Name: Manipulation der Murine Lakrimal (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-11-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 56 s
Description: Lernen Sie die ex-vivo-Kultur muriner Tränendrüsen zur Analyse von Entwicklungssignalwegen. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung von Proteinexpression und Morphogenese in der Augengesundheitsforschung.

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Die Autoren bedanken sich bei Förderung durch die UCSF Ressourcenzuordnung Programm vorgesehen anzuerkennen.

Alle Tier Arbeit wurde unter strenger Übereinstimmung mit den Empfehlungen im Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren der National Institutes of Health durchgeführt. Das Protokoll wurde von der Institutional Animal Care und Use Committee (IACUC) von der University of California, San Francisco genehmigt. 1. embryonalen Maus-Tränendrüsen (LG): Ernten und Mikrodissektion <ol><li> Folgenden Verfahren durch die Institutional Tiere für wissenschaftliche Forschung Ethik-Kommission genehmigt, einschläfern timed schwanger CD-1 (oder transgene) Weibchen mit steigenden CO 2 Inhalation, gefolgt von der Bestätigung durch Genickbruch zu ernten Embryonen auf den entsprechenden embryonalen Tag. Bestimmen Sie den Tag der Vaginalpfropf Entdeckung e0. Hinweis: Tränendrüsen (LGs) aus dem e14 einzelnen Knospenstadium ab geerntet werden. Allerdings e16 - geben (5 10 Knospen) Embryonen die konsequentesten Ergebnisse für die ex vivo Kultur. </li><li> Sterilisieren Sie die ventral Seite der Maus unter Verwendung von 70% Ethanol. Pinch die Haut und machen einen Einschnitt an der Mittellinie mit sterilen chirurgischen Schere; schneiden durch die Haut und Bauchfell, die Bauchhöhle aus. Die 2 Uterushörner durch Schneiden entlang der Mesometrium an der Oberseite jedes Uterushorn und in kaltem PBS (Phosphate Buffered Saline) oder DMEM F12-Medium mit 100 U / ml Penicillin und 100 ug / ml Streptomycin ergänzt. </li><li> Mit einer Pinzette (# 5), zu entfernen Embryonen aus den Fruchtblasen und in einen zweiten sterilen Petrischale mit kaltem PBS. Seien Sie vorsichtig, um die Augen oder Kopfbereich nicht berühren. </li><li> Zeigen Embryo auf einem Binokular mit einer Durchleuchtung Basis. Wenn der Embryo &lt;e17, führen Sie die Schritte 1,5-1,7. Wenn Embryonen&gt; e17, diese Schritte können hilfreich sein, sind aber nicht unbedingt erforderlich, daher gehen Sie zu Schritt 1.8. </li><li> Sever den Kopf vom Rumpf knapp unter dem Unterkiefer (Schritt 1, Abbildung 2) Usinga sterilen Skalpell (# 10 Klinge). Drehen Sie den Kopf, so dass der Unterkiefer ist jetzt auf dem Seziertisch Platte. Verwenden einer Pinzette, um den Kopf und ein Skalpell, um etwa ¼ der dorsalen Seite des Gehirns (Schritt 2, 1. Schnitt, Abbildung 2) zu entfernen stabilisieren - dies ist besonders wichtig, wenn Knorpel versteift rund e15. </li><li> Richten Sie den Kopf, so dass das Skalpell kann die Nase zwischen den Augen durchbohren. Machen Sie einen Schnitt durch die Mitte des Kopfes, so dass die Augen sind jetzt auf getrennten Hälften (Schritt 2, 2. Schnitt, Abbildung 2). </li><li> Mit Hilfe von zwei # 5 Zangen, nehmen Sie eine Hälfte des Kopfes und entfernen überschüssiges Gewebe (siehe Schritt 3, Abbildung 2). Achten Sie darauf, den Kopf so zu orientieren, das LG (in der unteren hinteren Ecke des Auges befindet) wird in diesem Entfernungsprozess verloren. Entfernen überschüssigen zerebralen, Knorpel und Nasengewebe umgibt und unter dem Auge. Da die Verschraubung an dieser Stelle kaum sichtbar, sicherzustellen, ist das Auge nach dem überschüssigen Gewebeentfernung t richtig orientierto nicht zu verlieren die Lage des LG. </li><li> Vorsichtig greifen die Haut von der hinteren, unteren Ecke des Auges mit beiden Zangen. Entfernen Sie die Haut vorsichtig abziehen offen mit der Pinzette, um die LG aussetzen. Verwenden Sie zusätzliche Beleuchtung oberhalb und unterhalb des Gewebes zu helfen visualisieren die LG. Hinweis: Das LG, unterscheidbar durch sein Aussehen als Knospe auf einem Kanal in einen dunkleren, Kondensmilch Mesenchym, sichtbar an dieser Stelle. </li><li> Vorsichtig beginnen zu LG und zugehörige Mesenchym (siehe Diagramm und Bilder) aus dem umgebenden Gewebe mit einer Pinzette, wobei Sie darauf achten das LG oder den angeschlossenen Kanal nicht zu greifen sezieren. Sobald die Drüse ist frei von dem umgebenden Gewebe, entfernen Sie vorsichtig die gesamte Drüse durch Ergreifen des Epithelien um die Augen an der Basis des LG Kanal. Achten Sie auf die umgebende Mesenchym das Epithel, das als kondensiertes Mesenchym in welche die Epithel stülpt beobachtet werden kann erhalten. HINWEIS: Einige zusätzliche Entfernung von tissue (jedoch kleine Knochenfragmente, Muskeln und Bindegewebe) kann notwendig sein, um zu vermeiden, Signalisierung / Wachstumsfaktoren aus dem benachbarten Gewebe. </li><li> Für Kultur, Ernte 4-5 Drüsen und die damit verbundenen Mesenchym pro Platte (LGs sind sofort nach Dissektion plattiert); Sammeln mindestens 14 Drüsen pro 100 &amp; mgr; l RNA-Lysepuffer für RT-PCR 6. </li></ol> 2. Bereiten Teller für Ex-vivo-Kultur Dieses Verfahren wird auf die für die Entwicklung von Speicheldrüsen 7,8, bezogen. <ol><li> Mit 200 &amp; mgr; l DMEM F12 Kulturmedium mit 50 &amp; mgr; g / ml Ascorbinsäure und 50 &amp; mgr; g / ml holo-Transferrin mit einem Glasboden-Mikrotiterplatten mit 50 mm Durchmesser Teller 7 (mit 100 U / ml Penicillin und 100 ug / ml Streptomycin). Hinweis: DMEM F12 wurde gewählt, da wir zuvor fand es Morphogenese in der embryonalen Speicheldrüse zu maximieren. </li><li> Float eine 13 mm PolycarbOnate Membranfilter mit 0,1 um Poren auf der Oberseite der Medien. </li><li> Optionaler Schritt: Verdünnen 3-D Laminin 1: 1 mit DMEM / F12, um eine Endkonzentration von 3 mg / ml zu (verwenden Sie 200 ul Pipette vorsichtig mischen; Zentrifuge für 1 min, wenn Blasenbildung). Werden 15 &amp; mgr; l dieser verdünnten 3-D Laminin zu filtern. Hinweis: Diese Verdünnung wurde als optimal für die Aufrechterhaltung der LG in seiner 3D-Zustand ohne Kompromisse epithelialen Verzweigung zu sein. Es ist jedoch nicht wesentlich für die Kultur von LG. </li><li> Zeigen 4-5 LG auf Filter oder in Laminin. Kultur LGs ex vivo für 24 - 48 h (Figur 3) oder fix mit 4% PFA für 20 min für eine weitere Analyse durch qPCR oder Immunfärbung (Abbildung 4). Für qPCR Analyse der embryonalen Drüsengewebe entnehmen Sie bitte Rebustini et al beziehen. 2011. Für Immunfluoreszenz-Analyse der embryonalen Drüsengewebe entnehmen Sie bitte den folgenden Zitaten: Hoffman et al, (2002) und Steinberg e.t al., (2005). </li></ol> 3. Maus Postnatale und Erwachsenentränendrüsen (LG): Dissection <ol><li> Euthanize der postnatalen Maus nach Normen geeigneten Tierethikausschuss. Für die postnatale Welpen Tag 8 oder jünger, einschläfern durch Abtrennen des Kopfes mit einer sterilen Schere. Für postnatalen Tag 8 oder älter, Spray Fell mit 70% Ethanol. </li><li> Um die LG zu finden, lag der Maus seitlich von oben Seite nach oben unter einem Binokular mit Beleuchtung. Hinweis: Die postnatale und Erwachsenen LG werden durch die Halsschlagader, M. masseter und der Dermis (siehe Abbildung 5) begrenzt. </li><li> Mit kleinen Dissektion Schere, machen kleinen Einschnitt in der Epidermis seitlich von dem die LG befinden soll. </li><li> Mit einer Pinzette, öffnen Sie die Epidermis in Richtung Ohr, um den LG aussetzen. </li><li> Verwenden einer Pinzette vorsichtig lockern LG vom umgebenden Gewebe. </li><li> Sobald das LG wird vom umgebenden Gewebe freigesetzt wird, entfernen Sie vorsichtig das LG durch den Kanal,durch Ergreifen wobei der Kanal und die Epithelien Umgebung des Auges zu verbinden (Figur 1). </li><li> Platzieren LGS RNA Lysepuffer für RT-PCR, oder fix mit 4% PFA für 20 min zur Immunfärbung. </li></ol>

<ol><li>Liu, K. C., Huynh, K., Grubbs, J., Davis, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autoimmunity+in+the+pathogenesis+and+treatment+of+keratoconjunctivitis+sicca%5BTitle%5D)+AND+%22Current+allergy+and+asthma+reports%22%5BJournal%5D)">Autoimmunity in the pathogenesis and treatment of keratoconjunctivitis sicca.</a> Current allergy and asthma reports. 14, 403(2014).</li>
<li>Makarenkova, H. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FGF10+is+an+inducer+and+Pax6+a+competence+factor+for+lacrimal+gland+development%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">FGF10 is an inducer and Pax6 a competence factor for lacrimal gland development.</a> Development. 127, Cambridge, England. 2563-2572 (2000).</li>
<li>Dartt, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+regulation+of+lacrimal+gland+secretory+processes%3A+relevance+in+dry+eye+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Progress+in+retinal+and+eye+research%22%5BJournal%5D)">Neural regulation of lacrimal gland secretory processes: relevance in dry eye diseases.</a> Progress in retinal and eye research. 28, 155-177 (2009).</li>
<li>Nigam, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Concise+review%3A+can+the+intrinsic+power+of+branching+morphogenesis+be+used+for+engineering+epithelial+tissues+and+organs%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+cells+translational+medicine%22%5BJournal%5D)">Concise review: can the intrinsic power of branching morphogenesis be used for engineering epithelial tissues and organs.</a> Stem cells translational medicine. 2, 993-1000 (2013).</li>
<li>Qu, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glycosaminoglycan-dependent+restriction+of+FGF+diffusion+is+necessary+for+lacrimal+gland+development%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Glycosaminoglycan-dependent restriction of FGF diffusion is necessary for lacrimal gland development.</a> Development. 139, Cambridge, England. 2730-2739 (2012).</li>
<li>Rebustini, I. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MT2-MMP-dependent+release+of+collagen+IV+NC1+domains+regulates+submandibular+gland+branching+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+cell%22%5BJournal%5D)">MT2-MMP-dependent release of collagen IV NC1 domains regulates submandibular gland branching morphogenesis.</a> Developmental cell. 17, 482-493 (2009).</li>
<li>Hoffman, M. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+Expression+Profiles+of+Mouse+Submandibular+Gland+Development%3A+FGFR1+Regulates+Branching+Morphogenesis+in+Vitro+Through+BMP-+and+FGF-Dependent+Mechanisms%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Gene Expression Profiles of Mouse Submandibular Gland Development: FGFR1 Regulates Branching Morphogenesis in Vitro Through BMP- and FGF-Dependent Mechanisms.</a> Development. 129, 24-5778 (2002).</li>
<li>Steinberg, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FGFR2b+signaling+regulates+ex+vivo+submandibular+gland+epithelial+cell+proliferation+and+branching+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">FGFR2b signaling regulates ex vivo submandibular gland epithelial cell proliferation and branching morphogenesis.</a> Development. 132, Cambridge, England. 1223-1234 (2005).</li>
<li>Knox, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKnox%2C+SM+%22Parasympathetic+innervation+maintains+epithelial+progenitor+cells+during+salivary+organogenesis%22">Parasympathetic innervation maintains epithelial progenitor cells during salivary organogenesis</a>. 329, Science. New York, N.Y. 1645-1647 (2010).</li>
<li>Magenheim, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood+vessels+restrain+pancreas+branching%2C+differentiation+and+growth%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Blood vessels restrain pancreas branching, differentiation and growth.</a> Development. 138, Cambridge, England. 4743-4752 (2011).</li>
<li>Jaskoll, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FGF10%2FFGFR2b+signaling+plays+essential+roles+during+in+vivo+embryonic+submandibular+salivary+gland+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+developmental+biology%22%5BJournal%5D)">FGF10/FGFR2b signaling plays essential roles during in vivo embryonic submandibular salivary gland morphogenesis.</a> BMC developmental biology. 5, 11(2005).</li>
<li>Takasato, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Directing+human+embryonic+stem+cell+differentiation+towards+a+renal+lineage+generates+a+self-organizing+kidney%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+cell+biology%22%5BJournal%5D)">Directing human embryonic stem cell differentiation towards a renal lineage generates a self-organizing kidney.</a> Nature cell biology. 16, 118-126 (2014).</li>
<li>Knox, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Parasympathetic+stimulation+improves+epithelial+organ+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+communications%22%5BJournal%5D)">Parasympathetic stimulation improves epithelial organ regeneration.</a> Nature communications. 4, 1494(2013).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts zu offenbaren.

Die Vielseitigkeit der Kultur und manipulieren das LG ex vivo bietet erhebliche Vorteile für das Studium ihrer Entwicklung. Dies schließt die Geschwindigkeit, mit der sich der Forscher in der Lage, Hypothesen und die Vielzahl von Störungen, die ausgeführt ist, um zu beurteilen, wie Epithelzellen, neuronale, Endothel- und mesencyhmal Zellen interagieren, um das Organ zu bilden, zu testen. Es gibt jedoch eine Reihe von Einschränkungen bei der Nutzung dieses Modell. Erstens durch seine Isolierung die Drüse nicht m...

Die Tränendrüse (LG) ist für wässrige Tränensekretion kritisch für die Sehschärfe und die Gesundheit, Pflege und zum Schutz der Zellen der Augenoberfläche verantwortlich. LG Dysfunktion führt zu einer der häufigsten und schwächenden Augenerkrankungen: wässrige mangel Trockenen Auges, die durch Augenreizung, Lichtempfindlichkeit auszeichnet und verminderte Sicht ein. Im menschlichen LG liegt in der Umlaufbahn über dem seitlichen Ende des Auges in dem 3 - 5 Werkausführungsgänge Ablagerung Tränen auf der Augenoberfläche. Die Maus verfügt über drei Paare von großen Augendrüsen, die am meisten untersuchte, von denen ist die Tränendrüse (LG) befindet vorderen und ventralen zum Ohr (exorbital) mit Tränen über einen einzigen Ausführungsgang Reisen in das Auge. Ähnlich wie bei anderen Drüsenorgane entwickelt das LG durch den Prozess der epithelialen Verzweigung Morphogenese bei dem eine einzelne epitheliale Knospe innerhalb eines kondensierten Mesenchym erfährt mehrere Runden von Knospe und Kanalbildung fürm eine komplizierte Verbundnetz von sekretorischen Acini und Leitungen (1) 2. Während der Entwicklung des Epithels vaskularisiert sowie stark von den parasympathischen Nerven des Ganglion pterygopalatinum und in geringerem Maße von der überlegenen zervikalen Ganglion 3 innerviert durch sympathische Nerven. Wechselwirkungen zwischen jedem dieser Zelltypen, dh neuronale, Epithelzellen, Endothelzellen und mesenchymalen Zellen, sind für die Funktion und Wartung der adulten Geweben. Allerdings bleibt die zugrundeliegenden molekularen Mechanismen koordiniere LG Entwicklung und Regeneration und wie Inter-Zellen-Typ-Kommunikation führt diese Prozesse unklar. Das Aufkommen von embryonalen ex vivo Kulturtechniken hat die Identifizierung von Entwicklungs- und Regenerationswege in mehreren verzweigenden Organe 4 erlaubt. Züchten ex vivo gibt dem Forscher die Möglichkeit, die Orgel mich zu manipulieren (mechanisch, genetische oder chemische) unter definierten Bedingungen sowie die Organentwicklung und Zell-Zell-Wechselwirkungen in Echtzeit zu charakterisieren. Die exorbital LG der Maus ist sehr gut für diese Technik und neuere Studien haben festgelegt, Signalsysteme, die ihre Entwicklung 2,5 regulieren. Doch trotz der Notwendigkeit, Signalstoffe zugrunde LG Entwicklung und Regeneration zu verstehen, momentan bleibt wenig erforschten, wahrscheinlich aufgrund der technischen Schwierigkeiten bei der Isolierung des Organs. In diesem Beitrag beschreiben wir, wie zu isolieren und zu führen ex vivo Kultur von embryonalen Maus-LG zu Entwicklungsprogramme definieren.

<table><tbody><tr><td>DMEM/F12 ohne HEPES</td><td>SH3027101</td><td>Thermo Scientific</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin-Streptomycin</td><td>P0781</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td></tr><tr><td>Albuminlösung aus Rinderserum</td><td>A9576</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehyd 16% Lösung</td><td>15710</td><td>Elektronenmikroskopie Sciences</td><td>Verdünnt auf 4% in 1x PBS</td></tr><tr><td>Phosphat gepufferte Kochsalzlösung 10x</td><td>BP665-1</td><td>Fisher Scientific</td><td></td></tr><tr><td>Phosphat gepufferte Kochsalzlösung 1x</td><td></td><td></td><td>Hergestellt aus 10x Stamm</td></tr><tr><td>Holo-Transferrin</td><td>Rind T1283</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>25&nbsp; mg/ml Stammlösung in Wasser. Einfrieren von Einmal-Aliquoten bei -20&nbsp; &deg;C. DMEM/F12-Medien bis zu einer Endkonzentration von 50&nbsp; &mu; g/ml.</td></tr><tr><td>L-Ascorbinsäure (Vitamin C)</td><td>A4544</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>25&nbsp; mg/ml Stammlösung in Wasser. Einfrieren von Einmal-Aliquoten bei -20&nbsp; &deg;C. DMEM/F12-Medien bis zu einer Endkonzentration von 50&nbsp; &mu; g/ml.</td></tr><tr><td>BioLite 100 mm Schalen mit Gewebekultur behandelt</td><td>130182</td><td>Thermo Scientific</td><td>Platten, die nicht mit Gewebekulturen behandelt wurden, können ebenfalls verwendet werden.</td></tr><tr><td>Stereomikroskop mit Untertisch-Iluminator</td><td>Stemi 2000</td><td>Carl Zeiss</td> Es <td>kann jedes Stereo-Präpariermikroskop verwendet werden, das über eine Durchlichtbasis verfügt.</td></tr><tr><td>Untertisch-Beleuchtungssockel für Stereomikroskop</td><td>TLB 4000</td><td>Diagnostics Instruments, Inc.</td><td></td></tr><tr><td>Falke 35&nbsp; mm Mit Gewebekulturen behandelte Schalen</td><td>353001</td><td>Corning</td><td>Es können auch Platten verwendet werden, die nicht mit Gewebekulturen behandelt wurden.</td></tr><tr><td>50 mm unbeschichtete Glasbodenschüsseln</td><td>P50G-1.5-14-F</td><td>MatTek Corporation</td><td></td></tr><tr><td>Weitfeld-Fluoreszenzmikroskop</td><td>Axio Observer Z1</td><td>Carl Zeiss</td><td>Jedes Fluoreszenzmikroskop (aufrechtes, inverses oder Stereo-Präpariermikroskop) kann zur Überwachung der GFP-Expression bei geringer Vergrößerung mit einer angeschlossenen Digitalkamera verwendet werden.</td></tr><tr><td>Konfokalmikroskop</td><td>TCS SP5</td><td>Leica Microsystems</td><td>Die konfokale Mikroskopie ist notwendig, um detaillierte Zellstrukturen zu sehen. Jedes konfokale Mikroskop kann verwendet werden.</td></tr><tr><td>SWISS Mikrofeinzange, #5 (11.2&nbsp; cm)</td><td>17-305X</td><td>Integra LifeSciences Corporation</td><td>Feine Spitzen sind erforderlich, um Mesenchym aus dem Epithel zu entfernen. Auch Wolframnadeln können verwendet werden.</td></tr><tr><td>Dumont Zange mit Standardspitze, #5 (11&nbsp; cm)</td><td>91150-20</td><td>Fine Science Tools (USA), Inc.</td><td>Ideal für die Entnahme von Drüsen aus Embryonen.</td></tr><tr><td>Wiederverwendbare chirurgische Messergriffe aus Kunststoff, Modell Nr. 3.</td><td>4-30</td><td>Integra LifeSciences Corporation</td><td></td></tr><tr><td>Sterile chirurgische Klingen aus Edelstahl, Nr. 10</td><td>4-310</td><td>Integra LifeSciences Corporation</td><td></td></tr><tr><td>RNAqueous-Micro Total RNA Isolation Kit</td><td>AM1931</td><td>Life Technologies</td><td></td></tr><tr><td>Cultrex 3D Culture Matrix Laminin I</td><td>3446-005-01</td><td>Trevigen</td><td>6 mg/ml Stamm 1:1 verdünnt mit DMEM/F12</td></tr><tr><td>Zeitschwangeres Crl:CD1(ICR) </td><td></td> Mäuse <td>Charles River</td><td>Labs Embryonen werden am Tag 14 entnommen (wobei der Tag der Entdeckung des Steckers als Tag 0 bezeichnet wird).</td></tr><tr><td>Nukleopore spurgeätzte hydrophile Membranen, 0,1&nbsp; &mu; M Porengröße, 13&nbsp; mm</td><td>110405</td><td>Whatman</td><td></td></tr><tr><td>Zeitschwangere Pax6-Cre, GFP-Mäuse</td><td>Tg(Pax-Cre, GFP)1Pgr</td><td>The Jackson Laboratory</td><td>Optionale Mäuse zum Erlernen der Lokalisierung des LG.</td></tr></tbody></table>

manipulation der murine lakrimal

Manipulating the Murine Lacrimal Gland

Die Tränendrüse (LG) sezerniert wäßrigen Tränen zur Aufrechterhaltung von Struktur und Funktion der Hornhaut, ein transparentes Gewebe wichtig für das Sehvermögen erforderlich. Im menschlichen einen einzigen LG liegt in der Umlaufbahn über dem seitlichen Ende eines jeden Auges liefern Tränen auf die Augenoberfläche über 3 - 5 Werkkanäle. Die Maus verfügt über drei Paare von großen Augendrüsen, die am meisten untersuchte, von denen ist die exorbital Tränendrüse (LG) befindet vorderen und ventralen an das Ohr. Ähnlich wie bei anderen Drüsenorgane entwickelt das LG durch den Prozess der epithelialen Verzweigung Morphogenese bei dem eine einzelne epitheliale Knospe innerhalb eines kondensierten Mesenchym erfährt mehrere Runden von Knospe und Kanalbildung, um eine komplizierte Verbundnetz von sekretorischen Acini und Kanäle bilden. Diese aufwendigen Verfahren wurde auch in vielen anderen epithelialen Organen wie der Bauchspeicheldrüse und der Speicheldrüse dokumentiert. Allerdings hat das LG viel weniger erforscht und die Mechanismen, die Morphogenese sind schlecht unterstand. Wir vermuten, dass diese Unterrepräsentanz als Modellsystem ist eine Folge der Schwierigkeiten bei der Suche, Präparieren und Kultivieren der LG verbunden. So beschreiben wir Dissektion Techniken für die Ernte embryonalen und postnatalen LG und Methoden für die ex vivo Kultur des Gewebes.

Das LG entwickelt sich durch den Prozess der epithelialen Verzweigung Morphogenese. Hell Bilder embryonaler LGs bei e14, e15, e16, e17 und P2 seziert illustrieren diese Veranstaltung. <img alt="Figur 1" fo:content-width="6in" src="/files/ftp_upload/51970/51970fig1highres.jpg" width="600"> Abbildung 1. Das LG entwickelt sich durch den Prozess der epithelialen Verzweigung Morphogenese. Hell Bilder embryonaler LGs frisch bei e14, e15, e1...

Die Tränendrüse (LG) ist ein Verzweigungs Organ, das die wässrigen Bestandteile der Tränen notwendig für die Aufrechterhaltung der Vision und Augengesundheit produziert. Hier beschreiben wir murine LG Dissektion und ex vivo Kulturtechniken zu entziffern Signalwege in LG Entwicklung beteiligt.

Manipulation der Murine Lakrimal

The lacrimal gland (LG) secretes aqueous tears necessary for maintaining the structure and function of the cornea, a transparent tissue essential for ...

Das übergeordnete Ziel des folgenden Experiments ist es, die Entwicklung der Tränendrüsen unter Verwendung eines ex vivo-Ansatzes zur Manipulation und Analyse von Signalereignissen während der Drüsenentwicklung zu analysieren. Dies wird erreicht, indem zunächst die Tränendrüsen von Embryonen am 16. Tag präpariert werden. In einem zweiten Schritt werden die Drüsen auf Filter gelegt, die in Kultur schwimmen und Medien enthalten, die niedermolekulare Inhibitoren oder Wachstumsfaktoren enthalten, die die Entwicklung der Tränendrüse verändern.Nach 24 Stunden sind die Drüsen fixiert und immungefärbt für die interessierenden Entwicklungsproteine. Letztendlich können die Veränderungen der Proteinexpression während der ex vivo Entwicklung der Tränendrüse mittels Immunfluoreszenzmikroskopie analysiert werden. Diese Methode kann helfen, wichtige Fragen auf dem Gebiet der Entwicklung der Tränendrüse zu beantworten.Was sind zum Beispiel die Signalmechanismen, die die Tränendrüse definieren? Morphogenese Die visuelle Demonstration dieser Methode ist von entscheidender Bedeutung, da die Tränendrüse während der frühen Embryonalentwicklung ohne visuelle Anleitung und Übung bei der Lokalisierung schwer zu erkennen ist. Um die Tränendrüse einer embryonalen Maus zu gewinnen, verwenden Sie 70% Ethanol, um die ventrale Seite einer embryonalen Maus mit 14 bis 16 schwangeren Mäusen zu sterilisieren.Kneifen Sie dann die Haut zusammen und schneiden Sie die Haut entlang der Mittellinie des Tieres durch, um das Peritoneum freizulegen, schneiden Sie durch das Peritoneum, um die Bauchhöhle und das Myometrium freizulegen, und entfernen Sie beide Hörner des Myometriums und legen Sie es in kaltes PBS. Als nächstes verwenden Sie eine Pinzette Nummer fünf, um die Embryonen aus den Fruchtblasen in eine zweite sterile Petrischale mit kaltem PBS zu übertragen, wobei Sie darauf achten müssen, die Augen oder den Kopfbereich nicht zu berühren. Nachdem Sie den Kopf vom Rumpf abgetrennt haben, drehen Sie den Kopf direkt unter dem unteren Unterkiefer so, dass sich der Unterkiefer nun auf der Präparierplatte befindet.Verwenden Sie dann eine Pinzette, um den Kopf zu stabilisieren, und ein Skalpell, um etwa ein Viertel der dorsalen Seite des Gehirns zu entfernen, richten Sie den Kopf so aus, dass das Skalpell die Nase zwischen den Augen durchstechen kann, und machen Sie dann einen Schnitt durch die Mitte des Kopfes, so dass die Augen nun auf getrennten Hälften liegen. Greifen Sie dann mit der oberen und unteren Beleuchtung die Haut aus dem hinteren unteren Augenwinkel und ziehen Sie die Haut vorsichtig mit der Pinzette auf, um die Tränendrüse freizulegen, die als Knospe auf einem Kanal in einem dunkleren kondensierten Mesenchym erscheinen sollte. Präparieren Sie die Tränendrüse und das zugehörige Mesenchym vorsichtig vom umgebenden Gewebe weg und achten Sie darauf, dass Sie die Tränendrüse oder den zugehörigen Gang nicht greifen.Sobald die Tränendrüse vom umgebenden Gewebe befreit ist, greifen Sie vorsichtig das Epithel, das das Auge umgibt, an der Basis des Tränendrüsengangs und entfernen Sie die gesamte Drüse. Achten Sie darauf, dass das Meen-Chi, das das Epithel umgibt, erhalten bleibt, das als kondensiertes Gewebe zu beobachten ist, in das das Epithel eindringt. Kultivieren Sie dann vier bis fünf Tränendrüsen pro Filter in einer Petrischale, die Kulturmedium und die niedermolekularen Inhibitoren oder Wachstumsfaktoren von Interesse enthält, für 24 Stunden, um die Tränendrüsen einer postnatalen oder erwachsenen Maus zu gewinnen, und besprühen Sie zuerst die Augenpartie mit 70 % Ethanol.Legen Sie dann das Tier mit der Seitenseite nach oben unter ein Präpariermikroskop mit Beleuchtung von oben. Als nächstes machen Sie mit einer kleinen Dissektionschere einen Schnitt in die Epidermis seitlich von der Stelle, an der sich die Tränendrüse befinden sollte. Ziehen Sie dann die Epidermis in Richtung Ohr auf, um die Tränendrüse freizulegen, die bei der postnatalen und erwachsenen Maus von der Halsschlagader, dem Musculus und der Dermis begrenzt wird. Lösen Sie die Tränendrüse vorsichtig mit der Pinzette vom umgebenden Gewebe und dann, sobald die Tränendrüse aus dem umgebenden Gewebegriff gelöst ist. wo sich der Gang und das Epithel, das das Auge umgibt, verbinden und die Drüse vorsichtig entfernen.Zum Schluss fixieren Sie die Tränendrüsen 20 Minuten lang mit 4%para Formaldehyd, bevor Sie die Immunfärbung durchführen. Für die interessierenden Entwicklungsproteine entwickelt sich die Tränendrüse durch den Prozess der epithelial verzweigten Morphogenese. Diese Hellfeldbilder von embryonalen Tränendrüsen, die an den embryonalen Tagen 14, 15, 16, 17 und nach der Geburt präpariert wurden, veranschaulichen diesen Prozess.Beachten Sie, dass mit zunehmender Größe des Epithels die Menge an Mesenchym abnimmt, wie in diesen Bildern dargestellt. Tränendrüsen entwickeln sich unter vivo-Kulturbedingungen in ähnlicher Weise wie in den in vivo-Drüsenkulturen, und frisch präparierte Tränendrüsen können für die Immunfluoreszenzanalyse fixiert werden. In diesem Bild ist zum Beispiel die Färbung der Epithelnerven und Blutgefäße zu sehen.In einem Embryo kann eine 16-Tränendrüsen-Embryo aus einem Wildtyp-CD-1-Embryo bei postnatalen oder adulten PAC-Sechs-CRE-Mäusen in der Tränendrüse beobachtet werden. Obwohl diese Methode einen Einblick in die Entwicklung der Tränendrüse geben kann, kann sie auch auf andere Systeme angewendet werden, wie z. B. Funktionsstörungen der Tränendrüse aufgrund von Autoimmunerkrankungen oder Bestrahlungsbehandlungen. Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie Sie die murine Tränendrüse für die Ex-vivo-Kulturanalyse lokalisieren und isolieren können.

Research

Forschung

JoVE Journal

Biology

Biologie

Dieses Video beschreibt den chirurgischen Eingriff, um die beiden Teile: Palpebral und Orbital der oberen Tränendrüse von einem Kaninchen zu entfernen, um ein Modell für die Erkrankung des trockenen Auges zu erstellen. Dieses Kaninchenmodell eignet sich für Untersuchungen der Homöostase der Augenoberfläche, der Pathophysiologie und der Augentherapeutika.

Entfernung der oberen Tränendrüse: Eine chirurgische Technik zur Entfernung der palpebralen und orbitalen Teile der oberen Tränendrüse aus einem Kaninchenmodell

In diesem Video beschreiben wir einen chirurgischen Eingriff, um die große untere Tränendrüse aus einem Kaninchenmodell zu entfernen, um die Auswirkungen auf die Tränenproduktion beim Tier zu untersuchen.

Entfernung der unteren Tränendrüsen aus dem Kaninchenmodell: Ein chirurgischer Eingriff zur Entfernung der größeren unteren Tränendrüse aus der Augenhöhle des Kaninchens

Dieses Video beschreibt das Verfahren zur Induktion des trockenen Auges in einem Kaninchenmodell durch eine Injektion von Concanavalin A in den Orbitallappen der oberen Tränendrüse. Das entwickelte Modell ist nützlich, um die Wirksamkeit verschiedener Medikamente zur Behandlung von Erkrankungen des trockenen Auges zu untersuchen.

Durchführung einer Injektion in den Orbitallappen der oberen Tränendrüse: Eine Technik zur Induktion der Krankheit des trockenen Auges im Kaninchenmodell

Die Tränendrüse (LG) hat zwei Zelltypen, die α-glatte Muskelaktin (αSMA) ausdrücken: Myoepithelialzellen (MECs) und Pericytes. MECs sind ektodermaler Herkunft, der in vielen Drüsengeweben zu finden ist, während die Periicyten vaskuläre glatte Muskelzellen endodermalen Ursprungs sind. Dieses Protokoll isoliert MECs und Periicytes von murinen LGs.

Isolierung von myepithelialen Zellen aus der Urmorine, Lacrimal und Submandibular Drüsen

Dieser Artikel beschreibt die Entwicklung einer Methode, um akute oder chronische trockene Augenerkrankungen bei Kaninchen zu induzieren, indem Concanavalin A in alle Teile des Orbital-Tränendrüsensystems injiziert wird. Diese Methode, die den bereits gemeldeten überlegen ist, erzeugt ein reproduzierbares, stabiles Modell des trockenen Auges, das für die Untersuchung pharmakologischer Wirkstoffe geeignet ist.

A Rabbit Model of Aqueous-Deficient Dry Eye Disease Induced by Concanavalin A Injection into the Lacrimal Dlands: Application to Drug Efficacy Studies

Ein neuartiger Ansatz wird vorgestellt, um chronische trockene Augenerkrankungen bei Kaninchen zu induzieren, indem alle orbitalen Tränendrüsen operativ entfernt werden. Diese Methode, die sich von den zuvor berichteten unterscheidet, produziert ein stabiles, reproduzierbares Modell eines wässrigen mangelhaften trockenen Auges, das gut geeignet ist, Tränenphysiologie und Pathophysiologie und Augentherapeutika zu studieren.

Etablierung eines schweren Trockenauges modell mit vollständiger Dakryoadenektomie bei Kaninchen

Die dreidimensionale, serumfreie Kulturmethode für adulte Tränendrüsenstammzellen (LG) ist für die Induktion der Bildung und Differenzierung von LG-Organoiden in Acinare oder duktale Zellen gut etabliert.

Dreidimensionales, serumfreies Kultursystem für Tränendrüsenstammzellen

Dieses Protokoll beschreibt, wie Tränendrüsenorganoide, die aus primärem Maus- und menschlichem Gewebe gewonnen werden, hergestellt, erhalten, genetisch verändert, differenziert, funktionell charakterisiert und transplantiert werden.

Etablierung, Erhaltung, Differenzierung, genetische Manipulation und Transplantation von Tränendrüsenorganoiden von Mäusen und Menschen

Hier etablieren wir ein Rattenmodell der Tränendrüsendysfunktion, um eine Grundlage für die Untersuchung des wässrig-defizienten trockenen Auges zu schaffen.

Ein Rattenmodell für trockenes Auge mit durch Scopolamin induzierter Funktionsstörung der Tränendrüse

Hier präsentieren wir eine Methode zur Etablierung eines Mausmodells des wässrig-defizienten trockenen Auges durch Exzidierung der extraorbitalen und infraorbitalen Tränendrüsen und bewerten die Veränderungen der Augenoberfläche beim wässrigen Mangel-Trockenauge.

Etablierung eines Mausmodells für den Kammerwassermangel Trockenes Auge

Lernen Sie die ex-vivo-Kultur muriner Tränendrüsen zur Analyse von Entwicklungssignalwegen. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung von Proteinexpression und Morphogenese in der Augengesundheitsforschung.

Manipulation der Murine Lakrimal

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