Name: Mess Glutathion-induzierte Fütterung Antwort in Hydra (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-11-16T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 10 s
Description: Erfahren Sie, wie Sie die Fütterungsantwort von Hydra auf reduziertes Glutathion quantifizieren. Diese Methode misst den Abstand zwischen Tentakelspitze und Mundöffnung zuverlässig und reproduzierbar.

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Die Autoren danken K. P. Madhu, Nita Beliappa und den Mitarbeitern des Medienzentrums des Indian Institute of Science Education and Research, Pune für ihre Hilfe bei der Videoproduktion. Die Arbeit wurde durch eine Finanzierung im Rahmen des Centre of Excellence-Programms des Department of Biotechnology, Government of India an SG, und ein Postdoc-Stipendium des Department of Science and Technology, Government of India, an RK unterstützt.

1. Hydra, Kultur und Messung der Fütterung Antwort <ol><li> Aufrechtzuerhalten Hydra Polypen in Kultur durch tägliche Fütterung mit Artemia und halten sie in einem Medium (1 mM Tris-HCl-Puffer, pH 7,6, 1 mM NaCl, 1 mM CaCl 2, 0,1 mM KCl und 0,1 mM MgSO 4) in ein enthaltenes Glasschale bei 18 ° C unter 12 Stunden Licht-12 h Dunkel-Zyklen wie zuvor 12 beschrieben. </li><li> Zur Messung der Fütterung Antwort übertragen Älterer Hydra Polypen mit 5 bis 6 Tentakeln zu einem einzelnen Well einer 24-Well-Platte. Entfernen Sie die Restmittel aus dem Brunnen durch Kippen und dann sofort hinzuzufügen 500 ml frisches Medium. </li><li> Bereiten 9 uM Glutathion-Lösung in Hydra Medium. Da die Glutathion-Lösung ist anfällig für Oxidation, immer frisch zubereitet Glutathion-Lösung für jedes Experiment. </li><li> Übertragen Sie die Platte an der Imaging-Plattform eines Mikroskops mit Bestimmungen für die Bildaufzeichnung. Verwenden Sie einen dunklen Hintergrund, so dass das Verhalten of Hydra Polypen deutlich gegen den kontrastierenden Hintergrund abgebildet werden. </li><li> Der Raum für die Beobachtung und Abbildung des Verhaltens von Hydra frei von Lichtern von schwankenden Intensitäten, Luftströmungen und Lärm gewöhnt. Solche Störungen könnten auch dazu führen, die Hydra Polypen zu einer Kontraktion der Tentakeln zeigen - auch in Abwesenheit von Glutathion. </li><li> Lassen Sie die Polypen zu 5 min zu entspannen. </li><li> Sicherzustellen, dass der Polyp ist entlang der zentralen Region der Vertiefung, so daß das Verhalten deutlich abgebildet werden entfernt. Wenn der Polyp ist am Rand des Brunnens, bringen Sie es in die Mitte durch Spülen des Mediums mit einer Pipette und wieder erlauben zu entspannen. </li><li> Aufnehmen eines Bildes von Hydra im entspannten Zustand. Dies wird die Null-Zeitpunkt Beobachtung stehen. </li><li> Hinzuzufügen schnell 9 uM Glutathion-Lösung bis zu einer Endkonzentration von 3 &amp; mgr; M in dem Bohrloch zu erreichen. Je nach dem Zweck des Experiments und der Reaktion von Hydra gezeigt, testen eine Reihe von verschiedenen Konzentrationen von Glutathion und ChooSE Die geeignete Konzentration erforderlich. </li><li> Starten Sie den Timer unmittelbar nach dem Hinzufügen Glutathion-Lösung und die Aufnahmen nach jedem 15 bis 30 sec für 4-5 min. Die Vergrößerungseinstellungen während der Zeitraffer-Bildgebung nicht verändern. </li><li> Hinzufügen des Glutathion-Lösung schonend und gleichförmige Strömung, so dass die Position des Tieres in der gut wäre minimal in das Sichtfeld des Mikroskops gestört werden. Allerdings, wenn der Polyp bewegt ausgiebig nach Zugabe Glutathion-Lösung, bewegen Sie die Platte sehr vorsichtig, um die Polypen in das Blickfeld für die Bilderfassung zu bringen. </li><li> Im Kontrollexperiment verwenden Medium ohne Glutathion und gleichzeitig alle anderen Parameter gleich. </li><li> Achten Sie darauf, alle der oben genannten experimentellen Schritte in der ersten Hälfte des Tages durchzuführen - vor 13.00 Uhr, um die möglichen Auswirkungen der zirkadianen Rhythmus auf das Ausmaß der Fütterung Reaktion zu vermeiden. </li><li> Öffnen Sie jedes der aufgenommenen Bilder unter Verwendung der GNU Image Manipulation Program (GIMP). </li> Verwenden Sie die "Messen" Werkzeug von Menü&gt; Extras&gt; Messen Sie den Abstand zwischen apikalen Ende von jedem der Tentakeln und Hypostom bestimmen. Wenn die Mündungsöffnung in einem der Bilder beobachtet, den Abstand zwischen der Mitte des geöffneten Mund und dem apikalen Ende der Tentakel. Beziehen sich auf diese Distanz als die Tentakel Verbreitung. <li> Berechnen Sie die durchschnittliche Tentakel Spread für jeden Polypen vor und nach Glutathion Exposition. Berechnen des Verhältnisses der durchschnittlichen Tentakel Ausbreitung bei Null-Zeitpunkt an, dass an jedem der folgenden Zeitpunkte. Dieses Verhältnis wird relativ Tentakel Spread bezeichnet werden. </li><li> Wiederholungsmessungen für mindestens 20 Polypen. </li></ol><img alt="Gleichung 1" fo:content-width="3.5in" src="/files/ftp_upload/52178/52178eq1.jpg" width="400"> <img alt="Gleichung 2" fo:content-width="4in" src="/files/ftp_upload/52178/52178eq2.jpg" width="450"> 2. Methodenvalidierung mit Hilfe derStarvation Modell <ol><li> Für Hunger, übertragen einige Hydra Polypen zu einer separaten Glasschale und sie nicht für 5 Tage zu ernähren. Führen Sie das Kontrollgruppe von wenigen Polypen täglich mit Artemia in einem ähnlich großen Schüssel. Ändern Sie das Medium aus experimentellen Schalen täglich Pilzwachstum im Medium zu vermeiden. </li><li> Am Tag des Experiments, füttern die Kontrollgruppe von Hydra mit Artemia für 1 Stunde und verwenden Sie diese Hydra für die nachfolgenden Experimente nach dem Entfernen aller uneaten und toten Artemia aus dem Medium. </li><li> Messung der Vorschub Reaktion des Hydra ausgehungert im Vergleich mit der Kontrollgruppe Hydra aus der zuvor in Schritt 1 beschrieben, um jegliche Verzerrungen zu vermeiden Verfahren aufgrund Beobachtungszeit, abwechselnd die Messungen jedes der ausgehungert und steuern Hydra Polypen. </li></ol>

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</ol>

Die Autoren erklären, dass keine konkurrierenden finanziellen Interessen bestehen.

Fressverhalten in Hydra stellt eines der Vorfahren chemosensory Systeme der Metazoen. Obwohl die Anwesenheit von GSH in der nach nematocyst gestützte Beutefang freigegeben Krustentier Flüssigkeit wurde schon vor langer Zeit erkannt 1, haben weder die GSHR Proteine ​​noch die mutmaßlichen kodierenden Gens / s von Hydra bisher geprägt. Einige Versuche wurden unternommen, um zu charakterisieren GSH-bindende Proteine ​​in Hydra 8, 14, 15. Jedoch bleibt die Identität dieser putativen Rezeptorproteine ​​...

Hydra ist der primitivste Organismus, der ein Nervensystem und eine Chemoempfindung zum Nachweis von reduziertem Glutathion (GSH) zum Fangen der Beute besitzt1. Er ernährt sich von einer Vielzahl von Tieren wie Fadenwürmern, Krebstieren, Insektenlarven, Kaulquappen und frisch geschlüpften Fischen1. Die Bewegung dieser Beuteorganismen bewirkt eine mechanosensorische Entladung der Nesselkapseln, der Nematozysten von der Hydra, die in die Beute eingebracht werden2. GSH, das in der von der verletzten Beute freigesetzten Flüssigkeit vorhanden ist, aktiviert anschließend die Fressreaktion in der Hydra, die das Einrollen der Tentakel umfasst, um die Beute zum Maul zu bringen, das Öffnen des Mauls und das anschließende Verschlingen der Beute. Es wurde gezeigt, dass mehrere Moleküle wie Dopamin3, Glutamat4, GABA, Glycin5, NMDA-Rezeptoren6 und Allatotropin7 an der Fressreaktion in Hydra beteiligt sind. Es wurde auch gezeigt, dass die durch GSH induzierte chemosensorische Reaktion durch den Fressstatus des Tieres moduliert wird, so dass ausgehungerte Hydra eine verstärkte Fressreaktion zeigten1. Eine solche Erhöhung der GSH-Sensitivität ist biologisch relevant, da Hydra unter Hunger ihre Beute mit höherer Sensitivität finden müssen. 
Obwohl die durch GSH induzierte Fressreaktion unter dem Mikroskop deutlich beobachtet werden kann, sind die Methoden, die typischerweise zur Messung der Beobachtungen der Fressreaktion verwendet werden, nicht quantitativ. In den meisten Fällen wurde die Zeit, in der das Maul der Hydra offen bleibt, als Maß für die Fressreaktion genommen8,9; In einem anderen Fall basierte die Quantifizierung auf der Anzahl der Hydra in einer Population, die die Fressreaktion10 zeigte. Die Beobachtung der Mundöffnungszeit der Hydra-Polypen ist jedoch umständlich und unterliegt Variationen, die durch unkontrollierbare Parameter wie die Richtung der Mundausrichtung während der Beobachtungen hervorgerufen werden. Da die Fütterungsreaktion ein quantitativer Parameter ist, unterliegen populationsbasierte Ansätze Variationen/Fehlern, die durch die Meinung oder Beobachtungsverzerrung des einzelnen Beobachters verursacht werden. Um diese Probleme zu umgehen, haben wir eine Methode zur relativen Quantifizierung der Fressreaktion bei Hydra (Hydra vulgaris, Ind-Pune11) entwickelt, die auf dem Abstand des apikalen Endes des Tentakels von der Mündung des Hydra-Polypen basiert.

<table><tbody><tr><td>Gekühlter Inkubator</td><td>Panasonic</td><td>MIR-254-PE</td><td></td></tr><tr><td>Mikroskop</td><td>Leica</td><td>S8AP0&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Kamera für das Mikroskop</td><td>Leica</td><td>EC3</td><td></td></tr><tr><td>Reduziertes Glutathion</td><td>Sigma</td><td>G4251</td><td>Gelagert bei 4 °C. Bringen Sie die Flasche vor dem Öffnen auf Raumtemperatur, um Oxidation zu vermeiden</td></tr><tr><td>Bildbearbeitungsprogramm</td><td>GIMP</td><td>Version 2.8</td><td></td></tr></tbody></table>

mess glutathion-induzierte fütterung antwort in hydra

Measuring Glutathione-induced Feeding Response in Hydra

Hydra gehört zu den primitivsten Organismen, die ein Nervensystem und eine Chemoempfindung zum Nachweis von reduziertem Glutathion (GSH) zum Fangen der Beute besitzen. Die Bewegung der Beuteorganismen bewirkt eine mechanosensorische Entladung der Nesselzellen, der Nematozysten von der Hydra, die in die Beute eingebracht werden. Die Fressreaktion bei Hydra, die das Einrollen der Tentakel umfasst, um die Beute zum Maul zu bringen, das Öffnen des Mauls und das anschließende Verschlingen der Beute, wird durch GSH ausgelöst, das in der von der verletzten Beute freigesetzten Flüssigkeit vorhanden ist. Um den bisher unbekannten molekularen Mechanismus der Fressreaktion bei Hydra identifizieren zu können, ist es notwendig, einen Assay zur Messung der Fressreaktion zu etablieren. Hier beschreiben wir eine einfache Methode zur Quantifizierung der Fressreaktion, bei der der Abstand zwischen dem apikalen Ende des Tentakels und der Mündung der Hydra gemessen und das Verhältnis dieses Abstands vor und nach der Zugabe von GSH bestimmt wird. Es wurde festgestellt, dass das Verhältnis, das als relative Tentakelspreizung bezeichnet wird, ein Maß für die Fressreaktion liefert. Dieser Assay wurde anhand eines Hungermodells validiert, in dem ausgehungerte Hydra im Vergleich zu täglich gefütterten Hydra eine verbesserte Fressreaktion zeigten.

Glutathion bewirkt Hydra, um ein Kräuseln der Tentakeln zur Mündung zum Zwecke der engulfing die Beute zeigen. Solche Curling von Tentakeln bringt apikalen Enden der Tentakeln näher am Hypostom. Dies resultiert in der Reduktion der Tentakel zu verbreiten, oder der lineare Abstand zwischen apikalen Ende des Tentakel und Hypostom (Abbildung 1). Die relative Tentakel Ausbreitung, oder das Verhältnis der durchschnittlichen Tentakel vor verbreitet und nach Zugabe von Glutathion, gemittelt über mehrere Polype...

Hier beschreiben wir einen einfachen Assay zur Quantifizierung der Fressreaktion in Hydra, die durch die reduzierte Form von Glutathion induziert wird. Dieser Assay beruht auf der Messung des Abstands zwischen dem apikalen Ende des Tentakels und dem Mund der Hydra.

Mess Glutathion-induzierte Fütterung Antwort in Hydra

Hydra is among the most primitive organisms possessing a nervous system and chemosensation for detecting reduced glutathione (GSH) for capturing the prey. ...

In diesem Video beschreiben wir eine Methode zur Messung des Fressverhaltens in Hydra. Als Reaktion auf die reduzierte Form von Glutathion ernährt sich Hydra von einer Vielzahl von Tieren, Nematoden, Krusten und frisch geschlüpften Fischen. Auf der äußeren Schicht dieses zweizelligen Tieres befinden sich spezialisierte Zellen, die Nematozysten genannt werden.Nematozysten haben Auslöser, die, wenn sie durch die Bewegung der Beute in der umgebenden Flüssigkeit aktiviert werden, den Austritt der Fadenfäden bewirken. Die Stechenden Fäden werden in die Beute eingeführt. Die verletzte Beute setzt Schwemmglukose frei.Ionenhydro hat eine Chemo-Empfindung zum Nachweis des Glutathions in der umgebenden Flüssigkeit. Dies löst ein Fressverhalten aus, an dem das Nervensystem beteiligt ist. Das Fressverhalten bei Hydra beinhaltet das Einrollen der Tentakel, um die Beute zu einem Hyperskop zu bringen, das Öffnen des Mauls und das Verschlingen der Beute.Tatsächlich verursacht das Hinzufügen von Überfluss in der Umgebung die Fressreaktion bei Hydra, selbst wenn keine Beute vorhanden ist. Um das Zusammenspiel von Chemoempfindung und Nervensystem zu verstehen, müssen wir das Verhalten quantisieren und genaue und zuverlässige Messungen erstellen. In einigen früheren Berichten wird die Zeit, für die der Mund hydro geöffnet bleibt, als Maß für die Fressreaktion genommen, aber die Beobachtung der Dauer der Mundöffnung bei den Hydropolypen ist mühsam und unterliegt Variationen, die durch unkontrollierbare Parameter wie die Ausrichtung des Mundes aufgrund von Beobachtungen induziert werden.Eine andere Methode zur Quantifizierung des Verhaltens basiert auf der Anzahl der Hydren in einer Population, die die Fressreaktion zeigt. Da es sich jedoch bei der Fütterungsreaktion um einen individuellen quantitativen Parameter handelt, handelt es sich bei den populationsbasierten Ansätzen um subjektive Variationen, die durch die Meinung des einzelnen Beobachters verursacht werden. Der Hauptvorteil der alternativen Methode, die wir hier beschreiben, besteht darin, dass sie sehr einfach auszuführen und sehr reproduzierbar ist.Halten Sie die Hydra bei 18 Grad Celsius unter 12-Stunden-Licht. 12-Stunden-Dunkelzyklen in einem Medium in einer Glasschüssel enthalten und füttern Sie sie täglich mit Ememie, um die Fressreaktion zu messen. Übertragen Sie einen reifen Hydropolypen in eine Vertiefung einer 24-Well-Platte. Entfernen Sie das restliche Medium mit einem Drehpunkt aus der Vertiefung.Dies wird erleichtert, indem Sie die Platte kippen, das überschüssige Medium entsorgen und dann sofort 500 Mikroliter frisches Medium hinzufügen Zubereitung von Glutathionlösung. Eine neunmikromolare Lösung von Glutathion wird unter Verwendung von Hydromedium hergestellt. Denken Sie daran, dass Glutathionlösung anfällig für Oxidation ist, verwenden Sie also immer frisch zubereitete Glutathionlösung.Übertragen Sie die Platte für jedes Experiment auf die Bildgebungsplattform eines Mikroskops. Bei Vorkehrungen für die Bildaufzeichnung wird ein dunkler Hintergrund verwendet, so dass das Verhalten des Hydropolypen vor dem kontrastierenden Hintergrund deutlich dargestellt werden kann. Stellen Sie sicher, dass sich der Polyp entlang des zentralen Teils der Vertiefung befindet, die ein Bild der Hydra im entspannten Zustand aufgenommen hat.Dies wird eine Nullpunktbeobachtung sein. Fügen Sie schnell neun mikromolare Glutathionlösung hinzu, um eine Endkonzentration von drei Mikromolaren in der Vertiefung zu erreichen. Starten Sie den Timer sofort nach der Zugabe von Glutathionlösung und nehmen Sie Bilder alle 15 oder 30 Sekunden für vier bis fünf Minuten auf, ohne die Vergrößerungseinstellungen zu ändern.Für Messungen verwenden wir gim Version zwei, gim. Ein GNU-Bildbearbeitungsprogramm ist eine Software, die kostenlos aus dem Internet heruntergeladen werden kann. Öffnen Sie jedes der aufgenommenen Bilder in gim.Dieses Programm verfügt über ein Messwerkzeug, das über die Menüwerkzeuge verfügbar ist. Messen Sie den Abstand zwischen Hypers, Stoma und apikalem Ende jedes Tentakels, der mit diesem Tool gemessen werden kann. Diese Distanz wird als Tentakelspreizung bezeichnet.Berechnen Sie die durchschnittliche Tentakelausbreitung für jeden Polypen vor und nach Glutathion. Berechnen Sie das Verhältnis der durchschnittlichen Tentakelspreizung zum Zeitpunkt Null. Zeigen Sie zu jedem der folgenden Zeitpunkte darauf.Nennen wir das relative Tentakelspreizung. Führen Sie solche Messungen für mindestens 20 Polypen für den Hunger durch. Setzen Sie ein paar Hydropolypen in eine separate Glasschüssel um und füttern Sie sie fünf Tage lang nicht.Füttern Sie die Kontrollpolypen am Tag des Experiments täglich mit Artia. Füttern Sie die Kontrollgruppe von Hydra mit Artia für ein R und verwenden Sie diese Hydra für die nachfolgenden Experimente. Messen Sie die Fressreaktion der ausgehungerten Hydra im Vergleich zu der Hydra aus der Kontrollgruppe mit der zuvor in diesem Video beschriebenen Methode, um eine Verzerrung aufgrund der Zeit des Wechsels der Messungen jedes der ausgehungerten und kontrollierten Hydropolypen zu vermeiden.Glutathion bewirkt, dass sich die Tentakel der Hydra in Richtung Mund kräuseln. Ein solches Kräuseln bringt die apikalen Enden der Tentakel näher an den Hyposturm. Dies führt zu einer Verringerung des linearen Abstands zwischen den apikalen Enden des Tentakels und dem Hypersturm oder der Tentakelausbreitung.Die relative Tentakelspreizung nach Zugabe von Medium. Mangelndes Glutathion reduziert sich nur vorübergehend. In etwa einer Minute springt es wieder auf eins zurück.Es ist bekannt, dass Hunger zu einer Verbesserung des durch Glutathion induzierten Fressverhaltens führt. Die Tentakelspreizung eine Minute nach der Zugabe von Glutathion war in der Stabgruppe im Vergleich zur gesättigten Gruppe signifikant niedriger. Alle Tiere nutzen die Chemo-Sensation zum Aufspüren von Nahrung.Hydra verwendet ein chemisches Signal in Form von Glutathion, das von der verletzten Beute freigesetzt wird, hat ein einfaches Nervensystem ohne gehirnähnliche Struktur, so dass der molekulare Mechanismus des Chemo-Empfindens und seine vom Fressstatus abhängige Modulation wahrscheinlich auch einfach sind. Das Verständnis dieses Mechanismus kann Aufschluss über die Evolution einer Regulation der Fütterung bei höheren Tieren geben. Weder der Rezeptor, der Glutathion binden kann, noch andere Bestandteile der nachgeschalteten Signalkaskade sind in Haida bisher jedoch bekannt.Pharmakologische Inhibitoren gängiger Chemosensorik-Signalwege und der Einsatz fortschrittlicher molekularbiologischer Techniken zur Veränderung der Expression solcher Signalproteine und Glutathionrezeptoren können sich als leistungsfähige Werkzeuge für das Verständnis des molekularen Mechanismus der Nahrungsaufnahme erweisen. In Hydra ist jedoch ein zuverlässiges Maß für das veränderte Fressverhalten erforderlich, um das Ausmaß der durch solche experimentelle Untersuchungen verursachten Modifikationen zu verstehen. Hier haben wir eine Methode vorgestellt, die nicht nur zuverlässig, sondern auch einfach durchzuführen und in hohem Maße reproduzierbar ist.

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Dieser Artikel stellt eine Methode zur Untersuchung des Schleimatrezeptorhandels (GluR) in dissoziierten primären Hippocampuskulturen vor. Mit einem Antikörper-Fütterungsansatz zur Kennzeichnung endogenes oder überexprimierter Rezeptoren in Kombination mit pharmakologischen Ansätzen ermöglicht diese Methode die Identifizierung molekularer Mechanismen zur Regulierung der GluR-Oberflächenexpression durch Modulation Internalisierungs- oder Recyclingprozesse.

Ein Antikörper-Fütterungsansatz zur Untersuchung des Schleimatrezeptorhandels in dissoziierten primären Hippocampuskulturen

Beschrieben hier ist ein Protokoll, das die kolorimetrische Quantifizierung der Menge der Nahrung ermöglicht, die innerhalb eines definierten Zeitintervalls von Drosophila melanogaster Larven gegessen wird, die Diäten unterschiedlicher Makronährstoffqualität ausgesetzt sind. Diese Assays werden im Rahmen eines neuronalen thermogenetischen Bildschirms durchgeführt.

Quantifizierung der Zufuhr von Makronährstoffen in einem thermogenetischen neuronalen Bildschirm mit Drosophila Larven

Dieser Artikel beschreibt ein Protokoll zur Bestimmung von Unterschieden im basalen Redoxzustand und in den Redoxreaktionen auf akute Störungen in primären Hippocampus- und kortikalen Neuronen unter Verwendung der konfokalen Live-Mikroskopie. Das Protokoll kann mit minimalen Modifikationen auf andere Zelltypen und Mikroskope angewendet werden.

Live-Bildgebung des mitochondrialen Glutathion-Redox-Zustands in primären Neuronen unter Verwendung eines ratiometrischen Indikators

Die Quantifizierung sowohl oxidierter als auch reduzierter Formen von Glutathion (GSSG bzw. GSH) wurde durch die Verwendung von Ortho-Phthalaldehyd (OPA) erreicht. OPA wird stark fluoreszierend, sobald es an GSH konjugiert wird, ist aber nicht in der Lage, GSSG zu konjugieren, bis es reduziert wird. Hier beschreiben wir einen multiparametrischen Assay, um beides mittels Proteinquantifizierung zur Normalisierung zu quantifizieren.

Schnelle Quantifizierung von oxidierten und reduzierten Formen von Glutathion unter Verwendung von ortho-Phthalaldehyd in kultivierten Säugetierzellen in vitro

Dieses Protokoll beschreibt einen Assay zur Quantifizierung der Fütterungsrate von Caenorhabditis elegans , der auf der Messung der Clearance von Bakterien in Flüssigkulturen basiert.

Quantifizierung der Nahrungsaufnahme bei Caenorhabditis elegans durch Messung der bakteriellen Clearance

Mit Zeitrafferbildgebung kann der vollständige Regenerationsprozess von Hydra-Sphäroiden verfolgt werden. Dieses Protokoll beschreibt die Erzeugung von Hydra-Sphäroiden , diskutiert verschiedene Montagestrategien und beschreibt, wie Langzeit-Live-Bildgebung mit rotierender Scheibenkonfokalmikroskopie sowie Lichtblatt-Fluoreszenzmikroskopie durchgeführt werden kann.

Vorbereitung und Live-Imaging regenerierender Hydra-Sphäroide

Erfahren Sie, wie Sie die Fütterungsantwort von Hydra auf reduziertes Glutathion quantifizieren. Diese Methode misst den Abstand zwischen Tentakelspitze und Mundöffnung zuverlässig und reproduzierbar.

Mess Glutathion-induzierte Fütterung Antwort in Hydra

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