Name: Sammlung und Extraktion von DNA-Speichel für Next Generation Sequencing (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-08-27T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 58 s
Description: Erfahren Sie die kostengünstige Extraktion hochwertiger genomischer DNA aus Speichel für PCR und Sequenzierung. Diese optimierte Methode minimiert Degradation und gewährleistet hohe Ausbeute für genomische Studien.

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Diese Arbeit wurde von einem National Institutes of Health R01 finanziert (DC009453 Unterstützung des CWB).

HINWEIS: Vor der Bereitstellung Speichelproben alle Probanden gaben Einwilligung gemäß den Richtlinien für die Behandlung von Menschen bei Nationwide Kinderkrankenhaus. 1. Speichelentnahme und Lagerung <ol><li> Vor der Speichelentnahme, sicherzustellen, dass der Mund des Subjekts ist frei von Nahrung oder anderen Fremdstoffen, indem er das Thema spülen den Mund mit Wasser und die Vermeidung von Essen oder Trinken für 30 Minuten vor dem Sammeln der Probe. </li><li> Öffnen Sie ein 15 ml Zentrifugenröhrchen mit 2,5 ml DNA-Stabilisierungspuffer 2 achten Sie darauf, berühren Sie nicht die Innenseite der Kappe oder ein Rohr, und haben das Thema spucken 2,5 ml Speichel in die Pufferlösung. Hinweis: Das Sammeln von mehr als 2,5 ml Speichel können Probenabbau von einem unzureichenden Verhältnis von DNA-Probe, um Stabilisierungspuffer führen. Sammeln zu wenig Speichel erwarteten Erträge aus dem Protokoll zu reduzieren. Um Sammelmengen auswerten, die Ziffern Steigungen auf der Seite von Ter Rohr. </li><li> Die Schutzkappe und mischen durch Umdrehen, bis die Mischung homogenisiert. Heftiges Schütteln ist nicht notwendig. Lagern Sie die Proben bei Raumtemperatur für die kurzzeitige Lagerung oder 4 ° C für die Langzeitlagerung (&gt; 3 Monate). </li></ol> 2. Erste Vorbereitungen und Zell-Lyse <ol><li> Vor Beginn der Extraktion, Hitze ein Wasserbad auf 37 ° C, und bereiten einem Eimer Eis. Drei 15 ml konischen Zentrifugenröhrchen wird für jeden extrahierten Probe benötigt. Die drei Röhren wird verwendet, um die Zelle und Proteinpellet, die endgültige extrahiert gDNA und das Isopropanol und Ethanol-Überstände zu halten. </li><li> Abrufen Proben von Lagerung und Invertzucker Proben mehrmals dann Wirbel bei mittlerer Geschwindigkeit für 15 Sekunden. </li><li> Verzichten 2,5 ml Probe in ein sauberes 15 ml Zentrifugenröhrchen und 5 ml Zell-Lyse-Lösung. Die Probe 50-mal durch Inversion, und Inkubation bei RT für 30 min. </li></ol> 3. Entfernen RNA <ol><li> Dann werden 40 ul RNase A Solution bei 100 mg / ml, und bei 37 ° C für 15 min. </li><li> Entfernen Sie die Probe aus dem 37 ° C warmen Wasserbad und kühlen auf Eis für 3 min. <ol><li> Nach der RNase A Inkubation wird die Temperatur des Wasserbades auf 65 ° C für die DNA Rehydratisierung Schritt des Protokolls. </li></ol></li></ol> 4. Protein und Lipidentfernung <ol><li> Dann werden 50 ul Proteinase K-Lösung bei 20 mg / ml, Mischung mehrfach durch Umdrehen und inkubiert bei Raumtemperatur für mindestens 30 min. Hinweis: Dies ist eine mögliche Pause Punkt für das Protokoll. Nach der Zugabe der Proteinase-K-Lösung, kann die Probe bei 4 ° C gelagert, bis die Extraktion abgeschlossen werden kann. Lagerung bei 4 ° C für bis zu 24 Stunden wurde nicht gezeigt, um eine signifikante Wirkung auf die Extraktionsausbeuten oder DNA-Qualität haben. Langfristige Lagerung in diesem Stadium noch nicht bewertet worden. </li><li> Fügen Sie 1,7 ml Protein Precipitation Lösung, Vortex kräftig für 20 Sekunden bei hoher Geschwindigkeit und auf Eis für 10 min. </li&gt; <li> Nachdem die Proben auf Eis für 10 min, Zentrifuge für 10 min bei 3.000 × g und 4 ° C abgekühlt. Die gefällten Proteine ​​bilden muss eine enge Pellet, um fortzufahren. Wenn das Pellet ist nicht dicht oder die Lösung ist immer noch bewölkt, können die Proben auf Eis für 5 min mehr gekühlt werden und Zentrifugation wiederholt. Die Proben sind auf Eis gehalten werden, um eine enge Pellet gewährleisten. </li></ol> 5. Isolierung und Aufreinigung von gDNA <ol><li> In einen sauberen 15 ml-Zentrifugenröhrchen, Pipetten 5 ml Isopropanol und 8 ul Glycogen reinen Lösung bei 20 mg / ml. </li><li> Gießen der Überstand, der gDNA aus Schritt 4.3 in das Rohr mit dem Isopropanol und Glykogen Lösung, wobei hinter dem ausgefällten Proteinpellet. Nachdem der Überstand wurde hinzugefügt, vorsichtig mischen die Probe 50-mal durch Umdrehen und Zentrifuge für 30 min bei 3.000 × g und 4 ° C liegt. </li><li> Gießen Sie den Überstand langsam in einen sauberen 15-ml-Tube. Nach Entfernen des Überstands, Zugabe von 1 ml 70% EthanolWaschen des Pellets langsam und sanft schaukel Bewegen des Ethanol über dem ausgefällten Pellet mehrmals. Bewahren Sie das Ethanol in die Röhre. </li><li> Nach der ersten Wäsche, Zentrifugieren Sie die Probe für 1 min bei 2.000 xg und 20 ° C. Dieser Zentrifugationsschritt kann entweder bei 4 ° C oder 20 ° C durchgeführt werden. Keine signifikante Wirkung der Temperatur für diesen Schritt hat sich gezeigt. </li><li> Nach der ersten Wäsche und Zentrifugation des Pellets, gießen Sie langsam den Ethanolwasch aus der Tube und entsorgen, dann eine zweite Wasch durch Wiederholen der Schritte 5.3 und 5.4. </li><li> Nach dem Entfernen des Überstands aus der zweiten Wasch Pellet an der Luft trocknen lassen für 15 Minuten. <ol><li> Wenn die Probe nicht vollständig getrocknet ist, an der Luft trocknen für weitere 15 min. </li></ol></li></ol> 6. Rehydrierung von gDNA <ol><li> Nachdem die Probe getrocknet werden 300 ul Tris-EDTA, das getrocknete Pellet gDNA rehydrieren. </li><li> Vortex die Probe für 5 Sekunden bei mittlerer Geschwindigkeit und in einen65 ° C heißen Wasserbad für 1 Stunde. </li><li> Entfernen Sie die Proben aus dem Wasserbad inkubiert und O / N bei RT. HINWEIS: Alle Produkte und Reagenzien sind in der Tabelle aufgeführten Materialien, sowie Tabelle 4. </li></ol>

<ol><li>Quinque, D., Kittler, R., Kayser, M., Stoneking, M., Nasidze, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+saliva+as+a+source+of+human+DNA+for+population+and+association+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Evaluation of saliva as a source of human DNA for population and association studies.</a> Analytical Biochemistry. 353, 272-277 (2006).</li>
<li>Min, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+mircosatellite+and+SNP+genotyping+success+rates+established+in+a+large+number+of+genomic+DNA+samples+extracted+from+mouth+swabs+and+genotypes%5BTitle%5D)+AND+%22Twin+Research+and+Human+Genetics%22%5BJournal%5D)">High mircosatellite and SNP genotyping success rates established in a large number of genomic DNA samples extracted from mouth swabs and genotypes.</a> Twin Research and Human Genetics. 9, 501-506 (2006).</li>
<li>Dlugos, D. J., Scattergood, T. M., Ferraro, T. N., Berrettinni, W. H., Buono, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recruitment+rates+and+fear+of+phlebotomy+in+pediatric+patients+in+a+genetic+study+of+epilepsy%5BTitle%5D)+AND+%22Epilepsy+%26+Behavior%22%5BJournal%5D)">Recruitment rates and fear of phlebotomy in pediatric patients in a genetic study of epilepsy.</a> Epilepsy & Behavior. 6, 444-446 (2005).</li>
<li>Etter, J. F., Neidhart, E., Bertand, S., Malafosse, A., Bertrand, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collecting+saliva+by+mail+for+genetic+and+cotinine+analyses+in+participants+recruited+through+the+internet%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Epidemiology%22%5BJournal%5D)">Collecting saliva by mail for genetic and cotinine analyses in participants recruited through the internet.</a> European Journal of Epidemiology. 20, 833-838 (2005).</li>
<li>Hansen, T. V., Simonsen, M. K., Nielsen, F. C., Hundrup, Y. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collection+of+blood%2C+saliva%2C+and+buccal+cell+samples+in+a+pilot+study+on+the+danish+nurse+cohort%3A+Comparison+of+the+response+rate+and+quality+of+genomic+DNA%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Epidemiol+Biomarkers+Prev%22%5BJournal%5D)">Collection of blood, saliva, and buccal cell samples in a pilot study on the danish nurse cohort: Comparison of the response rate and quality of genomic DNA.</a> Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 16, 2072-2076 (2007).</li>
<li>Van Schie, R. C. A. A., Wilson, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Saliva%3A+A+convenient+source+of+DNA+for+analysis+of+bi-allelic+polymorphisms+of+fc%CE%B3+receptor+iia+%28cd32%29+and+fc%CE%B3+receptor+iiib+%28cd16%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunological+Methods%22%5BJournal%5D)">Saliva: A convenient source of DNA for analysis of bi-allelic polymorphisms of fcγ receptor iia (cd32) and fcγ receptor iiib (cd16).</a> Journal of Immunological Methods. 208, 91-101 (1997).</li>
<li>Dawes, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estimates%2C+from+salivary+analyses%2C+of+the+turnover+time+of+oral+mucosal+epithelium+in+humans+and+the+number+of+bacteria+in+an+edentulous+mouth%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Oral+Biology%22%5BJournal%5D)">Estimates, from salivary analyses, of the turnover time of oral mucosal epithelium in humans and the number of bacteria in an edentulous mouth.</a> Archives of Oral Biology. 48, 329-336 (2003).</li>
<li>Bahlo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Saliva-derived+DNA+performs+well+in+large-scale%2C+high-density+single-nucleotide+polymorphism+microarray+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Epidemiol+Biomarkers+Prev%22%5BJournal%5D)">Saliva-derived DNA performs well in large-scale, high-density single-nucleotide polymorphism microarray studies.</a> Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 19, 794-798 (2010).</li>
<li>Hu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genotyping+performance+between+saliva+and+blood-derived+genomic+dnas+on+the+dmet+array%3A+A+comparison%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Genotyping performance between saliva and blood-derived genomic dnas on the dmet array: A comparison.</a> PLoS ONE. 7 (3), e33968(2012).</li>
<li>Simmons, T. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increasing+genotype-phenotype+model+determinism%3A+Application+to+bivariate+reading%2Flanguage+traits+and+epistatic+interactions+in+language-impaired+families%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Heredity%22%5BJournal%5D)">Increasing genotype-phenotype model determinism: Application to bivariate reading/language traits and epistatic interactions in language-impaired families.</a> Human Heredity. 70, 232-244 (2010).</li>
<li>Zeugin, J. A., Hartley, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ethanol+precipitation+of+DNA%5BTitle%5D)+AND+%22Focus%22%5BJournal%5D)">Ethanol precipitation of DNA.</a> Focus. 7, 1-2 (1985).</li>
<li>Li, H., Durbin, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fast+and+accurate+short+read+alignment+with+Burrows-Wheeler+Transform%5BTitle%5D)+AND+%22Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">Fast and accurate short read alignment with Burrows-Wheeler Transform.</a> Bioinformatics. 25, 1754-1760 (2009).</li>
<li>McKenna, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Genome+Analysis+Toolkit%3A+a+MapReduce+framework+for+analyzing+next-generation+DNA+sequencing+data%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Res%22%5BJournal%5D)">The Genome Analysis Toolkit: a MapReduce framework for analyzing next-generation DNA sequencing data.</a> Genome Res. 20, 1297-1303 (2010).</li>
<li>DePristo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+framework+for+variation+discovery+and+genotyping+using+next-generation+DNA+sequencing+data%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Genetics%22%5BJournal%5D)">A framework for variation discovery and genotyping using next-generation DNA sequencing data.</a> Nature Genetics. 43, 491-498 (2011).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Das vorliegende Verfahren ist eine optimierte DNA-Extraktionsprotokoll, die deutlich verbesserte Ausbeute von hochmolekularer DNA im Vergleich zu Standardmethoden, ohne dabei DNA-Qualität. Der entscheidende Schritt mit der größten Wirkung auf den Ertrag die meisten war Schritt 5.2, die eine längere Zentrifugation Schritt während Ethanol-Fällung als jeder veröffentlichten Protokoll hier, überprüft mit einer Ausnahme, die nicht weit verbreitet war 11 umfasst. Keine Änderungen in der DNA-Qualität mit dieser läng...

Erzielen hoher Qualität für die menschliche DNA genetische Studien ist wichtig, in der Krankheit Gen Entdeckungsprozess. Blut, obwohl erfordern ein invasives Verfahren und auch teurer als Speichelsammlung wird zum Erzeugen immortalisierter Zelllinien als eine unendliche Quelle von DNA oder iPSCs für funktionelle Studien bevorzugt, und manchmal Blut-DNA wird verwendet, wenn Zelllinien nicht vorhanden sind. , Blutgewinnung erfordert jedoch eine ausgebildete phlebotomist und Blut eine kürzere Halbwertszeit als Speichel 1 hat. DNA aus Speichel ist weniger teuer und leichter zu erhalten, da sie gesammelt und durch die Mail ohne die Notwendigkeit für eine Blutentnahme, wodurch die Versuchsperson Bäder weit über den Einzugsbereich der Krankenhäuser und Laboratorien 2. Studienaufnahme kann verbessert werden, wenn die Probanden die Möglichkeit zu geben eine Speichelprobe statt Blut 3, 4. Können Bedenken hinsichtlich der Quantität und Qualität der DNA aus dem Speichel seine weit verbreitete uns eingeschränkt habenTrotz zahlreicher Studien neueren Studien, die die Eignung der gesamte Speichel, mit einem Durchschnitt von 4,3 x 10 5 Zellen pro Milliliter, zum DNA-Test gegenüber den älteren Tupfern Verfahren, die signifikante Mengen an Speichel 2, 3, 4, 5 nicht erhalten hat e, 6. Während eine bescheidene Literatur existiert, die die Eignung der Gesamtspeichel abgeleiteten DNA für die Genotypisierung Anwendungen wie Microarray-basierte Methoden 8, 9, 10, keine Studien haben untersucht, Next Generation Sequencing (NGS). Das Ziel für die Optimierung dieses ganze Speichel DNA Extraktionsprotokoll war es, Menge und Qualität für Anwendungen in der Genetik einer kosteneffektiven Weise, die leicht in Labore mit gemeinsamen Reagenzien und Verbrauchsmaterialien umgesetzt zu maximieren. DNA-Extraktion aus Speichel erfordert mehrere Verfahren: 1) Sammlung und Lagerung, 2) Zell-Lyse, 3) RNase-Behandlung, 4) Proteinfällung, 5) Ethanol-Fällung, 6) DNA Rehydrierung. Die DNA-Stabilisierungspuffer-Lösung, beschriebenvorher 2, Funktionen angemessen unverändert. Kein Versuch zur Optimierung der RNase-Behandlung und DNA Rehydratisierung Schritte wurde. Für jeden weiteren Schritt wurden mehrere Variablen, die Rendite auswirken könnten identifiziert. Jede Variable wurde einzeln manipuliert und Verbesserung der Ausbeute und Qualität wurde statistisch ausgewertet. Für Variablen, die gezeigt wurden, um die Ausbeute und / oder DNA-Qualität zu verbessern, wurden die optimalen Werte in der letzten Protokoll enthalten.

<table><tbody><tr><td>15 ml Zentrifugenröhrchen</td><td>Fisher</td><td>12-565-268</td><td></td></tr><tr><td>Zelllyselösung</td><td>Qiagen</td><td>158908</td><td></td></tr><tr><td>Proteinase K</td><td>Sigma</td><td>P6556</td><td></td></tr><tr><td>Proteinfällungslösung</td><td>Qiagen</td><td>158912</td><td></td></tr><tr><td>Isopropanol</td><td>Fisher</td><td>A416-4</td><td></td></tr><tr><td>Glykogen</td><td>EZ-BioResearch</td><td>S1003</td><td></td></tr><tr><td>70% Ethanol</td><td>Fisher</td><td>04-355-305</td><td></td></tr><tr><td>Tris-EDTA (TE)</td><td>Fisher</td><td>BP2473-1</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Fisher</td><td>AC194090010</td><td></td></tr><tr><td>Tris HCl</td><td>Fisher</td><td>BP1757-100</td><td></td></tr><tr><td>EDTA (0,5 M) Lösung</td><td>Fisher</td><td>03-500-506</td><td></td></tr><tr><td>Natriumdodecylsulfat</td><td>Fisher</td><td>BP166-100&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Analoger Vortex-Mischer</td><td>Fisher</td><td>02-215-365</td><td></td></tr><tr><td>Zentrifuge 5810R</td><td>Eppendorf</td><td>5811 000.010</td><td></td></tr></tbody></table>

sammlung und extraktion von dna-speichel für next generation sequencing

Collection and Extraction of Saliva DNA for Next Generation Sequencing

Die bevorzugte DNA-Quelle in der Humangenetik ist Blut oder aus Blut gewonnene Zelllinien, da diese Quellen große Mengen an hochwertiger DNA liefern. Die DNA-Extraktion aus Speichel kann jedoch qualitativ hochwertige DNA mit wenig bis gar keiner Degradation/Fragmentierung liefern, die für eine Vielzahl von DNA-Assays ohne die Kosten eines Phlebotomisten geeignet ist und sogar per Post erworben werden kann. Bisher wurden in der Literatur jedoch keine Speichel-DNA-Entnahme-/Extraktionsprotokolle für die Sequenzierung der nächsten Generation vorgestellt. Dieses Protokoll optimiert die Parameter der Speichelgewinnung/-lagerung und der DNA-Extraktion, um von ausreichender Qualität und Quantität für DNA-Assays mit den höchsten Standards zu sein, einschließlich Microarray-Genotypisierung und Next Generation Sequencing.

Um die optimalen Parameter zu bestimmen für die DNA-Extraktion eine Reihe von gepaarten DNA-Extraktionen durchgeführt wurde. Eine einzelne Speichelprobe wurde aufgeteilt, und jede Portion mit einem von zwei möglichen Werten für eine bestimmte Variable getestet. Mindestens acht Wiederholungen jeder gepaarten Test durchgeführt (beispielsweise wurde ein einzelner Speichelprobe aliquotiert, um die Extraktion mit oder ohne anfängliche 50 ° C Inkubation Test). Gesamt-DNA-Ausbeute, die 260/280 Wert, desto 260/230 Wert...

DNA-Extraktion aus Speichel kann eine leicht verfügbare Quelle für DNA mit hohem Molekulargewicht darstellen, mit wenig bis gar keiner Degradation/Fragmentierung. Dieses Protokoll bietet optimierte Parameter für die Speichelgewinnung/-lagerung und DNA-Extraktion, um von ausreichender Qualität und Quantität für nachgelagerte DNA-Assays mit hohen Qualitätsanforderungen zu sein.

Sammlung und Extraktion von DNA-Speichel für Next Generation Sequencing

The preferred source of DNA in human genetics research is blood, or cell lines derived from blood, as these sources yield large quantities of high quality ...

Das allgemeine Ziel dieses Verfahrens besteht darin, genomische DNA hoher Qualität aus Ganzspeichel zu isolieren. Dies wird erreicht, indem zunächst die Zellen lysiert werden, um die DNA freizusetzen. Der zweite Schritt des Verfahrens besteht darin, RNA- und Proteinverunreinigungen zu entfernen.Der dritte Schritt besteht darin, die genomische DNA auszufällen und verbleibende Kontaminanten oder Verunreinigungen zu entfernen. Der letzte Schritt ist die Wiedereinwässerung der genomischen DNA für nachgeschaltete Anwendungen wie PCR und Sequenzierung. Letztendlich können Spektroskopie, Photometrie und Amplifikation zeigen, dass die isolierte genomische DNA von hoher Qualität ist.Der Hauptvorteil dieser Methode gegenüber Sammelkits liegt in den deutlich reduzierten Kosten, ohne dass dabei die Ausbeute beeinträchtigt wird. Eine halbe Stunde vor der Speichelentnahme spülen die Probanden ihren Mund mit Wasser aus und verzichten anschließend auf Nahrung und Getränke, bis die Probe genommen wird. Zur Entnahme der Probe spuckt der Proband genau 2,5 Milliliter Speichel in ein 15-Milliliter-Röhrchen, das 2,5 Milliliter DNA-Stabilisierungspuffer enthält.Berühren Sie nicht das Innere des Röhrchens oder das Innere des Verschlusses. Verschließen Sie während dieses Vorgangs das Röhrchen und homogenisieren Sie die Mischung durch Umstülpen, nicht durch Schütteln. Bewahren Sie die Probe anschließend kurzfristig bei Raumtemperatur oder bis zu drei Monate bei vier Grad Celsius auf.Die Vorbereitungen umfassen das Erwärmen eines Wasserbades auf 37 Grad Celsius und das Bereitlegen von drei 15-Milliliter-Röhrchen. Drehen Sie die Probe zunächst mehrmals vorsichtig um, anschließend wirbeln Sie sie 15 Sekunden lang mit mittlerer Geschwindigkeit. Übertragen Sie 2,5 Milliliter der Probe in eines der Röhrchen.Geben Sie fünf Milliliter Zelllyselösung zur Probe aliquot und mischen Sie die Lysepufferlösung durch 50-maliges Vorsichtig-Invertieren des Röhrchens in die Probe ein. Nach dem Mischen lassen Sie die Probe 30 Minuten lang bei Raumtemperatur inkubieren. Nach einer halben Stunde geben Sie 40 Mikroliter RNA A (100 Milligramm pro Milliliter) zur lysierten Zelllösung hinzu.Danach das Röhrchen schnell fünfmal umstülpen. Die RNA-Reaktion 15 Minuten bei 37 Grad Celsius inkubieren lassen. Anschließend das Röhrchen drei Minuten auf Eis abkühlen.Erhöhen Sie an dieser Stelle die Wassertemperatur auf 65 Grad Celsius. Entfernen Sie anschließend das Röhrchen vom Eis. Geben Sie 50 Mikroliter Proteinase K hinzu und mischen Sie gut; inkubieren Sie die Reaktion entweder 30 Minuten bei Raumtemperatur oder 16 bis 24 Stunden bei vier Grad Celsius.Fügen Sie anschließend 1,7 Milliliter Proteinfällungslösung hinzu und wirbeln Sie das Gefäß 20 Sekunden lang bei hoher Geschwindigkeit im Vortex-Mixer. Anschließend lässt man die Probe 10 Minuten lang auf Eis abkühlen. Nach dem Abkühlen wird eine Probe 10 Minuten lang bei 3000 G und 4 Grad Celsius zentrifugiert.Falls das Pellet nicht fest ist, kühlen Sie die Probe weitere fünf Minuten lang und zentrifugieren Sie sie erneut für fünf Minuten. Wiederholen Sie diesen Vorgang, bis ein festes Pellet erhalten wird. Halten Sie die Probe stets kühl.Beginnen Sie die DNA-Isolierung, indem Sie ein sauberes 15-Milliliter-Gefäß mit fünf Millilitern Isopropanol und acht Mikrolitern Glykoslösung mit 20 Milligramm pro Milliliter vorbereiten. Gießen Sie dann die überstehende Phase der zentrifugierten Probe in dieses Gefäß. Entsorgen Sie das Pellet und mischen Sie die Probe durch 50maliges Umstülpen.Als Nächstes die Probe bei 3000 Gs und vier Grad Celsius für 30 Minuten zentrifugieren. Das Überstandsgemisch in ein anderes sauberes 15-Milliliter-Gefäß gießen, um das Pellet zu erhalten. Ein Milliliter 70 %igen Ethanol hinzufügen und das Gefäß 30 Sekunden lang vorsichtig von Hand zur Seite kippen.Anschließend die Ethanollösung eine Minute lang bei 2000 G und entweder bei vier Grad Celsius oder 20 Grad Celsius zentrifugieren. Das Überstandsvolumen verwerfen, indem es langsam abgegossen wird, dann erneut Ethanol zum Pellet hinzufügen. Das Gemisch vorsichtig von Hand schwenken und den Zentrifugationsschritt wiederholen.Danach die Ethanol-Lösung langsam erneut abgießen. Während der Wäsche kann das Pellet locker werden. Falls es sich löst, sicherstellen, dass es in der Ethanol-Lösung bleibt und nicht an den Seitenwänden oder am Deckel des Röhrchens haften bleibt.Drehen Sie das Röhrchen während dieser Waschung nicht um. Nach den Ethanolwaschungen lassen Sie das Röhrchen 15 bis 30 Minuten lufttrocknen. Anschließend resuspendieren Sie das Pellet der genomischen DNA, indem Sie zunächst 300 Mikroliter Tris-EDTA hinzufügen.Anschließend eine Probe 5 Sekunden lang bei mittlerer Geschwindigkeit verwirbeln und die Probe nach dem Erhitzen im Wasserbad eine Stunde lang in ein 65 Grad Celsius heißes Wasserbad überführen. Am nächsten Tag die Probe über Nacht bei Raumtemperatur inkubieren. Am folgenden Tag ist die DNA gebrauchsfertig. Die Gelelektrophorese von Speichel-DNA-Extraktionsproben zeigt geeignete Banden mit hohem Molekulargewicht, ohne Verschmierung, die auf abgebautete DNA hindeutet. Der Schritt zur RNA-Entfernung ist notwendig und äußerst effektiv.Nach der RNase-Di­ges­ti­on liegt das Verhältnis von 260 Nanometer zu 280 Nanometer im Durchschnitt bei 1,74. Bedeutsam ist, dass die DNA für die Hochdurchsatzsequenzierung geeignet ist. Ein Target-Enrichment-Kit wurde auf 24 Proben angewandt, die 2,6 Megabasen DNA gezielt anreicherten; 12 barcodierte Proben wurden pro Lane sequenziert.Alle 24 Proben wiesen NGS-Daten von hoher Qualität auf, und seltene Einzelnukleotid-Polymorphismen konnten identifiziert werden. Nach dem Ansehen dieses Videos sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man hochwertige genomische DNA aus Ganzspeichel extrahiert.

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Forschung

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Medizin

Angesichts Speichel Probenahme für zukünftige klinische Anwendung wurde ein Lollipop-ähnliche Ultrafiltration (LLUF) Sonde hergestellt, um in die menschliche Mundhöhle passen. Direkte Analyse von unverdauten Speichel mit nanoLC-LTQ Massenspektrometrie zeigten die Fähigkeit von LLUF Sonden, um große Proteine ​​und hohe Abundanz Proteine ​​zu entfernen, und machen Low-reiche Peptide mehr nachweisbar.

Probenahme menschliche Speichel Indigene Peptidoms Mit einem Lollipop-Like Ultrafiltration Sonde: vereinfachen und erweitern Peptid-Erkennung für Klinische Massenspektrometrie

Bisulfit-Amplikon-Sequenzierung (BSAS) ist eine Methode zur Quantifizierung der Cytosin-Methylierung in bestimmten genomischen Regionen von Interesse. Bei dieser Methode wird die Bisulfit-Umwandlung in Kombination mit der PCR-Amplifikation von Zielregionen vor der Next-Generation-Sequenzierung verwendet, um eine absolute Quantifizierung der DNA-Methylierung auf basenspezifischer Ebene zu erzielen.

Gezielte DNA Methylierungsanalyse von Next-Generation-Sequencing

Dieses Manuskript beschreibt einen automatisierten Ansatz zur Auswahl der Gelgröße zur Aufreinigung von DNA-Fragmenten für die Next-Generation-Sequenzierung. Die Ranger-Technologie ermöglicht die vollständige Automatisierung des gesamten Prozesses der Beladung des Agarosegels, der elektrophoretischen Analyse und der Rückgewinnung von DNA-Zielfragmenten und ermöglicht so einen hohen Durchsatz und eine hohe Qualität der Sequenzierungsbibliotheken der nächsten Generation.

Automatisierte Gel Größenauswahl, um die Qualität der nächsten Generation Sequencing Libraries von Umweltwasserproben vorbereitet verbessern

Wir beschreiben eine effiziente, robuste und kosteneffektive Methode zur Nukleinsäure von Tupfern zur Charakterisierung von Bakteriengemeinschaften Extraktion unter Verwendung von 16S rRNA-Gen-Amplikons Sequenzierung. Das Verfahren ermöglicht eine gemeinsame Verarbeitungsansatz für mehrere Probenarten und beherbergt eine Reihe von nachgelagerten analytischen Prozessen.

Effiziente Nukleinsäure-Extraktion und 16S rRNA Gen-Sequenzierung für bakterielle Gemeinschaft Charakterisierung

Metagenomik wurde verwendet, um das Mikrobiom von Silage-Rinderfutter zu untersuchen. Die Analyse wurde durch Schrotflintensequenzierung durchgeführt. Dieser Ansatz wurde verwendet, um die Zusammensetzung der mikrobiellen Gemeinschaft im Viehfutter zu charakterisieren.

Metagenomanalyse von Silage

Der Vergleich und die Optimierung zweier pflanzenorganischer DNA-Anreicherungsmethoden werden vorgestellt: traditionelle Differentialzentrifugation und Fraktionierung der gesamten gDNA auf Basis des Methylierungsstatus. Wir beurteilen die resultierende DNA-Quantität und -Qualität, zeigen die Leistung in der Kurzzeit-Sequenzierung der nächsten Generation und diskutieren das Potenzial für den Einsatz in der Langzeit-Einzelmolekül-Sequenzierung.

Optimierung und Vergleichsanalyse von pflanzlichen organellaren DNA-Anreicherungsmethoden Geeignet für die Sequenzierung der nächsten Generation

Hier beschreiben wir ein einfaches Protokoll zur Erstellung von DNA-Fingerabdruckprofilen durch Amplifizierung des VNTR-Locus D1S80 aus Epithelzell-DNA.

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Hier wird ein DNA-Extraktionsprotokoll mit magnetischen Perlen beschrieben, um qualitativ hochwertige DNA-Extraktionen aus Moskitos herzustellen. Diese Extraktionen eignen sich für einen nachgelagerten Next-Generation-Sequencing-Ansatz.

Ein magnetperlenbasiertes Moskito-DNA-Extraktionsprotokoll für die Sequenzierung der nächsten Generation

Dieses Protokoll beschreibt einen umfassenden Ansatz für die Kultivierung, Sequenzierung und De-novo-Hybridgenomassemblierung von Harnbakterien.   Es bietet ein reproduzierbares Verfahren zur Erzeugung vollständiger, zirkulärer Genomsequenzen, die bei der Untersuchung sowohl chromosomaler als auch extrachromosomaler genetischer Elemente nützlich sind, die zur Kolonisierung im Urin, zur Pathogenese und zur Verbreitung antimikrobieller Resistenzen beitragen.

Hybride De-Novo-Genomassemblierung zur Erzeugung vollständiger Genome von Harnbakterien unter Verwendung von Kurz- und Langzeitsequenzierungstechnologien

Wir stellen eine optimierte Methode zur DNA-Extraktion aus dekontaminiertem Sputum vor, bei der eine matrixbasierte Extraktionsmethode in Kombination mit einer magnetischen Bead-Aufreinigung für die nachgelagerte gezielte Next-Generation-Sequenzierung von Mycobacterium tuberculosis verwendet wird.

Matrixbasierte DNA-Extraktion für gezieltes Next-Generation-Sequencing an dekontaminierten Sputumproben

Erfahren Sie die kostengünstige Extraktion hochwertiger genomischer DNA aus Speichel für PCR und Sequenzierung. Diese optimierte Methode minimiert Degradation und gewährleistet hohe Ausbeute für genomische Studien.

Sammlung und Extraktion von DNA-Speichel für Next Generation Sequencing

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