Name: Isolierung von Primär Myofibroblasten aus Maus und Mensch Colon Tissue (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-10-12T19:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 59 s
Description: Lernen Sie die Isolierung primärer Myofibroblasten aus Maus- und menschlichem Kolongewebe durch enzymatische Verdauung und Kultivierung. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung stromaler Zellfunktionen in der gastroenterologischen Forschung.

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Diese Arbeit wurde vom National Institutes of Health Grants 5KO8DK085136-02 bis JY unterstützt.

1. Erhalten Colon Tissue Maus Ein Protokoll zum Tierversuch durchzuführen, detailliert die Gründe und Ziele der Forschung, vorgelegt und von unserem institutionellen Amt für Tierforschung Aufsicht genehmigt wurde. <ol><li> Euthanize die Maus mit inhalativen Isofluran durch Genickbruch folgte. </li><li> Machen Sie einen ventralen Mittellinienschnitt, Einfahren der Dünndarm entfernt und Identifizierung der Doppelpunkt. Fahren Sie die Blase und Gebärmutter (falls vorhanden), die seitlich und Identifizierung des Schambeins und schneiden Sie es mit einer feinen Schere, um den Mastdarm aus. </li><li> Präparieren Sie die dorsalen Mesenterium des Mastdarms aus der Dickdarm-und Dickdarm zu mobilisieren, die aus dem After, um den Blinddarm, und es durchschneiden, um den Darm aus dem Dünndarm zu trennen. </li><li> Man gibt die Probe in eiskalter phosphatgepufferter Kochsalzlösung (PBS). </li><li> Füllen Sie eine Spritze mit 10 ml eiskaltem PBS und spülen den Darm Lumen mehrmals, um den Inhalt zu löschen, dann schneiden Sie den Doppelpunkt open der Länge nach mit einer Schere. </li><li> Setzen Sie den Doppelpunkt in einem 50 ml konischen Röhrchen mit 20 ml eiskaltem PBS. Der Darm nicht in einer bestimmten Ausrichtung angeordnet werden. Waschen Sie den Doppelpunkt durch den Austausch des PBS, bis die Flüssigkeit klar ohne Feinstaub. </li></ol> Mensch Ein Protokoll für die menschliche Gewebe von chirurgischen Patienten zu erhalten, detailliert die Bedeutung der Erhalt dieser Gewebe sowie eine Bewertung der potenziellen Risiken und Vorteile, vorgelegt und von unserem institutionellen Amt des Human Research Protection Program genehmigt wurde. <ol><li> Forschungskooperation mit einem kolorektalen Chirurgen notwendig ist, um in der Lage, menschliches Gewebe für Ihre Forschung zu erhalten. Ein Protokoll der menschlichen Dickdarmgewebe zu erhalten, sollte eingereicht werden und die Ihr Institutional Review Board genehmigt werden. </li><li> Schriftliche Einverständniserklärung von dem Patienten vor dem chirurgischen Eingriff erhalten. </li><li> Der Chirurg wird einen Doppelpunkt Resektion im Stand durchführenard Mode. Sobald der Darm aus dem Patienten entfernt worden ist, wird die Probe sofort entnommen Pathologie. Eine 0,5 in voller Dicke Abschnitt Darmwand nicht für die pathologische Auswertung benötigt wird und wird unmittelbar auf eiskaltem PBS gelegt. Dieses Exemplar sollte nicht die Dickdarm-Mesenteriums und epiploicum Anhänge sollten ebenfalls entfernt werden, da das Vorhandensein von Fett wird die Verdauung beeinflussen. </li></ol> 2. Entblößen Epithelzellen <ol><li> Inkubieren der gesamten Maus Kolon in 25 ml 5 mM EDTA in HBSS (Raumtemperatur) in einem 50 ml konischen Röhrchen. Legen Sie die konische Röhrchen in einem 37 ° C Luft-Bad Schütteln (250 rpm) für 15 min. Nach 15 Minuten vorsichtig abgießen der Flüssigkeit und füllen Sie den Schlauch mit 25 ml 5 mM EDTA, wiederholen Sie für insgesamt 5 Wäschen. Für menschliche Dickdarm, nach Erhalt einer ½ Zoll-Streifen der Darmwand von der Pathologe schneiden den Doppelpunkt mit einer Schere in vier gleich große Stücke schneiden. Legen zwei der Stücke in einen 50 ml konischen Röhrchen undDie restlichen zwei Stücke von Dickdarm-Gewebe in einem separaten 50 ml konischen Röhrchen. Dann inkubiert mit 25 ml 5 mM EDTA in HBSS und führen Waschungen wie oben beschrieben. </li><li> Zweimal Spülen Sie den Dickdarm in 20 ml eiskaltem PBS. </li><li> Die Maus Dickdarmgewebe in eine neue 50 ml konischen Röhrchen, enthaltend 20 ml RPMI-5, 10 U Dispase und 2.000 U Kollagenase D (Raumtemperatur). Für den menschlichen Dickdarmgewebe, verwenden Sie die doppelte Menge an Dispase und Kollagenase (20 U Dispase, 4.000 U Kollagenase D). </li><li> Das Röhrchen wird in einem 37 ° C schütteln Luftbad vertikal ausgerichtet (Wenn horizontal platziert, es gibt zu viel Be-und Zellschäden). Schütteln bei 250 rpm für bis zu 60 min. Nach Kontakt mit dem Dispase und Collagenase D, wird der Dickdarmgewebe zu starten, um zu verdauen und die Dickdarmgewebe beginnt zu sehnig aussehen. Dies dauert in der Regel ca. 30 min. Wenn der Darm hat diese Erscheinung, entfernen den Dickdarm von den Enzymen. </li><li> Schütteln Sie jedes Rohr nach oben und unten 2-4 mal zu brechen das Gewebe. PEllet das Gewebe bei 200 × g in einer Tischzentrifuge (4 º C) für 5 min. Vorsichtig gießen Sie den Überstand und entsorgen. </li></ol> 3. Myofibroblasten Isolierung und Kultur <ol><li> Resuspendieren jedes Pellet durch Zugabe von 10 ml ACK-Lysepuffer (47 ° C). Zentrifuge wieder bei 200 g für 5 min (4 ° C), abgießen und den Überstand verwerfen. </li><li> Resuspendieren jedes Pellets durch Zugabe von 10 ml RPMI-5 mit einer Pipette. </li><li> Geben Hälfte der Zellsuspension (5 ml) über einen 70 &amp;mgr; m-Mesh-Sieb mit einer 10 ml Pipette in ein 100 mm TC-behandelten Teller. Dann fügen Sie weitere 15 ml RPMI-5. Wiederholen mit den verbleibenden 5 ml der Zellsuspension in einen anderen 100 mm TC-behandelten Teller. Eine Maus Doppelpunkt wird daher ergeben zwei 100 mm TC-behandelt Gerichte. Eine ½ Zoll-Streifen der menschlichen Dickdarmgewebe wird insgesamt vier 100-mm-TC-behandelt Gerichte ergeben. </li><li> Platzieren der Gewebekulturplatten in einer 10% CO 2-Inkubator bei 37 ° C Die Kulturbedingungen sind die gleichen foder Maus und humane primäre Zellen. </li><li> Nach 3 Std., sanft abwaschen nicht-adhärenten Zellen mit zwei Änderungen HBSS. Die Trümmer Floating sollte vorsichtig ausgewaschen werden. Adhärente Zellen epithelialen Zellen, Makrophagen und Myofibroblasten besteht. Eine Woche nach der Aussaat, Myofibroblasten nur teilen, Makrophagen und Epithelzellen altern nach dem ersten Durchgang. In frischem RPMI-5 und wachsen die Zellen in Zellkultur. </li><li> Die Zellen werden durch Trypsinierung für 5 min agiert und sind gespalten 02.01. </li></ol> Abkürzungen HBSS: Hank-Salzlösung; RPMI-5: Roswell Park Memorial Institute Medien; ACK: Ammonium-Chlorid-Kalium; FCS: fetales Kälberserum, TC-behandelt: Gewebekultur behandelt Lösungen ACK-Lysepuffer - (4,15 g NH 4 Cl, 0,5 g KHCO 3, 18,6 mg Na 2 EDTA, 400 ml H 2 O, pH-Wert auf 7,2-7,4 mit 1 N HCl). Filter sterilisierbare durch einen 0,2 um Filter und bei 4 ° C RPMI-5 - (bis 500 ml machen: 454,5 ml RPMI, 25 ml FCS, 5 ml 200 mM L-Glutamin, 5 ml 1 M HEPES, pH 7,4, 5 ml 100 mM Natrium-Pyruvat, 5 ml 100x Pen-Strep, 500 ml 50 mM B-ME in PBS).

<ol><li>Armaka, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenchymal+cell+targeting+by+TNF+as+a+common+pathogenic+principle+in+chronic+inflammatory+joint+and+intestinal+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">Mesenchymal cell targeting by TNF as a common pathogenic principle in chronic inflammatory joint and intestinal diseases.</a> J. Exp. Med. 205, 331-337 (2008).</li>
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<li>Yoo, J., Rodriguez Perez, C. E., Nie, W., Sinnett-Smith, J., Rozengurt, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+kinase+D1+mediates+synergistic+MMP-3+expression+induced+by+TNF-alpha+and+bradykinin+in+human+colonic+myofibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem.+Biophys.+Res.+Commun%22%5BJournal%5D)">Protein kinase D1 mediates synergistic MMP-3 expression induced by TNF-alpha and bradykinin in human colonic myofibroblasts.</a> Biochem. Biophys. Res. Commun. 413, 30-35 (2011).</li>
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<li>Hoang, B., Trinh, A., Birnbaumer, L., Edwards, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Decreased+MAPK-+and+PGE2-dependent+IL-11+production+in+Gialpha2-%2F-+colonic+myofibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Gastrointest.+Liver+Physiol%22%5BJournal%5D)">Decreased MAPK- and PGE2-dependent IL-11 production in Gialpha2-/- colonic myofibroblasts.</a> Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 292, G1511-G1519 (2007).</li>
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<li>Saada, J. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subepithelial+myofibroblasts+are+novel+nonprofessional+APCs+in+the+human+colonic+mucosa%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Subepithelial myofibroblasts are novel nonprofessional APCs in the human colonic mucosa.</a> J. Immunol. 177, 5968-5979 (2006).</li>
<li>Lahar, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+subepithelial+myofibroblasts+support+in+vitro+and+in+vivo+growth+of+human+small+intestinal+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Intestinal subepithelial myofibroblasts support in vitro and in vivo growth of human small intestinal epithelium.</a> PLoS One. 6, e26898(2011).</li>
</ol>

Autoren haben nichts zu offenbaren.

Die allgemeine Technik ist ähnlich wie bei der Verwendung von entweder Maus-oder menschlichen Kolon. Diese Technik kann auch verwendet werden, um Myofibroblasten aus dem Dünndarm zu isolieren. Konkrete Angaben zur Isolierung von Myofibroblasten aus 1. Maus und 2. menschlichen Dickdarm werden nachstehend erörtert. 1. Maus Colon Spülung des Dickdarms Maus wird durch Anbringen eines 4 in 16 g Popper stumpfendig Nadel an einem Ende des Dickdarms erleichtert. Dies hilft ...

Die Regelung der Funktionstrakt gastrointestinale (GI) ist mit komplexen, dynamischen Wechselwirkungen zwischen der Schleimhautschicht und der zugrunde liegenden Mesenchym. Diese Interaktionen dienen in der Regel, um die Homöostase aufrecht zu erhalten, kann aber auch auf die Entwicklung von Krankheitszuständen führen, unter pathologischen Bedingungen ein. Myofibroblasten sind eine Subpopulation von Stromazellen an der Epithelschicht, die in einer Umgebung mit parakrin Zell-Subpopulationen, um eine Reihe von kritischen Prozessen, die GI-Trakt Schleimhautregeneration, Reparatur und Fibrose 2 einschließen, regeln, welcher unterhalb kommunizieren. Die 18Co-Zelllinie ist ein Beispiel eines menschlichen Kolon-Myofibroblasten Zelllinie, die weit verbreitet ist, um Myofibroblasten Funktion zu studieren, weil es viele der Eigenschaften von Primär in situ Myofibroblasten Aktien. Dazu gehören die Proteinexpression von einer glatten Muskel-Aktin (α-SMA) und Vimentin, als auch die Expression einer ReiheZelloberflächenrezeptoren wie der epidermale Wachstumsfaktor-Rezeptor oder Rezeptoren für Lysophosphatidsäure 3,4. Da dieser gemeinsamen Merkmale ultra sowie Ähnlichkeiten in biologischen Funktion 5 hat die 18Co-Zelllinie wurde ausgiebig verwendet, um Myofibroblasten Funktion im Zusammenhang mit vielen Krankheitszuständen, wie entzündliche Darmerkrankung oder Darmkrebs 3,6 studieren. Allerdings gibt es inhärente Beschränkungen und Bedenken bei der Verwendung einer Zelllinie. Dazu gehören genotypische Instabilität über die Zeit, die Zelllinien aus Primärzellen unterscheidet, Änderung der Phänotyp und die biologische Funktion der Zelle, einschließlich Wachstumsraten und Wechselwirkungen mit anderen Zellpopulationen. Zellinien fehlt auch die normalen Komponenten der GI-Mikroumgebung (Epithel-, Stroma-und Gefäß Komponenten), die eine große Einschränkung ihrer Verwendung ist. Daher sind die Schlussfolgerungen aus experimentellen Zelllinie gezogen Forschung erfordert eine weitere Bestätigung, um die ri reduzierensk von Fehlinterpretationen. Primäre Myofibroblasten aus Mensch und Maus Dickdarmgewebe erhalten werden, um in einer Zelllinie 7 identifiziert experimentellen Ergebnisse zu bestätigen. Das Verfahren wurde ursprünglich von Mahida, et al. 8 beschrieben, und unser Protokoll ist eine von vielen gut beschriebene Techniken, die verwendet werden kann, um primäre Myofibroblasten aus Maus und Mensch Colon 9 isolieren. Für jede Maus-Modell der Dickdarmerkrankung, kann diese Technik verwendet, um primäre Myofibroblasten zu isolieren, um zu studieren, wie sie mit Nachbarzellen interagieren, oder dazu beitragen, sowohl normalen oder pathologischen GI 10,11 verarbeitet werden. Diese Technik kann verwendet werden, um zu untersuchen, wie Myofibroblasten tragen zur Heilung, Fibrose, und die Entwicklung von kolorektalen Adenomen und Karzinomen der Schleimhaut werden. Primär Myofibroblasten auch von humanen Kolon-Gewebe, das bei der Operation für gutartige (entzündliche Darmerkrankung, Strikturen, Divertikulitis) oder bösartig c reseziert worden ist, erhalten werden,ie Bedingungen. Isolierten primären Zellen aus Mensch und Maus Dickdarmgewebe in Zellkultur gezüchtet und über eine begrenzte Anzahl von Durchgängen verwendet werden.

<table><tbody><tr><td>Name des Reagenzes</td><td>Firma</td><td>Katalognummer</td><td>Bemerkungen (optional)</td></tr><tr><td>Dispase I</td><td>Invitrogen/GIBCO</td><td>#17105-041</td><td></td></tr><tr><td>Kollagenase D</td><td>Roche</td><td>#1 088 858</td><td></td></tr><tr><td>4 in, 16 G Popper stumpfe Nadel</td><td>Fisher</td><td>#14-825-16K</td><td></td></tr></tbody></table>

isolierung von primär myofibroblasten aus maus und mensch colon tissue

Isolation of Primary Myofibroblasts from Mouse and Human Colon Tissue

Die Myofibroblasten eine Stromazellen des Magen-Darm-Trakt (GI), die gewonnen hat beträchtliche Aufmerksamkeit für seine kritische Rolle in vielen Funktionen GI. Während mehrere Myofibroblasten Zelllinien sind im Handel erhältlich, diese Zellen in vitro zu untersuchen, Forschungsergebnisse aus einer Zelllinie, experimentelle Zellkulturbedingungen ausgesetzt haben inhärente Beschränkungen aufgrund der übermäßig reduktionistischen Art der Arbeit. Einsatz von Primär Myofibroblasten bietet einen großen Vorteil in Bezug auf die Bestätigung in einer Zelllinie identifiziert experimentellen Befunde. Isolierung von primären Myofibroblasten aus einem Tiermodell erlaubt die Untersuchung von Myofibroblasten unter Bedingungen, die stärker nachzuahmen der Krankheitszustand untersucht. Isolation von Primär-Myofibroblasten aus menschlichen Dickdarmgewebe bietet wohl die wichtigsten experimentellen Daten, da die Zellen kommen direkt von Patienten mit der Grunderkrankung. Wir beschreiben eine etablierte Technik, die u seintilized Primär Myofibroblasten sowohl aus Maus und Mensch Dickdarmgewebe zu isolieren. Diese isolierten Zellen wurden charakterisiert, um alpha-smooth muscle Aktin und Vimentin-positiven und-negativen Desmin, im Einklang mit subepithelialen Myofibroblasten Darm sein. Primär Myofibroblasten Zellen in Zellkultur gezüchtet und für experimentelle Zwecke über eine begrenzte Anzahl von Durchgängen verwendet werden.

Einmal isoliert, primäre menschliche Myofibroblasten in Zellkultur gezüchtet und über eine begrenzte Anzahl von Durchgängen verwendet werden (bis zu Passage 4). Diese Zellen werden als ein-smooth muscle Aktin und Vimentin positiv gekennzeichnet, und Desmin-negativ (Abbildung 1A), im Einklang mit Darm subepithelialen Myofibroblasten 5,7. Sie haben auch eine charakteristische stern Morphologie (Fig. 1B). Primär Myofibroblasten kann dann verwendet werden, um eine Zelllinie ident...

Die Myofibroblasten ist ein einfluss Stromazellen des Magen-Darm-Trakt, die wichtige physiologische Prozesse in normalen und Krankheitszustände regelt. Wir beschreiben eine Technik, die für die Isolierung von primären Myofibroblasten aus Maus und menschlichen Dickdarmgewebe, das für die in vitro Experimente verwendet werden können, ermöglicht.

Isolierung von Primär Myofibroblasten aus Maus und Mensch Colon Tissue

The myofibroblast is  a stromal cell of the gastrointestinal (GI) tract that has been gaining  considerable attention for its critical role in many GI ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, primäre Myofibroblasten aus Kolongewebe von Maus oder Mensch zu isolieren. Dies wird erreicht, indem zunächst das Kolon vom spendenden Tier entnommen und mit eiskalter PBS-Lösung gespült wird. Anschließend werden die Epithelzellen durch eine Abfolge von Spülschritten und enzymatischen Behandlungen abgetragen.Dann wird die epitheliale Zellsuspension auf Zellkulturschalen ausplattiert und zur Inkubation freigegeben. Schließlich werden die nicht-anklebenden Zellen abgewaschen, um die Myofibroblasten zu isolieren. Letztendlich können Ergebnisse erzielt werden, die die Isolierung primärer Myofibroblasten-Zellen mittels immunhistochematischer Färbung zeigen. Das Verfahren wird gemeinsam mit einem Techniker aus meinem Labor demonstriert.Alle Experimente wurden von der University of California Office of Animal Research Oversight genehmigt und an einer Maus durchgeführt, die durch inhaliertes Isofluran und anschließende Halswirbelzerreißung euthanasiert wurde. Beginnen Sie mit einem ventralen medianen Schnitt. Ziehen Sie den Darm zur Seite, lokalisieren Sie den Colon, ziehen Sie die Harnblase lateral zur Seite und identifizieren Sie da

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Forschung

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Biology

Biologie

Die wichtigsten adhärenten Zelltypen, die aus dem menschlichen Muskel stammen, sind myogene Zellen und Fibroblasten. Hierbei werden Zellpopulationen mittels magnetisch aktivierter Zellsortierung auf Basis des CD56-Antigens angereichert. Die anschließende Immunmarkierung mit spezifischen Antikörpern und der Einsatz von Bildanalysetechniken ermöglicht die Quantifizierung der zytoplasmatischen und nukleären Eigenschaften in einzelnen Zellen.

Isolierung und Charakterisierung von Quantitative Immunzytochemische Primäre myogenen Zellen und Fibroblasten aus menschlichen Skelettmuskel

Wir präsentieren ein Protokoll zur Erzeugung von Primärkulturen von murinen und humanen ösophagealen Stromazellen mit einem Myofibroblasten-Phänotyp. Kultivierte Zellen haben eine spindelförmige Morphologie, exprimieren α-SMA und Vimentin und es fehlen epitheliale, hämatopoetische und endotheliale Zelloberflächenmarker. Charakterisierte Stromazellen können in funktionellen Studien zu epithelial-stromalen Wechselwirkungen verwendet werden.

Isolierung von Myofibroblasten aus Maus und Mensch Ösophagus

Es wird ein Protokoll zur Extraktion primärer menschlicher Zellen aus chirurgischem Dickdarmtumor und normalem Gewebe beschrieben. Die isolierten Zellen werden dann auf weichen, elastischen Substraten (Polyacrylamid-Hydrogelen) kultiviert, die durch ein extrazelluläres Matrixprotein funktionalisiert und mit fluoreszierenden Mikrokügelchen eingebettet sind. Die Traktionszytometrie wird durchgeführt, um zelluläre kontraktile Spannungen zu beurteilen.

Isolierung von primären humanen Colon Tumorzellen von Surgical Gewebe und Kultivierung sie direkt auf weiche elastische Substrate für Traction Cytometry

Hier beschreiben wir eine einfache Methode zur Isolierung von räumlich unterschiedlichen murinen Dickdarmepithel-Oberflächenzellen von den darunter liegenden Krypten-Basiszellen.

Kryoschneiden Verfahren zur Mikrodissektion von Murine Kolonschleimhaut

Hier wird ein Protokoll zur Isolierung und Etablierung von primären Fibroblasten/Myofibroblasten (MF)-Kulturen aus gefrorenen Magen-, kleinen Darm- und Dickdarmgewebe-liefernden Zellen mit einem MF-Phänotyp vorgestellt. Diese Zellen exprimieren CD90, α-SMA und Vimentin. MFs können für eine Vielzahl von funktionellen Assays verwendet werden, einschließlich enzymatischer Aktivität und Zytokinproduktion.

Isolierung von CD 90+ Fibroblasten / Myofibroblasten von Human Gefrorene Magen-Darm-Proben

Das Ziel dieses Protokolls ist es, mononukleäre Zellen, die in der Lamina-Propria des Dickdarms durch enzymatische Verdauung des Gewebes mit Kollagennase leben zu isolieren. Dieses Protokoll ermöglicht die effiziente Isolierung mononukleativer Zellen, was zu einer Einzelzellsuspension führt, die wiederum für eine robuste Immunphenotypisierung verwendet werden kann.

Isolierung von Lamina Propria Mononukleären Zellen aus murine Colon mit Kollagenase E

Wir präsentieren ein Protokoll, um primäre erwachsene Fibroblasten auf einfache, schnelle und zuverlässige Weise zu isolieren, die von Anfängern (z. B. Studenten) durchgeführt werden können. Das Verfahren kombiniert enzymatische Gewebeverdauung und mechanische Agitation mit Ultraschallwellen, um primäre Fibroblasten zu erhalten. Das Protokoll kann leicht an spezifische experimentelle Anforderungen (z.B. menschliches Gewebe) angepasst werden.

Ultraschall-augmented Primary Adult Fibroblast Isolation

Myoblaste sind proliferierende Vorläuferzellen, die sich unterscheiden, um polynukleierte Myotuben und schließlich Skelettmuskelmyofien zu bilden. Hier stellen wir ein Protokoll zur effizienten Isolierung und Kultur von primären Myoblasten von jungen erwachsenen Mausskelettmuskeln vor. Die Methode ermöglicht molekulare, genetische und metabolische Studien von Muskelzellen in der Kultur.

Isolierung und Differenzierung von primären Myoblasten von Mausskelettmuskelexplants

Die Gewinnung einer reinen Population von Fibroblasten ist entscheidend für die Untersuchung ihrer Rolle bei der Wundreparatur und Fibrose. Beschrieben ist eine detaillierte Methode, um Fibroblasten und Myofibroblasten von unverletzten und verletzten Mausherzen zu isolieren, gefolgt von der Charakterisierung ihrer Reinheit und Funktionalität durch Immunfluoreszenz, RTPCR, Fluoreszenz-unterstützte Zellsortierung und Kollagen-Gel-Kontraktion.

Isolierung und Charakterisierung von adulten Herz-Fibroblasten und Myofibroblasten

In diesem Protokoll beschreiben wir, wie man murine primäre epitheliale Dickdarmmonoschichten direkt aus Darmkrypten erzeugt. Wir bieten experimentelle Ansätze zur Erzeugung konfluenter Monoschichten auf permeablen Filtern, konfluente Monoschichten für die Kratzwundeheilung und biochemische Studien sowie spärliche und konfluente Monoschichten für die Immunfluoreszenzanalyse.

Erzeugung von murinen primären Dickdarmepithel-Monoschichten aus Darmkrypten

Hier stellen wir ein Protokoll zur Isolierung des murinen intestinalen Mesenchyms, einschließlich Telozyten, vor. Diese können für verschiedene Anwendungen verwendet werden, z. B. für die Kokultur mit Organoiden aus der Maus oder vom Menschen, um das Wachstum zu unterstützen und die Situation im ursprünglichen Gewebe besser widerzuspiegeln.

Isolierung des murinen intestinalen Mesenchyms, was zu einer hohen Ausbeute an Telozyten führt

Lernen Sie die Isolierung primärer Myofibroblasten aus Maus- und menschlichem Kolongewebe durch enzymatische Verdauung und Kultivierung. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung stromaler Zellfunktionen in der gastroenterologischen Forschung.

Isolierung von Primär Myofibroblasten aus Maus und Mensch Colon Tissue

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