3. Februar 2015
Es wurde ein Ansatz entwickelt, um optimale Viruskonzentrationsbedingungen für Wasserproben mit kleinem Volumen unter Verwendung von Spikes des humanen Adenovirus zu identifizieren. Die hier beschriebenen Techniken werden verwendet, um Konzentrationsparameter für andere virale Ziele zu identifizieren, und werden auf groß angelegte Experimente zur Viruskonzentration angewendet.
Das übergeordnete Ziel des folgenden Experiments besteht darin, die Virusrückgewinnung aus Wasser mithilfe einer ursprünglich zur Optimierung der Virusanreicherung entwickelten Methode im kleinen Maßstab zu verbessern. Ein Glas-Cellulose-Filter erwies sich als der beste elektropositive Filter zur Anreicherung von Adenoviren aus Wasser. Als sekundäre Elutionsmethode erwies sich die Konzentration mit Celite als am besten geeignet, um Adenoviren von den Filteroberflächen zu eluieren. Die resultierende Methode ermöglicht die Rückgewinnung der höchsten Menge an Adenoviren aus Leitungswasser, basierend auf den höchsten prozentualen Rückgewinnungsraten im Vergleich zu allen getesteten Kombinationen aus Filtern und Elutionsverfahren.
Der Hauptvorteil dieser Technik gegenüber bestehenden Methoden wie der großtechnischen Volumenkonzentration besteht darin, dass sie geringere Probenvolumina nutzt und es ermöglicht, eine Vielzahl von Konzentrationsvariablen schnell und einfach zu bewerten.
Stellen Sie vor Beginn dieses Protokolls sicher, dass alle benötigten Lösungen bereitstehen, einschließlich der über einen 0,22-Mikron-Filter sterilisierten Viruslösung mit einer Konzentration von 10 bis 100.000 MPN pro Milliliter.
Messen Sie zunächst einen Liter sterilem Leitungswasser ab und geben Sie es in einen Zwei-Liter-Becher mit einem Magnetrührstab. Während das Wasser gerührt wird, fügen Sie 0,7 Gramm Natriumthiosulfat hinzu und lassen es vollständig auflösen. Danach stellen Sie den pH-Wert durch tropfenweises Zugabe von einmolarer Säure- oder Basen-Stammlösung auf einen Wert zwischen 7 und 7,5 ein. Anschließend versetzen Sie das Wasser mit dem Virus, indem Sie einen vollen Milliliter der hergestellten Viruslösung hinzufügen. Bedecken Sie den Becher mit einer sterilen Abdeckfolie und lassen Sie das Virus 10 Minuten lang in das Wasser einmischen.
In der Zwischenzeit bereiten Sie den Millipore-Filter vor. Nehmen Sie ihn zunächst aus der Verpackung und stellen Sie sicher, dass er fest zwischen der oberen Schale und dem unteren Sieb sitzt. Prüfen Sie anschließend, ob das Korkmaterial des Filters gut auf den Rand eines einliterigen Seitenhalskolbens passt. Entfernen Sie nun die obere Schale des Filters und legen Sie mit einer Pinzette eine 47 Millimeter große elektropositive Filtermembran genau mittig auf das Filtersieb. Danach setzen Sie die Schale wieder auf und befestigen sie durch eine Drehung gegen den Uhrzeigersinn.
Messen Sie 100 Milliliter des belasteten Leitungswassers mit einem sterilen Zylinder ab. Überführen Sie das Wasser anschließend in das vorbereitete Filtergehäuse auf dem Zwei-Liter-Kolben. Die elektropositive Scheibe im Filter kann aus gefalteter Glas-Cellulose oder nanoaluminierten Glasfasern bestehen. Ein sanfter Unterdruck kann verwendet werden, um das restliche Wasser durch den Filter zu leiten.
Versetzen Sie nun das Filtergehäuse in einen 250-Milliliter-Kolben mit Seitenhals. Geben Sie 100 Milliliter Rinderextrakt ab und gießen Sie ihn langsam auf den Filter. Lassen Sie den Extrakt langsam durchlaufen und verwenden Sie ein sanftes Vakuum, um den Rest durchzuziehen.
Danach mit einer der beiden sekundären Konzentrationsoptionen fortfahren.
Um das Virus mithilfe von Celite zu konzentrieren, überführen Sie den Inhalt des 250-Milliliter-Kolbens, der das Virus enthält, auf einen Rührer. Erzeugen Sie mit einem Rührstab einen kleinen Wirbel. Geben Sie anschließend 0,1 Gramm Celite-Pulver zu 100 Milliliter Rinderextrakt hinzu. Lassen Sie das Celite dispergieren und bereiten Sie sich darauf vor, den pH-Wert der Lösung anzupassen. Durch tropfenweise Zugabe von 0,1-molarer Salzsäure senken Sie den pH-Wert auf 4,0 ab.
Dann die Lösung 10 Minuten lang mischen lassen. Währenddessen den 47-Milliliter-Vorfilter an einem Zwei-Liter-Kolben befestigen. Nun 100 Milliliter der Rinderextrakt-Celite-Mischung durch den Vorfilter gießen. Ein leichtes Vakuum kann zur Fertigstellung verwendet werden.
Als Nächstes wird eine Metallrohrklemme an der Ausgussöffnung eines Filtergehäuses befestigt. An die Klemme wird ein steriles 15-Milliliter-Polypropylen-Sammelröhrchen angebracht und anschließend der Filter wieder auf dem Kolben montiert.
Eluieren Sie nun das Virus von den Celite-Partikeln mit fünf Millilitern 1X PBS bei einem pH-Wert von neun. Lassen Sie den größten Teil des PBS durch Schwerkraft in die 15-Milliliter-Röhrchen laufen und ziehen Sie den Rest mit leichtem Vakuum durch. Um das Virus durch organische Flockung zu konzentrieren, überführen Sie den Inhalt des 250-Milliliter-Kolbens, der das Virus enthält, auf eine Rührplatte. Erzeugen Sie mithilfe eines Rührstabs einen kleinen Wirbel. Stellen Sie den pH-Wert der Lösung durch tropfenweise Zugabe von einmolarer Salzsäure auf 3,5 ein. Lassen Sie die Mischung anschließend eine halbe Stunde lang rühren. Überführen Sie die Lösung danach in ein steriles kegelförmiges 250-Milliliter-Zentrifugenröhrchen. Zentrifugieren Sie die Lösung mit 2.500 × g für 15 Minuten bei vier Grad Celsius. Achten Sie nach der Zentrifugation darauf, beim Umgang mit den Röhrchen das Pellet nicht aufzuwirbeln. Entsorgen Sie vorsichtig den Überstand und resuspendieren Sie das Pellet in fünf Millilitern PBS mit pH 9. Stellen Sie sicher, dass das Pellet vollständig gelöst ist. Zentrifugieren Sie die erneut suspendierte Probe anschließend mit 4.000 × g für 10 Minuten bei vier Grad Celsius. Sammeln Sie nun den Überstand, der das konzentrierte Virus enthält. Das Pellet kann verworfen werden.
Bei der Optimierung dieses Protokolls wurden drei Arten von Celite verglichen. Gröberes Celite führte zu geringeren Ausbeuten sowohl von ADV 40 als auch von ADV 41.
Die Filterelution wurde bei einem pH-Wert zwischen 7,5 und 12 getestet, um festzustellen, welcher am effektivsten zur Gewinnung von ADV-Partikeln aus den Filtern ist. Die höchste Rückgewinnungsrate wurde mit einem Glas-Cellulose-Filter in Kombination mit Rinderextrakt bei pH 10 und Celite erzielt. Das Ergebnis war identisch mit ADV 40 und ADV 41.
Der Fleischextrakt bei pH 10 erwies sich als überlegen gegenüber der organischen Flockung.
Die optimierte Methode wurde mit der Zugabe von 25 % Trypsin verglichen und zudem mit der Supplementierung des Rinderextrakts mit 0,1 % Natriumpolyphosphat. Keine der Behandlungen verbesserte die ADV-Recovery signifikant.
Wenn die Technik einmal beherrscht ist, kann sie bei korrekter Durchführung in 45 Minuten durchgeführt werden.
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Diese Studie stellt eine Methode zur Optimierung der Virusrückgewinnung aus Wasserproben geringer Menge vor, wobei der Fokus speziell auf dem humanen Adenovirus liegt. Der Ansatz nutzt einen Glas-Cellulose-Filter und eine sekundäre Konzentrationstechnik, um die Rückgewinnungsraten zu verbessern.
Die Optimierung der Virusrückgewinnung aus Wasserproben geringer Volumina ermöglicht eine schnelle Überprüfung von Konzentrationsparametern und unterstützt die frühe Entwicklung von Assays in der Umweltvirologie. Die Methode bietet einen skalierbaren und kosteneffizienten Ansatz zur Bewertung von Kombinationen aus Filtern und Elutionsverfahren, wodurch der Ressourcenverbrauch in Workflows zur präklinischen Pathogendetektion reduziert wird. Durch die Identifizierung optimaler Bedingungen für die Adenoviruskonzentration verbessert die Technik die Vorhersagesicherheit bei nachgeschalteten Nachweisverfahren.
Die Methode fügt sich in den Entdeckungsprozess von der frühen Hypothesenprüfung bis hin zur Identifizierung von Leitkeimen in der Umweltpathogendetektion ein und ermöglicht eine schnelle Iteration von Konzentrationsvariablen, bevor auf größere Volumina skaliert wird.