Name: Chemotherapie-induzierte vaskuläre Toxizität - Echtzeit- In-vivo- Imaging von Vessel Impairment (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-01-07T13:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 48 s
Description: Lernen Sie die faserkonfokale Fluoreszenzmikroskopie zur Echtzeit-Visualisierung von Gefäßen und deren Reaktion auf Chemotherapeutika im Tiermodell. Diese Methode ermöglicht die Bewertung vaskulärer Toxizität.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ethics Statement: Alle Experimente wurden von der Institutional Animal Care und Verwenden Committee genehmigt. Tierpflege war gemäß gültiger Richtlinien. ICR weibliche Mäuse (7-8 Wochen alt, 25 bis 30 g) wurden in Klimaanlage, Licht gesteuert Tiereinrichtungen des Sackler Fakultät für Medizin in Tel-Aviv Universität untergebracht. Am Begriff wurden die Tiere mit Narkosedosis euthanasiert. 1. Fibred konfokale Fluoreszenzmikroskopie (FCFM) Kalibrierung <ol><li> Schalten Sie das Gerät EIN. </li><li> Schließen Sie die Mikrosonde (mini0 / 30). </li><li> Kalibrieren der Vorrichtung nach den Anweisungen des Herstellers. </li></ol> 2. Mäuse Vorbereitung für Imaging <ol><li> Anesthetize durch eine subkutane Injektion von sowohl Ketaset (100 mg / kg) und XYL-M2 (6 mg / kg). Überprüfen Sie die Betäubung durch Teilnahmslosigkeit bis Fuß-Prise. </li><li> Inzision der Haut unter der Leiste, um<html> zeigen die Oberschenkel arteriellen Gefäße. Halten Sie die Inzisionsstelle feucht mit Kochsalzlösung nach Einschnitt. </li><li> Heizen Sie den Schwanz durch die Verwendung eines Beutels (oder einen Handschuh) mit warmem Wasser (nicht zu heiß zum Anfassen) für ca. 30 sec gefüllt. Vorbereiten eines intravenösen (IV) Shunt zur Verabreichung von FITC-Dextran (ein Kontrastmittel) und entweder Kochsalzlösung oder chemotherapeutisches Mittel, durch Einführen einer Nadel (30 G, 1/2 Zoll) in die Schwanzvene und Anbringen einer 1 ml Spritze, um es . Achten Sie darauf, die Ader ist durch die Injektion von Kochsalzlösung auf. Hinweis: eine IV-Verabreichung von FITC-Dextran (mit hohem Molekulargewicht; 100 &amp; mgr; l; 10 mg / ml; 2.000 kDa) erleichtert die Visualisierung des Oberschenkel Mikrovaskulatur von FCFM. Doxorubicin (100 ul, 8 mg / kg Adriamycin) oder Kochsalzlösung wird ebenfalls später verabreicht werden IV in die vorgewärmte Schwanzvene. </li><li> Bewegen Sie die Maus supinely auf einer Polystyrol-Bühne. Sichern Sie die Maus auf dem Pad und zu pflegen, die mithilfe von chirurgischen Klebeband. </li></ol>title &quot;&gt; 3. Abbildung von Oberschenkelblutgefäße durch FCFM während und nach der Verabreichung von Doxorubicin oder Saline Anmerkung: (1) Mikrosonde (mini0 / 30): Die Fasern versehenen Konfokalmikroskop in dieser Studie verwendet wird, aus zwei Einheiten zusammengesetzt ist. (2) Laserscaneinheit (LSU-488; 488 nm Wellenlänge). <ol><li> Führen Sie alle Zeit-Runden-Analysen unter Verwendung der LSU 488 nm Wellenlängen-Laser. HINWEIS: Das Hauptgerät Detektor die gefiltert (500 bis 650 nm) emittierte Fluoreszenz. Die aufgenommenen Bilder werden anschließend wieder aufgebaut und mit einer Geschwindigkeit von 12 Bildern / s angezeigt. </li><li> Trennen Sie vorsichtig die Spritze von der Nadel und fügen Sie eine neue Spritze mit FITC-Dextran. Verwalten (IV) 100 ul FITC-Dextran. </li><li> Verschieben Sie die Mikrosonde (mini0 / 30) an eine geeignete Sichtfeld und fixiert es, nach Anpassung an die z-Achse, um das entsprechende Bild zu erhalten. Warten Sie auf das Anfangssignal zu verblassen, bis eine klare und fokussierte Signal visible. </li><li> Nehmen Sie eine Grundlinie Blutfluss für kurze Stabilisierungsphase (~ 30 sec). Schließen Sie dann auf die Nadel eine andere Spritze, die entweder Doxorubicin oder Kochsalzlösung. IV verwalten 100 ul Doxorubicin oder Kochsalzlösung. </li><li> Überwachung der Strömung des eingespritzten FITC-Dextran kontinuierlich für 20 min. Auf der FCFM-zugehörige Software, verwenden Sie die Schaltfläche Durchmesser am oberen Lineal, um die Blutgefäße zu messen und kategorisieren sie als kleine (&lt;15 um) oder große (&gt; 15 um). </li><li> Euthanize das Tier mit Narkosedosis. </li></ol>

<ol><li>Chow, A. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anthracyclines+cause+endothelial+injury+in+pediatric+cancer+patients%3A+a+pilot+study%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Oncol%22%5BJournal%5D)">Anthracyclines cause endothelial injury in pediatric cancer patients: a pilot study.</a> J Clin Oncol. 24 (6), 925-928 (2006).</li>
<li>Nuver, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+chemotherapy-induced+cardiovascular+changes+in+patients+with+testicular+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Oncol%22%5BJournal%5D)">Acute chemotherapy-induced cardiovascular changes in patients with testicular cancer.</a> J Clin Oncol. 23 (36), 9130-9137 (2005).</li>
<li>Vos, F. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+cell+effects+of+cytotoxics%3A+balance+between+desired+and+unwanted+effects%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Treat+Rev%22%5BJournal%5D)">Endothelial cell effects of cytotoxics: balance between desired and unwanted effects.</a> Cancer Treat Rev. 30 (6), 495-513 (2004).</li>
<li>Kerbel, R. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((%27Accidental%27+anti-angiogenic+drugs.+anti-oncogene+directed+signal+transduction+inhibitors+and+conventional+chemotherapeutic+agents+as+examples.Eur%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cancer%22%5BJournal%5D)">'Accidental' anti-angiogenic drugs. anti-oncogene directed signal transduction inhibitors and conventional chemotherapeutic agents as examples.Eur.</a> J Cancer. 36 (10), 1248-1257 (2000).</li>
<li>Soultati, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+vascular+toxicity+from+chemotherapeutic+agents%3A+preclinical+evidence+and+clinical+implications%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Treat+Rev%22%5BJournal%5D)">Endothelial vascular toxicity from chemotherapeutic agents: preclinical evidence and clinical implications.</a> Cancer Treat Rev. 38 (5), 473-483 (2012).</li>
<li>Tempelhoff, G. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood+coagulation+during+adjuvant+epirubicin%2Fcyclophosphamide+chemotherapy+in+patients+with+primary+operable+breast+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Oncol%22%5BJournal%5D)">Blood coagulation during adjuvant epirubicin/cyclophosphamide chemotherapy in patients with primary operable breast cancer.</a> J Clin Oncol. 14 (9), 2560-2568 (1996).</li>
<li>Ben Aharon, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Doxorubicin-induced+vascular+toxicity--targeting+potential+pathways+may+reduce+procoagulant+activity%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Doxorubicin-induced vascular toxicity--targeting potential pathways may reduce procoagulant activity.</a> PLoS One. 8 (9), e7515(2013).</li>
<li>Laemmel, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibered+confocal+fluorescence+microscopy+%28Cell-viZio%29+facilitates+extended+imaging+in+the+field+of+microcirculation.+A+comparison+with+intravital+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vasc+Res%22%5BJournal%5D)">Fibered confocal fluorescence microscopy (Cell-viZio) facilitates extended imaging in the field of microcirculation. A comparison with intravital microscopy.</a> J Vasc Res. 41 (5), 400-411 (2004).</li>
<li>Al-Gubory, K. H., Houdebine, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+imaging+of+green+fluorescent+protein-expressing+cells+in+transgenic+animals+using+fibred+confocal+fluorescence+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">In vivo imaging of green fluorescent protein-expressing cells in transgenic animals using fibred confocal fluorescence microscopy.</a> Eur J Cell Biol. 85 (8), 837-845 (2006).</li>
<li>Bar-Joseph, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+bioimaging+as+a+novel+strategy+to+detect+doxorubicin-induced+damage+to+gonadal+blood+vessels%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">In vivo bioimaging as a novel strategy to detect doxorubicin-induced damage to gonadal blood vessels.</a> PLoS One. 6 (9), e23492(2011).</li>
<li>Kaushal, V., Kaushal, G. P., Mehta, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+toxicity+of+anthracyclines+on+cultured+endothelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Endothelium%22%5BJournal%5D)">Differential toxicity of anthracyclines on cultured endothelial cells.</a> Endothelium. 11 (5-6), 253-258 (2004).</li>
<li>Kim, E. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Doxorubicin-induced+platelet+cytotoxicity%3A+a+new+contributory+factor+for+doxorubicin-mediated+thrombocytopenia%5BTitle%5D)+AND+%22J+Thromb+Haemost%22%5BJournal%5D)">Doxorubicin-induced platelet cytotoxicity: a new contributory factor for doxorubicin-mediated thrombocytopenia.</a> J Thromb Haemost. 7 (7), 1172-1183 (2009).</li>
<li>Walsh, J., Wheeler, H. R., Geczy, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modulation+of+tissue+factor+on+human+monocytes+by+cisplatin+and+adriamycin%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Haematol%22%5BJournal%5D)">Modulation of tissue factor on human monocytes by cisplatin and adriamycin.</a> Br J Haematol. 81 (4), 480-488 (1992).</li>
<li>Kotamraju, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Doxorubicin-induced+apoptosis+in+endothelial+cells+and+cardiomyocytes+is+ameliorated+by+nitrone+spin+traps+and+ebselen.+Role+of+reactive+oxygen+and+nitrogen+species%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Doxorubicin-induced apoptosis in endothelial cells and cardiomyocytes is ameliorated by nitrone spin traps and ebselen. Role of reactive oxygen and nitrogen species.</a> J Biol Chem. 275 (43), 33585-33592 (2000).</li>
<li>Vasquez-Vivar, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+nitric+oxide+synthase-dependent+superoxide+generation+from+adriamycin%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Endothelial nitric oxide synthase-dependent superoxide generation from adriamycin.</a> Biochemistry. 36 (38), 11293-11297 (1997).</li>
</ol>

Auswerten Chemotherapie-induzierter vaskulärer Toxizität stellt aufgrund der Schwierigkeit bei der Visualisierung der Dynamik der Vaskulatur in Antwort auf Stimuli in Echtzeit. Zahlreiche klinische Studien haben impliziert, dass mehrere Chemotherapien verursachen direkte Gefäßverletzung, aber der Mechanismus und Besonderheiten dieser Toxizität ist noch nicht geklärt. Wir haben eine Echtzeit für die Bewertung der potentiellen Gefäß Toxizität der Chemotherapie in Mäusen, umfassend von gefaserten konfokale Fluoreszenzmikro...

Klinische Daten zeigen, dass verschiedene Klassen von Chemotherapien zu entlocken eine Vielzahl von Gefäßerkrankungen von Raynaud-Phänomen, Bluthochdruck, myocardialinfarction, zerebrovaskuläre Angriff und Lebervenen occlusivedisease 1,2 manifestiert. &quot;&#39;Unbeabsichtigter&#39; anti-angiogenen Drogen&quot; ist ein recht neuer Begriff, der herkömmliche Chemotherapeutika, die als mögliche Angiogenese-Inhibitoren wirken beschreibt, obwohl sie ursprünglich nicht für diesen Zweck entwickelt, aber 3-5 entwickelt, um Tumorzellen zu eliminieren durch Auferlegung so wenig &quot;Sicherheiten Schaden &quot;zu normalen Zellen wie möglich 3. Mehrere Chemotherapien wurden als vasculo-Giftstoffe angedeutet worden, wie in klinischen Studien mit Serum-Biomarkern beobachtet. Unter diesen sind Alkylierungsmittel (wie Cyclophosphamid), Platin-Verbindungen (wie Cisplatin) und Anthrazyklinen 1,2,5-7. Akute kardiovaskulären Komplikationen können als resul auftretent von vaskulären Toxizität durch Chemotherapie. Sie können in chronischen Erkrankungen wie Arteriosklerose und machen erhöhtes Risiko für Spät vaskulären Morbidität Fortschritt. Trotz Montage klinische Beweise, gibt es einen Mangel an bezeichneten Studien, in der der Mechanismus der Gefäß Toxizität und daher ist eine weitere Erläuterung der genaue Pathogenese sie anrichten gerechtfertigt. Eine große Herausforderung bei der Aufdeckung des Mechanismus der Chemotherapie-induzierter vaskulärer Toxizität ergibt sich aus der Komplexität der Untersuchung von Gefäßfunktion in vivo. Wir beschreiben hier eine Plattform für hochauflösende in vivo molekulare Bildgebung bei Mäusen, die den Blutfluss und Schiffe Eigenschaften erfassen können. Diese Plattform erleichtert den Nachweis der direkten Behandlung induzierten vaskulären Wirkungen: in Echtzeit, sowie die folgenden sie über eine Zeitdauer, innerhalb der gleichen Individuen.

<table><tbody><tr><td>Allgemeinanästhesie</td><td>Fort Dodge Animal Health, IA, USA und Biove Laboratories, Frankreich</td><td></td><td>100 mg/kg Ketaset und 6 mg/kg XYL-M2</td></tr><tr><td>Enthaarungscreme (Veet)</td><td>ReckittBenckiser, Bristol, UK</td><td></td><td></td></tr><tr><td>30 G, 1/2 Zoll Nadel an 1 ml Spritze</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>befestigt FITC Dextran (10 mg/ml; MW 2.000 kDa)</td><td>Sigma</td><td>FD2000S</td><td>100 &mu; l Volumen</td></tr><tr><td>Doxorubicin</td><td>Teva, Israel</td><td></td><td>8 mg/kg, Adriamycin</td></tr><tr><td>Paclitaxel</td><td>Taro, Israel</td><td></td><td>1,2 mg/kg, Medexel</td></tr><tr><td>Kochsalzlösung</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

chemotherapie-induzierte vaskuläre toxizität - echtzeit-<em&gt; in-vivo-</em&gt; imaging von vessel impairment

Chemotherapy-induced Vascular Toxicity - Real-time In vivo Imaging of Vessel Impairment

Bestimmte Arten von Chemotherapien können akute Gefäßveränderungen, die in langfristigen Bedingungen, die den Patienten zu einem erhöhten Risiko von vaskulären Erkrankungen begünstigen können, fortschreiten kann auszuüben. Doch wenn auch der Befestigungs klinische Beweise, gibt es einen Mangel an klaren Studien des vaskulären Toxizität und daher der Ätiologie einer heterogenen Gruppe von Gefäß / kardiovaskulären Störungen noch aufgeklärt werden. Darüber hinaus kann der Mechanismus, der vaskulären Toxizität zugrunde liegen vollständig unterscheiden sich von den Grundsätzen der Chemotherapie-induzierter Kardiotoxizität, die in Beziehung steht zu Myozyten Verletzungen zu lenken. Wir haben eine Echtzeit eingerichtet, in vivo molekularen Bildgebung Plattform, um die mögliche akute vaskuläre Toxizität von Antikrebstherapien zu bewerten. Wir haben eine Plattform für in vivo, hochauflösende molekulare Bildgebung bei Mäusen, die für die Visualisierung Gefäßsystem im geschlossenen Organe und Referenz blo eingestelltod Gefäße innerhalb derselben Personen während jedes einzelnen dienen als seine eigene Kontrolle. Wände der Blutgefäße wurden nach Doxorubicin Verwaltung beeinträchtigt, was einen einzigartigen Mechanismus von vaskulären Toxizität, die der frühes Ereignis in der Endorgane Verletzung sein kann. Hierbei wird das Verfahren zum fibered konfokale Fluoreszenzmikroskopie (FCFM) basierend Abbildungs ​​beschrieben, die einen innovativen Modus bietet den physiologischen Phänomenen auf zellulärer und subzellulärer in Tier Themen zu verstehen.

In-vivo-Bildgebung bei kontinuierlichen Echtzeit- Die bildgebende Vorrichtung verwendet, hier ist ein hochauflösendes, fibered konfokalen Mikroskop, mit einer Sonde, die Visualisierung des Gefäßsystems und ihre Reaktion auf verschiedene Stimuli, wie Chemotherapie ermöglicht. Dieses Verfahren ist minimal-invasiv, da, obwohl es Bildgebung der tiefen Gefäße oder Organe zu erleichtern, einen kleinen Einschnitt für die Sonde erfordert. Die Sondenbündel bestehen aus Zehntausenden von Fasern,...

Wir beschreiben hier die Methode der faserbasierten konfokalen Fluoreszenzmikroskopie (FCFM) Bildgebung, die einen innovativen Modus zum Verständnis physiologischer Phänomene auf zellulärer und subzellulärer Ebene bei tierischen Probanden bietet.

Chemotherapie-induzierte vaskuläre Toxizität - Echtzeit-<em&gt; In-vivo-</em&gt; Imaging von Vessel Impairment

Certain classes of chemotherapies may exert acute vascular changes that may progress into long-term conditions that may predispose the patient to an ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, mithilfe eines hochauflösenden fasergekoppelten Konfokalmikroskops die Gefäßstruktur und deren Reaktion auf verschiedene Reize sichtbar zu machen. Dazu wird zunächst das Mikroskop kalibriert und anschließend das Tier intravenös mit Fitzy-Dextrin injiziert, um die Visualisierung der Blutgefäße zu erleichtern. Danach werden die Gefäße mit dem fasergekoppelten konfokalen Fluoreszenzmikroskop in Echtzeit während und nach der experimentellen Behandlung abgebildet. Letztendlich könnte diese in-vivo-Molekularbildgebungstechnik zur Beurteilung der potenziellen vaskulären Toxizität von Substanzen wie Chemotherapeutika in einem Tiermodell eingesetzt werden.Im Allgemeinen können Personen, die neu in dieser Methode sind, Schwierigkeiten haben, da der Aufbau eines Systems und die Aufnahme eines stabilen Bildes herausfordernd sein können. Die Durchführung des Verfahrens wird von Dr. Sef, einem Postdoktoranden aus dem Labor, demonstriert. Bevor die Maus für die Bildgebung vorbereitet wird, schalten Sie das Faser-Konfokal-Fluoreszenzmikroskop ein und verbinden Sie die Mini-Zero-30-Mikrosonde.Kalibrieren Sie das Gerät gemäß den Anweisungen des

chemotherapy-induced-vascular-toxicity-real-time-vivo-imaging-vessel

Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Kontrastverstärkte Kleintier-Schiff Bildgebung durch MicroCT ist eine schnelle, kostengünstige und High-Throughput-Verfahren für die...

Kontrastverstärkten Vessel Imaging mit MicroCT

Wir beschreiben ein Verfahren zur Abbildung als Reaktion auf...

Live-Imaging of Drug Responses in der Tumor-Mikroumgebung in Mausmodellen von Brustkrebs

In diesem Beitrag stellen wir eine Methode, um Tumormikrogefäßen in vivo Analyse mit dynamischen Kontrastmittel-Fluoreszenz-Videomikroskopie. Zwei quantitative Parameter wurden erworben: funktionelle Kapillardichte was die Durchblutung des Tumors und Leckage Index spiegelt die Undichtigkeit der endothelialen Wand.

In-vivo-Imaging der Tumorangiogenese mit Fluoreszenz-Videomikroskopie Konfokale

A Novel Hochauflösende<em&gt; In vivo</em&gt; Bildtechnik, um die Dynamik der intrakranielle Strukturen zu Tumorwachstum und Therapeutics Studieren

Hier wird die Echtzeitüberwachung des Tumorzellstoffwechsels, kombiniert mit einem in vivo Modell der Chorio-Allantoismembran (CAM) der Metastasierung von Hühnerembryonen, verwendet, um neuartige Anti-Krebs-Ziele/Wirkstoffe auf ihre Fähigkeit hin zu bewerten, Tumorzellen für DNA-schädigende Chemotherapeutika zu sensibilisieren.

Bewertung der Wirksamkeit der Krebsmedikament Sensibilisierung<em&gt; In-vitro-</em&gt; Und<em&gt; In-vivo-</em

Dieses Protokoll beschreibt die Verwendung von Multiphotonen - Mikroskopie ausgedehnte Zeitraffer-Bildgebung von mehrzelligen Interaktionen in Echtzeit durchzuführen, in vivo auf Einzelzellauflösung.

Erweiterte Zeitraffer-Intravital Imaging von Echtzeit-Vielzellige Dynamics im Tumormikromilieu

Dieses Protokoll beschreibt die intravitalen Bildgebung von transgenen Mäusen zellspezifische fluoreszierenden Marker zum Ausdruck zu bringen. Intravitalen Bildgebung stellt eine nicht-invasive Methode für hochauflösende Beobachtungen an lebenden Tieren mit implantierbaren Windows durch die mikroskopische Visualisierung von Prozessen möglich ist. Diese Methode ist besonders nützlich, um längs Prozesse zu studieren.

Intravitalen Mikroskopie von Tumor-assoziierten Gefäßsystem mit erweiterten dorsalen Hautfalte Fenster Kammern an transgenen Mäusen fluoreszierende

Monozyten sind wichtige Vermittler des Arteriogenesis im Rahmen der peripheren arteriellen Verschlusskrankheit. Mit einem Basalmembran-wie Matrix und intravitalen Mikroskopie, untersucht dieses Protokoll Monocyte homing und im Zusammenhang mit Tumor-Angiogenese nach Monocyte-Injektion in die Femoral Arterie Ligatur Mausmodell.

Intravitalen Mikroskopie Monocyte Homing und Tumor-bezogene Angiogenese in einem Mausmodell der peripheren arteriellen Verschlusskrankheit

Wir beschreiben zwei Methoden zur Beurteilung der transienten vaskulären Permeabilität im Zusammenhang mit der Tumormikroumgebung der Metastasenfunktion (TMEM) und der Krebszellintravasation unter intravenöser Injektion von hochmolekularem Dextran (155 kDa) bei Mäusen. Die Methoden umfassen intravitale Bildgebung bei lebenden Tieren und feste Gewebeanalyse mittels Immunfluoreszenz.

Beurteilung der Tumormikroumgebung von Metastasierung Doorway-Vermittelte Vaskuläre Durchlässigkeit im Zusammenhang mit der Krebszellverbreitung mit Intravital Imaging und Fixed Tissue Analysis

Dieses Protokoll stellt ein physiologisch relevantes Tumor-on-a-Chip-Modell vor, um Hochdurchsatz-Grundlagen- und translationale Krebsforschung am Menschen durchzuführen und das Arzneimittel-Screening, die Krankheitsmodellierung und Ansätze der personalisierten Medizin mit einer Beschreibung von Lade-, Wartungs- und Bewertungsverfahren voranzutreiben.

Etablierung eines physiologischen humanen vaskularisierten Mikrotumormodells für die Krebsforschung

Die Translation von Befunden der Intravitalmikroskopie wird durch das geringe Eindringen in das Gewebe erschwert. Hier beschreiben wir ein Mausmodell mit dorsaler Fensterkammer, das die Co-Registrierung der Intravitalmikroskopie und klinisch anwendbarer Bildgebungsmodalitäten (z. B. CT, MRT) für eine direkte räumliche Korrelation ermöglicht und so die klinische Translation von Befunden der Intravitalmikroskopie möglicherweise rationalisiert.

Ein Mausmodell eines dorsalen Hautfaltenfensterkammertumors für die kombinierte Intravitalmikroskopie und Magnetresonanztomographie in der translationalen Krebsforschung

Lernen Sie die faserkonfokale Fluoreszenzmikroskopie zur Echtzeit-Visualisierung von Gefäßen und deren Reaktion auf Chemotherapeutika im Tiermodell. Diese Methode ermöglicht die Bewertung vaskulärer Toxizität.

Chemotherapie-induzierte vaskuläre Toxizität - Echtzeit-

Weitere Videos entdecken