Name: Murine Cervical Herztransplantation Modell mithilfe eines modifizierten Cuff-Technik (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-12T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 32 s
Description: Erfahren Sie die modifizierte Cuff-Technik für die murine zervikale Herztransplantation zur Untersuchung immunologischer Reaktionen und Ischämie-Reperfusions-Verletzungen. Diese Methode ermöglicht über 1.000 erfolgreiche Transplantationen.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Die Autoren erklären, dass sie keine konkurrierenden finanziellen Interessen haben.

Tiere werden in einem barrierefreie Einrichtung Erreger untergebracht. Alle Tiere erhalten menschlicher Obhut in Übereinstimmung mit den &quot;Principals of Laboratory Animal Care&quot; von der National Society for Medical Research &quot;und dem&quot; Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren &quot;der Nationalen Akademie der Wissenschaften vorbereitet formuliert und veröffentlicht von der National Institutes of Health (NIH Publikation nicht. 86-23, überarbeitet 1985). Alle Versuche werden vom Bundesministerium für Bildung, Wissenschaft und Kultur genehmigt. 1. Empfänger Vorbereitung <ol><li> Betäuben die Empfängertier mit einer im Injektion von Xylazin (5 mg / kg Körpergewicht) und Ketamin (100 mg / kg Körpergewicht). </li><li> Entfernen Sie alle Haare der seitlichen Halsbereich des Tieres und schrubben das Operationsfeld dreimal mit chlorhexdine. </li><li> Platzieren Sie die Maus in Rückenlage auf dem Operationsfeld. </li><li> Weiter machen einen Hautschnitt von der Halsschlag incision auf der rechten Unterkiefer. </li><li> Anschließend unverblümt zu mobilisieren, die rechte äußere Halsschlagader (EJV) und teilen die Zweige zwischen Ligaturen. </li><li> Dann teilen Sie die EJV zwischen Ligaturen und achten Sie auf eine ausreichende Länge zu verlassen, um den proximalen Stumpf über die Manschette Körper umzustülpen. </li><li> Nächstes entfernen Sie den rechten Lappen der Unterkieferspeicheldrüse. </li><li> Für die venöse Anastomose passieren das proximale Ende des EJV durch die Polyethylen Manschette und befestigen Sie es am Griff der Manschette mit einem Mikroklemme. </li><li> Entfernen Sie die Ligatur am Ende des Schiffes, umstülpen, das Lumen über der Manschette und fixieren Sie es mit einem 8-0 Seidenschleife (Abbildung 1a). </li><li> Anschließend durchschneiden das Recht M. sternocleidomastoideus mit bipolaren Kauter, um Zugang zu der A. carotis communis zu gewinnen. </li><li> Weiter zu mobilisieren, die Arteria carotis communis und schneiden das Schiff zwischen den Ligaturen. </li><li> Weiter zu mobilisieren, die Arteria carotis communis und schneiden das Schiff zwischen den Ligaturen. </li><li> Führen Sie die distal Ende des Schiffes durch die Manschette und fixieren Sie es mit der Arterienklemme. </li><li> Entfernen Sie die Ligatur am Ende des Schiffes und dehnen das Lumen mit Gefäß Dilatatoren. Weiter, in Analogie zu der EJV Evert die Arterie über der Manschette und fixieren Sie es mit einem 8-0 Seidenschleife. </li></ol> 2. Herz Beschaffung <ol><li> Betäuben die Spendermaus mit einer im Injektion von Xylazin (5 mg / kg Körpergewicht) und Ketamin (100 mg / kg Körpergewicht). Dann entfernen Sie alle Haare der Bauchbereich des Tieres. Schrubben das Operationsfeld drei Mal mit chlorhexdine. Nächsten Ort die Maus in Rückenlage auf dem Operationsfeld wie zuvor beschrieben. </li><li> Nach einer Mittellinie Bauchschnitt, schieben Sie der Eingeweide mit Q-Tips auf der linken Seite, um die untere Hohlvene (IVC) aus. </li><li> Injizieren 400 ul einer 1: 4 Heparin-Natrium-Lösung in den IVC für Heparinisierung. </li><li> Führen Sie eine Thorakotomie und klappen Sie den vorderen Brustwand über kranial nach gewinneness zum Herzen. </li><li> Dann entfernen Sie den Thymus und Entlüftung machen Einschnitte in der linken und der rechten oberen Hohlvene. </li><li> Anschließend versorgen die Herzretrograd mit 4 ° Celsius HTK-Lösung durch Kanülierung der Aortenbogen mit einem 27 G Spritze auf der Ebene der brachiozephalen Zweig. </li><li> Ligieren den unteren und oberen Hohlvene mit 8-0 Seide und teilen sie distal zu den Ligaturen. </li><li> Weiter teilen den Aortenbogen auf dem Niveau des vorherigen Kanülierung und sezieren die kostenlose Lungen Stamm und teilen sie so weit distal wie möglich. </li><li> Im Anschluss daran binden die Lungenvenen mit einer Schüttligation und teilen sie distal zu den Ligaturen. </li><li> Schließlich entfernen Sie das Herz aus der Entnahmestelle und speichern sie in 4 ° Celsius HTK-Lösung (Abbildung 1b). </li></ol> 3. Implantation <ol><li> Legen Sie die Herzen Transplantat im Empfängerhalsbereich in einer umgekehrten Position (Abbildung 1c </strong&gt;). </li><li> Weiter ziehen Sie den Stamm der Lungen Herz über die Vene Manschette Konstrukt des Empfängers und fixieren Sie sie mit einem Seidenschleife (Abbildung 1d). </li><li> Führen Sie die Anastomose zwischen der Aorta des Transplantats und dem umgestülpten Arterie des Empfängertieres in der gleichen Weise (Abbildung 1e). </li><li> Anschließend entfernen Sie die venöse Klemme zuerst, gefolgt von der Arterienklemme. Das Herz wird reperfundiert und beginnt innerhalb von 1-2 min zu schlagen. Während der Reperfusion zu befeuchten das Herz mit warm (35 ° Celsius) Kochsalzlösung. </li><li> Schließlich schließen Sie die OP-Wunde mit 6-0 kontinuierliche Nähte (Abbildung 1e). </li></ol> 4. Postoperative Behandlung, Endpoint <ol><li> Gib bis zu 0,3 ml physiologischer Kochsalzlösung ip postoperativ für Flüssigkeitsersatz. </li><li> Legen Sie das Tier unter einer Wärmelampe bis Erwachen aus der Narkose. </li><li> Einmal wach, bringen Sie das Tier mit dem Gehäuse Anlage, wo sie Nahrung und Wasser ad libitum erhalten. </li><li> Auf minimize Schmerzen während der ersten 7 Tage nach der Operation zu verabreichen Carprofen (4 mg / kg alle 12 Stunden subkutan (sc). Darüber hinaus geben Buprenorphin (0,1 mg / kg) unmittelbar nach der Operation alle 12 Stunden für 5 Tage. </li><li> Erhalten das Gewicht (g) jedes Empfängertier wöchentlich, um für die richtige Nahrungsaufnahme zu beurteilen. Wenn es Hinweise auf mehr als 10-15% Gewichtsverlust im Vergleich zu Gewicht bei der Operation-date, Apathie, Lähmung oder eine sehr zurückgebogen, zu opfern das Tier mit Terminal-Isofluran Inhalation vor dem Erreichen der klinischen Endpunkt. Auch das Tier zu opfern, nach dem Herzen abgelehnt wurde. </li></ol>

<ol><li>Brandacher, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tetrahydrobiopterin+compounds+prolong+allograft+survival+independently+of+their+effect+on+nitric+oxide+synthase+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Tetrahydrobiopterin compounds prolong allograft survival independently of their effect on nitric oxide synthase activity.</a> Transplantation. 81, 583-589 (2006).</li>
<li>Schneeberger, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+secretory+leukocyte+protease+inhibitor+%28SLPI%29+on+ischemia%2Freperfusion+injury+in+cardiac+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Transplant%22%5BJournal%5D)">The effect of secretory leukocyte protease inhibitor (SLPI) on ischemia/reperfusion injury in cardiac transplantation.</a> Am J Transplant. 8, 773-782 (2008).</li>
<li>Sucher, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((IDO+and+regulatory+T+cell+support+are+critical+for+cytotoxic+T+lymphocyte-associated+Ag-4+Ig-mediated+long-term+solid+organ+allograft+survival%5BTitle%5D)+AND+%22JImmunol%22%5BJournal%5D)">IDO and regulatory T cell support are critical for cytotoxic T lymphocyte-associated Ag-4 Ig-mediated long-term solid organ allograft survival.</a> JImmunol. 188, 37-46 (2012).</li>
<li>Yamashita, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heme+oxygenase-1+is+essential+for+and+promotes+tolerance+to+transplanted+organs%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+J%22%5BJournal%5D)">Heme oxygenase-1 is essential for and promotes tolerance to transplanted organs.</a> FASEB J. 20, 776-778 (2006).</li>
<li>Kienzl, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proteomic+profiling+of+acute+cardiac+allograft+rejection%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Proteomic profiling of acute cardiac allograft rejection.</a> Transplantation. 88, 553-560 (2009).</li>
<li>Aurora, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Registry+of+the+International+Society+for+Heart+and+Lung+Transplantation%3A+tenth+official+pediatric+lung+and+heart%2Flung+transplantation+report--2007%5BTitle%5D)+AND+%22J+Heart+Lung+Transplant%22%5BJournal%5D)">Registry of the International Society for Heart and Lung Transplantation: tenth official pediatric lung and heart/lung transplantation report--2007.</a> J Heart Lung Transplant. 26, 1223-1228 (2007).</li>
<li>Häyry, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+allograft+vasculopathy+new+strategies+for+drug+development%5BTitle%5D)+AND+%22Transplant+Proc%22%5BJournal%5D)">Chronic allograft vasculopathy new strategies for drug development.</a> Transplant Proc. 30, 3989-3990 (1998).</li>
<li>Hosenpud, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immune+mechanisms+of+cardiac+allograft+vasculopathy+an+update%5BTitle%5D)+AND+%22Transpl+Immunol%22%5BJournal%5D)">Immune mechanisms of cardiac allograft vasculopathy an update.</a> Transpl Immunol. 1, 237-249 (1993).</li>
<li>Libby, P., Pober, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+rejection%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">Chronic rejection.</a> Immunity. 14, 387-397 (2001).</li>
<li>Kouwenhoven, E. A., de Bruin, R. W., Heemann, U. W., Marquet, R. L., Ijzermans, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Late+graft+dysfunction+after+prolonged+cold+ischemia+of+the+donor+kidney+inhibition+by+cyclosporine%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Late graft dysfunction after prolonged cold ischemia of the donor kidney inhibition by cyclosporine.</a> Transplantation. 68, 1004-1010 (1999).</li>
<li>Kouwenhoven, E. A., Ijzermans, J. N., de Bruin, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Etiology+and+pathophysiology+of+chronic+transplant+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22Transpl+Int%22%5BJournal%5D)">Etiology and pathophysiology of chronic transplant dysfunction.</a> Transpl Int. 13, 385-401 (2000).</li>
<li>Chen, Z. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+technique+of+cervical+heterotopic+heart+transplantation+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">A technique of cervical heterotopic heart transplantation in mice.</a> Transplantation. 52, 1099-1101 (1991).</li>
<li>Huang, X., Chen, D., Chen, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((%5BA+modified+model+of+cervical+heterotopic+cardiac+transplantation+for+chronic+rejection+research%5D%5BTitle%5D)+AND+%22Zhongguo+Xiu+Fu+Chong+Jian+Wai+Ke+Za+Zhi%22%5BJournal%5D)">[A modified model of cervical heterotopic cardiac transplantation for chronic rejection research].</a> Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi. 22, 1508-1510 (2008).</li>
<li>Hasegawa, T., Visovatti, S. H., Hyman, M. C., Hayasaki, T., Pinsky, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heterotopic+vascularized+murine+cardiac+transplantation+to+study+graft+arteriopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Heterotopic vascularized murine cardiac transplantation to study graft arteriopathy.</a> Nat Protoc. 2, 471-480 (2007).</li>
<li>Wang, C. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Suppression+of+murine+cardiac+allograft+arteriopathy+by+long-term+blockade+of+CD40-CD154+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Suppression of murine cardiac allograft arteriopathy by long-term blockade of CD40-CD154 interactions.</a> Circulation. 105, 1609-1614 (2002).</li>
<li>Matsuura, A., Abe, T., Yasuura, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simplified+mouse+cervical+heart+transplantation+using+a+cuff+technique%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Simplified mouse cervical heart transplantation using a cuff technique.</a> Transplantation. 51, 896-898 (1991).</li>
<li>Tomita, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+technique+of+heterotopic+cervical+heart+transplantation+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Improved technique of heterotopic cervical heart transplantation in mice.</a> Transplantation. 64, 1598-1601 (1997).</li>
<li>Zhou, Y., Gu, X., Xiang, J., Qian, S., Chen, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparative+study+on+suture+versus+cuff+anastomosis+in+mouse+cervical+cardiac+transplant%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Clin+Transplant%22%5BJournal%5D)">A comparative study on suture versus cuff anastomosis in mouse cervical cardiac transplant.</a> Exp Clin Transplant. 8, 245-249 (2010).</li>
<li>Corry, R. J., Winn, H. J., Russell, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Primarily+vascularized+allografts+of+hearts+in+mice.+The+role+of+H-2D%2C+H-2K%2C+and+non-H-2+antigens+in+rejection%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Primarily vascularized allografts of hearts in mice. The role of H-2D, H-2K, and non-H-2 antigens in rejection.</a> Transplantation. 16, 343-350 (1973).</li>
<li>Kamada, N., Calne, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat.+Technique+using+cuff+for+portal+vein+anastomosis+and+biliary+drainage%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Orthotopic liver transplantation in the rat. Technique using cuff for portal vein anastomosis and biliary drainage.</a> Transplantation. 28, 47-50 (1979).</li>
<li>Zimmermann, F. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Techniques+for+orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat+and+some+studies+of+the+immunologic+responses+to+fully+allogeneic+liver+grafts%5BTitle%5D)+AND+%22Transplant+Proc%22%5BJournal%5D)">Techniques for orthotopic liver transplantation in the rat and some studies of the immunologic responses to fully allogeneic liver grafts.</a> Transplant Proc. 11, 571-577 (1979).</li>
<li>Maglione, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Donor+pretreatment+with+tetrahydrobiopterin+saves+pancreatic+isografts+from+ischemia+reperfusion+injury+in+a+mouse+model%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Transplant%22%5BJournal%5D)">Donor pretreatment with tetrahydrobiopterin saves pancreatic isografts from ischemia reperfusion injury in a mouse model.</a> Am J Transplant. 10, 2231-2240 (2010).</li>
<li>Heron, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+technique+for+accessory+cervical+heart+transplantation+in+rabbits+and+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Actapathologica+et+microbiologica+Scandinavica+Section+A%2C+Pathology%22%5BJournal%5D)">A technique for accessory cervical heart transplantation in rabbits and rats.</a> Actapathologica et microbiologica Scandinavica Section A, Pathology. 79, 366-372 (1971).</li>
</ol>

Diese Studie wurde gefördert durch das Stipendium #207 des Medizinischen Forschungsfonds Tirol, Stipendium #2010022010 des MUI-START Förderungsprogramms der Medizinischen Universität Innsbruck.

Ablehnung der gefäß Allografts bringt eine Fülle von verschiedenen Schritten, die nur unzureichend mit in-vitro-Modellen bewertet werden können. Phänomene wie die Sensibilisierung von Empfängern, die Antigenprozessierung in sekundäre lymphatische Organe, sondern auch die Differenzierung und Proliferation von immunkompetenten Zellen sind dadurch besser in vivo. Tiermodelle sind damit das ideale Werkzeug für translationale Forschung 16. Mausmodelle stellen immer noch den Goldstandard in der Gr...

Herztransplantation stellt die Therapie der Wahl bei Patienten mit verschiedenen Endstadium Herzerkrankungen. Fortschritte in der chirurgischen Techniken, effektiver Prophylaxe von Infektionen und neuartige Immunsuppressiva führte zu deutlich verbesserten Ergebnis der Organtransplantation 6. Doch langfristige Transplantatüberleben wurde nicht konsequent in den letzten Jahren 7 verbessert. Chronische Abstoßung, gekennzeichnet durch Transplantat-Arteriosklerose ist weiterhin ein großes Hindernis für die langfristige Überleben des Transplantats 8-11 sein. Das Modell der heterotopen Herztransplantation bei Mäusen eine wichtige und gültige Werkzeug zur Analyse von immunologischen Mechanismus während der akuten als auch chronischen Abstoßung 12-15. Bis heute die häufigste Transplantationsmodell ist immer noch die Bauch Maus Herztransplantation mit der Nahttechnik. Die aufsteigenden Aorta des Spenderherzens an die eine Anastomosebdominal Aorta und der Lungenarterie ist an der unteren Hohlvene des Empfängers anastomosiert. Viel von der mikro Schwierigkeit des Naht Modell basiert auf der geringen Größe der Gefäße, die genäht werden 16,17 basiert. Im Gegensatz zu dem Nahtmaterial-Modell wird das Herz in den Halsbereich des Empfängers, wo die äußere Jugularvene wird zur Lungenarterie und der Arteria carotis communis die Aorta anastomosiert des Spenders angeordnet. Das Grundprinzip der Entwicklung der Halsherztransplantation Modell mit Hilfe der Manschette Technik war es, ein Tiermodell, der hohen Erfolgsraten mit grundlegenden mikrochirurgischen Fähigkeiten, die breite Anwendung dieses Modells erlauben wird ermöglicht. Die Hauptvorteile dieses Verfahrens sind die deutlich weniger auftritt Anastomose verbundenen Komplikationen wie Blutungen und Thrombosen im Vergleich zu dem Fadenmodell 18.

<table><tbody><tr><td>Yasargil Clip Mini Permanent 7 mm</td><td>Aesculap</td><td>FE720K</td><td></td></tr><tr><td>Mikro Gefäßclip</td><td>S & T</td><td>B1 00396 V</td><td></td></tr><tr><td>Mikroskopschere</td><td>FST</td><td>14075-11</td><td></td></tr><tr><td>Behälterdilatator</td><td>S & T</td><td>D-5a.2 00125</td><td></td></tr><tr><td>Mikrozange</td><td>FST</td><td>Dumont 11271- 30</td><td></td></tr><tr><td>Clipapplikator</td><td>S & T</td><td>CAF-4 00072</td><td></td></tr><tr><td>Mikrogefäß-Clip</td><td>S & T.</td><td>B1 00396 V</td><td></td></tr></tbody></table>

murine cervical herztransplantation modell mithilfe eines modifizierten cuff-technik

Murine Cervical Heart Transplantation Model Using a Modified Cuff Technique

<html> Mausmodelle sind von besonderem Interesse in der Forschung seit einer Vielzahl von monoklonalen Antikörpern und kommerziell Inzucht definiert und Knockout-Stämme sind in-vivo-Studien Mechanismus durchzuführen. Während Herztransplantation Modelle mit einer Nahttechnik wurden zunächst erfolgreich an Ratten entwickelt wurde, war die Übersetzung in eine ebenso weit verbreitete gebrauchte murine Äquivalent nie aufgrund der technischen Komplexität der mikrochirurgischen Verfahren erreicht. Im Gegensatz dazu wurden nicht-Nahtmanschette Techniken auch bei Ratten ursprünglich entwickelt, erfolgreich für die Verwendung in Mäusen 1-3 angepasst. Diese Technik für Revaskularisierung umfasst zwei Hauptschritte I) Umstülpen des Empfängergefäßes über einen Polyethylen Manschette; II) Ziehen des abgebenden Schiffes über die früher umgestülpt Empfängergefäßes und hielt ihn an Ort und Stelle mit einer umlaufenden Krawatte. Dies gewährleistet eine Kontinuität der Endothelschicht, kurze Betriebszeit und sehr hohe Durchgängigkeitsraten 4. t &quot;&gt; Unter Verwendung dieser Technik für die vaskuläre Anastomose führten wir mehr als 1.000 zervikalen Herztransplantationen mit einer Erfolgsquote von 95%. arterielle Zufluss der Arteria carotis communis und das proximal Aortenbogen wurden anastomosiert was eine retrograde Perfusion des transplantierten Herzens. für venöse Drainage wurde die Lungenarterie des Transplantats mit der externen Halsschlagader des Empfängers 5 anastomosiert. Hier stellen wir weitere Einzelheiten dieser Technik, um das Video zu ergänzen.

Abbildung 2 zeigt repräsentative Überlebensdaten von Herzallotransplantaten von BALB / c-Spendern nach Transplantation in vollständig übereinstimm MHC C57BL / 6 Empfängern. Herzen werden an Tag 7 ± 1 nach der Transplantation abgelehnt. Finger Palpation des transplantierten Allograft ist eine empfindliche Methode, um den zeitlichen Verlauf der Transplantatabstoßung zu erkennen. Alle syngenen Herztransplantationen in unserer Serie durchgeführt lebt auf unbestimmte Zeit (&gt; 150 Tage). <p class="jove_...

Die murine Gebärmutterhalskrebs Herztransplantation Modell ist für immunologische sowie Ischämie Reperfusionsschaden Studien gut geeignet. Wir modifizierten das Verfahren mit einem nicht-Nahttechnik und Manschette durchgeführt mehr als 1.000 erfolgreiche Transplantationen mit diesem Ansatz. Hier stellen wir weitere Einzelheiten dieser Technik, um das Video zu ergänzen.

Murine Cervical Herztransplantation Modell mithilfe eines modifizierten Cuff-Technik

Mouse models are of special interest in research since a wide variety of monoclonal antibodies and commercially defined inbred and knockout strains are ...

Ich bin UBA aus dem Daniel KY-Forschungslabor der Abteilung für Viszerale Transplantations- und Thoraxchirurgie der Medizinischen Universität Ensberg. Heute werden wir Ihnen ein murines heterotopes Herztransplantationsmodell zeigen. Unter Verwendung einer modifizierten Cuff-Technik wird das Empfängertier mit einer intramuskulären Injektion von INE und Ketamin anästhesiert.Danach wird das gesamte Haar des lateralen zervikalen Bereichs entfernt und das Operationsfeld dreimal mit Chlorhexidin abgerieben. Anschließend wird das Operationsfeld vorbereitet und das Tier in Rückenlage auf dem Operationsfeld platziert; das Spendermaus wird mittels intramuskulärer Injektion mit Xylazin und Ketamin anästhesiert. Danach wird das gesamte Haar des Bauchbereichs der Empfänger entfernt und das Operationsfeld dreimal mit Chlorhexidin abgerieben.Anschließend wird das Operationsfeld präpariert und das Tier in Rückenlage auf dem Operationsfeld positioniert. Wie in dieser Abfolge gezeigt, werden kardiale Carlo-Transplantate von Biopsiespendern innerhalb von sieben Tagen nach der Transplantation in vollständig MHC-mismatchte C57BL/6-Empfänger abgestoßen. Syngene Herztransplantate, die in unserer Serie du

murine-cervical-heart-transplantation-model-using-modified-cuff

Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Die Manschettentechnik verkürzt und erleichtert das Modell der heterotopen zervikalen Herztransplantation bei Mäusen, indem technisch anspruchsvolle Nahtanastomosen kleiner Gefäße vermieden werden. Die technischen Details, die in diesem Videopapier gezeigt werden, sollten es Forschern ermöglichen, dieses Modell in ihren Labors zu etablieren.

Heterotope Cervical Herztransplantation bei Mäusen

Hier stellen wir ein Protokoll der heterotopischen Aortentransplantation bei Mäusen mit der Nicht-Naht-Manschettentechnik in einem zervikalen Murin-Modell vor. Dieses Modell kann verwendet werden, um die zugrunde liegende Pathologie der chronischen Allograft-Vaskulopathie (CAV) zu untersuchen und kann helfen, neue therapeutische Wirkstoffe zu bewerten, um ihre Bildung zu verhindern.

Murine Cervical Aortic Transplantation Modell mit einer modifizierten Non-Suture Manschettentechnik

Wir führen einen inneren Röhrenansatz zur Manschettentechnik für die heterotopische Herztransplantation der Maus ein, um das Gefäß über die Manschette zu bringen. Wir stellten fest, dass die Zusammenarbeit zwischen zwei erfahrenen Chirurgen die Operationszeit deutlich verkürzt.

Optimierung der Manschettentechnik für DieMurine Heart Transplantation

Im vorliegenden Protokoll wird ein Maus-Herztransplantationsmodell verwendet, um den Mechanismus der kardialen Allotransplantatabstoßung zu untersuchen. In diesem heterotopen Herztransplantationsmodell wird die Operationseffizienz verbessert und das Überleben von Herztransplantaten durch eine zervikale End-to-End-Anastomose der Herzimplantation unter Verwendung einer modifizierten Manschettentechnik sichergestellt.

Eine modifizierte Manschettentechnik für das zervikale heterotope Herztransplantationsmodell der Maus

Maus-Herztransplantationsmodelle stellen wertvolle Forschungswerkzeuge für die Untersuchung der Transplantationsimmunologie dar. Das vorliegende Protokoll beschreibt die heterotope zervikale Herztransplantation der Maus, bei der Manschetten auf die gemeinsame Halsschlagader des Empfängers und den Lungenarterienstamm des Spenders gelegt werden, um einen laminaren Blutfluss zu ermöglichen.

Heterotope zervikale Herztransplantation der Maus mit Gefäßmanschetten

Dieses Protokoll stellt eine manschettenfreie, nahtbasierte heterotope zervikale Herztransplantationstechnik bei Mäusen vor, die darauf ausgelegt ist, die zuverlässige Platzierung eines zweiten heterotopen Herztransplantats zur Bewertung der donorspezifischen Immuntoleranz unter physiologischen Bedingungen mit minimaler Interferenz durch Fremdmaterial zu ermöglichen.

Manschettenfreies, nahtbasiertes zervikales Modell für sekundäre heterotopische Herztransplantation zur Bewertung der spenderspezifischen Immuntoleranz bei Mäusen

Dieses Protokoll präsentiert eine vereinfachte, end-zu-seitige Nahtanastomose-Technik für die Zervikalherztransplantation der Maus und bietet ein robustes und reproduzierbares Modell zur Untersuchung der Transplantationsimmunologie.

Zervikale heterotopische Mausherztransplantation mit End-to-Side-Anastomose-Technik zur Untersuchung der Transplantationsimmunologie

Ein Mausmodell von kutanen Wundheilung, die zur therapeutischen Verbindungen in physiologischen und pathophysiologischen Einstellungen beurteilen kann.

Mausmodell der Wundheilung

Das Manuskript beschreibt die erforderlich sind, um die heterotopen Herztransplantation in der Maus führen Sie die Schritte.

Murine Heterotope Heart Transplant-Technik

Um die zellulären und molekularen Mechanismen neotissue Bildung und Stenose Entwicklung in Gewebezüchtungen Herzklappen zugrunde liegen, wurde ein Maus-Modell der heterotopen Herzklappentransplantation entwickelt. Eine Lungenherzklappe wurde mit der heterotopen Herztransplantation Technik, um Empfänger transplantiert.

Transplantation von Pulmonalklappe Mit einem Maus-Modell der heterotopen Herztransplantation

Erfahren Sie die modifizierte Cuff-Technik für die murine zervikale Herztransplantation zur Untersuchung immunologischer Reaktionen und Ischämie-Reperfusions-Verletzungen. Diese Methode ermöglicht über 1.000 erfolgreiche Transplantationen.

Murine Cervical Herztransplantation Modell mithilfe eines modifizierten Cuff-Technik

Weitere Videos entdecken