Name: Einem Mausmodell der zervikalen Rückenmarksverletzung zu Post-läsionaler Atemneuroplastizität Studieren (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-05-28T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 9 s
Description: Lernen Sie ein präklinisches Rattenmodell zur Untersuchung von Ateminsuffizienz nach zervikaler Rückenmarksverletzung. Diese Methode ermöglicht die Analyse neuroplastischer Veränderungen und die Entwicklung neuer Therapien.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Diese Arbeit wird mit Mitteln aus der Europäischen Union Siebten Rahmenprogramms (FP7/2007-2013) unter Finanzhilfevereinbarung Nr. 246556 (europäische Projekt RBUCE-UP) unterstützt, HandiMedEx zugeteilt von der Französisch Öffentliche Investment Board. Marcel Bonay wurde von der Chancellerie des Universités de Paris (Beine Poix), dem Fonds de Recherche en Santé Dotation Respiratoire, und dem Centre d&#39;Assistance Respiratoire à Domicile d&#39;Île de France (CARDIF) unterstützt

Dieses Protokoll wurde von der Ethik-Ausschuss des RBUCE-UP Stuhl of Excellence (Universität Paris Sud, Finanzhilfevereinbarung Nr. 246556) und der Université de Versailles Saint-Quentin-en-Yvelines genehmigt. 1. Vorbereitung der sterilisierte chirurgische Instrumente <ol><li> Reinigen Sie die chirurgischen Instrumente mit Laborreinigungsmittel. </li><li> Autoklaven werden die Instrumente vor der Operation. </li><li> In einer chirurgischen Sitzung, die Werkzeuge zu sterilisieren, indem Sie die Tipps in eine heiße Perle Sterilisator für 10 min bei 180 ° C zwischen zwei Operationen. </li></ol> 2. Herstellung von Drogen <ol><li> Bereiten Sie 2 x 1 ml-Spritzen für Pre-Anästhetika Cocktail und nach der Operation Medikamente. </li><li> Entsprechend dem Gewicht der Ratte Herstellung einer Spritze mit vorge Anästhetika: Carprofen (5 mg / kg), Buprenorphin (50 ug / kg), Baytril (5 mg / kg) und Dexmedetomidin (0,5 mg / kg). Füllen Sie das Volumen auf 1 ml mit Ringer-Laktat. </li><li> Bereiten Sie imeine andere Spritze die Auflösung für die Pre-Anästhetika: Atipamezol (500 ug / kg). </li></ol> 3. Anästhesie der Ratte <ol><li> Subkutan verabreichen, um dem Tier die Lösung der in Schritt 2.2 beschrieben vorge Anästhetika. Dann, setzen Sie das Tier im Käfig zurück und warten, bis die sedierende Wirkung erscheint. </li><li> Legen Sie die Ratte in eine geschlossene Kammer mit 5% Isofluran in 100% O 2 gefüllt und warten, bis der Atemrhythmus verlangsamt (ca. 30 sec). Entfernen Sie dann die Ratte aus der Kammer und legen Sie sie auf den Tisch Intubation. </li></ol> 4. Orotracheale Intubation <ol><li> Legen Sie sich das Tier auf dem Rücken, dann sichern Sie den Kopf, indem sie einen Gurt um seine Vorderzähne an den Tisch befestigt. </li><li> Mit einem Glasfaser-Licht, leuchten den Brustraum. Legen Sie dann einen Kehlkopfspiegel (oder eine maßgeschneiderte ein, Jou et al. 20 für Details) in das Maul des Tieres. Visualisieren Sie die Stimmbänder. </li><li> Geschobene und platzieren Sie eine orotracheale Führung in der Luftröhre (zwischen den Stimmbändern). Schieben Sie die Orotrachealtubus (16 G Kathetergröße) auf der Führungs. </li><li> Entfernen der Führung und Überprüfung mit einer Kehlkopfspiegel am Ende der Orotrachealtubus für die Anwesenheit von Feuchtigkeit platziert, Bestätigung der entsprechenden Position der Röhre in die Luftröhre und in die Speiseröhre. </li><li> Schließen Sie den Schlauch an einem Nagetier Ventilator (683 Nagetier Ventilator, Harvard Apparatus) und stellen die Konzentration von Isofluran bis 2% (in 100% O 2). </li><li> Sichern Sie die Orotrachealtubus mit chirurgischen Band. </li></ol> 5. Wirbelsäulenchirurgie <ol><li> Legen Sie das Tier in Bauch Dekubitus-Position auf einem beheizten Operationsplatte, mit der Nase, die auf 90 °-Winkel an den Chirurgen. Pflegen Sie die Körpertemperatur um 37,5 ° C in der gesamten Chirurgie. </li><li> Rasieren Sie die Haare mit Klipper zwischen den Schulterblättern und entfernen Sie die Haare mit Gaze. </li><li> Reinigen Sie die Haut mit betadine, dann mit 70% Alkohol. Wiederholen Sie diesen Schritt 3x. </li><li> Eine Zehe Prise vor Beginn der Operation durchgeführt, um die ordnungsgemäße Narkosetiefe zu gewährleisten. &#160; Führen Sie dann einen seitlichen Hautschnitt rostro-kaudal mit der Schere zwischen den Schulterblättern. </li><li> Schneiden Sie die acromiotrapezius Muskel rostro-kaudal durch folgende Sehne, um Blutungen zu verhindern. Dann distanzieren den Rautenmuskel, um die Muskeln spinalis (rund um die Wirbel) zugreifen. </li><li> Fahren Sie den spinalis Muskel von C1 bis C3 Wirbel. Die C2-Wirbels ist das mit einem prominenten apophysis. </li><li> Reinigen Sie die Muskulatur rund um den dorsalen Teil der Wirbel mit sterilen Wattestäbchen. </li><li> Beginnen Sie vorsichtig mit einer Zange entfernen Sie den Fortsatz des C2. Dann weiter akribisch, bis der dorsalen Rückenmark freiliegt. Stellen Sie sicher, dass Laminektomie ist ein Rücken Hemi Laminektomie. Achten Sie besonders auf die Dauer, die das Rückenmark, und die Arterien in der Nähe von diesem Bereich umschließt. </li><li> Mit einem # 55 Pinzetten, sezieren rostro-kaudal die Dura entlang C2, nächste seitlich weiterhin auf jedem rostral und kaudal. </li><li> Schwamm den Liquor. </li><li> Machen Sie einen seitlichen Schnitt unter der zervikalen Hinterwurzel Nummer 2 mit der Mikroschere. Verifizierung mit einem Mikroskalpell, dass das Ausmaß der Läsion nahe genug ist, um die Mittellinie des Rückenmarks (siehe Fig. 2A eine dorsale Ansicht der Verletzung) zu erreichen. Wenn nicht, dann könnte ein weiterer Schnitt vorgenommen werden, um die Schädigung zu vervollständigen. Im Falle von Blutungen, sterile Wattestäbchen. Achten Sie darauf, nicht auf die Gegenseite zu gehen, sonst wird das Tier nicht von der Verletzung erholen und wird ein Atemversagen haben. </li><li> Nähen Sie die Muskeln als Schutzschicht und vernähen wieder die Haut. Reinigen Sie die Wunde mit steriler Gaze Betadine gesättigt. </li><li> Schalten Sie die Isofluran-Verdampfer und injizieren die Umkehrung Medikamente (Atipamezol [500 ug / kg, im]), überprüfen Sie die Körpertemperatur. </li><li> Wenn das Tier beginnt, gegen den Ventilator atmen,trennen Sie den Trachealtubus vom Beatmungsgerät, und nehmen Sie die Orotrachealtubus. Legen Sie das Tier in einem beheizten Käfig für die Verwertung. </li></ol> 6. Post-chirurgische Versorgung Nach der Operation werden die Tiere kontinuierlich überwacht, um die beste Umgebung für die Wiederherstellung möglich zu gewährleisten. Antibiotika (Baytril, 5 mg / kg), entzündungshemmende (Carprofen, 5 mg / kg) und Buprenorphin (50 ug / kg) Arzneimittel alle 12 h für die ersten 2 Tage nach der Operation, um Infektionen zu verhindern, und reduziert das Auftreten gegeben von postoperativen Schmerzen. Ratten haben Zugriff ad libitum zu weiche Nahrung und Wasser (oder geliert Wasser für die ersten postoperativen Tag). Subkutanen Flüssigkeiten können verwendet werden, um Austrocknung zu der ersten Tage nach der Operation zu verhindern. Das Körpergewicht und die Nahrungsaufnahme werden täglich überwacht. Ihre Umgebung wird während des Experiments und die Zeit nach der Verletzung (Dual-Gehäuse, Schläuche in ihren Käfigen) bereichert.

<ol><li>Frankel, H. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+survival+in+spinal+cord+injury%3A+a+fifty+year+investigation%5BTitle%5D)+AND+%22Spinal+Cord%22%5BJournal%5D)">Long-term survival in spinal cord injury: a fifty year investigation.</a> Spinal Cord. 36, 266-274 (1998).</li>
<li>Ramer, M. S., Harper, G. P., Bradbury, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progress+in+spinal+cord+research+-+a+refined+strategy+for+the+International+Spinal+Research+Trust%5BTitle%5D)+AND+%22Spinal+Cord%22%5BJournal%5D)">Progress in spinal cord research - a refined strategy for the International Spinal Research Trust.</a> Spinal Cord. 38, 449-472 (2000).</li>
<li>Zimmer, M. B., Nantwi, K., Goshgarian, H. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+spinal+cord+injury+on+the+respiratory+system%3A+basic+research+and+current+clinical+treatment+options%5BTitle%5D)+AND+%22J+Spinal+Cord+Med%22%5BJournal%5D)">Effect of spinal cord injury on the respiratory system: basic research and current clinical treatment options.</a> J Spinal Cord Med. 30, 319-330 (2007).</li>
<li>Mantilla, C. B., Sieck, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuromuscular+adaptations+to+respiratory+muscle+inactivity%5BTitle%5D)+AND+%22Respir+Physiol+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Neuromuscular adaptations to respiratory muscle inactivity.</a> Respir Physiol Neurobiol. 169, 133-140 (2009).</li>
<li>Goshgarian, H. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+crossed+phrenic+phenomenon+and+recovery+of+function+following+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Respir+Physiol+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">The crossed phrenic phenomenon and recovery of function following spinal cord injury.</a> Respir Physiol Neurobiol. 169, 85-93 (2009).</li>
<li>Nantwi, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recovery+of+respiratory+activity+after+C2+hemisection+%28C2HS%29%3A+involvement+of+adenosinergic+mechanisms%5BTitle%5D)+AND+%22Respir+Physiol+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Recovery of respiratory activity after C2 hemisection (C2HS): involvement of adenosinergic mechanisms.</a> Respir Physiol Neurobiol. 169, 102-114 (2009).</li>
<li>Sandhu, M. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Respiratory+recovery+following+high+cervical+hemisection%5BTitle%5D)+AND+%22Respir+Physiol+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Respiratory recovery following high cervical hemisection.</a> Respir Physiol Neurobiol. 169, 94-101 (2009).</li>
<li>Lane, M. A., Lee, K. Z., Fuller, D. D., Reier, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spinal+circuitry+and+respiratory+recovery+following+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Respir+Physiol+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Spinal circuitry and respiratory recovery following spinal cord injury.</a> Respir Physiol Neurobiol. 169, 123-132 (2009).</li>
<li>Seeds, N. W., Akison, L., Minor, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+plasminogen+activator+in+spinal+cord+remodeling+after+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Respir+Physiol+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Role of plasminogen activator in spinal cord remodeling after spinal cord injury.</a> Respir Physiol Neurobiol. 169, 141-149 (2009).</li>
<li>Alilain, W. J., Horn, K. P., Hu, H., Dick, T. E., Silver, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+regeneration+of+respiratory+pathways+after+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Functional regeneration of respiratory pathways after spinal cord injury.</a> Nature. 475, 196-200 (2011).</li>
<li>Vinit, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cervical+spinal+cord+injuries+and+respiratory+insufficiency%3A+a+revolutionary+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22Med+Sci+%28Paris%22%5BJournal%5D)">Cervical spinal cord injuries and respiratory insufficiency: a revolutionary treatment.</a> Med Sci (Paris. 28, 33-36 (2012).</li>
<li>Kastner, A., Gauthier, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Are+rodents+an+appropriate+pre-clinical+model+for+treating+spinal+cord+injury%3F+Examples+from+the+respiratory+system%29%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Are rodents an appropriate pre-clinical model for treating spinal cord injury? Examples from the respiratory system).</a> Exp Neurol. 213, 249-256 (2008).</li>
<li>Vinit, S., Lovett-Barr, M. R., Mitchell, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intermittent+hypoxia+induces+functional+recovery+following+cervical+spinal+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Intermittent hypoxia induces functional recovery following cervical spinal injury.</a> Physiol Neurobiol. 169, 210-217 (2009).</li>
<li>Porter, W. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Path+of+the+Respiratory+Impulse+from+the+Bulb+to+the+Phrenic+Nuclei%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">The Path of the Respiratory Impulse from the Bulb to the Phrenic Nuclei.</a> J Physiol. 17, 455-485 Forthcoming.</li>
<li>Nicaise, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phrenic+motor+neuron+degeneration+compromises+phrenic+axonal+circuitry+and+diaphragm+activity+in+a+unilateral+cervical+contusion+model+of+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Phrenic motor neuron degeneration compromises phrenic axonal circuitry and diaphragm activity in a unilateral cervical contusion model of spinal cord injury.</a> Exp Neurol. 235, 539-552 (2012).</li>
<li>Goshgarian, H. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+crossed+phrenic+phenomenon%3A+a+model+for+plasticity+in+the+respiratory+pathways+following+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">The crossed phrenic phenomenon: a model for plasticity in the respiratory pathways following spinal cord injury.</a> J Appl Physiol. 94, 795-810 (2003).</li>
<li>Vinit, S., Gauthier, P., Stamegna, J. C., Kastner, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+cervical+lateral+spinal+cord+injury+results+in+long-term+ipsilateral+hemidiaphragm+paralysis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">High cervical lateral spinal cord injury results in long-term ipsilateral hemidiaphragm paralysis.</a> J Neurotrauma. 23, 1137-1146 (2006).</li>
<li>Fuller, D. D., Johnson, S. M., Johnson, R. A., Mitchell, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+cervical+spinal+sensory+denervation+reveals+ineffective+spinal+pathways+to+phrenic+motoneurons+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci+Lett%22%5BJournal%5D)">Chronic cervical spinal sensory denervation reveals ineffective spinal pathways to phrenic motoneurons in the rat.</a> Neurosci Lett. 323, 25-28 (2002).</li>
<li>Dougherty, B. J., Lee, K. Z., Lane, M. A., Reier, P. J., Fuller, D. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contribution+of+the+spontaneous+crossed-phrenic+phenomenon+to+inspiratory+tidal+volume+in+spontaneously+breathing+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Contribution of the spontaneous crossed-phrenic phenomenon to inspiratory tidal volume in spontaneously breathing rats.</a> J Appl Physiol. 112, 96-105 (2012).</li>
<li>Jou, I. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simplified+rat+intubation+using+a+new+oropharyngeal+intubation+wedge%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Simplified rat intubation using a new oropharyngeal intubation wedge.</a> J Appl Physiol. 89, 1766-1770 (2000).</li>
<li>Fuller, D. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Graded+unilateral+cervical+spinal+cord+injury+and+respiratory+motor+recovery%5BTitle%5D)+AND+%22Respir+Physiol+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Graded unilateral cervical spinal cord injury and respiratory motor recovery.</a> Respir Physiol Neurobiol. 165, 245-253 (2009).</li>
<li>Vinit, S., Windelborn, J. A., Mitchell, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lipopolysaccharide+attenuates+phrenic+long-term+facilitation+following+acute+intermittent+hypoxia%5BTitle%5D)+AND+%22Respir+Physiol+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Lipopolysaccharide attenuates phrenic long-term facilitation following acute intermittent hypoxia.</a> Respir Physiol Neurobiol. 176, 130-135 (2011).</li>
<li>Ahmad, F., Wang, M. Y., Levi, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hypothermia+for+Acute+Spinal+Cord+Injury-A+Review%5BTitle%5D)+AND+%22World+Neurosurg%22%5BJournal%5D)">Hypothermia for Acute Spinal Cord Injury-A Review.</a> World Neurosurg. , (2013).</li>
<li>Lovett-Barr, M. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repetitive+intermittent+hypoxia+induces+respiratory+and+somatic+motor+recovery+after+chronic+cervical+spinal+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Repetitive intermittent hypoxia induces respiratory and somatic motor recovery after chronic cervical spinal injury.</a> J Neurosci. 32, 3591-3600 (2012).</li>
<li>Minor, K. H., Akison, L. K., Goshgarian, H. G., Seeds, N. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spinal+cord+injury-induced+plasticity+in+the+mouse--the+crossed+phrenic+phenomenon%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Spinal cord injury-induced plasticity in the mouse--the crossed phrenic phenomenon.</a> Exp Neurol. 200, 486-495 (2006).</li>
<li>Baussart, B., Stamegna, J. C., Polentes, J., Tadie, M., Gauthier, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+model+of+upper+cervical+spinal+contusion+inducing+a+persistent+unilateral+diaphragmatic+deficit+in+the+adult+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol+Dis%22%5BJournal%5D)">A new model of upper cervical spinal contusion inducing a persistent unilateral diaphragmatic deficit in the adult rat.</a> Neurobiol Dis. 22, 562-574 (2006).</li>
<li>Golder, F. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Breathing+patterns+after+mid-cervical+spinal+contusion+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Breathing patterns after mid-cervical spinal contusion in rats.</a> Exp Neurol. 231, 97-103 (2011).</li>
<li>Lane, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Respiratory+function+following+bilateral+mid-cervical+contusion+injury+in+the+adult+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Respiratory function following bilateral mid-cervical contusion injury in the adult rat.</a> Exp Neurol. 235, 197-210 (2012).</li>
<li>Vinit, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axotomized+bulbospinal+neurons+express+c-Jun+after+cervical+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroreport%22%5BJournal%5D)">Axotomized bulbospinal neurons express c-Jun after cervical spinal cord injury.</a> Neuroreport. 16, 1535-1539 (2005).</li>
<li>Guenther, C. H., Windelborn, J. A., Tubon, T. C., Yin, J. C., Mitchell, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+atypical+PKC+expression+and+activity+in+the+phrenic+motor+nucleus+following+cervical+spinal+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Increased atypical PKC expression and activity in the phrenic motor nucleus following cervical spinal injury.</a> Exp Neurol. 234, 513-520 (2012).</li>
<li>Mantilla, C. B., Gransee, H. M., Zhan, W. Z., Sieck, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Motoneuron+BDNF%2FTrkB+signaling+enhances+functional+recovery+after+cervical+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Motoneuron BDNF/TrkB signaling enhances functional recovery after cervical spinal cord injury.</a> Exp Neurol. 247, 101-109 (2013).</li>
<li>Vinit, S., Darlot, F., Aoulaiche, H., Boulenguez, P., Kastner, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distinct+expression+of+c-Jun+and+HSP27+in+axotomized+and+spared+bulbospinal+neurons+after+cervical+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Mol+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Distinct expression of c-Jun and HSP27 in axotomized and spared bulbospinal neurons after cervical spinal cord injury.</a> J Mol Neurosci. 45, 119-133 (2011).</li>
<li>Windelborn, J. A., Mitchell, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glial+activation+in+the+spinal+ventral+horn+caudal+to+cervical+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Respir+Physiol+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Glial activation in the spinal ventral horn caudal to cervical injury.</a> Respir Physiol Neurobiol. 180, 61-68 (2012).</li>
<li>Vinit, S., Stamegna, J. C., Boulenguez, P., Gauthier, P., Kastner, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Restorative+respiratory+pathways+after+partial+cervical+spinal+cord+injury%3A+role+of+ipsilateral+phrenic+afferents%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Restorative respiratory pathways after partial cervical spinal cord injury: role of ipsilateral phrenic afferents.</a> Eur J Neurosci. 25, 3551-3560 (2007).</li>
<li>Dougherty, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recovery+of+inspiratory+intercostal+muscle+activity+following+high+cervical+hemisection%5BTitle%5D)+AND+%22Respir+Physiol+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Recovery of inspiratory intercostal muscle activity following high cervical hemisection.</a> Respir Physiol Neurobiol. 183, 186-192 (2012).</li>
</ol>

Die Autoren erklären, dass sie keine finanziellen Interessen konkurrieren.

Technische Schwierigkeiten bei der Herstellung der C2 Verletzungsmodell Die C2-Verletzung Mausmodell ist ein interessantes Tool, um Atem Post-läsionaler Neuroplastizität zu studieren. Allerdings sind die notwendigen Schritte, um eine reproduzierbare und zuverlässige Modell produzieren zahlreiche und jeder über die Ergebnisse der Studie beeinflussen können. Zum Beispiel während der Intubation Verfahren ist extrem darauf geachtet werden, da die Orotrachealtubus können eine Ent...

Rückenmarksverletzung ist eine häufige Verletzung in der menschlichen Bevölkerung mit dramatischen Vorfälle, wie Dauer Paralyse beobachtet. Die Schwere der Verletzung, hängt jedoch von der Höhe und dem Umfang des anfänglichen Traumas. Atemversagen ist die häufigste Todesursache folgenden oberen zervikalen Rückenmarksverletzung (SCI) ein. Derzeit ist die einzige therapeutische Behandlung des Patienten unter Atemunterstützung zu platzieren. Da nur wenige Patienten von der Atemunterstützung entwöhnt werden 2, durch spontane Erholung, die mit Post-läsionaler Verzögerung auftritt, ist die Notwendigkeit, neue innovative nicht-invasive Therapien entwickeln dringenden 3. Eine gute standardisierte präklinischen Modell, um die Wirkung einer zervikalen SCI auf respiratorische Insuffizienz zu untersuchen und somit die Anwendung der vermeintlichen therapeutischen Strategien zu untersuchen, ist unerlässlich. In diesem technischen Artikel beschreiben wir einen spezifischen präklinischen Mausmodell of Beeinträchtigung der Atemwege durch eine teilweise Hals-SCI an der C2-Ebene induziert. Dieses Modell wird derzeit von mehreren Labors auf der ganzen Welt verwendet werden (Bewertungen: 4-13). Allerdings können geringe Unterschiede in den chirurgischen Eingriff unter den verschiedenen Forschern beobachtet, dass diese besondere zervikalen Verletzungen Mausmodell zu erzeugen. Die Wirkung einer C2 SCI auf die Atemleistung wurde zuerst 1895 von Porter 14 beschrieben. Ein Hals-Hemisektion induziert eine Deafferentation der Zwerchfellmotoneuronen aus ihrer zentralen Antrieb (in der RVRG im Hirnstamm, 1A befindet) auf der gleichen Seite der Verletzung, die zu einer stillen Zwerchfellnervenaktivität und der anschließenden Membran Lähmung. Die Gegenseite erhalten bleibt und ermöglicht es dem Tier, um zu überleben. Im Gegensatz zu verschiedenen SCI in einem unteren Wirbelsäulensegment (zum Beispiel ein kontusive Verletzungen an C4 Ebene 15) befindet, wird die Integrität des Zwerchfellmotoneuron Kern auf beiden Seiten erhalten. Nach einer cervschen C2 Verletzungen können einige spontane Aktivität auf der ipsilateralen Seite (Zwerchfell und Zwerchfell) aufgrund einer Aktivierung des kontralateralen synaptischen stille Wege, die das Rückenmittellinie auf der Segmentebene C3-C6 (Gekreuzte Wege phrenic, CPP, 1B) gekreuzt beobachtet werden . Die Aktivierung der CPP, das ist per Definition ein C2 Hemisektion, kombiniert mit einer kontralateralen phrenicotomy die eine ipsilaterale Teil Phrenikus Erholung zu induzieren, kann von Stunden bis Wochen nach der Verletzung auftreten, 16-18. Die eigentliche positive Wirkung dieser CPP Weg auf die Atem Erholung ist begrenzt 19 und eine weitere Untersuchung und Behandlung zu entwickeln, um das Ausmaß der spontanen Wiederherstellung 3 zu verbessern. Dieses Protokoll bietet eine leistungsstarke Art der präklinischen Mausmodell die Atmungs Post-läsionaler Plastizität auf verschiedenen Ebenen zu studieren (Atemphysiologie von der Vor-und Zwerchfellmotoneuronen, Inter, Molekular-und cellular, Fortbewegung der Vordergliedmaße zum Beispiel) sowie ein Modell für invasive und nicht-invasive Therapiestrategien das Ziel, die Atemwege und des Bewegungsapparates Erholung nach C2 Teil zervikalen Rückenmarksverletzungen verbessern zu testen.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Animal</td></tr><tr><td>Männliche Sprague Dawley Ratte</td><td>Janvier</td><td></td><td>225-250 g</td></tr><tr><td colspan="4">Chirurgische Instrumente</td></tr><tr><td>Student Dumont #5 Pinzette</td><td>Fine Science Tool</td><td>91150-20</td><td></td></tr><tr><td>Student Standard Pattern Pinzette</td><td>Fine Science Tool</td><td>91100-12</td><td></td></tr><tr><td>Mayo-Stille Schere</td><td>Fine Science Tool</td><td>14013-15</td><td>Gebogene</td></tr> Student <tr><td>Vannas Federschere</td><td>Fine Science Tool</td><td>91500-09</td><td>Gerade</td></tr><tr><td>Federschere - 8 mm Klingen</td><td>Fine Science Tool</td><td>15025-10</td><td>Gerade Blunt/Blunt</td></tr><tr><td>Friedman Pearson Rongeur</td><td>Fine Science Tool</td><td>16121-14</td><td>Gebogenes</td></tr><tr><td>Präpariermesser - Fine Science</td><td>Tool</td> <td>mit feiner Spitze10055-12</td><td>Gerader</td></tr><tr><td>Olsen-Hegar Nadelhalter</td><td>Fine Science Tool</td><td>12002-14</td><td>Gezackter</td></tr><tr><td>Weitlaner-Locktite Retraktor</td><td>Fine Science Tool</td><td>17012-11</td><td>2x3 Blunt</td></tr><tr><td>Resorbierbares chirurgisches Nahtmaterial</td><td>Centravet</td><td>BYO001</td><td>Nahtgröße 4-0</td></tr><tr><td colspan="4">Ausrüstung</td></tr><tr><td>Heißperlensterilisator</td><td>Fine Science Werkzeug</td><td>18000-45</td><td></td></tr><tr><td>Katheter&nbsp;</td><td>Centravet</td><td>CAT188</td><td>16 G</td></tr><tr><td>Laryngoskop</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Führungsdraht</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kehlkopfspiegel</td><td>Centravet</td><td>MIR011</td><td></td></tr><tr><td>Laktated Ringers</td><td>Centravet</td><td>RIN020</td><td></td></tr><tr><td>Spritze</td><td>Centravet</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nadel</td><td>Centravet</td><td></td><td></td></tr><tr><td>O2</td><td>Air Liquid I1001M20R2A001</td><td></td><td></td></tr><tr><td>683 RodentT Ventilator 115/230V</td><td>Harvard Apparat</td><td>55-0000</td><td></td></tr><tr><td>Stand-Alone Vaporizer</td><td>WPI</td><td>EZ-155</td><td></td></tr><tr><td>Dünnleitungs-Heizbett</td><td>WPI</td><td>EZ-211</td><td></td></tr><tr><td>Luftkanister</td><td>WPI</td><td>EZ-258<</td><td></td></tr><tr>td colspan="4">Drugs</td></tr><tr><td>Carprofen</td><td>Centravet</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rimadyl</td><td>Centravet</td><td>RIM011</td><td></td></tr><tr><td>Buprenorphin</td><td>Centravet</td><td>BUP001</td><td></td></tr><tr><td>Baytril</td><td>Centravet</td><td>BAY001</td><td></td></tr><tr><td>Dexmedetomidin</td><td>Centravet</td><td>DEX010</td><td></td></tr><tr><td>Atipamezol</td><td>Centravet</td><td>ANT201</td><td></td></tr><tr><td>Betadine Lösung</td><td>Centravet</td><td>VET002</td><td></td></tr><tr><td>Isofluran</td><td>Centravet</td><td>VET066</td><td></td></tr></tbody></table>

einem mausmodell der zervikalen rückenmarksverletzung zu post-läsionaler atemneuroplastizität studieren

A Murine Model of Cervical Spinal Cord Injury to Study Post-lesional Respiratory Neuroplasticity

Ein zervikalen Rückenmarksverletzung induziert dauerhafte Lähmung und führt zu Atemnot oft. Bisher wurden keine wirksamen Therapeutika entwickelt worden, um zu verbessern / verbessern die Atemversagen nach hohen zervikalen Rückenmarksverletzung (SCI). Hier schlagen wir eine Maus präklinischen Modell der Hoch SCI am zervikalen 2 (C2) metamere Ebene diverse Post-läsionaler Atemneuroplastizität zu studieren. Die Technik besteht aus einem Operationsteilschäden an der C2-Ebene, die eine Halbseitenlähmung der Membran durch eine Deafferentierung der Zwerchfellmotoneuronen aus den Atemzentren im Hirnstamm induziert wird. Die Gegenseite der Verletzung bleibt erhalten und ermöglicht dem Tier Erholung. Anders als andere Gebiete von gemeinschaftlicher Bedeutung, die die Bewegungsfunktion (bei der Brust-und Lendenbereich) betreffen, wird die Atemfunktion nicht erforderlich Tier Motivation und die Quantifizierung des Defizits / Recovery leicht durchgeführt werden (Membran-und Zwerchfellnerv Aufnahmes, Ganzkörper Lüftung). Diese präklinischen C2 SCI Modell ist ein leistungsfähiges, nützliche und zuverlässige präklinischen Modell, um verschiedene Atem-und nicht-respiratorischen Ereignisse Neuroplastizität auf verschiedenen Ebenen (molekulare Physiologie) zu studieren und diverse vermeintliche therapeutische Strategien, die die Atmung verbessern könnten, testen SCI-Patienten.

Ausmaß der Verletzung Der Erfolg und die Reproduzierbarkeit dieser besonderen experimentellen Modell sind abhängig von der Erfahrung jedes Manipulator / Chirurgen. Die anschließende Höhe von Atemwiederherstellung (Zwerchfellnervenaktivität und Membranaktivität) nach einer Verletzung C2 korreliert mit der Rest ventrolateralen verschont weißen Substanz 21. Da die Verletzung ist &quot;handmade&quot; und erfordert einige Übung von dem Chirurgen, der Umfang der einzeln...

Atemversagen ist die häufigste Todesursache nach einer zervikalen Rückenmarksverletzungen. Nachdem eine reproduzierbare, messbare und verlässliche präklinischen Tiermodell der Atemversagen durch eine teilweise zervikalen Verletzungen induziert wird helfen, die Atemwege und des anschließenden nicht-respiratorischen Neuroplastizität zu verstehen und ermöglichen die Prüfung vermeintlichen Reparaturstrategien.

Einem Mausmodell der zervikalen Rückenmarksverletzung zu Post-läsionaler Atemneuroplastizität Studieren

A cervical spinal cord injury induces permanent paralysis, and often leads to respiratory distress. To date, no efficient therapeutics have been developed ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens ist es, ein quantifizierbares, zuverlässiges und reproduzierbares präklinisches Tiermodell der respiratorischen und nicht-respiratorischen Insuffizienz zu erstellen, die durch eine zervikale Rückenmarksverletzung induziert wird. Dies wird erreicht, indem zunächst die Instrumente und die für den Eingriff erforderlichen Medikamente vorbereitet werden. Der zweite Schritt besteht darin, das Tier zu betäuben, es dann zu intubieren und an ein Nagetierbeatmungsgerät anzuschließen.Als nächstes wird das Rückenmark freigelegt und die Verletzung der Halswirbelsäule induziert. Nach dem Zunähen des Tieres wird die Narkose entfernt und eine angemessene postoperative Versorgung durchgeführt. Abschließend werden histologische Techniken sowie Nerven- und Muskelaufnahmen eingesetzt, um das Ausmaß und die Auswirkungen der Halswirbelsäulenverletzung zu untersuchen.Der Hauptvorteil dieser Technik gegenüber bestehenden Methoden, wie z. B. der Panel-Nabelschnurprellung, besteht darin, dass die Verletzung kleiner und gut definiert ist. Das Verfahren wird von einem Ingenieur aus meinem Labor demonstriert. Zur Vorbereitung auf die Operation reinigen und autoklavieren Sie die chirurgischen Instrumente. Bereiten Sie auch eine zwei mal einen Milliliter Spritze mit den Präanästhetika vor und vervollständigen Sie das Volumen auf einen Milliliter mit stillatierten Ringern Bereiten Sie in einer anderen Spritze die Umkehrung für die Präanästhetika vor Nach der subkutanen Verabreichung der Lösung von Präanästhetika setzen Sie das Tier zurück in einen Käfig und warten Sie etwa 20 Minuten, bis die beruhigende Wirkung auftritt.Setzen Sie dann die Ratte in eine geschlossene Kammer, die mit 5 % Fluor in hundert Prozent Sauerstoff gefüllt ist, und warten Sie etwa 30 Sekunden, bis sich der Atemrhythmus verlangsamt. Nehmen Sie dann die Ratte aus der Kammer und legen Sie sie auf den Rücken auf den Intubationstisch. Sichern Sie nun den Kopf, indem Sie einen Gurt anbringen, um die vorderen Zähne am Tisch zu befestigen.Mit Hilfe eines faseroptischen Lichts wird der Brustraum beleuchtet. Platzieren Sie dann ein Laryngoskop in das Maul des Tieres, um die Stimmbänder sichtbar zu machen. Als nächstes schieben Sie eine Trachealführung in die Luftröhre zwischen den Stimmbändern und schieben Sie dann den Orotrachealtubus auf die Führung.Entfernen Sie dann die Führung und platzieren Sie einen Kehlkopfspiegel am Ende des Orotrachealtubus, um zu überprüfen, ob er feucht ist, um zu bestätigen, dass der Tubus in der Luftröhre platziert ist. Schließen Sie anschließend den Schlauch an ein Beatmungsgerät an und stellen Sie die Fluorkonzentration auf 2% einBefestigen Sie dann den Orotrachealtubus mit chirurgischem Klebeband an der Schnauze des Tieres. Für die Operation drehen Sie das Tier um und legen Sie es auf eine beheizte Operationsplatte, wobei die Nase in einem 90-Grad-Winkel zum Chirurgen zeigt.Halten Sie die Körpertemperatur während der gesamten Operation bei etwa 37,5 Grad Celsius. Nach der Rasur zwischen den Schulterblättern mit einer Haarschneidemaschine die Haare mit Gaze entfernen und die Haut reinigen. Zuerst mit Betadine, dann mit 70% Alkohol.Als nächstes machst du mit einer Schere einen vier bis fünf Zentimeter langen seitlichen Hautschnitt. Roc coly zwischen den Schulterblättern. Den Schultereckmuskel trapezius durchtrennen und dabei der Sehne folgen, um Blutungen zu vermeiden.Dissoziieren Sie dann den Rautenmuskel, um Zugang zu den Wirbelsäulenmuskeln zu erhalten, die den Wirbel umgeben. Finde die sichtbare Beule des Spinellmuskels. Dies markiert die Lage der beiden Wirbel der beiden Wirbel hervorstehende Apophyse.Schneiden Sie anhand dieses Orientierungspunkts den Spinellmuskel vom C-Wirbel bis zum C3-Wirbel ab. Verwenden Sie anschließend sterile Wattestäbchen, um den Muskel um den dorsalen Teil des Wirbels zu reinigen. Entfernen Sie vorsichtig mit einem Ron Jour die Apophyse von C zwei.Setzen Sie dann die Laminektomie sorgfältig fort und achten Sie darauf, die Dura und eventuelle Arterien zu vermeiden. Nach Abschluss der dorsalen Hemi-Laminektomie wird das dorsale Rückenmark freigelegt. Halten der Dura mit einer Pinzette mit der Nummer 55.Mit einer Mikroschere den Dura ROS Coly entlang C zwei sezieren. Dann auf jeder rostralen und verwöhnten Seite seitlich weiterfahren. Schwämme die zerebrale Rückenmarksflüssigkeit nach Bedarf, um die Rückenmarksverletzung durchzuführen.Identifizieren Sie zunächst die zweite zervikale Rückenwurzel, die die erste sichtbare Wurzel sein wird. Verwenden Sie eine Mikroschere, um einen seitlichen Abschnitt an der zweiten Halswirbelsäule zu machen. Verwenden Sie sterile Wattestäbchen, um bei Bedarf Blut zu entfernen.Überprüfen Sie mit einem Mikroskalpell, ob das Ausmaß der Läsion nahe genug ist, um die Mittellinie des Rückenmarks zu erreichen. Verwenden Sie dann das Mikroskalpell, um einen weiteren Schnitt zu machen, um die Verletzung zu vervollständigen. Stellen Sie sicher, dass das Ausmaß der Verletzung von dorsal nach ventral und lateral zur Mittellinie verläuft.Wenn der HEMI-Schnitt abgeschlossen ist, nähen Sie die Muskeln und die Haut und reinigen Sie die Wunde mit Betadin-gesättigter steriler Gaze. Nach dem Ausschalten des isof-Fluorverdampfers injizieren Sie die Umkehrmedikamente intramuskulär und überprüfen Sie die Körpertemperatur. Wenn das Tier anfängt, gegen das Beatmungsgerät zu atmen, trennen Sie den Trachealtubus vom Beatmungsgerät und entfernen Sie den Schlauch.Setzen Sie das Tier zur Genesung in einen beheizten Käfig Nach der Operation verabreichen Sie in den ersten zwei Tagen nach der Operation alle 12 Stunden Antibiotika, entzündungshemmende und schmerzstillende Medikamente und verwenden Sie subkutane Flüssigkeiten, um eine Dehydrierung zu verhindern. Lassen Sie Ratten in den ersten postoperativen Tagen ad libido Zugang zu geliertem Wasser für den ersten postoperativen Tag und weichem Futter und Wasser an den folgenden Tagen und überwachen Sie ihr Körpergewicht und ihre Nahrungsaufnahme. Querschnitte des Rückenmarks nach einer Verletzung C zwei ermöglichen eine Rekonstruktion der Verletzung.Die graue Schattierung zeigt das Ausmaß der Verletzung vor der Querschnittlähmung. Die Aktivität des Nervus phrenicus ist auf beiden Seiten des Tieres nach einer C-2-Teilverletzung ähnlich. Die Aktivität des Nervus phrenicus ist auf der ipsilateralen Seite aufgehoben, aber auf der kontralateralen Seite sieben Tage nach der Verletzung intakt.Es kommt zu einer teilweisen Wiederherstellung der Aktivität des ipsilateralen Nervus phrenicus aufgrund der gekreuzten phrenischen Bahn. Die C zwei Teilverletzung hebt die ipsilaterale Zwerchfellaktivität auf. Sieben Tage nach der Verletzung tritt eine leichte Aktivität auf, die hauptsächlich auf die Aktivität der gekreuzten Zwerchfellbahn zurückzuführen ist.Die rhythmische Ablenkung des auf der ipsilateralen Seite beobachteten Signals ist auf die künstliche Aufzeichnung des Elektrokardiogramms zurückzuführen. Es ist zu beachten, dass nach einer C-2-Verletzung die kontralaterale Zwerchfellaktivität die gleiche bleibt wie vor der Verletzung und es dem Tier ermöglicht, nach seiner Entwicklung zu überleben. Diese Technik ebnete den Weg für Forscher auf dem Gebiet der Atemphysiologie, um neue ative Therapeutika zu erforschen, die zur Verbesserung der Genesung nach Verletzungen beitragen.

a-murine-model-cervical-spinal-cord-injury-to-study-post-lesional

Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Eine zuverlässige und wiederholbare Möglichkeit, eine zervikale einseitige Verletzung des Rückenmarks mit der Infinite Horizon Impaktor produzieren wird beschrieben. Die Methode nutzt die Vorteile eines maßgeschneiderten Rahmen und spannen, um die Wirbelsäule zu stabilisieren. Das standardisierte Verfahren und biomechanischen Parameter führen zu Verletzungen ausreichende und nachhaltige Verletzungen.

Ein Modell von gequetscht Einseitige Cervical Spinal Cord Injury Mit dem Infinite Horizon Impactor

Eine neue Technik, um eine reproduzierbare...

Controlled Cervical Laceration Verletzungen in Mäuse

Der Mangel an Verständnis der Mechanismen des Rückenmarks Ischämie-Reperfusion Verletzungen hat weitere Zusätze behindert eine Querschnittslähmung nach Aorten-Operationen mit hohem Risiko zu verhindern. Somit ist die Entwicklung von Tiermodellen zwingend. Dieses Manuskript zeigt, reproduzierbare Lähmung der unteren Extremitäten nach Thorax Aortenokklusionsvorrichtung in einem Mausmodell.

Reproduzierbare Paraplegie von thorakalen Aorta Occlusion in einem Mausmodell der Spinal Cord Ischämie-Reperfusion

Verletzungen des Rückenmarks ist eine traumatische Erkrankung, die schwere Morbidität und hoher Sterblichkeit führt. In dieser Arbeit beschreiben wir im Detail eine Quetschung Modell der Verletzung des Rückenmarks in Mäusen, gefolgt von einer Transplantation von neuralen Stammzellen.

Neural Stem Cell Transplantation in Experimental Gequetscht Modell von Rückenmarksverletzungen

Dieser Artikel beschreibt eine Methode zur Erzeugung einer reproduzierbaren Rückenmarkskompressionsverletzung (SCI) bei der neugeborenen Maus. Das Modell bietet eine vorteilhafte Plattform für die Untersuchung von Mechanismen adaptiver Plastizität, die der spontanen funktionellen Erholung zugrunde liegen.

Ein Neonatal Maus Spinal Cord Injury Kompression Modell

Hier zeigen wir die Leistung eines minimalen Rückenmark Verletzungen Modells in einer Erwachsenen Maus, die den zentralen Kanal Nische Gehäuse endogenen neurale Stammzellen (NSCs) erspart. Wir zeigen, wie neurosphäre Assay verwendet werden kann, um Aktivierung und Migration der definitive und primitiven NSCs nach Verletzung zu quantifizieren.

Ein Neurosphäre Assay auszuwertende endogenen neurale Stammzellen Aktivierung in einem Mausmodell der minimalen Spinal Cord Injury

Die Brustbrust-Spinal-Hemisektion ist ein wertvolles und reproduzierbares Modell der einseitigen Rückenmarksverletzung, um die neuronalen Mechanismen der bewegungsmotorischen Erholung und Behandlungswirksamkeit zu untersuchen. Dieser Artikel enthält eine detaillierte Schritt-für-Schritt-Anleitung, um das Hemisection-Verfahren durchzuführen und die Leistung des Bewegungsapparates in einer Offenen Allee zu bewerten.

Thorax Rückenmarks-Hemisektionschirurgie und Open-Field-Locomotor Assessment in der Ratte

Minimalinvasive Techniken und ein einfaches Laborgerät verbessern die Reproduzierbarkeit des Rückenmarksverletzungsmodells, indem sie operative Schäden an den Versuchstieren reduzieren und die Aufrechterhaltung der anatomischen Morphologie ermöglichen. Die Methode lohnt sich, weil die zuverlässigen Ergebnisse und das reproduzierbare Vorgehen die Untersuchung der Mechanismen der Krankheitsheilung erleichtern.

Etablierung eines Maus-Kontusionsmodells für Rückenmarksverletzungen basierend auf einer minimal-invasiven Technik

Das vorliegende Protokoll, das das zentrale Rückenschnursyndrom (CCS) bei Mäusen simuliert, hat die Wiederholbarkeit verbessert und die Operationsschäden der Versuchstiere minimiert, wodurch eine übermäßige Störung der anatomischen Struktur vermieden wurde. Die Strategie in dieser Studie ist vorteilhaft, da sie die Erforschung von Verletzungsmechanismen ermöglicht, indem sie konsistente Ergebnisse liefert.

Etablierung des Modells des Zentralschnursyndroms in der C57BL/6J-Maus

Atemwegskomplikationen sind die häufigste Todesursache bei Personen mit zervikaler Rückenmarksverletzung (cSCI). Tiermodelle für cSCI sind für mechanistische Bewertungen und präklinische Studien unerlässlich. In dieser Arbeit stellen wir eine reproduzierbare Methode vor, um die funktionelle Wiederherstellung der Zwerchfellmuskelaktivität (DIAm) nach einseitiger C2 spinaler Hemisektion (C2SH) bei Ratten zu beurteilen.

Beurteilung der funktionellen Wiederherstellung der Eupneik-Zwerchfellaktivität nach einseitiger Hemisektion des zervikalen Rückenmarks bei Ratten

Lernen Sie ein präklinisches Rattenmodell zur Untersuchung von Ateminsuffizienz nach zervikaler Rückenmarksverletzung. Diese Methode ermöglicht die Analyse neuroplastischer Veränderungen und die Entwicklung neuer Therapien.

Einem Mausmodell der zervikalen Rückenmarksverletzung zu Post-läsionaler Atemneuroplastizität Studieren

Weitere Videos entdecken