Name: Glutamat und Hypoxie als Stress-Modell für die isolierten perfundierten Wirbel Retina (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-03-22T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 48 s
Description: Erfahren Sie ein standardisiertes Stressmodell für die isolierte perfundierte Rinderretina zur Prüfung neuroprotektiver Substanzen. Diese Methode ermöglicht präklinische Tests mittels Elektroretinographie unter Glutamat- und Hypoxiebedingungen.

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Diese Arbeit ist meiner geliebten Frau Maren und unserem kleinen Karl gewidmet.

1. Vorbereitung der Rinderaugen <ol><li> Erhalten Rinderaugen direkt nach der Schlachtung des Tieres. </li><li> Transportieren die geschützten Augen &quot;sichel Lösung&quot; ein spezielles Medium, enthaltend 120 mM NaCl, 2 mM KCl, 0,1 mM MgCl 2, 0,15 mM CaCl 2, 1,5 mM NaH 2 PO 4, 13,5 mM Na 2 HPO 4 und 5 mM Glucose bei RT. </li><li> Führen Sie die Vorbereitung der Netzhaut unter dunklen Bedingungen angepasst mit einem dim rotes Licht. </li><li> Entfernen Sie den vorderen Teil des Auges. Führen Sie einen äquatorialen Schnitt ca. 4 mm hinter dem Limbus. Hornhaut, Iris, Ziliarkörper und Linse Danach entfernen Sie in einem Stück. Halten Sie die Netzhaut in Sickel-Lösung. </li><li> Mechanisch lösen Sie die Glaskörper-Anhänge an den Netzhautoberfläche und entfernen Sie die Glaskörper aus der offenen Augenmuschel. </li><li> Danach teilen das Auge in vier Quadranten und Punch-Out runden Flächen von ca. 7 mm Durchmesser mit einem Hohlbohrer. </li><li> Trennen die Netzhaut vorsichtigaus dem Pigmentepithel und auf ein Aufnahmegerät in einem Karton vor Licht geschützt. Die Aufzeichnungsvorrichtung besteht aus einem Kunststoff mit einer Maschen Betreuers in der Mitte; legen Sie die Netzhaut auf dem Netz und dann fix mit einem Kunststoffring direkt auf den Elektroden. HINWEIS: Die Kunststoff Maintainer hat zwei Kanäle, um eine konstante Strömung des Mediums zu ermöglichen. </li></ol> 2. Aufnahme der Elektroretinogramm (ERG) <ol><li> Um das Elektroretinogramm aufzunehmen, verwenden zwei Silber / Silberchlorid-Elektroden auf jeder Seite der Netzhaut und versorgen die Retina bei einer konstanten Geschwindigkeit von ca. Perfusion 1 ml / min, und konstanter Temperatur von 37 ° C. Verwenden Sie die &quot;Sickel-Lösung&quot; mit Sauerstoff gesättigt. </li><li> Vor Beginn der Messung, dunkel Anpassung der Netzhaut (Schutz vor Licht bei allen Messungen) und verwenden Sie Stimulus Abständen von fünf Minuten. Verwenden Sie eine 1 Hz einzelne weiße Xenon-Blitz für die Stimulation mit einer Intensität von 6,3 mlx an der Netzhautoberfläche gesetzt. </li&gt; <li> Verwenden kalibrierten Neutralfilter und einen Lichtreiz von 10 us durch einen Timer, um optimale Antworten haben gesteuert. </li><li> Zur Messung und Verarbeitung der Daten, filtern die ERG und verstärken sie (100 Hz Hochpassfilter, 50 Hz Notch-Filter, 100.000 x Verstärkung) mit einem Gras RPS312RM Verstärker. Versuchen herausfiltern möglich Störfrequenzen, die das Signal stören können. Um die Daten zu verarbeiten, verwenden Sie einen Analog-zu-Digital-Datenerfassungskarte auf einem Desktop-Computer (PC-kompatibel). </li><li> Nach der Dunkeladaptation Zeitraum konstant Perfusion messen die Amplituden des elektrischen Signals, bis stabile b-Wellenamplituden erfasst werden. HINWEIS: Die Amplituden gilt als stabil, wenn fünf Einzelmessungen erreicht einen Mittelwert abweichen und weniger als 10%. Ein gutes Beispiel für Einzelmessungen wird in Abbildung 1 wiedergegeben. </li><li> Um den Test zu starten, wechseln reinem Sauerstoff entweder durch reinen Stickstoff (Anzahl der Einzelversuche, n = 5), um eine Hypoxie testenoder 250 &amp; mgr; m Glutamat (n = 5). </li><li> Notieren Sie die elektrischen Antworten alle 5 min für 45 min. </li><li> Nach der Testphase durchströmen die Netzhaut mit Standardmedium mit Sauerstoff gesättigt 75 Minuten und Blick auf die Veränderungen der b-Wellenamplitude. Dies ist der Auswaschphase. Messen des b-Wellenamplitude von der Wanne der a-Welle auf die Spitze der b-Welle. </li><li> Um die Wirkung von Hypoxie oder Glutamat an der Photorezeptor-Potentials unter skotopischen Bedingungen zu untersuchen, unterdrücken die b-Welle, die durch Zugabe von 1 mM in die Nährlösung. </li><li> Nach der Aufnahme einer stabilen Photorezeptor-Potentials für 30 Minuten, führt das Verfahren nach wie vor Freilegung der Netzhaut 45 Minuten zu den verschiedenen Spüllösungen mit 1 mM Aspartat. Verwenden Sie den gleichen Zeitraum Auswaschen (Schritt 2.8), wie oben erwähnt. </li></ol> 3. Datenanalyse <ol><li> Um die Daten statistisch auszuwerten, sorgen für eine Normalverteilung für alle Daten, beispielsweise unter Verwendung des Kolmogorov-SmirnovTest 15. </li><li> Berechnen Sie die Reduzierung der a- und b-Wellenamplituden in Prozent nach der Belichtungsphase im Vergleich zur letzten Messung vor der Ausstellung. Vergleichen Sie die Reduzierung der ERG-Amplituden nach 45 Minuten - am Ende der Ausstellung Zeitraum - zum ERG gemessen vor der Anwendung. </li><li> Vergleichen der A- und B-Welle am Ende der Auswaschphase zur entsprechenden Amplitude vor Exposition, um eine mögliche Wiederherstellung zu prüfen. </li><li> Für die statistische Analyse, die Software JMP Statistik-Software SPSS oder Software. Berechnen von Daten im gesamten als Mittelwert ± Standardabweichung. Schätzwert von der entsprechenden statistischen Grundlage. HINWEIS: Diese Tests können unterschiedlich sein, je nach Versuchsumfang. Bei dieser Einstellung verwendet der Student-gepaarten t-Test. </li></ol>

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</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

In dieser Studie wurde eine signifikante Auswirkung auf die b-Wellenamplitude nach 45 min von Hypoxie gefunden. Diese Reduktion war nach der Auswaschphase signifikant. Eine ähnliche Wirkung auf die Photorezeptor-Potentials beobachtet werden. Die Ergebnisse werden von anderen veröffentlichten Daten 16 und geben Sie uns die Gelegenheit, mögliche neuroprotektive Effekte nach Hypoxie Studium unterstützt. Nach 45 min Exposition von 250 &amp; mgr; M Glutamat...

Neuroprotektion ist ein starker Forschungsgebiet in der ophthalmologischen Forschung in den letzten Jahrzehnten. Die Retina ist ein hochempfindliches neuronalen Netzwerk, hängt signifikant von Sauerstoffversorgung und wird stark durch den Stoffwechsel des ihn umgebenden Zellen beeinflusst. Die wichtigsten Augenkrankheiten zu Schädigungen von Nervenzellen im Zusammenhang stehen retinalen Gefäßverschlüssen, Glaukom und Netzhautablösung. Arterienverschluss, als Beispiel für die Netzhautgefäßverschluss führt zu einem plötzlichen Verlust des Sehvermögens durch Hypoxie des inneren Netzhaut ein. Es wird häufig mit allgemein vaskulären Pathologien 2 und führt zu einer anhaltenden Sehverlust 1 zugeordnet sind, wobei nur 8% der Patienten nach der Sehschärfe signifikant 1. Obwohl arteriellen Fibrinolyse wurde als Behandlungsoption vorgeschlagen worden, könnte der Nutzen nicht in einer randomisierten klinischen Studie 3 angezeigt. Glaukom und Netzhautablösungbeide haben eine Erhöhung der Glutamatkonzentration 4-6. Glutamat unter physiologischen Bedingungen als exzitatorische Transmitter im gesamten Zentralnervensystem und der inneren Retina 7,8 angetroffen. Erhöhte Glutamatspiegel nicht nur bei Glaukom und Netzhautablösung 5,6, sondern auch in proliferative diabetische Retinopathie 9 gefunden. Eine Erhöhung Glutamat führt möglicherweise zu Exzitotoxizität und daher Nervenzellschädigung 10. In den meisten Fällen von Netzhautablösung und in einigen Fällen der proliferativen diabetischen Retinopathie Operation auf der Netzhaut (Vitrektomie) notwendig. Während der Vitrektomie mechanische Manipulation, helles Licht von der optischen Faser oder durch hohe Durchflussraten von Spüllösungen bei langen Operationen ausgeübten Scherspannung üben eine zusätzliche Belastung auf der Netzhaut 11,12. Alle genannten Erkrankungen ist gemeinsam, dass die Pathologie zur retin lokalisiertenein allein und stellen die ophthalmologische Gemeinschaft vor der Herausforderung, Wege, um die Netzhaut als neurosensorische System zu schützen. Das Elektroretinogramm (ERG) ist das Standardverfahren für die Bewertung der in vivo-Photorezeptor-Funktion (a-Welle), und die Funktion der inneren Retina (b-Welle). Die ERG wird durch Silber-Elektroden in die Hornhaut eingeführt, gemessen und die Augen sind durch eine zunehmende Licht stimuliert, um Defekte in Stäbchen oder Zapfen oder in der inneren Netzhaut erkennen. Unterschiedliche Fehler in der Netzhaut kann durch Veränderungen in der Amplitude (der Stärke der Antwort) oder die Latenz (die Zeit bis zur Antwort-Intervall) des ERG festgestellt werden. Verschiedene ERG-Protokoll und Messverfahren (Muster-ERG, multifokalen ERG-oder Hellfeld-ERG) ermöglichen eine weitere Differenzierung von Mängeln. Die Technik des isolierten Netzhaut wurde vor kurzem eingeführt wurde, wodurch es möglich wird, um Effekte auf die Netzhaut ohne Interferenzen von zB eine Studie Tieres zu evaluierenAllgemeinreaktionen 13,14. Es war das Ziel dieser Studie zu bewerten, und die Einführung einer definierten und standardisierten Spannungsmodell für Hypoxie und Glutamat Belastung des Superfusion isoliert Retina. So hoffen wir, die Grundlagen für künftige Studien über neuroprotektive Effekte von bestimmten Agenten oder intraokularen Spüllösungen legen.

<table><tbody><tr><td>120 mM NaCl&nbsp;</td><td>Merck Pharma, Deutschland</td><td>1.064.041.000</td><td></td></tr><tr><td>2 Mio. KCl,&nbsp; &nbsp;</td><td>Merck Pharma, Deutschland</td><td>1.050.010.250</td><td></td></tr><tr><td>0,1 mM MgCl2,&nbsp;</td><td>Merck Pharma, Deutschland</td><td>58.330.250</td><td></td></tr><tr><td>0,15 mM CaCl2</td><td>Merck Pharma, Deutschland</td><td>111 TA106282</td><td></td></tr><tr><td>1,5 mM NaH2PO4/13,5 mM Na2HPO4&nbsp; &nbsp;</td><td>Merck Pharma, Deutschland</td><td>1.065.860.500</td><td></td></tr><tr><td>5 mM Glukose</td><td>Merck Pharma, Deutschland</td><td>40.741.000</td><td></td></tr></tbody></table>

glutamat und hypoxie als stress-modell für die isolierten perfundierten wirbel retina

Glutamate and Hypoxia as a Stress Model for the Isolated Perfused Vertebrate Retina

Neuroprotektion ist in der ophthalmologischen Forschung in den letzten Jahrzehnten eine starke Untersuchungsfeld und wirkt sich Krankheiten wie Glaukom, Netzhautgefäßverschluss, Netzhautablösung, und diabetische Retinopathie. Es war das Ziel dieser Studie, einen standardisierten Stress-Modell für zukünftige therapeutische präklinischen Tests einzuführen. Rindernetzhäute wurden präpariert und mit einem Sauerstoff gesättigt Standardlösung durchströmt, und der ERG wurde aufgezeichnet. Nach dem Aufzeichnen stabil b-Wellen, Hypoxie (reines N 2) oder Glutamat Belastung (250 &amp; mgr; m glutamat) wurde für 45 min ausgeübt wird. Um die Auswirkungen auf allein Photorezeptorfunktion zu untersuchen, wurde 1 mM zugegeben, um eine Aspartat-Wellen erhalten. ERG-Erholung wurde für 75 min überwacht. Hypoxie wurde eine Abnahme in einer Wellenamplitude von 87,0% nach einer Expositionszeit von 45 min (Abnahme von 36,5% nach dem Ende der Auswaschphase p = 0,03) angemerkt (p &lt;0,01). Zusätzlich wird ein Anfangs decrLeichtigkeit der b-Wellenamplituden von 87,23% erfasst wurde, dass die statistische Signifikanz erreichte (p &lt;0,01, Abnahme von 25,5% am Ende der Auswaschphase, p = 0,03). Für 250 &amp; mgr; m Glutamat, einem anfänglichen 7,8% Reduktion der a-Wellen-Amplituden (p&gt; 0,05), gefolgt von einer Reduktion von 1,9% (p&gt; 0,05). Eine Verringerung von 83,7% der b-Wellenamplituden (p &lt;0,01) wurde festgestellt; nach einer Auswaschung von 75 min war die Reduktion von 2,3% (p = 0,62). In dieser Studie wird eine standardisierte Spannungsmodell dargestellt, die nützlich für mögliche neuroprotektive Wirkung in der Zukunft identifiziert werden kann.

Nach 1 Stunde der Durchblutung der Netzhautpräparate mit sauerstoffgesättigten Standardlösung (1A und B) ERG-Amplituden zeigten Stabilisierung und weniger Variation der Amplituden zwischen Einzelmessungen. pH-Wert, osmotischer Druck, Temperatur und pO 2 (außer für Hypoxie testing) wurden für alle Versuche konstant gehalten. Um die Photorezeptorsignal aus dem Signal der inneren Retina zu isolieren, wurde 1 mM Aspartat zu der Standardlösung zugesetzt, um die b-Welle <b...

Mit dieser Studie stellen wir einen standardisierten Stress-Modell für die isolierte superfundiert Rinderretina für zukünftige therapeutische präklinischen Tests. Die Wirkung von entweder Hypoxie (reines N 2) oder Glutamat Stress (250 uM Glutamat) auf Netzhautfunktion von a- und b-Wellenamplituden dargestellt wurde ausgewertet.

Glutamat und Hypoxie als Stress-Modell für die isolierten perfundierten Wirbel Retina

Neuroprotection has been a strong field of investigation in ophthalmological research in the past decades and affects diseases such as glaucoma, retinal ...

Das übergeordnete Ziel des folgenden Experiments besteht darin, Glutamat oder Hypoxie-Stress als ein potenzielles Modell einzuführen, um die Wirksamkeit neuroprotektiver Wirkstoffe zu testen. Dies wird erreicht, indem zunächst frische enukleierte Rinder-Augen beschafft und eine schnelle, jedoch dennoch traumatische Präparation der Netzhaut durchgeführt wird. Anschließend werden nach der Inkubation der Netzhäute in einer speziellen Nährlösung Elektroden verwendet, um eine Reihe stabiler Basislinien-Elektroretinogramme (ERGs) aufzuzeichnen.Dann wird Glutamat zur Nährlösung hinzugefügt oder Hypoxie durch Zugabe von 100 % Stickstoff anstelle von Sauerstoff induziert. Abschließend wird eine ERG-Aufzeichnung durchgeführt, um die Wirkung von Glutamat-Stress oder Hypoxie auf die Amplituden der A- und B-Wellen zu beobachten. Die Ergebnisse zeigen eine Veränderung der retinalen Funktion bei Exposition gegenüber Hypoxie oder Glutamat-Stress anhand der ERG-Aufzeichnungen.Der Hauptvorteil dieser Technik gegenüber bestehenden Methoden wie Zellkultur oder in-vivo-ERG-Ableitungen besteht darin, dass funktionelle Tests durchgeführt werden können, im Gegensatz zu Zellkulturen, ohne die Variabilität durch die Platzierung der Elektroden oder die Allgemeinanästhesie, wie sie bei in-vivo-Experimenten auftritt. Diese Methode kann helfen, zentrale Fragen im pharmakologischen Bereich zu beantworten, beispielsweise die Prüfung neuroprotektiver Wirkstoffe. Die Bedeutung dieser Technik erstreckt sich auf die Therapie oder Diagnose akuter oder chronischer Erkrankungen. Mögliche neuroprotektive Wirkstoffe können nun mit diesem Stressmodell getestet werden. Obwohl diese Methode Einblicke in die Neuroprotektion im ophthalmologischen Bereich ermöglichen kann, ist sie auch auf andere medizinische Bereiche wie neurodegenerative Erkrankungen anwendbar. Im Allgemeinen werden Personen, die neu in dieser Methode sind, aufgrund der Probenvorbereitungstechnik Schwierigkeiten haben.Das Modell selbst wurde von Professor Sickle in Köln entwickelt, und er war ein hervorragender Neurophysiologe. Nachdem Rinderäugel von einem geschlachteten Tier erhalten wurden, legen Sie diese zur Beförderung ins Labor in Sickle-Lösung bei Raumtemperatur unter Verwendung eines abgedunkelten roten Lichts unter dunkeladaptierten Bedingungen. Entfernen Sie den vorderen Teil des Auges, führen Sie dann einen äquatorialen Schnitt etwa vier Millimeter hinter der Limbus durch und entfernen Sie die Hornhaut, die Regenbogenhaut, den Ziliarkörper und die Linse in einem Stück.Halten Sie die Netzhäute in der Sickel-Lösung. Lösen Sie anschließend mechanisch die Glaskörperanhängsel von der Netzhautoberfläche und entfernen Sie den Glaskörper aus der offenen Augentasse. Teilen Sie dann das Auge in vier Quadranten und stanzen Sie mit einer TR-Feinlochzange kreisförmige Bereiche von etwa sieben Millimetern Durchmesser aus.L&ouml;sen Sie die Netzhaut vorsichtig vom Pigmentepithel und legen Sie sie auf eine Ableitungsvorrichtung; &uuml;berf&uuml;hren Sie die Netzhaut anschlie&szlig;end auf ein Netz und sichern Sie sie mit einem Plastikring auf den Elektroden. Danach stellen Sie die Ableitungsvorrichtung in eine lichtgesch&uuml;tzte Box. Vor der Messung adaptieren Sie die Netzhaut im Dunkeln und anschlie&szlig;end mit kalibrierten Neutraldichtefiltern. In f&uuml;nfmin&uuml;tigen Abst&auml;nden geben Sie einen einherzigen wei&szlig;en Xenonblitz als Reiz mit einer Dauer von 10 Mikrosekunden und einer Intensit&auml;t von 6,3, die der Lichtintensit&auml;t an der Netzhautoberfl&auml;che entspricht (MLX), zur Stimulation ab.Nach der Dunkeladaptationsphase unter konstanter Perfusion die Amplituden des elektrischen Signals so lange messen, bis stabile a-Wellen-Amplituden registriert werden. Um mit der Prüfung zu beginnen, reinen Sauerstoff entweder durch reinen Stickstoff zur Hypoxie-Prüfung oder durch 250 Mikromolar Glutamat ersetzen. Die elektrischen Antworten alle fünf Minuten über einen Zeitraum von 45 Minuten aufzeichnen.Messen Sie die Amplitude der B-Welle von dem Trog der A-Welle bis zum Gipfel der B-Welle, um den Effekt von Hypoxie oder Glutamat auf das Photorezeptorpotential zu untersuchen. Unter skotopischen Bedingungen geben Sie eine millimolare Aspartatlösung zur Nährlösung hinzu, um die B-Welle zu unterdrücken. Um die Daten statistisch auszuwerten, verwenden Sie den Kolmogorow-Smirnow-Test, um eine Normalverteilung aller Daten sicherzustellen. Berechnen Sie die Reduktion der Amplituden der A- und B-Welle sowie die prozentuale Abnahme nach der Expositionsphase.Im Vergleich zur letzten Messung vor der Exposition bewerten Sie die Abnahme der ERG-Amplituden nach 45 Minuten am Ende der Expositionsphase im Vergleich zum ERG vor der Applikation. Vergleichen Sie die a- und b-Welle am Ende der Spülphase mit der entsprechenden Amplitude vor der Exposition. Zur Untersuchung einer möglichen Erholung für die statistische Analyse verwenden Sie die statistische Software JMP oder SPSS.Berechnen Sie die Daten als Mittelwert ± Standardabweichung. Verwenden Sie den geeigneten statistischen Test, um die Signifikanz wie hier gezeigt zu bestimmen. Nach einer einstündigen Perfusionsdauer der Netzhautpräparate mit einer mit Sauerstoff gesättigten Standardlösung stabilisierte sich die ERG-Amplitude und zeigte geringere Schwankungen zwischen einzelnen Messungen.Der pH-Wert, osmotischer Druck, Temperatur und PO₂ wurden für alle Tests konstant gehalten. Um das Signal des Photorezeptors vom Signal der inneren Netzhaut zu isolieren, wurde der Standardlösung ein Millimolar Aspartat hinzugefügt, um die B-Welle zu unterdrücken. Unter hypoxischen Bedingungen wurde eine Abnahme der A-Wellenamplitude um 87,0 % festgestellt.Nach einer Expositionszeit von 45 Minuten am Ende der Auswaschphase wurde ein Rückgang um 36,5 % festgestellt, der statistisch signifikant war. Zusätzlich wurde in diesem Setting ein statistisch signifikanter initialer Rückgang der B-Wellen-Amplituden um 87,23 % registriert.Eine statistisch signifikante Reduktion von 25,5 % wurde festgestellt. Nach der Exposition mit 250 Mikromolar Glutamat wurde nach dem definierten Zeitintervall eine nicht signifikante Reduktion der Wellenamplituden um 7,8 % detektiert. Dieser Phase folgte eine nicht signifikante Reduktion um 1,9 %. Schließlich wurden Amplitudenabnahmen der ERG um 83,7 % registriert, und am Ende der Auswaschphase wurde eine BWA-Erholung beobachtet, die nach 75 Minuten Perfusion mit Standardlösung in einer nicht signifikanten Reduktion von 2,3 % resultierte.Während des Durchführens dieses Verfahrens ist es wichtig, die ERG-Basislinie stets im Auge zu behalten. Nach diesem Verfahren können neuroprotektive oder schädigende Substanzen getestet werden, um weitere Fragen hinsichtlich der Toxizität nach der Entwicklung zu beantworten. Diese Technik ebnete den Forschern auf dem Gebiet der XV mit Elektrophysiologie den Weg, um ERG-Veränderungen in einem standardisierten Modell zu untersuchen.

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Research

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JoVE Journal

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Das Nagetier Retina wurde lange als eine zugängliche Fenster zum Gehirn erkannt. In diesem Fachbeitrag stellen wir ein Protokoll, das die Maus-Modell der Sauerstoff-induzierten Retinopathie, die Mechanismen, die zum Versagen der vaskulären Regeneration im zentralen Nervensystem nach einem ischämischen Verletzungen führen studieren beschäftigt. Das beschriebene System kann auch genutzt werden, um Strategien zu erkunden, um das Nachwachsen der funktionellen Blutgefäße in der Netzhaut und ZNS zu...

Beurteilung der Gefäß Regeneration im ZNS Verwenden der Maus Retina

Ein Protokoll für entorhino-Hippocampus organotypischen Kulturen, die Wiedergabe von vielen Aspekten der ischämischen Hirnschädigung ermöglicht, wird vorgestellt. Durch das Studium der Veränderungen der Leitungsbahnen in Zusätzlich zu den Veränderungen in den Nervenzellen ist dieses Protokoll ein vielseitiges Werkzeug, um plastische Veränderungen im Nervengewebe nach Verletzungen zu studieren.

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Ischämie-Reperfusion (IR)-Schädigung ist mit einer hohen Morbiditäts- und Mortalitätsrate verbunden. Das Ziel des hier beschriebenen in vitro-Modells des Sauerstoff-Glukose-Departions und der Reoxygenierung (OGD-R) ist es, die Auswirkungen einer Ischämie-Reperfusionsverletzung auf eine Vielzahl von Zellen zu bewerten, insbesondere in Endothelzellen der Blut-Hirn-Schranke (BHS).

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Dieser Artikel beschreibt ein Verfahren für die retinale Ischämie-Reperfusionsverletzung von erhöhtem Augeninnendruck bei Mäusen zu induzieren. Retinaler Ischämie-Reperfusionsschaden durch erhöhten Augeninnendruck dient menschlichen Krankheiten zu modellieren, indem kompromittiert Sauerstoff- und Nährstoffversorgung in der Retina gekennzeichnet, so dass die Forscher potentielle zelluläre Mechanismen und Therapien für menschliche Erkrankungen der retinalen Gefäß-Nerven-Einheit zu untersuchen.

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Eine kostengünstige, einfach zu bedienende und leistungsfähige System etabliert mögliche Behandlungen zu bewerten, die Blut Retina-Schranke Verletzung durch Histamin induzierte verbessern könnte. Blutgefäße Leckage, Müller-Zell-Aktivierung und die Kontinuität der neuronalen Prozesse werden genutzt, um die Schadensantwort und deren Umkehrung mit einem potenziellen Medikament, Lipoxin A4 zu beurteilen.

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Ischämischen Schlaganfall ist schwer zu lernen ist ein komplexer Vorgang, in dem der spezifische Beitrag der Astrozyten, die betroffene Hirnregion Glukose Sauerstoffmangel (OGD) ausgesetzt. Dieser Artikel stellt eine Methode zur isolierte Astrozyten zu erhalten und ihre Reaktivität und Verbreitung unter OGD Bedingungen zu studieren.

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Dieses Protokoll beschreibt eine neuartige Methode zur Untersuchung einer Form der chemischen Neurostimulation Wholemount Ratte Netzhäute in Vitro mit dem Neurotransmitter Glutamat. Chemischen Neurostimulation ist eine vielversprechende Alternative zu herkömmlichen elektrischen Neurostimulation der Netzhaut Neuronen für die Behandlung von irreversible Blindheit durch Photorezeptor degenerativen Erkrankungen verursacht.

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Dieses Protokoll stellt und beschreibt Schritte zur Isolierung, Dissektion, Kultivierung und Färbung von Netzhautexplantaten, die aus einer erwachsenen Maus gewonnen wurden. Diese Methode ist als Ex-vivo-Modell für die Untersuchung verschiedener neurovaskulärer Netzhauterkrankungen wie der diabetischen Retinopathie von Vorteil.

Netzhautexplantat der adulten Mausnetzhaut als Ex-vivo-Modell zur Untersuchung neurovaskulärer Netzhauterkrankungen

Dieses Protokoll modelliert die retinale Ischämie-Reperfusionsverletzung in einem Mausauge, indem es eine retinale Ischämie über eine Vorderkammerkanülierung und eine Erhöhung des Augeninnendrucks induziert, gefolgt von einer Intraokulardrucknormalisierung, um die Reperfusion zu initiieren.

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