Name: Ein kleines Volumen Verfahren für Viral Konzentration von Wasser (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-02-03T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 28 s
Description: Erfahren Sie eine Methode zur Optimierung der Viruswiederherstellung aus kleinen Wasserproben mit Glaszellulosefilter und Sea-Light-Sekundärkonzentration. Diese Technik ermöglicht eine effiziente Adenovirus-Erfassung aus Leitungswasser.

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Wir möchten Dr. Nicholas J. Ashbolt und Dr. G. Shay Fout für ihre Durchsicht des Manuskripts danken.

1. Herstellung der Glasgeschirr und Filtergehäuse <ol style="margin-left: 40px;"><li> Wenn nicht anders angegeben, sterilisieren alle Gläser, Filtergehäuse und Lösungen bei 121 ° C für 15 min. Um die Sterilität zu gewährleisten, decken alle Öffnungen oder freiliegenden Flächen entweder mit Aluminiumfolie oder Klebeband gesicherten Papier vor der Sterilisation. </li><li> Montieren Sie Filtervorrichtung durch Anbringen von Filter-Gehäuse (47 mm Durchmesser) auf 1 L Seitenarm Erlenmeyerkolben. Filter erforderlich sammeln: 47 mm Durchmesser elektro / elektroScheibenFiltern. </li><li> Herstellung von 1 l 1,5% Rinderextrakt (Ausflocken, produziert Flockenpartikel beim pH der Lösung wird auf 3,5 oder nichtflock abgesenkt, das aber nicht bei pH 3,5 hat Aggregat) durch Auflösen von 15 g Rinderextrakt in, mit 0,05 M Glycin, 1 l entionisiertem Wasser und Zugabe von 3,75 g Glycin. HINWEIS: Nicht-Flockungsmitteln Rindfleischextrakten wird die Zugabe von Celite vor tertiären Konzentration erfordern. </li><li> Fügen Elution Additiv Natrium polyphosphate um Rindfleischextrakt in einer Konzentration von 0,1%. </li><li> 1 M Salzsäurelösung tropfenweise von dem Mischungsrindfleischextrakt, pH-Lösung um den gewünschten pH. Autoklav Rindfleischextrakt für 15-30 min bei 121 ° C. </li><li> Messen Sie 0,1 g feine, mittlere oder große Partikel Celite (zur Verwendung mit nicht-Flockungsmittel Rindfleischextrakt nur). </li><li> Bereiten Vakuum / Sog durch das Anbringen kompatibler Schlauch an Erlen Seitenarm Kolben und an die Vakuumsteckdose. </li></ol> 2. Herstellung von Lösungen und Virenvektor <ol style="margin-left: 40px;"><li> Herstellung von 1 l 1 M HCl. </li><li> Herstellung von 1 l 1 M NaOH. </li><li> Bereiten 1x PBS-Lösung (137 mM NaCl, 2,7 mM KCl, 1,47 mM K 2 PO 4 und 4,3 mM NaH 2 PO 4). <ol><li> Der pH-Wert von 1 × PBS auf 9,0 unter Verwendung von 1 M NaOH. </li></ol></li><li> Vorbereiten und verdünnen Lager Virus bis 10 4 -10 5 wahrscheinlichste Zahl (MPN) ml-1 durch Mischen von 1 ml Stammvirus mit 9 ml PBS (pH7), wie zuvor beschrieben, 8,13. Bei -80 ° C in 1 ml-Teilmengen. <ol><li> Sterilisieren Virusstamm mit Hilfe einer Spritze Filterung (0,22 um Porengröße), um mögliche Verunreinigungen zu entfernen. </li></ol></li><li> Entchlortem Leitungswasser <ol><li> Maßnahme 1 l sterilem Leitungswasser mit einer sterilen Messzylinder abgemessen und in einen 2 l-Becherglas mit Magnetrührer. </li><li> Hinzufügen von 0,7 g Natriumthiosulfat und mischen, bis Granulate aufzulösen. Der pH-Wert des Leitungswassers auf 7-7,5 bei Bedarf mit 1 M HCl oder 1 M NaOH-Lösung. </li><li> Thaw Virus Spike (1 ml) und fügen gesamte Volumen der Spitze zu 1 l dechloriert sterilem Leitungswasser. Mischen Sie für 10 Minuten. </li><li> Bereiten Sie eine leere Methode (dechloriert Leitungswasser ohne Adenovirus) mit jedem Experiment und Verfahren in der gleichen Weise wie der angereicherten Probe. </li></ol></li></ol> 3. Herstellung von Millipore Filtergerät <ol style="margin-left: 40px;"><li> Entfernen steriler Verband Filtergehäuse. Dafür Sorgengute Passform zwischen den Filtergehäuseoberschale und unteren Filter Bildschirm Probe Leckage während der Filtration zu vermeiden. </li><li> Entfernen sterilen Abdeckung von 1 l Erlenmeyerkolben. Sicherzustellen, dass der Korken von der Filtereinheit paßt genau in die obere Öffnung des Erlenmeyerkolben, der eine gute Abdichtung. </li><li> Entfernen Sie die obere Schale mit Filtereinheit von der unteren Filterscheibe, und legen Sie 47 mm elektroFilterScheibe direkt über Bildschirm mit einer sterilen Pinzette. Befestigen Sie Filtergehäuse Schüssel zum unteren Bildschirm und einrasten durch Verdrehen gegen den Uhrzeigersinn. </li></ol> 4. Tippen Sie auf Wasserfiltration (Primary Konzentration) <ol style="margin-left: 40px;"><li> Messen Sie 100 ml Virus versetzt Leitungswasser mit sterilen Messzylinder. </li><li> Gießen Sie 100 ml Virus versetzt Leitungswasser in das Filtergehäuse, die entweder ein 47 mm Falten Glas / Cellulose-Filter oder eine Nano-Aluminiumoxid / Glasfaser-Scheibenfilter. </li><li> Damit das Wasser langsam durch Filter. Bewerben leichtem Vakuum, um die verbleibenden Reste zu entfernen of Leitungswasser aus Filterfläche. </li><li> Bei der Verwendung von Trypsin-Behandlung, 5 ml 0,25% Trypsin, um Oberflächen filtern und Inkubation für 5 min. </li><li> Von Filterfläche mit 50 ml sterilem deionisiertem Wasser waschen Trypsin. </li></ol> 5. Virus Elution von Filter <ol style="margin-left: 40px;"><li> Entfernen Sie Filtergehäuse aus zwei L-Erlenmeyerkolben, und setzen Sie auf 250 ml Seitenarm Kolben. </li><li> Messen Sie 100 ml Fleischextrakt unter Verwendung von Messzylinder. Gießen Sie langsam 100 ml Fleischextrakt in das Filtergehäuse. </li><li> Lassen Rindfleischextrakt durch Filter gießen, der Erfassung Rindfleischextrakt in einem kleinen (250 ml) Erlenmeyerkolben. Gib Vakuum durch Restfleischextrakt aus dem Filter zu ziehen. </li></ol> 6. Celite Sekundär Konzentration <ol style="margin-left: 40px;"><li> Transfer-Kolben, die die eluierten Viren auf einer Rührplatte. In sterilen Magnetrührer und auf Rührplatte, Mischen zu leichten Wirbel zu erzeugen. </li><li> Mit 0,1 g CelitePulver zu 100 ml Fleischextrakt und lassen Celite zu zerstreuen. Zeigen sterile pH-Sonde in Fleischextrakt. </li><li> Fügen tropfenweise 1 M HCl auf Rindfleischextrakt auf pH 4,0 zu erreichen. Lassen Sie langsam mischen für 10 min. </li><li> Platz 47 mm-Vorfilter auf Filtergehäuse (wie zuvor beschrieben) mit einem 2 l-Erlenmeyerkolben. </li><li> Gießen Sie 100 ml Fleischextrakt / Celite-Mischung über Vorfilter. Lassen Rindfleischextrakt durch gießen. Mit leichtem Unterdruck, durch Restfleischextrakt aus dem Filter zu ziehen. </li><li> Zeigen Metallrohr Clip auf Ende des Filtergehäuses Auslauf. Bringen sterile 15 ml-Polypropylen-Sammelrohr, um Metallrohr Clip. Zeigen Filtergehäuse zurück in Erlenmeyerkolben. </li><li> 5 ml 1x PBS-Puffer, pH 9,0 über Celite am Vorfilter gesammelt. </li><li> Lassen PBS durch Vorfilter tropfen. Mit leichtem Unterdruck, durch Rest PBS in 15 ml Sammelröhrchen zu ziehen. </li></ol> 7. Organische Flockung Sekundär Konzentration <ol style="margin-left: 40px;"><li>Übertragen Sie die Becher, die das eluierte Virus auf einer Rührplatte. In sterilen Magnetrührer zu 100 ml Fleischextrakt und mischen, um leichten Wirbel zu erzeugen. </li><li> Zeigen sterile pH-Sonde in Fleischextrakt. </li><li> 1 M HCl tropfenweise zu Rindfleischextrakt und pH-Wert auf 3,5. Mischen für 30 min. </li><li> Gießen des Eluats in 250 ml Zentrifugen konische Röhrchen und Zentrifugieren bei 2.500 xg für 15 min bei 4 ºC. </li><li> Überstand abgießen dabei nicht, das Sediment nicht zu stören. Das Pellet in 5 ml 1x PBS, pH 9. </li><li> Zentrifugieren Sie die Suspension bei 4.000 × g für 10 min bei 4 ° C. Überstand abgießen und verwerfen das Pellet. </li><li> PH-Wert auf 7-7,5 filtersterilisieren durch 0,22 &amp; mgr; m-Spritzenfilter übertragen und bei -80 ° C. </li></ol> 8. viralen Nukleinsäureextraktion <ol style="margin-left: 40px;"><li> Extrahieren viralen Nukleinsäuren unter Verwendung eines geeigneten handelsüblichen Kits nach den Anweisungen des Herstellers. </li></ol> &lt;p class = &quot;jove_title&quot;&gt; 9. AdV 40/41 qPCR <ol style="margin-left: 40px;"><li> Verwenden Primer und Sonden sowie den Reaktionsmischung und Temperaturwechselprofile veröffentlicht als 8,13. Hinweis: Das Nachweisgrenze für den Test ist ca. 5 qPCR Einheiten pro Reaktion. </li><li> Hinzufügen von Komponenten einer PCR-Amplifikation Mischungen in Konzentrationen wie folgt: 10 mM Tris (pH 8,3), 50 mM KCl, 4,5 mM MgCl 2, 10 mM dNTPs, 10 &amp; mgr; M Primer und 1 &amp; mgr; M Sonde und 0,5 &amp; mgr; l Polymerase sodass Endvolumen von 45 ul können auf geeignete Anzahl von Wells einer 96-Well-PCR-Reaktionsplatte gegeben werden. </li><li> Last 45 ul der PCR-Amplifikation Mischung zu jedem entsprechenden Vertiefung einer 96-well, schnelle Reaktion PCR-Platte. </li><li> In 5 ul DNA extrahiert Probe Vertiefungen der PCR-Platte. </li><li> Abdeckplatte mit hitzebeständigem Deckeldichtung, drehen Sie die Platte um alle Tröpfchen nach unten von PCR-Plattenvertiefungen zu bewegen. </li><li> Stellen Sie die PCR-Amplifikation Zyklen wie folgt einteilenOWS: 95 ° C für 10 min, gefolgt von 40 Zyklen bei 95 ° C für 15 sec und 60 ° C für 1 min. </li></ol> 10. Datenanalysen <ol style="margin-left: 40px;"><li> Analysieren Dreifachmessungen der serielle 5-fache Verdünnungen der Proben Spanning 1: 5 bis 1: 625 Verdünnung Bereich um die wahrscheinlichste Zahl (MPN) der Viruspartikel zu bestimmen, wie zuvor beschrieben, 8,13. </li><li> Analysieren serielle 5-fache Verdünnungen von Adenovirus experimentellen Spitzen Spanning 1: 5 bis 1: 15.625 Verdünnung Bereich um die wahrscheinlichste Zahl (MPN) der Viruspartikel zu bestimmen. </li><li> Mit dem EPA MPN Rechner (http://www.epa.gov/nerlcwww/online.html), stellen Sie den Rechner, um für Art der Verdünnung zu berücksichtigen (1: 5 oder 1:10), die Anzahl der Verdünnungen durchgeführt, und die Zahl der Parallelproben in Verdünnungsreihen. </li><li> Führen log 10-Transformation der Daten, gefolgt von der Normalisierung auf eine Volumeneinheit (beispielsweise 1 ml, 100 ml, usw. </em&gt;). Berechnen Wiedereinziehungen für gegebenen Experiment durch Division Anzahl der in Probe vorhandenen Viruspartikel konzentriert zur Zahl der in der experimentellen Spannungsspitzen vorhanden Viruspartikel. </li><li> Bewerten der Wirkung der verschiedenen experimentellen Parametern (zB unterschiedliche Celite Typen pH-Bereichen, unterschiedliche Filtertypen und verschiedene sekundäre Konzentrationstechniken) auf AdV Einziehungen durch Ausführen parametrischer oder nicht-parametrischen statistischen Tests (zB gepaarter t-Test, ein oder zwei -Wege ANOVA) in Abhängigkeit von der Verteilung der Daten und die Konzeption des Experiments. </li></ol>

<ol><li>Sinclair, R. G., Jones, E. L., Gerba, C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Viruses+in+recreational+water-borne+disease+outbreaks%3A+a+review%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Viruses in recreational water-borne disease outbreaks: a review.</a> Journal of Applied Microbiology. 107, 1769-1780 (2009).</li>
<li>WHO. Guidelines for Safe Recreational Water Environments. , World Health Organization. Geneva. (2003).</li>
<li>Westrell, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Norovirus+outbreaks+linked+to+oyster+consumption+in+the+United+Kingdom%5BTitle%5D)+AND+%22Euro+Surveillance+%3A+Bulletin+Europeen+Sur+les+Maladies+Transmissibles+%3D+European+Communicable+Disease+Bulletin%22%5BJournal%5D)">Norovirus outbreaks linked to oyster consumption in the United Kingdom.</a> Euro Surveillance : Bulletin Europeen Sur les Maladies Transmissibles = European Communicable Disease Bulletin. 15, Norway, France, Sweden and Denmark. (2010).</li>
<li>Wong, K., Fong, T. T., Bibby, K., Molina, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+enteric+viruses+for+fecal+pollution+source+tracking+in+environmental+waters%5BTitle%5D)+AND+%22Environment+International%22%5BJournal%5D)">Application of enteric viruses for fecal pollution source tracking in environmental waters.</a> Environment International. 45, 151-164 (2012).</li>
<li>Cashdollar, J. L., Wymer, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+primary+concentration+of+viruses+from+water+samples%3A+a+review+and+meta-analysis+of+recent+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Methods for primary concentration of viruses from water samples: a review and meta-analysis of recent studies.</a> Journal of Applied Microbiology. 115, 1-11 (2013).</li>
<li>Ikner, L. A., Soto-Beltran, M., Bright, K. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+method+using+a+positively+charged+microporous+filter+and+ultrafiltration+for+concentration+of+viruses+from+tap+water%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+and+Environmental+Microbiology%22%5BJournal%5D)">New method using a positively charged microporous filter and ultrafiltration for concentration of viruses from tap water.</a> Applied and Environmental Microbiology. 77, 3500-3506 (2011).</li>
<li>Karim, M. R., Rhodes, E. R., Brinkman, N., Wymer, L., Fout, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+electropositive+filter+for+concentrating+enteroviruses+and+noroviruses+from+large+volumes+of+water%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+and+Environmental+Microbiology%22%5BJournal%5D)">New electropositive filter for concentrating enteroviruses and noroviruses from large volumes of water.</a> Applied and Environmental Microbiology. 75, 2393-2399 (2009).</li>
<li>McMinn, B. R., Cashdollar, J. L., Grimm, A. C., Fout, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+the+celite+secondary+concentration+procedure+and+an+alternate+elution+buffer+for+the+recovery+of+enteric+adenoviruses+40+and+41%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virological+Methods%22%5BJournal%5D)">Evaluation of the celite secondary concentration procedure and an alternate elution buffer for the recovery of enteric adenoviruses 40 and 41.</a> Journal of Virological Methods. 179, 423-428 (2012).</li>
<li>Katzenelson, E., Fattal, B., Hostovesky, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organic+flocculation%3A+an+efficient+second-step+concentration+method+for+the+detection+of+viruses+in+tap+water%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+and+Environmental+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Organic flocculation: an efficient second-step concentration method for the detection of viruses in tap water.</a> Applied and Environmental Microbiology. 32, 638-639 (1976).</li>
<li>Fout, G. S., Schaefer, F. W. 3rd, Messer, J. W., Dahling, D. R. ICR microbial laboratory manual. 178, US Environmental Protection Agency. Washington, D.C. (1996).</li>
<li>Calgua, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+application+of+a+one-step+low+cost+procedure+to+concentrate+viruses+from+seawater+samples%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virological+Methods%22%5BJournal%5D)">Development and application of a one-step low cost procedure to concentrate viruses from seawater samples.</a> Journal of Virological Methods. 153, 79-83 (2008).</li>
<li>Calgua, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+and+quantification+of+classic+and+emerging+viruses+by+skimmed-milk+flocculation+and+PCR+in+river+water+from+two+geographical+areas%5BTitle%5D)+AND+%22Water+Research%22%5BJournal%5D)">Detection and quantification of classic and emerging viruses by skimmed-milk flocculation and PCR in river water from two geographical areas.</a> Water Research. 47, 2797-2810 (2013).</li>
<li>McMinn, B. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+adenovirus+40+and+41+recovery+from+tap+water+using+small+disk+filters%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virological+Methods%22%5BJournal%5D)">Optimization of adenovirus 40 and 41 recovery from tap water using small disk filters.</a> Journal of Virological Methods. 193 (2), 284-290 (2013).</li>
<li>Brinkman, N. E., Haffler, T. D., Cashdollar, J. L., Rhodes, E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+methods+using+celite+to+concentrate+norovirus%2C+adenovirus+and+enterovirus+from+wastewater%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virological+Methods%22%5BJournal%5D)">Evaluation of methods using celite to concentrate norovirus, adenovirus and enterovirus from wastewater.</a> Journal of Virological Methods. 193, 140-146 (2013).</li>
<li>Albinsson, B., Kidd, A. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adenovirus+type+41+lacks+an+RGD+alpha%28v%29-integrin+binding+motif+on+the+penton+base+and+undergoes+delayed+uptake+in+A549+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Virus+Research%22%5BJournal%5D)">Adenovirus type 41 lacks an RGD alpha(v)-integrin binding motif on the penton base and undergoes delayed uptake in A549 cells.</a> Virus Research. 64, 125-136 (1999).</li>
<li>He, C., Lian, J. S., Jiang, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electronic+structures+and+hydrogen+bond+network+of+high-density+and+very+high-density+amorphous+ices%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Physical+Chemistry.+B%22%5BJournal%5D)">Electronic structures and hydrogen bond network of high-density and very high-density amorphous ices.</a> The Journal of Physical Chemistry. B. 109, 19893-19896 (2005).</li>
<li>Sedmak, G., Bina, D., Macdonald, J., Couillard, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nine-year+study+of+the+occurrence+of+culturable+viruses+in+source+water+for+two+drinking+water+treatment+plants+and+the+influent+and+effluent+of+a+Wastewater+Treatment+Plant+in+Milwaukee%2C+Wisconsin%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Nine-year study of the occurrence of culturable viruses in source water for two drinking water treatment plants and the influent and effluent of a Wastewater Treatment Plant in Milwaukee, Wisconsin.</a> 71, 1042-1050 (2005).</li>
<li>Soto-Beltran, M., Ikner, L. A., Bright, K. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effectiveness+of+poliovirus+concentration+and+recovery+from+treated+wastewater+by+two+electropositive+filter+methods%5BTitle%5D)+AND+%22Food+and+Environmental+Virology%22%5BJournal%5D)">Effectiveness of poliovirus concentration and recovery from treated wastewater by two electropositive filter methods.</a> Food and Environmental Virology. 5, 91-96 (2013).</li>
<li>Haramoto, E., Katayama, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+acidic+elution+to+virus+concentration+using+electropositive+filters%5BTitle%5D)+AND+%22Food+and+Environmental+Virology%22%5BJournal%5D)">Application of acidic elution to virus concentration using electropositive filters.</a> Food and Environmental Virology. 5, 77-80 (2013).</li>
<li>Lee, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+electropositive+filtration+for+recovering+norovirus+in+water%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Water+and+Health%22%5BJournal%5D)">Evaluation of electropositive filtration for recovering norovirus in water.</a> Journal of Water and Health. 9, 27-36 (2011).</li>
<li>Gibbons, C. D., Rodriguez, R. A., Tallon, L., Sobsey, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+positively+charged+alumina+nanofibre+cartridge+filters+for+the+primary+concentration+of+noroviruses%2C+adenoviruses+and+male-specific+coliphages+from+seawater%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Evaluation of positively charged alumina nanofibre cartridge filters for the primary concentration of noroviruses, adenoviruses and male-specific coliphages from seawater.</a> Journal of Applied Microbiology. 109, 635-641 (2010).</li>
<li>Hill, V. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+rapid+method+for+simultaneous+recovery+of+diverse+microbes+in+drinking+water+by+ultrafiltration+with+sodium+polyphosphate+and+surfactants%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+and+Environmental+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Development of a rapid method for simultaneous recovery of diverse microbes in drinking water by ultrafiltration with sodium polyphosphate and surfactants.</a> Applied and Environmental Microbiology. 71, 6878-6884 (2005).</li>
<li>Polaczyk, A. L., Roberts, J. M., Hill, V. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+1MDS+electropositive+microfilters+for+simultaneous+recovery+of+multiple+microbe+classes+from+tap+water%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Microbiological+Methods%22%5BJournal%5D)">Evaluation of 1MDS electropositive microfilters for simultaneous recovery of multiple microbe classes from tap water.</a> Journal of Microbiological Methods. 68, 260-266 (2007).</li>
<li>Rhodes, E. R., Hamilton, D. W., See, M. J., Wymer, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+hollow-fiber+ultrafiltration+primary+concentration+of+pathogens+and+secondary+concentration+of+viruses+from+water%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virological+Methods%22%5BJournal%5D)">Evaluation of hollow-fiber ultrafiltration primary concentration of pathogens and secondary concentration of viruses from water.</a> Journal of Virological Methods. 176, 38-45 (2011).</li>
<li>Melnick, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Round+robin+investigation+of+methods+for+the+recovery+of+poliovirus+from+drinking+water%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+and+Environmental+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Round robin investigation of methods for the recovery of poliovirus from drinking water.</a> Applied and Environmental Microbiology. 47, 144-150 (1984).</li>
<li>Schwab, K. J., De Leon, R., Sobsey, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Concentration+and+purification+of+beef+extract+mock+eluates+from+water+samples+for+the+detection+of+enteroviruses%2C+hepatitis+A+virus%2C+and+Norwalk+virus+by+reverse+transcription-PCR%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+and+Environmental+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Concentration and purification of beef extract mock eluates from water samples for the detection of enteroviruses, hepatitis A virus, and Norwalk virus by reverse transcription-PCR.</a> Applied and Environmental Microbiology. 61, 531-537 (1995).</li>
</ol>

Keine konkurrierenden finanziellen Interessen. 
Die in diesem Artikel geäußerten Ansichten sind die der Autoren und spiegeln nicht unbedingt die Ansichten oder Richtlinien der US-Umweltschutzbehörde wider. Die Erwähnung von Handelsnamen oder kommerziellen Produkten stellt keine Billigung oder Empfehlung zur Verwendung dar.

Elektro Filter sind nützlich bei der Konzentration von Viren aus Wasser; aber diese Filter können in ihrer Struktur und Zusammensetzung, die wiederum ihre Wirksamkeit verändern könnten abweichen. Compoundierung dieses Problem, Kapsidstrukturen und Gebühren schwanken zwischen Virusstämme erfordern Konzentrationstechniken zugeschnitten auf optimale Erholung 15 zu gewährleisten. Durch einfache Änderungen an den vorhandenen Konzentrierungstechniken (zB elektro Filter, Rindfleischextrakt Elution), können ...

Menschendarmviren sind wichtige Erreger von Wasser übertragenen Krankheiten 1-3, aber sind in der Regel in geringer Anzahl in kontaminierten Umwelt Gewässern, so dass ihr Nachweis schwierig, ohne Konzentration. Verfahren verwendet werden, um Viren zu konzentrieren umfassen typischerweise ein Filtrationsschritt, gefolgt von Filter Elution und Sekundär Konzentration des Filter Eluat. Eine gemeinsame Filtrationsverfahren stützt sich auf den Einsatz von geladenen Membranen wie elektro Filter (vor kurzem in 4,5 überprüft). Diese Filter verlassen sich auf die Erfassung von Viren in Wasser suspendiert, elektrostatische Wechselwirkungen zwischen der Filteroberfläche (positiv geladen) und gezielte Viruspartikel (negativ geladen). Zwei elektro Filter, die kommerziell verfügbar sind, beruhen auf dieser Technologie, die Glas / Cellulose und Nano-Aluminiumoxid / Glasfaser-Filtern. Die Glas / Cellulose-Filterkosten um bis zu 10-fache des Nano-Aluminiumoxid / Glasfaser, das die Verwendung des Glases / ce begrenzenllulose Filter für die routinemäßige Virenüberwachung. Jüngste Studien haben festgestellt, Unterschiede nominal zwischen diesen beiden Filter in der Wiederaufnahme von Enteroviren von Umgebungswasser 6,7 sind, rechtfertigt den Einsatz eines preiswerter Filter Alternative. Weitere Filteroptionen wie elektro und Glaswolle-Filter untersucht worden, aber sie erfordern entweder die Vorbehandlung der Quelle Wasser (elektro Filter) oder nicht im Handel erhältlich (Glaswolle-Filter). Die Entwicklung der Viruskonzentration Verfahren hat sich vor allem auf die Optimierung der primären Konzentrationstechniken (Filter), um Virenrückforderungen aus dem Wasser zu verbessern konzentriert. Allerdings Sekundär Konzentration Verfahren, die das Volumen des Elutionsmittels typischerweise 1 L senken, Volumes Milliliter, kann auch einen erheblichen Einfluss auf die Virus Erholungen 8. Sekundäre Konzentration von Darmviren beruht in der Regel auf einem Flockungsmittel, wie einige Arten von Rinderextrakt (organische floccunung) oder Magermilch Flockung 9-12 zu Viruspartikeln aus Filterflächen zu entfernen. Kürzlich wurde eine weitere sekundäre Konzentrationsverfahren unter Verwendung von Rinderextrakt zusammen mit der Zugabe von Celite (feine Teilchen) Versprechen zur Rückgewinnung Adenovirus, Enteroviren und Norovirus 8,13,14 gezeigt. Celite Konzentration Arbeiten unter ähnlichen Prinzipien wie die des organischen Ausflockungsverfahren dass Viruspartikel befestigen und von Teilchen (Flocken oder Celite) durch Änderung des pH der Suspension die Lösung freigesetzt. Vergleiche zwischen diesen beiden Sekundär Konzentration Techniken bei der Beitreibung von Stachel Adenovirus (AdV) Typen 40 und 41 8 bewertet worden. Diese Studie ergab, dass die beiden Sekundärkonzentrationstechniken waren in der Wiederaufnahme von Adenoviren statistisch ähnlich. Jedoch erfordert das organische Ausflockungsverfahren 30 min. Inkubation bei pH 3,5, während das Celite Technik erfordert eine kürzere Inkubation (10 min) bei pH 4,0. Die organische flocculatIonen erfordert auch den Einsatz von teuren Laboreinrichtungen (Zentrifugen) Flockenpartikel während tertiäre Konzentration sammeln, das Celite Technik im Gegensatz nur die wichtigsten Laborausrüstung (Vakuumfiltration), um Celite Teilchen aus der Suspension zu trennen. Bestimmte Kombinationen von Filtern und Sekundär Elutionstechniken kann auch Auswirkungen auf Virus-Rückforderungen. Eine Studie ergab, dass bestimmte Kombinationen von primären (elektro Filter) und sekundäre Konzentrationstechniken (Celite oder organischen Flokkulation) einen signifikanten Einfluss der Erholung von Adenovirus-13 hatte. Diese Ergebnisse legen nahe, dass die Optimierung ist, um optimal zu erholen Zielvirus aus einer gegebenen Wassermatrix bei der Verwendung dieser Techniken erforderlich. Optimierung ist ein zeitaufwendiger, aktiv zu vermeiden mühsamer Prozess viele Forscher seit vielen Variablen werden ausgewertet (Filtertyp / Marke pH Elutionslösung, Celite / organischen Flokkulation). Dafür study, ein Verfahren entwickelt, um optimale Bedingungen für die Viruskonzentration von Wasser zu identifizieren mit Stachel humane Adenovirus-Stämme 40 und 41 Vermutlich da jeder Virustyp zeigt eine einzigartige Kapsid Morphologie und spezifische Kapsid Ladung, müssen Konzentrationsprotokolle für jeden Virus optimiert werden zielen, um eine optimale Virusrückgewinnung zu erreichen. Diese Studie liefert einen Ansatz für die AdV 40 und 41 Konzentration: 1) Auswertung Virus Erholungen in Leitungswasser mittels elektroFilterScheiben, gefolgt von 2) Auswertung eines etablierten organischen Flockungsmethoden gegenüber dem Celite-Technik als Sekundär Konzentration, und 3) Bewertung der Elutionspuffer für tertiäre Konzentration.

<table><tbody><tr><td>Adenovirus 40 Lager</td><td>ATCC</td><td>VR-931</td><td></td></tr><tr><td>Adenovirus 41 Lager</td><td>ATCC</td><td>VR-930</td><td></td></tr><tr><td>Natriumthiosulfat</td><td>Fluka Chemical Co.</td><td>72051</td><td></td></tr><tr><td>Celite #577</td><td>Fluka Chemical Co.</td><td>22142</td><td></td></tr><tr><td>NanoCeram 47 mm</td><td>Argonid</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>1MDS 47 mm</td><td>3M</td><td>6408502</td><td></td></tr><tr><td>AP-20 Vorfilter 47 mm</td><td>Millipore Corp.</td><td></td><td></td>AP2004700</tr><tr><td>Glycin&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>50046-1KG</td><td></td></tr><tr><td>Natriumpolyphosphat</td><td>Acros Organics</td><td>390930010</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin</td><td>Gibco</td><td>25200</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Sigma</td><td>P5368</td><td></td></tr><tr><td>Salzsäure</td><td>Fisher</td><td>A481-212</td><td></td></tr><tr><td>BBL Rindfleischextrakt</td><td>BD Biosciences</td><td>212303</td><td></td></tr><tr><td>Difco Rindfleischextrakt</td><td>BD Biosciences</td><td>211520</td><td></td></tr><tr><td>ABI 7900 Echtzeit-PCR-System</td><td>ABI</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Edelstahl-Filtergehäuse</td><td>Millipore Corp.</td><td></td><td></td>XX2004720</tr><tr><td>Blut-DNA-Extraktionskit</td><td>Qiagen&nbsp;</td><td>51104</td><td></td></tr><tr><td>EPA MPN Taschenrechner</td><td></td><td></td><td>http://www.epa.gov/nerlcwww/online.html</td></tr></tbody></table>

ein kleines volumen verfahren für viral konzentration von wasser

A Small Volume Procedure for Viral Concentration from Water

Die kleinskalige Konzentration von Viren (Probenvolumen 1-10 L, hier simuliert mit 100 ml Wasserproben) ist eine effiziente, kostengünstige Methode, um optimale Parameter für die Viruskonzentration zu identifizieren. Viren können durch Filtration (elektropositiv, elektronegativ, Glaswolle oder Größenausschluss) aus Wasser konzentriert werden, gefolgt von einer Sekundärkonzentration mit Rindfleischextrakt, um Viren von den Filteroberflächen freizusetzen, und schließlich einer Tertiärkonzentration, die zu einem Viruskonzentrat mit einem Volumen von 5-30 ml führt. Um optimale Konzentrationsverfahren zu identifizieren, wurden zwei verschiedene elektropositive Filter (ein Glas/Zellulose-Filter [1MDS] und ein Nano-Aluminiumoxid/Glas-Filter [NanoCeram]) sowie verschiedene Sekundärkonzentrationstechniken evaluiert; Bei der Celit-Technik, bei der drei verschiedene Celit-Partikelgrößen (fein, mittel und groß) bewertet wurden, wurde diese Technik mit der etablierten organischen Flockungsmethode verglichen. Verschiedene Elutionsadditive wurden auch auf ihre Fähigkeit untersucht, die Freisetzung von Adenovirus-Partikeln (AdV) von Filteroberflächen zu verbessern. Feinpartikel-Celit gewann ähnliche Konzentrationen von AdV40 und 41 wie bei der etablierten organischen Flockungsmethode, wenn während der Sekundärkonzentration virale Spikes hinzugefügt wurden. Der Glas-/Zellulosefilter gewann im Vergleich zu einem Nano-Aluminiumoxid-/Glasfaserfilter höhere Konzentrationen von AdV40 und 41 zurück. Obwohl statistisch nicht signifikant, wurden durch die Zugabe von 0,1 % Natriumpolyphosphat modifiziertem Eluans Rindfleischextrakt 10 % mehr AdV-Partikel im Vergleich zu unmodifiziertem Rindfleischextrakt zurückgewonnen.

<html> Celite Auswahl Drei verschiedene Arten von Celite wurden vor der Auswahl des besten Variante getestet. Celite mit feinen bis mittelgroße Partikel produziert die höchsten Adenovirus Erholungen. Einsatz größerer Celite führte zu niedrigeren Wiederfindungsraten für sowohl AdV40 und 41 (Bereich 32% -100%) (Abbildung 1). Durchschnittliche Rückforderungen von Adenovirus-40 waren 144% ± 52% (fein), 115% ± 28% (mittel) und 82% ± 53% (große) Partikel Celite und AdV41, 132% ± 39...

Es wurde ein Ansatz entwickelt, um optimale Viruskonzentrationsbedingungen für Wasserproben mit kleinem Volumen unter Verwendung von Spikes des humanen Adenovirus zu identifizieren. Die hier beschriebenen Techniken werden verwendet, um Konzentrationsparameter für andere virale Ziele zu identifizieren, und werden auf groß angelegte Experimente zur Viruskonzentration angewendet.

Ein kleines Volumen Verfahren für Viral Konzentration von Wasser

Small-scale concentration of viruses (sample volumes 1-10 L, here simulated with spiked 100 ml water samples) is an efficient, cost-effective way to ...

Das übergeordnete Ziel des folgenden Experiments besteht darin, die Virusrückgewinnung aus Wasser mithilfe einer ursprünglich zur Optimierung der Virusanreicherung entwickelten Methode im kleinen Maßstab zu verbessern. Ein Glas-Cellulose-Filter erwies sich als der beste elektropositive Filter zur Anreicherung von Adenoviren aus Wasser. Als sekundäre Elutionsmethode erwies sich die Konzentration mit Celite als am besten geeignet, um Adenoviren von den Filteroberflächen zu eluieren. Die resultierende Methode ermöglicht die Rückgewinnung der höchsten Menge an Adenoviren aus Leitungswasser, basierend auf den höchsten prozentualen Rückgewinnungsraten im Vergleich zu allen getesteten Kombinationen aus Filtern und Elutionsverfahren. Der Hauptvorteil dieser Technik gegenüber bestehenden Methoden wie der großtechnischen Volumenkonzentration besteht darin, dass sie geringere Probenvolumina nutzt und es ermöglicht, eine Vielzahl von Konzentrationsvariablen schnell und einfach zu bewerten. Stellen Sie vor Beginn dieses Protokolls sicher, dass alle benötigten Lösungen bereitstehen, einschließlich der über einen 0,22-Mikron-Filter sterilisierten Viruslösung mit einer Konzentration von 10 bis 100.000 MPN pro Milliliter. Messen Sie zunächst einen Liter sterilem Leitungswasser ab und geben Sie es in einen Zwei-Liter-Becher mit einem Magnetrührstab. Während das Wasser gerührt wird, fügen Sie 0,7 Gramm Natriumthiosulfat hinzu und lassen es vollständig auflösen. Danach stellen Sie den pH-Wert durch tropfenweises Zugabe von einmolarer Säure- oder Basen-Stammlösung auf einen Wert zwischen 7 und 7,5 ein. Anschließend versetzen Sie das Wasser mit dem Virus, indem Sie einen vollen Milliliter der hergestellten Viruslösung hinzufügen. Bedecken Sie den Becher mit einer sterilen Abdeckfolie und lassen Sie das Virus 10 Minuten lang in das Wasser einmischen. In der Zwischenzeit bereiten Sie den Millipore-Filter vor. Nehmen Sie ihn zunächst aus der Verpackung und stellen Sie sicher, dass er fest zwischen der oberen Schale und dem unteren Sieb sitzt. Prüfen Sie anschließend, ob das Korkmaterial des Filters gut auf den Rand eines einliterigen Seitenhalskolbens passt. Entfernen Sie nun die obere Schale des Filters und legen Sie mit einer Pinzette eine 47 Millimeter große elektropositive Filtermembran genau mittig auf das Filtersieb. Danach setzen Sie die Schale wieder auf und befestigen sie durch eine Drehung gegen den Uhrzeigersinn. Messen Sie 100 Milliliter des belasteten Leitungswassers mit einem sterilen Zylinder ab. Überführen Sie das Wasser anschließend in das vorbereitete Filtergehäuse auf dem Zwei-Liter-Kolben. Die elektropositive Scheibe im Filter kann aus gefalteter Glas-Cellulose oder nanoaluminierten Glasfasern bestehen. Ein sanfter Unterdruck kann verwendet werden, um das restliche Wasser durch den Filter zu leiten.Versetzen Sie nun das Filtergehäuse in einen 250-Milliliter-Kolben mit Seitenhals. Geben Sie 100 Milliliter Rinderextrakt ab und gießen Sie ihn langsam auf den Filter. Lassen Sie den Extrakt langsam durchlaufen und verwenden Sie ein sanftes Vakuum, um den Rest durchzuziehen.Danach mit einer der beiden sekundären Konzentrationsoptionen fortfahren.Um das Virus mithilfe von Celite zu konzentrieren, überführen Sie den Inhalt des 250-Milliliter-Kolbens, der das Virus enthält, auf einen Rührer. Erzeugen Sie mit einem Rührstab einen kleinen Wirbel. Geben Sie anschließend 0,1 Gramm Celite-Pulver zu 100 Milliliter Rinderextrakt hinzu. Lassen Sie das Celite dispergieren und bereiten Sie sich darauf vor, den pH-Wert der Lösung anzupassen. Durch tropfenweise Zugabe von 0,1-molarer Salzsäure senken Sie den pH-Wert auf 4,0 ab.Dann die Lösung 10 Minuten lang mischen lassen. Währenddessen den 47-Milliliter-Vorfilter an einem Zwei-Liter-Kolben befestigen. Nun 100 Milliliter der Rinderextrakt-Celite-Mischung durch den Vorfilter gießen. Ein leichtes Vakuum kann zur Fertigstellung verwendet werden.Als Nächstes wird eine Metallrohrklemme an der Ausgussöffnung eines Filtergehäuses befestigt. An die Klemme wird ein steriles 15-Milliliter-Polypropylen-Sammelröhrchen angebracht und anschließend der Filter wieder auf dem Kolben montiert.Eluieren Sie nun das Virus von den Celite-Partikeln mit fünf Millilitern 1X PBS bei einem pH-Wert von neun. Lassen Sie den größten Teil des PBS durch Schwerkraft in die 15-Milliliter-Röhrchen laufen und ziehen Sie den Rest mit leichtem Vakuum durch. Um das Virus durch organische Flockung zu konzentrieren, überführen Sie den Inhalt des 250-Milliliter-Kolbens, der das Virus enthält, auf eine Rührplatte. Erzeugen Sie mithilfe eines Rührstabs einen kleinen Wirbel. Stellen Sie den pH-Wert der Lösung durch tropfenweise Zugabe von einmolarer Salzsäure auf 3,5 ein. Lassen Sie die Mischung anschließend eine halbe Stunde lang rühren. Überführen Sie die Lösung danach in ein steriles kegelförmiges 250-Milliliter-Zentrifugenröhrchen. Zentrifugieren Sie die Lösung mit 2.500 × g für 15 Minuten bei vier Grad Celsius. Achten Sie nach der Zentrifugation darauf, beim Umgang mit den Röhrchen das Pellet nicht aufzuwirbeln. Entsorgen Sie vorsichtig den Überstand und resuspendieren Sie das Pellet in fünf Millilitern PBS mit pH 9. Stellen Sie sicher, dass das Pellet vollständig gelöst ist. Zentrifugieren Sie die erneut suspendierte Probe anschließend mit 4.000 × g für 10 Minuten bei vier Grad Celsius. Sammeln Sie nun den Überstand, der das konzentrierte Virus enthält. Das Pellet kann verworfen werden.Bei der Optimierung dieses Protokolls wurden drei Arten von Celite verglichen. Gröberes Celite führte zu geringeren Ausbeuten sowohl von ADV 40 als auch von ADV 41. Die Filterelution wurde bei einem pH-Wert zwischen 7,5 und 12 getestet, um festzustellen, welcher am effektivsten zur Gewinnung von ADV-Partikeln aus den Filtern ist. Die höchste Rückgewinnungsrate wurde mit einem Glas-Cellulose-Filter in Kombination mit Rinderextrakt bei pH 10 und Celite erzielt. Das Ergebnis war identisch mit ADV 40 und ADV 41.Der Fleischextrakt bei pH 10 erwies sich als überlegen gegenüber der organischen Flockung.Die optimierte Methode wurde mit der Zugabe von 25 % Trypsin verglichen und zudem mit der Supplementierung des Rinderextrakts mit 0,1 % Natriumpolyphosphat. Keine der Behandlungen verbesserte die ADV-Recovery signifikant. Wenn die Technik einmal beherrscht ist, kann sie bei korrekter Durchführung in 45 Minuten durchgeführt werden.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Environment

Umwelt

Um Lentiviren, sind DNA-Vektoren in humanen 293-Zellen transfiziert. Nach der Ernte und die Konzentration der Überstand wird Virustiter mittels Fluoreszenz-Ausdruck mit einem Durchflußzytometer bestimmt.

Lentivirus Produktion

Die Fluktuationsrate von Viren in Meer-und Süßwasser-Systeme können durch eine Reduktion und Wiederholung Technik geschätzt werden. Die Daten können die Forscher Raten von Virus-vermittelte mikrobielle Sterblichkeit in aquatischen Systemen zu schließen.

Die Schätzung Virus Produktionsraten in aquatischen Systemen

Glaswolle-Filter wurden verwendet, um auf Wasserbasis Viren durch eine Reihe von Forschergruppen auf der ganzen Welt zu konzentrieren. Hier zeigen wir einen einfachen Ansatz für den Bau von Glaswolle-Filter und demonstrieren die Filter sind auch wirksam bei der Konzentration des wässrigen virale, bakterielle und Protozoen Pathogene.

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Source: Fout, G. S., Cashdollar, J. L. EPA Method 1615. Measurement of Enterovirus and Norovirus Occurrence in Water by Culture and RT-qPCR. II. Total Culturable Virus Assay. J. Vis. Exp. (2016)This video demonstrates the use of a total culturable virus assay to quantify infectious viruses in water samples. It outlines host cell inoculation, observation of cytopathic effect, and statistical quantification of infectious virus concentration.

Quantifying Infectious Viruses in Water Samples Using an In Vitro Total Culturable Virus Assay

EPA-Methode 1615 verwendet einen elektropositiven Filter, um Enteroviren und Noroviren in Umwelt- und Trinkwasser zu konzentrieren. Dieses Manuskript beschreibt das Verfahren zur Entnahme von Proben für Analysen nach Methode 1615.

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Hier präsentieren wir ein umfassendes Protokoll zur Bewertung der Verfügbarkeit organischer und anorganischer Nährstoffe sowie der Häufigkeit und Struktur von mikrobiellen und viralen Gemeinschaften in abgelegenen Meeresumgebungen.

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Hier stellen wir VirWaTest vor, eine einfache, erschwingliche und tragbare Methode zur Konzentration und Detektion von Viren aus Wasserproben am Einsatzort.

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Die Viruskonzentration aus Wasser- und Abwasserproben aus der Umwelt ist eine anspruchsvolle Aufgabe, die vor allem zur Identifizierung und Quantifizierung von Viren durchgeführt wird. Während mehrere Methoden zur Viruskonzentration entwickelt und getestet wurden, demonstrieren wir hier die Wirksamkeit der Ultrafiltration und der Magermilchflockung für RNA-Viren mit verschiedenen Probentypen.

Konzentration von Viruspartikeln aus Wasser- und Abwasserproben aus der Umwelt mittels Magermilchflockung und Ultrafiltration

Adeno-assoziiertes Virus wird in Suspensionszellkultur hergestellt und durch doppelte Iodixanol-Dichtegradientenzentrifugation gereinigt. Es sind Schritte enthalten, um die Gesamtvirusausbeute zu erhöhen, das Risiko von Virusausfällungen zu verringern und das endgültige Virusprodukt weiter zu konzentrieren. Die erwarteten Endtiter erreichen 10bis 12 Viruspartikel/ml und sind für die präklinische In-vivo-Anwendung geeignet.

Herstellung und Aufreinigung von Suspensionskulturen von Adeno-assoziierten Viren durch Iodixanol-Dichtegradientenzentrifugation für In-vivo-Anwendungen

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Ein kleines Volumen Verfahren für Viral Konzentration von Wasser

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