Name: Transplantation von Haut-Schwanz zu allogene CD4-T-Zellantworten in Mäusen untersucht (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-07-25T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 48 s
Description: Lernen Sie die Transplantation von Schwanzhaut bei Mäusen zur Untersuchung T-Zell-vermittelter Abstoßung und Toleranzinduktion. Dieses Modell ermöglicht die Analyse allogener CD4-T-Zellantworten mit minimaler Invasivität.

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Diese Arbeit wurde durch SNF-Zuschüsse PPOOA-_119204 und PPOOP3_144918 an S.W.R. unterstützt. Wir danken E. Palmer und B.T.H. Hausmann für die Mäuse und das technische Know-how.

In diesem Video-Veröffentlichung und Protokoll wurden alle Tier Verfahren in Übereinstimmung mit der von der Kantonsbehörde Basel-Stadt, Schweiz zugelassenen Tier Protokoll durchgeführt. Führen Sie alle in sterilen Bedingungen, soweit möglich. 1. Vorbereitung der Chirurgie <ol><li> Autoklav alle chirurgischen Instrumenten und Gaze vor dem Gebrauch. </li><li> Erhitzen Sie die warmen Kissen und organisieren chirurgische Instrumente auf dem Tisch (Table of Materialien / Methoden). </li><li> Öffnen Sie die Fingerleiste Bandagen. Vaseline auf die Wundauflage mit einem Wattestäbchen (sicherstellen, dass die Gaze vollständig bedeckt ist). </li><li> Wiegen Sie die Mäuse und verwalten Analgesie Buprenorphin 0,05 mg / kg Körpergewicht. Hinweis: dies wird Analgesie unmittelbar nach der Transplantation bieten. </li></ol> 2. Vorbereitung der Schwanzhaut für Transplantation <ol><li> Euthanize Spendermäusen (zB IA BM12) pro CO 2-Erstickung und disinfect die Schwänze mit Desinfektionslösung vor Exzision. </li><li> Positionieren Sie den Schwanz mit dem schwarzen Streifen unten auf eine saubere Plastikbrett und schneiden Sie es in Längsrichtung über die Mittellinie, so dass eine oberflächliche Inzision, die nur die Hautschicht. </li><li> Ziehen Sie die Haut vom Schwanz mit Greifzange. </li><li> Setzen Sie den Schwanz-Haut in einer 10 cm Zellkulturschale mit 10 ml HBSS gefüllt. </li></ol> 3. Chirurgisches Vorgehen <ol><li> Betäuben Empfängermäuse (beispielsweise C57BL / 6) durch Inhalation einer 3% Isofluran Lösung in einem transparenten Induktionsfeld. Hinweis: Es dauert 3-5 min für die Maus, um chirurgische Anästhesie-Ebene zu erreichen. Verwenden Tierarzt Salbe auf die Augen zu Trockenheit während der Narkose zu vermeiden. </li><li> Legen Sie die Maus auf den warmen Pad und gelten 1,5% Isofluran über eine Mundmaske und Esel jedes Tier Reflex Zehen Kneifen. </li><li> Rasieren Sie die dorsale Seite der Empfängermäuse (zB C57BL / 6) und entfernen verunreinigende Haare mit einem trockenen Gaze swab. </li><li> Desinfizieren Sie rasiert Transplantation Website mit aseptischen Lösung. </li><li> Klemmen Sie die Haut mit einer Pinzette in der Mitte / rechts Seite des Rückens und einer gebogenen Schere verwenden, um eine Runde Schnitt von etwa 1 x 0,6 cm zu machen. </li><li> Wenn Blutungen auftreten, dann reinigen Sie die Wunde mit einem sterilen Wattestäbchen. </li><li> Bewerten Sie die Größe des Einschnitts und schneiden eine Transplantation von der geschätzten Größe von der Schwanzhaut mit dem Skalpell. </li><li> Schneiden Sie die Ecke der Transplantation runden. </li><li> Laden Sie die Transplantation auf dem Skalpell, trockenen Überschuss von HBSS auf einem sterilen Wattestäbchen und legen Sie sie in das Transplantat Bett der Empfängermaus. </li><li> Vermeiden Sie Überlagerung von Spender und Empfänger Haut und wenden Gewebekleber auf die Kontaktzone ausschließlich. </li><li> Tragen Sie eine Putz ohne Falten rund um die Maus Taille. </li><li> Kleber nicht-elastische Binde, das Pflaster auf die Maus zu beheben (3 mm verschoben). </li><li> Einzuschneiden mit der Schere etwa 3 mm im oberen ventralen Stelle der Bandage. Hinweis: Dies ist zu vermeiden, trapping von der Maus die Zähne während der Erholungsphase. </li><li> Entfernen Sie die Narkose-Mund-Maske und halten die transplantierten Mäusen auf dem Heizkissen bis wach. </li><li> Zurück transplantierten Mäusen in ihre Käfige nur bei vollständig erholt und beurteilen ihre Mobilität zu gewährleisten, dass der Verband nicht zu eng. </li><li> Sterilisieren Sie alle chirurgischen Instrumente mit 70% Ethanol, bevor mit der nächsten Operation fortfahren. </li></ol> 4. Post-operative Betreuung <ol><li> Hinzufügen Paracetamol enthaltenden Sirup zum Trinkwasser (4 mg / ml) und zu verwalten, für 7 Tage. </li><li> Zurück Maus an den Tierraum, sobald sie sich erholt hat. </li><li> Mäuse auf klinische Anzeichen wie Depressionen oder andere Verhaltensänderungen (Essen oder Immobilität), abnorme Erscheinung (mangelnde Pflege) oder Körperhaltung (Piloerektion oder gekrümmte Haltung) für die Zeit, die Binde ist vorhanden (1 Woche) genau beobachten. </li></ol> 5. Bandage Removal (6-7 Tage nach der Transplantation) <ol><li> Anesthetize Mäuse durch Inhalation einer 3% Isofluoran Lösung in einem transparenten Induktionsfeld (siehe oben). </li><li> Schneiden Verband und Gips mit Arterie Schere und sorgfältig zu entfernen. Hinweis: Vermeiden Sie Strecken des Transplantations Ort. </li><li> Überwachen Sie den transplantierten Mäusen für die klinische Anzeichen (siehe 4.3) und Punkte für die Ablehnung von Hauttransplantaten (Tabelle 1). Hinweis: Das Transplantat Score-System nutzt die Vorteile der verschiedenen Haartypen auf den Schwanz-Haut im Vergleich zu der Rückenhaut. In drei Typen wird das Aussehen des Transplantates und seiner Ablehnung kategorisiert. Die allogene Haut (MHC II nicht übereinstimm, z. B., IA BM12) Transplantate von C57BL / 6 immunkompetenten Mäusen in der Regel innerhalb von 12 bis 15 Tage nach der Transplantation (eigene Daten und 15-20) abgelehnt. </li></ol>

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</ol>

Die Autoren erklären, dass sie keine konkurrierenden finanziellen Interessen haben.

Hauttransplantation ist ein weit verbreitetes Verfahren zur Untersuchung Ablehnung und Toleranz abhängig von T-Zellen. Da die Haut Transplantationsmodell gegründet wurde, wurden mehrere Anpassungen und Änderungen angewandt. Bei dem beschriebenen Verfahren wird IA-BM12 Schwanz Hauttransplantation durchgeführt unter Verwendung von Narkosegas (Isofluran). Die Verwendung von Gas Narkose verringert die Zeit der Ausführung und Mäuse Erholung, die die Belastung der transplantierten Mäusen abnimmt. Das Verfahren besc...

Transplantation von soliden Organen wie Haut, Herz und Nieren ist inzwischen ein Standardverfahren in der medizinischen Praxis weltweit ein. Erfolgreich transplantierten Organen kann durch Aktivierung des Immunsystems des Empfängers, der die Haupt-Histokompatibilitäts-Antigene des Spenders erkennt zurückzuweisen. Daher transplantierten Patienten müssen die Behandlung mit Immunsuppressiva 2. Die allogene Hauttransplantation bei Mäusen wurde durch Medawar und Kollegen im Jahr 1955 gegründet und war hilfreich für die Identifizierung der Zielmoleküle später als Major Histocompatibility Complex (MHC) Klasse I und II beschrieben. Seitdem hat sich die Haut Transplantationsmodell kontinuierlich modifiziert und angepasst ist, um die Rolle der T-Zelluntergruppen und die Bedeutung von chemischen und biologischen Intervention bei der Unterdrückung der Abstoßung 2-4 studieren. Haut aus dem Ohr und Rumpf sind schwieriger herzustellen und sind anfälliger für Hypoxie und Nekrose als Schwanzhaut 5; jedochdas Transplantationsverfahren ist ähnlich. Neben der Überwachung der Schwanzhauttransplantaten ist einfach aufgrund der charakteristischen Haarstruktur der Haut. Dieser Artikel enthält eine detaillierte Prozedur für die MHC-Klasse-II-Fehlanpassung Schwanzhauttransplantation, die für die Untersuchung verschiedener Aspekte der CD4 + T-Zell-vermittelten Abstoßung und Toleranz bei Mäusen ermöglicht. Die natürliche Dreipunktmutation in der MHC-Klasse-II-Molekül IA b (genannt IA BM12) 6-9 ist ausreichend, um eine Abstoßung von Hauttransplantate in C57BL / 6 Mäusen 8 induzieren. Die IA BM12 Molekül aktiviert CD4 + T-Zellen mit verschiedenen αβ-T-Zellrezeptor (TCR)-Ketten von C57BL / 6 Mäusen, unter denen Vα2Vβ8-TCR-spezifische T-Zellen, um eine TcR-transgenen Maus 10 erzeugt identifiziert. Der adoptive Transfer von Vα2Vβ8-TCR-spezifische T-Zellen wurde verwendet, um eine Abstoßungsmodell in immundefizienten C57B etablierenL / 6 Rag2 - / - Mäuse mit IA BM12 Haut transplantiert. Genetische Unterschiede zwischen Spender und Empfänger beeinflussen das Ergebnis der Transplantat-Akzeptanz und Zurückweisung. Es gibt verschiedene Arten von Transplantationen: autologen Transplantationen sind vom Empfänger Individuum selbst; syngrafts und Allografts sind Transplantationen von genetisch identisch und genetisch nicht verwandten Individuen sind. Akzeptanz unterschiedlicher allogenen Organtransplantationen durch chemische und biologische Intervention bei Patienten und Mausmodellen 11,3,4 nachgewiesen. In einem grundlegenden Ansatz zeigte anti-CD3-Antikörper-behandelten C57BL / 6 Mäuse verlängerten Überlebenszeit von IA BM12 tail-Haut (unveröffentlichte Daten). Depletion von CD4 + und CD8 + T-Zellen vor der Transplantation in Empfängermäuse führte die Annahme der MHC-Klasse I und II nicht übereinstimm Transplantate (rev. 12). Interessanterweise Abstoßung von Hauttransplantaten, von der Anwesenheit von CD4 + </sup&gt; T-Zellen (rev. 12). In diesem Modell, auf bestimmte Interaktionen zwischen den verschiedenen Immunzellen durch Blockierung kostimulatorische Moleküle mit Antikörpern oder Unterdrückung der regulatorischen T-Zellen könnte Toleranz (unveröffentlichte Daten) zu induzieren. In der Tat, Sperrung sowohl CD40 und CD28 führte zu langfristigen Hauttransplantattoleranz 13,14. Schwanz-Hauttransplantation ist einfach durchzuführen und einfach zu überwachen, im Vergleich zur Transplantation anderer Organe. Darüber hinaus sind Schwanzhauttransplantate leicht herzustellen und sind weniger anfällig für Ischämie als andere Hautgewebe. Im Gegensatz zu injizierenden Anästhetika, die Verwendung von Narkosegas (Isofluran) während der Transplantation verkürzt sowohl die Verfahren und Empfänger Erholungszeit. Curling der Schwanzhaut-Transplantation, die unvollständig Wundheilung und Transplantat-Abstoßung führen kann, wird durch die Anwendung von Gewebekleber verhindert. Darüber hinaus wird die IA-BM12 Schwanz Hauttransplantation Modell aktiviert CD4 ausschließlich <sup&gt; + T-Zellen sowohl in der immunkompetenten und immungeschwächten Mäusen (aus dem gleichen genetischen Hintergrund) die Erleichterung der Interpretation der Ergebnisse. Dieses Protokoll beschreibt einen zuverlässigen, reproduzierbaren und leicht überwacht Maus-Modell, das für die chemische und biologische Eingriffe ermöglicht. Das Modell ist für die Untersuchung von Ablehnung und Toleranzinduktion von tail-Hauttransplantationen vorgesehen.

<table><tbody><tr><td>Betadine Standardlösung</td><td>Mundipharma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Wattestäbchen</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>31025060</td><td></td></tr><tr><td>Dafalgan , UPSA</td><td>Bristol Myers Squibb UPSA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hansaplast Fingerstreifen</td><td>Beierdorf AG</td><td>REF.76861</td><td></td></tr><tr><td>Histoacryl Gewebekleber</td><td>Braun</td><td>REF.1050052</td><td></td></tr><tr><td>Leukotape classic , 2 cm x 10 m</td><td>BSN Medical SAS</td><td>REF.02204-00</td><td></td></tr><tr><td>PBS, phosphatgepufferte Kochsalzlösung, pH 7,4</td><td>Invitrogen</td><td>10010015</td><td>GIBCO</td></tr><tr><td>Sterile Gaze, 5 x 5 cm, 8-lagig</td><td>MaiMed GmbH</td><td>21010</td><td></td></tr><tr><td>Zange mit schmalem Muster</td><td>FST</td><td>11003-12</td><td></td></tr><tr><td>Feine Irisschere gebogen</td><td>FST</td><td>14095-11</td><td></td></tr><tr><td>Feine Irisschere</td><td>FST</td><td>14094-11</td><td></td></tr><tr><td>Mayo-Schere</td><td>FST</td><td>14010-15</td><td></td></tr><tr><td>Arterienschere Kugelspitze 11,5 cm</td><td>FST</td><td>14080-11</td><td></td></tr><tr><td>Gewebezange</td><td>FST</td><td>11021-14</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgische Klinge Nr. 20</td><td>Swann-Morton LTD</td><td>3006</td><td>Kohlenstoffstahl</td></tr><tr><td>Chirurgische Klingengriffe</td><td>Swann-Morton LTD</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Spritze, 1 ml</td><td>ARTSANA</td><td></td><td>Einweg</td></tr><tr><td>Temgesic, Buprenorphin</td><td>ESSEX Chemie AG</td><td></td><td>0,3 mg/ml</td></tr><tr><td>Gewebekulturschalen 10 cm, 60,1 cm2</td><td>TPP</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vaseline</td><td>Vifor SA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Warmes Pad</td><td>Solis</td><td></td><td>Typ 223</td></tr></tbody></table>

transplantation von haut-schwanz zu allogene cd4-t-zellantworten in mäusen untersucht

Transplantation of Tail Skin to Study Allogeneic CD4 T Cell Responses in Mice

Die Untersuchung von T-Zell-Antworten und deren Konsequenzen bei der Erkennung von Allo-Antigenen erfordert ein Modell, das es ermöglicht, zwischen Spender- und Wirts-T-Zellen zu unterscheiden, das Transplantat einfach zu überwachen und das System anzupassen, um verschiedene immunologische Fragen zu beantworten. Medawar und Kollegen etablierten 1955 die allogene Schwanzhauttransplantation bei Mäusen. Seitdem wurde das Hauttransplantationsmodell kontinuierlich modifiziert und angepasst, um spezifische Fragestellungen zu beantworten. Durch die Verwendung von Schwanzhaut ist dieses Modell leicht für die Abstoßung von Transplantaten zu bewerten, erfordert weder eine umfangreiche Vorbereitung noch eine tiefe Anästhesie, ist auf Tiere aller genetischen Hintergründe anwendbar, verhindert ischämische Nekrosen und ermöglicht chemische und biologische Eingriffe. 
Im Allgemeinen sind sowohl CD4+ als auch CD8+ allogene T-Zellen für die Abstoßung von Allotransplantaten verantwortlich, da sie nicht übereinstimmende Haupthistokompatibilitätsantigene aus verschiedenen Mausstämmen erkennen. Es wurden mehrere Modelle für die Aktivierung allogener T-Zellen in hauttransplantierten Mäusen beschrieben. Die Identifizierung von Molekülen der Klassen I und II des Haupthistokompatibilitätskomplexes (MHC) in verschiedenen Mausstämmen, einschließlich C57BL/6-Mäusen, war ein wichtiger Schritt zum Verständnis und zur Untersuchung von T-Zell-vermittelten Alloantworten. In dem hier beschriebenen Schwanzhauttransplantationsmodell reicht eine Drei-Punkt-Mutation (I-Abm12) in der Antigen-präsentierenden Rille des MHC-Klasse II (I-Ab) Moleküls aus, um eine starke allogene CD4+ T-Zellaktivierung in C57BL/6-Mäusen zu induzieren. Hauttransplantate von I-Abm12-Mäusen an C57BL/6-Mäusen werden innerhalb von 12-15 Tagen abgestoßen, während syngene Transplantate bis zu 100 Tage akzeptiert werden. Das Fehlen von T-Zellen (CD3-/- und Rag2-/- Mäuse) ermöglicht eine Hauttransplantatakzeptanz von bis zu 100 Tagen, die durch den Transfer von 2 x 104 Wildtyp- oder transgenen T-Zellen überwunden werden kann. Adoptiv übertragene T-Zellen vermehren sich und produzieren IFN-γ in I-Abm12-transplantierten Rag2-/- Mäusen.

In einem ersten Ansatz wurden C57BL / 6 Mäuse mit IA BM12 Allografts und IA b syngrafts transplantiert. Bandage nach Entfernung Transplantate offensichtlichen Anzeichen der Wundheilung ohne Schließung der Kontaktzone in C57BL / 6 Mäusen (Fig. 1A). Bandage nach Entfernung führte CD4 + T-Zell-vermittelte Entzündung zu dem Auftreten von Nekrosen (rote Punkte) und Ablehnung IA BM12 Allotransplantaten in C57BL / 6 Mäusen innerhalb von 13 Tagen nach der Transplantat...

Die Schwanzhauttransplantation ist ein leistungsfähiges Modell zur Untersuchung der T-Zell-abhängigen Abstoßung und Toleranzinduktion während allogener Immunantworten bei Mäusen. Die Vorteile dieses Protokolls sind kleinere invasive Eingriffe und eine einfache Überwachung, ohne dass die Empfängermaus geopfert werden muss.

Transplantation von Haut-Schwanz zu allogene CD4-T-Zellantworten in Mäusen untersucht

The study of T cell responses and their consequences during allo-antigen recognition requires a model that enables one to distinguish between donor and ...

Das allgemeine Ziel des folgenden Verfahrens besteht darin, eine Schwanzhauttransplantation durchzuführen. Um die T-Zell-vermittelte Abstoßung oder die Induktion von Toleranz in einem Mausmodell zu untersuchen, wird zunächst die Schwanzhaut von einer Spendermaus entnommen. Im zweiten Schritt wird die Transplantationsstelle am Empfängertier vorbereitet.Anschließend wird die Transplantation des Transplantats durchgeführt und es wird mit Gewebeadhäsiv und einem Verband fixiert. Am siebten Tag nach der Transplantation wird der Verband entfernt und das Transplantat bewertet. Letztendlich kann die T-Zell-vermittelte alloimmune Antwort untersucht werden.Diese Technik der Schwanzhauttransplantation bietet ein leistungsfähiges Modell zur Untersuchung der T-Zell-abhängigen Abstoßung und der Induktion von Toleranz während allogener Immunantworten bei Mäusen. Öffnen Sie vor Beginn des Verfahrens die Fingerverbandstreifen und tragen Sie mit einem Wattestäbchen Vaseline auf die Wundpolster auf, wobei sichergestellt werden muss, dass der Mull vollständig bedeckt ist. Desinfizieren Sie anschließend den Schwanz einer euthanasierten Spendermaus mit Desinfektionslösung.Positionieren Sie dann den Schwanz auf einer sauberen Kunststoffplatte. Drehen Sie den oberen schwarzen Streifen nach unten und führen Sie einen longitudinalen, oberflächlichen Schnitt durch die Haut entlang der Mittellinie des Schwanzes durch. Verwenden Sie Pinzetten, um die Haut abzuziehen, und legen Sie das Gewebe anschließend in eine 10 cm große Zellkulturschale, die mit 10 mL HBSS gefüllt ist.Rasieren Sie die dorsale Stelle einer anesthetisierten Empfängermouse und verwenden Sie ein trockenes Stück Mullbinde, um eventuelle kontaminierende Haare zu entfernen. Nach der Desinfektion der rasierten Transplantationsstelle mit einer aseptischen Lösung, klemmen Sie die Haut mit einer Pinzette auf der mittleren rechten Seite des Rückens fest und verwenden Sie eine gebogene Schere, um einen kreisförmigen Einschnitt von etwa einem mal 0,6 Zentimetern Durchmesser zu machen. Danach schneiden Sie mit einem Skalpell ein Transplantat aus der entnommenen Schwanzhaut des Spenders, runden die Ecken des Gewebes ab, laden das Transplantat auf das Skalpell auf und tupfen Sie überschüssiges HBSS mit einem sterilen Wattestäbchen ab.Legen Sie dann das getrocknete Gewebe auf das Transplantatbett der empfängenden Maus. Vermeiden Sie eine Überlappung von Spender- und Wirtshaut, indem Sie Gewebekleber ausschließlich auf die Kontaktzone auftragen. Wickeln Sie anschließend ein faltenfreies Pflaster um die Taille der Maus und befestigen Sie es mit einem adhäsiven, nicht elastischen Verband, um zu verhindern, dass die Maus mit den Zähnen am Verband hängen bleibt.Während der Erholungsphase einen drei Millimeter langen Schnitt an der oberen Bauchseite des Materials anlegen. Nach vollständiger Erholung auf einer beheizten Wärmematte das transplantierte Tier in seinen Käfig zurückbringen und seine Beweglichkeit beurteilen. Um sicherzustellen, dass der Verband nicht zu eng sitzt, das Mäuschen sieben Tage lang mit Paracetamol-Sirup im Trinkwasser behandeln.Nach sechs bis sieben Tagen die Bandagen mit sterilen Arterienschere durchschneiden und vorsichtig entfernen, wobei darauf geachtet werden muss, die Transplantationsstelle nicht zu dehnen. Abschließend die transplantierten Mäuse auf klinische Anzeichen überwachen und die Abstoßung der Hauttransplantate bewerten. In diesem Experiment erhielten C 57 BL six-Mäuse IABM 12-Allografts und IAB sin-Grafts.Nach Entfernung der Verbände zeigte das Transplantat Anzeichen einer Wundheilung, jedoch ohne Schließung der Kontaktzone bei den C57BL/6-Mäusen. Ein bis zwei Wochen später führte eine CD4-positive, T-Zell-vermittelte Entzündung zum Auftreten nekrotischer Bereiche innerhalb des Transplantats. Die Abstoßung der IAβm12-Allografts wurde bei den C57BL/6-Mäusen innerhalb von 13 Tagen nach der Transplantation beobachtet.Während die syn-Transplantate bis zu 100 Tage lang toleriert wurden, hängt die Abstoßung von Hauttransplantaten mit MHC-Klasse-II-Inkompatibilität von der Anwesenheit allogener CD4-positiver T-Zellen ab. Beispielsweise zeigen T-Zell-defiziente CD3ε-Knockout-Mäuse und T- und B-Zell-defiziente RAG2-Knockout-Mäuse eine vollständige Wundheilung und tolerieren IaBM12-Transplantate bis zu 100 Tage lang.Die Akzeptanz der IABM 12-ungleichmäßigen Schwanzhaut ermöglicht die Untersuchung allogener CD4-positiver T-Zellen und ihrer Effektorfunktionen in einem Mausmodell ohne schwere Krankheitspathologien. Der Vorteil dieses Schwanzhauttransplantationsmodells besteht darin, dass die funktionelle Analyse von CD4-positiven T-Zellen einfach durch adoptive Übertragung antigenspezifischer CD4-positiver T-Zellen durchgeführt werden kann. In diesem repräsentativen Experiment war die Übertragung von zweimal 10 hoch 4 antigenspezifischen transgenen ABM-Zellen ausreichend, um die Abstoßung der IABM 12-Transplantate in rag2-Knockout-Mäusen innerhalb von 13 Tagen auszulösen. Die Vα2-Vβ8-TCR-Ketten-exprimierenden ABM-Zellen zeigten in der CFSE-670-Verdünnungsanalyse eine starke Proliferation und produzierten IFN-γ nach PMA-Stimulation. ZusammenfassendDiese Daten zeigen, dass nur wenige allogene CD4-positive T-Zellen erforderlich sind, um A.BY/SnJ-Hauttransplantate abzustoßen, wodurch dieses Modell ideal für die Analyse allogener T-Zellen in Abwesenheit schwerer Pathologie wird. Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man eine Schwanzhauttransplantation durchführt und den Transplantatabstoßungsprozess erfolgreich überwacht.

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