Name: Untersuchung der Verbreitung und Toxizität von Prion-ähnlichen Proteine Mit dem Metazoan Modellorganismus C. elegans (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-01-08T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 57 s
Description: Erfahren Sie die Untersuchung prion-ähnlicher Proteinverbreitung und Toxizität mit dem Modellorganismus C. elegans. Diese Methode nutzt Fluoreszenzmikroskopie und RNAi-Screening zur Identifizierung neuer Modulatoren.

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Wir danken Cindy Voisine und Yoko Shibata für hilfreiche Diskussionen und kritische Kommentare zum Manuskript. Wir danken dem High Throughput Analysis Laboratory (HTAL) und der Biological Imaging Facility (BIF) an der Northwestern University für ihre Unterstützung. Diese Arbeit wurde durch Zuschüsse der National Institutes of Health (NIGMS, NIA, NINDS), der Ellison Medical Foundation und der Daniel F. and Ada L. Rice Foundation (an R.I.M.) finanziert. C.I.N.-K. wurde gefördert durch die Deutsche Forschungsgemeinschaft (KR 3726/1-1).

1. Überwachung transzelluläre Verbreitung des Prion-ähnlichen Proteine ​​durch In-vivo-Zeitraffer-Imaging HINWEIS: Wachsen C. elegans Wildtyp (WT) (N2) und transgenen Linien nach Standardmethoden und die Kultivierungstemperatur 47 sorgfältig zu kontrollieren. <ol><li> Gene transgenen Linien von C elegans Expression des Prion-ähnlichen Protein, mit monomeren rot fluoreszierendes Protein (mRFP) markiert. In diesem Video, das, wie man die Mikroinjektion 48 demonstriert. Weitere Details und die Methoden beschreiben, wie Sie diese extrachromosomale Linien zu integrieren, finden 49. </li><li> Bereiten synchronisiert Populationen Eiablage oder Bleichen nach Standardverfahren 50. <ol><li> Synchronisation durch Eiablage <ol><li> Über 10-20 gravid Erwachsenen auf einem Teller und lassen Sie sie Eier legen für 1-2 Std. Erwachsene entfernen von der Platte und lassen Sie die Nachkommen wachsen, bis die gewünschte Zeit. </li></ol></li> &lt;li&gt; Synchronisation von Bleich <ol><li> Sammeln Sie eine unsynchronisierte Bevölkerung von schwangeren Erwachsenen und bleichen sie mit alkalischen Natriumhypochlorit-Lösung (250 mM NaOH und 1: 4 (v / v) Verdünnung der kommerziellen Bleichmittel in H 2 O). Zweimal (218 · g für 1 min) Waschen Sie die Eier mit M9-Puffer 47 (21 MMNA 2 HPO 4 · 7 H 2 O, 22 MMKH 2 PO 4, 86 mM NaCl, 1 mMMgSO 4 · 7 H 2 O, fügen dH 2 O bis zu 1 L). </li><li> Es ihnen ermöglichen, in M9-Puffer unter leichtem Schütteln O bei 20 ° C schlüpfen / N. Worm Entwicklung wird im L1 Stufe in Abwesenheit eines Nahrungsmittels zu verhaften, so dass eine synchronisierte Bevölkerung. Übertragen L1s auf frische Nematode Wachstumsmedien (NGM) Platten mit OP50 E. ausgesät coli-Bakterien und lassen Sie die Nachkommen entwickeln, bis die gewünschte 47 Jahren. </li></ol></li></ol></li><li> Planen 2% Agarose-Pads (in H 2 O) auf einen Objektträger, wie beschrieben 50. <ol><li> Bereiten Sie zwei mikop Folien mit Etikettenband über ihre ganze Länge angeordnet, um als Abstandshalter verwendet werden. Platzieren Sie eine dritte Objektträger zwischen ihnen. </li><li> Löse 2% Agarose in H 2 O und Pipette ein Tropfen auf die saubere Folie. </li><li> Platzieren eines vierten Schieber senkrecht zu den drei anderen Folien oben auf den Agar Abfall. Drücken Sie ihn vorsichtig nach unten, um das Kissen in die gleiche Dicke wie die Etikettierung Band zu glätten. </li><li> Lassen Sie es trocken für 1 Minute, bevor Sie die Abstandshalter und leichtes Ziehen die Folien auseinander. Die Agar-Pad, einen von ihnen zu bleiben. </li></ol></li><li> Pipette ~ 10 ul Anästhetikum (2 mM Levamisol in M9-Puffer) mit dem Pad und Übertragungs ~ 10 Tieren unter Verwendung einer Platindraht-Pick. Deckel mit einem Deckglas (~ 22 x 22 mm) und nehmen Sie Bilder in 1 Std. </li><li> Alternativ, um Filme über einen längeren Zeitraum hinweg zu erwerben oder die Möglichkeit einer Bewegung der Tiere weiter zu reduzieren, verwenden eine Kombination von Betäubung und Ruhigstellung Wulst 51. <ol><li> Bereiten Sie 10% agaRose-Pads (in M9-Puffer), wie beschrieben, 51 und fügen Würmer zu 3 ul Nanokugel Größenstandards Lösung (Polystyrol-Kügelchen, 100 nm) und 3 ul Betäubung (4 mM Levamisol in M9-Puffer). Bedecken Sie vorsichtig mit einem Deckglas. Um ein Austrocknen zu verhindern, versiegeln das Deckglas mit VALAP (Mischung aus gleichen Teilen Vaseline, Lanolin und Paraffinwachs). </li></ol></li><li> Bild immobilisiert Würmer mit einem konfokalen Mikroskop. HINWEIS: Die Ergebnisse werden mit einem Spinning Disc AF Konfokalmikroskop mit einem EM-CCD-Kamera und einem Mikroskopie Automatisierung und Bildanalyse-Software wie MetaMorph ausgestattet erhalten und stellen die Besonderheiten unter, aber vergleichbaren konfokalen Bildgebungssysteme können ebenfalls verwendet werden. <ol><li> Verwenden Sie das 63X oder 100X / 1.4NA Öl-Objektiv und setzen Sie den Objektträger, die Würmer in den Mikroskopobjektträgerhalter. </li><li> Öffnen Sie die Software. Passen Laserleistung und Filter für mRFP Bildgebung. Verwenden Sie die 561-nm-Laser mit 10% Leistung und Emissionsfilter&gt; 600 nm. </li><li&gt; Öffnen &quot;Mehrdimensionale Bildaufnahme&quot;. Unter der Registerkarte &quot;Allgemein&quot; die Kontrollkästchen für &quot;Timelapse&quot; und &quot;Run Journals&quot; (Hardware-Autofokus: aus). </li><li> Auf der Registerkarte &quot;Speichern&quot; auswählen oder das Verzeichnis Ordner, in dem die Dateien gespeichert werden sollen. Benennen Sie die Datei. </li><li> Unter dem Reiter &quot;Wellenlänge&quot;, wählen Sie die entsprechende Beleuchtung und die Belichtungszeit und Verstärkung. Mit &quot;YokoQuad Red&quot; (oder eine äquivalente Beleuchtungseinstellung für mRFP imaging) mit einer Einwirkungszeit zwischen 100 und 300 ms und einer Kameraverstärkung zwischen 100 und 300, abhängig von der einzelnen Probe (beurteilt unter Verwendung der Livebild). </li><li> Unter dem Reiter &quot;Timelapse&quot; wählen Sie &quot;Anzahl der Zeitpunkte&quot; = 301, &quot;Dauer&quot; = 5 min und &quot;Zeit / Intervall&quot; = 1 Sek. </li><li> Im Rahmen des &quot;Journals&quot; Tab wählen Journal: &quot;AFC SET Z HOLD&quot; und &quot;AFC Zurück zur Z HOLD&quot;, Typ: &amp;# 8220; Special &quot;(zweimal), Ausgangspunkt:&quot; Start Zeitpunkt &quot;und&quot; End of Zeitpunkt &quot;. Das Autofokus-Option ist wichtig, um Bild die gleiche Abschnitt über einen längeren Zeitraum. </li><li> Wenn das Setup abgeschlossen ist, klicken Sie auf &quot;Erfassen&quot;. Die Zeitraffer-Video wird als separate TIFF-Files abgelegt. </li><li> Öffnen Sie alle TIFF-Dateien eines bestimmten Zeitreihen in ImageJ. Gehen Sie auf &quot;Bild&quot; → &quot;Stacks&quot; → &quot;Bilder zu Stacks&quot;. Optional können Helligkeit und Kontrast, fügen Größe Bar, etc. Exportieren Sie den Film unter &quot;Datei&quot; → &quot;Speichern als&quot; → &quot;AVI ...&quot; (zum Beispiel siehe Video 1 und 2 entsprechend Figur 1). </li></ol></li></ol> 2. Mit Klapp Sensoren und Spannungs Reporter Cell Autonome und Nichtzellen Autonome Wirkt auf Proteostase und Toxizität Untersuchen <ol><li> Gene transgenen Linien, die einen Klappsensor oder Stress reporte coexprimierenr zusammen mit der Prion-ähnlichen Proteins. Für Methoden, wie man Kreuze errichten oder zu generieren transgenen Linien finden 48,49,52. Siehe Tabelle 1 für eine Liste von C elegans-Stämme, die verwendet werden können. </li><li> Bereiten synchronisierten Populationen transgener Tiere und wachsen, bis die gewünschte Alters wie oben (Abschnitt 1.2) 50 beschrieben. </li><li> Mit einem Stereomikroskop, überprüfen Sie die entsprechende Phänotyp des Faltungssensor oder Stress Reporter. <ol><li> Für die Faltung Sensor, bestimmen die Anzahl der Tiere beherbergen Aggregate an jedem Tag nach der Synchronisation (ein Beispiel finden Sie in Abbildung 2 E und F). </li><li> Für die Stress-Reporter, Test, wenn die Co-Expression der Prion-ähnlichen Protein führt zu einer erhöhten Fluoreszenz des Reporter (für ein Beispiel siehe Abbildung 3). </li></ol></li></ol> 3. Genomweite Bildschirm Unterdrückung von Prion-induzierte Toxizität in C. elegans<img alt="4" src="/files/ftp_upload/52321/52321fig4highres.jpg" /> Abbildung 4. Schematische Darstellung des RNAi-Screening-Protokoll. Siehe Protokoll Abschnitt 3 für eine detaillierte Beschreibung der einzelnen Schritte. <ol><li> Synchronisation von C. elegans Würmer und Vervielfältigung von RNAi-Bibliothek <ol><li> Für die RNAi Bildschirm aus den Ahringer RNAi-Bibliothek (oder die Vidal RNAi-Bibliothek) 53,54. Rearray das RNAi-Bibliothek aus dem ursprünglichen 384-Well-Format in ein 96-Well-Platten, indem die Platten mit 100 &amp; mgr; l LB-Amp-Medium (50 ug / ml Ampicillin in LB) mit 10% Glycerin ergänzt und Beimpfen mit einem 96-Pin-Replikator. Wachsen bei 37 ° CO / N unter Rühren und bei -80 ° C. </li><li> Pflegen C. elegans WT und transgenen Linien bei 20 ° C auf NGM-Platten ausgesät mit OP50 E. coli Bakterien nach Standardverfahren 47. </li><li>Synchronisieren Prion Domain transgene und WT (Kontrolle) Nematoden durch Bleichen (siehe Abschnitt 1.2). </li><li> Am selben Tag, dass die Würmer gebleicht werden, bereiten LB-Medium mit 50 ug / ml Ampicillin. Verwenden Sie eine automatisierte Reagenzspender zu verzichten (oder Pipette manuell) 65 ul der LB-Amp-Medium in jede Vertiefung einer Platte mit 96 Vertiefungen. </li><li> Entfernen Sie 96-Loch Ahringer RNAi Bibliothek Platten von -80 ° C und bringt sie zu einer sterilen Haube mit Küchenpapier ausgekleidet. Unverzüglich entfernen Sie die Dichtungsband, indem Sie die Platte auf den Kopf, während Platten noch gefroren sind, wobei darauf geachtet, um eine Kontamination von Eis auf der Außenseite der Platten zu vermeiden. Reinvert die Teller und lassen Sie sie für etwa 30 Minuten auftauen. </li><li> Tauchen Sie ein steriles 96 Pin-Replikator in einem RNAi-Bibliothek Platte und dann in eine frische LB-Amp-Platte. Verwenden Sie eine neue sterile Replikator für jede Platte. Dichten Sie alle Platten mit Klebefolienband und geben die Bibliotheksplatten bis -80 ° C. Die Replikatoren in Bleichmittel eingeweicht werden, gespült,und autoklaviert, um wieder verwendet werden. </li><li> Lassen duplizierten RNAi Platten zu O / N in einem Brutschrank auf 37 ° C und 300 Umdrehungen pro Minute eingestellt wachsen. Um HT115 E. verwenden coli Bakterien beherbergen, die einen leeren Vektor (L4440) als Kontrolle, wachsen sie einzeln in ein Kulturröhrchen pipettieren und 65 ul der Kultur mit einer Mehrkanalpipette in ein Viertel der zwei Platten mit 96 Vertiefungen. </li></ol></li><li> Die Induktion der Bakterien dsRNA Produktion und Zugabe von Würmern <ol><li> Verdünne Isopropyl-β-D-thiogalactopyranosid (IPTG) zu einer 5 mM Konzentration in ddH 2 O. Verwenden Sie eine automatisierte Workstation mit einem Mehrkanal-Kopf zu verzichten (oder Pipette manuell) 10 ul verdünnt IPTG in jede Vertiefung der RNAi Bakterien und der Steuerplatten. Verschließen Sie und legen Sie die Platten wieder in den Inkubator. Lassen Sie sie schütteln für 3 Stunden bei 37 ° C. </li><li> Während Bakterien zittern, bereiten die Würmer. Mischen Sie die M9 / Wurm Federung gut und Pipette eine kleine Probe (~ 5-10 ul) auf einen Glasobjektträger. Zählendie Zahl der Würmer unter einem Stereomikroskop und berechnen Sie die Anzahl der Würmer pro ul. </li><li> Unter Einhaltung steriler Techniken bereiten eine Lösung ergänzt M9 (M9 +) mit den folgenden Endkonzentrationen: 0,20 mg / ml IPTG, 8,0 ug / ml Cholesterin, 50 ug / ml Ampicillin, 9,6 ug / ml Tetracyclin, 0,0835 g / ml Fungizone und 15 Würmer pro 50 ul. <ol><li> Tätigen Sie Lösungen für Prionen Domain transgene und WT Würmer. Das Endvolumen M9 + benötigt wird von der Anzahl der RNAi Platten kopiert werden (siehe unten) abhängig Schneckenlösung plus ~ 30 ml Totvolumen, das in dem Reservoir verbleiben, wenn eine automatisierten Dispenser verwendet. </li></ol></li><li> Nach 3 Stunden Induktion der Bakterien dsRNA Produktion, nehmen die Platten aus dem Inkubator und lassen Sie sie auf Raumtemperatur (~ 30 min) zu kühlen, um Wärme zu belasten die Tiere. </li><li> Dispense 50 ul M9 + Prion Domain transgenen Wurm-Lösung in jede Vertiefung der RNAi-Platten und einer der leeren Vektor Kontrollplatten. Machensicher, dass die Schnecken Lösung vor jedem Schritt zu mischen, wie die Tiere dazu neigen, auf den Boden des Behälters absetzen. </li><li> Dispense WT Würmer in die zweite Steuerplatte. Lassen Sie die Platten nicht abgedichtet, um die Belüftung zu ermöglichen. Um die Flüssigkultur verdunstet halten, Stack 4-5 Platten zusammen und wickeln mit einem feuchten Papiertuch und Aluminiumfolie. Inkubation bei 200 rpm bei 20 ° C für 4 Tage. </li></ol></li><li> Wertung HINWEIS: Nach 4 Tagen im Brutschrank werden die Würmer am zweiten Tag Erwachsenenalter sein und bereit sind, zu untersuchen. Lassen Sie die Tiere nicht schütteln Bedingungen anpassen 30 min vor Screening ungestört Prügel zu gewährleisten. <ol><li> Mit einem Falcon 4M60 Kamera an einen Computer mit Monitor, Bildschirm visuell erhöht Prügel verbunden, verglichen mit Kontrolle behandelt Prion Domain transgenen Tieren. </li><li> Stellen Sie eine Liste der vorläufigen Ergebnisse zu bestätigen, mit wrMTrck (siehe nächster Abschnitt). </li></ol></li></ol> 4. Bestätigung der vorläufigenBildschirm Hits <ol><li> Motilität Assay auf festen Platten <ol><li> Bereiten Platten mit NGM mit 100 ug / ml Ampicillin, 12,5 ug / ml Tetracyclin und 1 mM IPTG ergänzt, nach Standardverfahren 47. Verwenden Sie nach Möglichkeit einen platten Gießmaschinen, um sicherzustellen, alle Platten haben die gleiche Höhe von Medien, die für eine schlankere Videoakquisitionsprozess ermöglicht. </li><li> Wachsen die verschiedenen RNAi-Klone in ~ 1 ml LB + 50 ug / ml Ampicillin, O / N bei 37 ° C und 250 Umdrehungen pro Minute. </li><li> Am nächsten Tag, induziert die Expression der dsRNA mit 1 mM IPTG für 3 Stunden. Samen, die Platten mit 150 ul jeder RNAi bakterielle Klon, zu einer dünnen Schicht ausgebreitet. Lassen Sie die Bakterien trocken 2 Tage bei RT im Dunkeln. Bereiten Sie 3 Platten pro RNAi-Klon. </li><li> Synchronisieren Sie die Wurmpopulation durch Bleichen nach Standardverfahren 50 (siehe Abschnitt 1.2), und lassen Sie die Eier ausbrüten O / N in M9-Medium. </li><li> Nehmen Sie eine Probe des Wurms Federung und bestimmen die Höhe der nematodes pro ul bei dem Stereomikroskop. Dann pipettieren das richtige Volumen der M9 und Würmer in jedem Versuchsplatte, so dass es 25 enthält - 30 L1 Würmer. Wachsen die Nematoden bei 20 ° C für 4 Tage, bis die Würmer erreichen Tag 2 des Erwachsenseins. </li></ol></li><li> Die quantitative Analyse der Wurm Motilität mit der wrMTrck Plugin für ImageJ HINWEIS: Die Videos wurden mit einem Stereomikroskop bei 10-facher Vergrößerung mit einem Hamamatsu Orca-R2 Digitalkamera C10600-10B und Hamamatsu einfache PCI-Imaging-Software erfasst. <ol><li> Schalten Sie die Kamera und das Simple PCI-Imaging-Software. Klicken Sie auf &quot;Live&quot;, um zur Einstellung der Bilderzeugungsbedingungen zu ermöglichen. </li><li> Richten Sie die Videobedingungen wie folgt: Gain = 0; Light Mode = High; Speedindex = 1; Binning = 2. Klicken Sie auf &quot;Auto Expose&quot; und passen Sie die Lichtverhältnisse, Bewegung der Mikroskopspiegel und die Helligkeits- und Kontrastwahl. HINWEIS: Das Video muss einen hohen Kontrast ohne ÜBERBEL habenosed, so dass die Tiere wie schwarze Gestalten auf einem hellen Hintergrund erscheinen. </li><li> Klicken Sie auf &quot;Zeit Scan&quot; und wählen Sie einen Ordner und einen Dateinamen ein. Set &quot;Feld Delay&quot; auf 20 ms und &quot;Stopp bei Time&quot; um 30 Sekunden. Drücken Sie auf &quot;Live Review&quot;, um den Bereich der Platte wählen zu erfassen (wo die meisten Würmer sind). Tippen Sie auf die Platte 3 oder 4 mal auf der Bühne, schnell bestätigen ihre Position im Sichtfeld ein und drücken Sie &quot;Start&quot;. </li><li> Nachdem der Film endet die Aufzeichnung der rechten Maustaste auf das Bild und wählen Sie &quot;Export Montage Sequence&quot;, um den Film von einem Format in ein .cxd .avi exportieren. </li></ol></li><li> Die Analyse der Motilität Videos <ol><li> Öffnen Sie die ImageJ-Software, gehen Sie zur Registerkarte &quot;Plugins&quot;, dann &quot;wrmtrck&quot; und wählen Sie &quot;wrMTrck Batch&quot;. Wählen Sie das Verzeichnis alle Dateien, die analysiert werden soll. </li><li> In der Haupteingabefenster wrMTrck_Batch, laden Sie die Eingabewerte wie in Figur detaillierte 5C. Erläuterung der einzelnen Parameter finden Sie in den Anweisungen, die das Plugin begleiten zu finden. Klicken Sie auf &quot;OK&quot;, und lassen Sie die Bewegungsanalyselauf. </li><li> Um die Ergebnisse zu kuratieren und bestätigen Sie, dass alle erkannten Tracks sind von den tatsächlichen C. elegans und beseitigen Artefakte, öffnen Sie jede der TXT-Dateien für jeden Film geschaffen und kopieren Sie die Daten auf eine Datenanalyse-Software-Datei. Öffnen Sie die &quot;* _labels.zip&quot; erstellten Dateien und führen Sie die daraus resultierende &quot;* _labels.tif&quot; von Hand überprüfen und zu beseitigen falsche Wurmspuren. </li></ol></li></ol>

Die Autoren erklären, dass keine konkurrierenden finanziellen Interessen bestehen.

Die hier beschriebenen Methoden helfen, um zu veranschaulichen die Verbreitung und der komplexen Zell autonomen und nicht autonomen Zelltoxizität von Prion-ähnlichen Proteinen. Wir haben vor kurzem festgestellt, dass eine Aggregation neigende cytosolische Prion-Domäne wird in membrangebundene Vesikel in einer Autophagie bezogenen Prozess übernommen. Eine spezielle Untergruppe dieser Vesikel transportiert das Prion-Domäne innerhalb und zwischen den Zellen und Gewebe 40. Der Schlüssel, um ihre Bewegung im leben...

Viele neurodegenerative Erkrankungen, einschließlich Alzheimer-Krankheit (AD), Parkinson-Krankheit (PD), Amyotrophe Lateralsklerose (ALS), und übertragbaren spongiformen Enzephalopathien (TSE) werden mit Aggregation neigende Proteine ​​verbunden und werden daher allgemein als Proteinfehlfaltungserkrankungen (PMDs bekannt ). TSE oder Prionenerkrankungen stellen eine einzigartige Klasse von PMDs indem sie Infektions in Mensch und Tier 1 sein kann. Auf molekularer Ebene, replizieren Prionen durch die Rekrutierung und Umwandlung von monomeren α-Helix reiche Wirts kodierten zellulären PrP (PrP C) in die pathologische β-Faltblatt-reiche PrP Sc Konformation 2,3. Selbstausbreiteproteinaggregate wurden auch in Pilzen, die wichtige Eigenschaften mit Säugetier Prionen 4,5 austauschen können. Zusätzlich sind Säuger Prionen bewegen kann, von Zelle zu Zelle und infizieren naiven Zellen 6,7. Während PMDs other als TSE nicht infektiös sind, teilen sie sich eine gemeinsame pathogene Prinzip mit Prionenerkrankungen 8,9. Obwohl die Proteine, die jeder der PMDs verknüpft sind nicht in der Struktur oder Funktion bezogen, sie bilden alle Aggregate über eine Kristallisationsartigen Prozess namens nukleierten oder impft Polymerisation; außerdem proteinhaltigen Samen wachsen durch die Einstellung ihrer löslichen Isoformen 2,10,11. Die Effizienz der Selbst Propagate variiert in vivo in Abhängigkeit von den intrinsischen Eigenschaften des Proteins, die zusammen mit zusätzlichen zellulären Faktoren wie molekulare Chaperone bestimmen letztlich Raten Aggregat Nukleation, Säen, Fragmentierung und Ausbreiten 12-15. Daher muss es eine feine Balance zwischen diesen Faktoren, die eine effiziente Vermehrung von Proteinaggregation ermöglicht existieren. Dies könnte auch erklären, warum nur einige amyloidogenen Aggregate Hafen der Eigenschaften eines Prion und damit nicht alle PMDs sind ansteckend. Prionen scheint &quot;Top-Performer&quot; o vertretenfa breites Spektrum von sich selbst replizierenden proteinartige Aggregate, die ihnen ein leistungsfähiges Werkzeug zur PMDs 8,13 zu studieren. Interessanterweise hat die Toxizität mit krankheitsbedingten Aggregaten assoziiert oft ein nicht zellautonomen Komponenten 16,17. Dies bedeutet, dass sie Nachbarzellen, die das entsprechende Gen nicht exprimieren, im Gegensatz zu einem rein Zelle autonome Wirkung, was bedeutet, daß nur die Zellen, die das Gen weisen die spezifischen Phänotyp beeinflussen. Dies wurde überzeugend von gewebespezifische Expression nachgewiesen oder knock down der entsprechenden Proteine ​​in zahlreichen Modellen neurodegenerativer Erkrankungen 18-26. Verschiedene Mechanismen wurden als Grundlage für diese nicht-zellautonomen Toxizität PMDs einschließlich vermindert Nährstoffversorgung Ungleichgewicht in neuronalen Signalisierung Glutamatexzitotoxizität und neuroinflammation 16,27,28 vorgeschlagen. Zusätzlich ist ein Prion artige Bewegung der Krankheit gebundenen Aggregate zwischen Zellen might diesem Aspekt 29,30 tragen. Zunehmende Hinweise darauf, dass andere Proteineinschlüsse als Prionen von Zelle-zu-Zelle zu übertragen, was erklären kann, die charakteristische Verteilung der Pathologie in vielen PMDs 30-36 beobachtet. Es hat sich jedoch noch nicht bestimmt werden, ob es einen klaren ursächlichen Zusammenhang zwischen interzelluläre Bewegung Krankheit Proteine ​​und die toxische Wirkung auf Nachbarzellen. Daher ist ein besseres Verständnis der zellulären Wege, die Zell-zu-Zell-Übertragung und nicht zellautonomen Toxizität zugrunde notwendig und wesentlich für die Entwicklung neuartiger Therapeutika. Allerdings sind viele Aspekte der Prionartigen Ausbreitung und zellulären Faktoren, die Zell-zu-Zell-Übertragung von fehlgefalteten Proteinen Metazoen beeinflussen nicht gut verstanden, insbesondere auf der Ebene der Organismen. Der Nematode Caenorhabditis elegans hat mehrere Vorteile, die das Potential bieten entdecken Sie neue Facetten des Prion-ähnlichen spreading in Metazoen 17. Es ist transparent, so dass für in vivo-Tracking von fluoreszenzmarkierten Proteine ​​im lebenden Organismus. Darüber hinaus werden viele zelluläre und physiologische Prozesse durch Krankheit betroffen von Würmern die menschliche konserviert und C. elegans eignet sich auch für eine Vielzahl von genetischen Manipulationen und molekularen und biochemischen Analysen 37-39. Genau 959 Körperzellen bilden die erwachsenen Hermaphroditen mit einem einfachen Körper Plan, der noch mehrere verschiedene Gewebearten, einschließlich Muskeln, Neuronen und Darm hat. Um eine neue Prion-Modell in C zu etablieren elegans, entschieden wir uns für exogen drücken die gut charakterisiert Glutamin / Asparagin (Q / N) -reichen Prion Domain NM der cytosolischen Hefe-Prion-Protein Sup35, da gibt es keine bekannten endogenen Prion-Proteine ​​in Würmern 4,40. Hefe Prionen waren von unschätzbarem Wert bei der Aufklärung grundlegender Mechanismen von Prionenreplikation 41-44. Darüber hinaus ist die Tanne NMst cytosolische Prion-ähnliches Protein, die gezeigt wurde, um den gesamten Lebenszyklus eines Prion in Säugetierzellkulturen 45,46 rekapitulieren. Ebenso wird, wenn in C exprimiert elegans, die hervorragend an die unterschiedlichen Anforderungen für die Vermehrung in Metazoen-Zellen im Vergleich zu Hefezellen und wiesen Merkmale von Prion biology 40. NM Aggregation wurde mit einem tiefen toxischen Phänotyp verbunden sind, einschließlich der Störung der mitochondrialen Integrität und das Aussehen angenommen Sup35 Prion Domäne verschiedene Autophagie bezogenen Vesikel auf zellulärer Ebene sowie embryonale und larvale Stillstand, Entwicklungsverzögerung, und eine weit verbreitete Störung der Proteinfaltung Umgebung auf der organismischen Ebene. Auffallend ist, dass das Prion-Domain weist Zell autonomen und nicht autonomen Zelltoxizität, Auswirkungen auf benachbarte Gewebe, bei denen das Transgen nicht ausgedrückt. Ferner ist der vesikulären Transport des Prion Domäne innerhalb und zwischen den Zellen in Echtzeit überwacht &lt;em&gt; In-vivo-40. Hier beschreiben wir, wie man Prion-ähnlichen Verbreitung in C prüfen elegans. Wir werden erklären, wie die intra- und interzellulären Transport von Vesikeln, die das Prion-Domäne mit Zeitraffer-Fluoreszenzmikroskopie zu überwachen. Wir werden die Verwendung von gewebespezifischen Klapp Sensoren unterstreichen und ubiquitär exprimiert Stress Reportern zu Zelle autonomen und nicht autonomen Zell Effekte auf zellulärer Fitness zu bewerten. Schließlich werden wir den Ablauf einer vor kurzem durchgeführt genomweiten RNA-Interferenz (RNAi) Bildschirm beschreiben, neue Modifikatoren von Prion-induzierte Toxizität zu identifizieren. In Kombination können diese Methoden helfen, necken neben genetischen Pfade in der interzellulären Bewegung von Proteinen und ihre nicht zellautonomen Toxizität beteiligt.

<table><tbody><tr><td>Reagenz</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nanosphäre Größenstandards 100 nm</td><td>ThermoScientific</td><td>3100A</td><td></td></tr><tr><td>Levamisol</td><td>Sigma</td><td>L-9756</td><td></td></tr><tr><td>IPTG</td><td>Sigma</td><td>15502-10G</td><td></td></tr><tr><td>Ahringer RNAi Bibliothek</td><td>Quelle BioScience LifeSciences&nbsp;</td><td></td><td>http://www.lifesciences.sourcebioscience .com/clone-products/nicht-säugetiere/c-elegans/c-elegans-rnai-library/</td></tr><tr><td>Ausrüstung</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sorvall Legend XTR Kühlzentrifuge, 120VAC</td><td>ThermoScientific</td><td>75004521</td><td>http://www.coleparmer.com/Product/Thermo_Scientific_Sorvall_Legend_ XTR_Refrigerated_Centrifuge_120 VAC/EW-17707-60</td></tr><tr><td>96-poliger Replikator</td><td>Scionomix&nbsp; &nbsp;</td><td></td><td>http://www.scinomix.com/all-products/96-pin-replicator/</td></tr> <tr><td>HiGro Inkubationsschüttler mit hoher Kapazität&nbsp;</td><td>Digilab</td><td></td><td>http://www.digilabglobal.com/higro</td></tr><tr><td>Multidrop Kombi-Reagenzienspender&nbsp;</td><td>Titertrek</td><td></td><td>http://groups.molbiosci.northwestern.edu/hta/titertek.htm</td></tr><tr><td>Biomek FX AP96 Automatisierte Workstation&nbsp;</td><td>Beckman Coulter</td><td></td><td>http://groups.molbiosci.northwestern.edu/hta/biomek_multi.htm</td></tr><tr><td>Innova44 Shaker</td><td>New Brunswick</td><td></td><td>http://www.eppendorf.com/int///index.php?sitemap=2.3&pb=d78efbc05310ec 04& action=Produkte& contentid=1& catalognode=83389</td></tr><tr><td>M205 FA&nbsp;</td><td>Leica</td><td></td><td>http://www.leica-microsystems.com/de/produkte/stereomikroskope-makroskope/fluoreszenz/details/product/leica-m205-fa/</td></tr> <tr><td>ORCA-R2 C10600-10BDigital CCD-Kamera</td><td>Hamamatsu</td><td></td><td>http://www.hamamatsu.com/jp/en/community/life_science_camera/product/search/C10600-10B/index.html</td></tr><tr><td>Spinning Disc AF Konfokalmikroskop&nbsp;</td><td>Leica</td><td></td><td>http://www.leica-microsystems.com/products/light-microscopes/life-science-research/fluorescence-microscopes/details/product/leica-sd-af/</td></tr> <tr><td>Falcon 4M60 Kamera&nbsp;</td><td>Teledyne Dalsa&nbsp;</td><td></td><td>http://www.teledynedalsa.com/imaging/products/cameras/area-scan/falcon/PT-41-04M60/</td></tr> <tr><td>Software</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>MetaMorph Mikroskopie Automatisierung & Bildanalysesoftware</td><td>Molekulare Bauelemente</td><td></td><td>http://www.moleculardevices.com/products/software/meta-imaging-series/metamorph.html</td></tr><tr><td>Hamamatsu SimplePCI Bildanalysesoftware</td><td>Meyer Instruments</td><td></td><td>http://meyerinst.com/imaging-software/hamamatsu/index.htm</td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>NIH</td><td></td><td>http://rsbweb.nih.gov/ij/download.html</td></tr><tr><td>wrMTrck Plugin für ImageJ</td><td></td><td></td><td>http://www.phage.dk/plugins/wrmtrck.html</td></tr><tr><td>C. elegans Stämme</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>N2 (WT)</td><td>Caenorhabditis Genetics Center (CGC)</td><td></td><td>http://www.cgc.cbs.umn.edu/strain.php?id=10570</td></tr><tr><td>AM815&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; rmIs323[myo-3p::sup35(r2e2)::rfp]</td><td>Morimoto-Labor</td><td></td><td>in unserem Labor erhältlich&nbsp;</td></tr><tr><td>In Tabelle 1 finden Sie eine Quelle für Faltsensor- und Stressreporterdehnungen</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

untersuchung der verbreitung und toxizität von prion-ähnlichen proteine ​​mit dem metazoan modellorganismus<em&gt; c. elegans</em

Investigating the Spreading and Toxicity of Prion-like Proteins Using the Metazoan Model Organism C. elegans

Prionen sind unkonventionelle, sich selbst vermehrende proteinhaltige Partikel, die keine kodierende Nukleinsäure enthalten. Diese proteinhaltigen Samen dienen als Vorlagen für die Umwandlung und Replikation ihrer gutartigen zellulären Isoform. Immer mehr Hinweise deuten darauf hin, dass viele Proteinaggregate als selbstvermehrende Matrizen fungieren und die Faltung verwandter Proteine korrumpieren können. Obwohl Aggregate unter bestimmten Umständen funktionsfähig sein können, führt dieser Prozess häufig zu einer Störung der zellulären Proteinhomöostase (Proteostase) und schließlich zu verheerenden Krankheiten wie Alzheimer (AD), Parkinson (PD), Amyotropher Lateralsklerose (ALS) oder transmissiblen spongiformen Enzephalopathien (TSEs). Die genauen Mechanismen der Prionenvermehrung und der Ausbreitung von Proteinaggregaten von Zelle zu Zelle sind noch Gegenstand intensiver Untersuchungen. Um dieses Wissen zu erweitern, wurde kürzlich ein neues Metazoenmodell in Caenorhabditis elegans für die Expression der Prionendomäne des zytosolischen Hefe-Prionenproteins Sup35 etabliert. Dieses Prionenmodell bietet mehrere Vorteile, da es die direkte Überwachung der fluoreszenzmarkierten Prionendomäne in lebenden Tieren ermöglicht und genetische Ansätze erleichtert. Hier werden Methoden zur Untersuchung des prionenähnlichen Verhaltens von Proteinaggregaten und zur Identifizierung von Modifikatoren der Prionen-induzierten Toxizität mit Hilfe von C. elegans beschrieben.

Überwachung interzelluläre Ausbreitung von Prionen-ähnlichen Proteinen durch In-vivo-Zeitraffer-Bildgebung Transgenen C. elegans Linien die Prion-Domäne exprimieren, sind besonders gut für die Analyse von bestimmten Aspekten der Prion-ähnlichen Proteine, zB Zell-zu-Zell-Übertragung und nicht zellautonomen Toxizität geeignet. Die Transparenz der Tiere ermöglicht Verfolgung von fluoreszenzmarkierten Proteine ​​aus dem lebenden Organismus in jeder Pha...

Die Prionen-ähnliche Vermehrung von Proteinaggregaten hat sich in letzter Zeit als an vielen neurodegenerativen Erkrankungen beteiligt. Das Ziel dieses Protokolls ist es, zu beschreiben, wie der Fadenwurm C. elegans als Modellsystem zur Überwachung der Proteinausbreitung und zur Untersuchung prionenähnlicher Phänomene verwendet werden kann.

Untersuchung der Verbreitung und Toxizität von Prion-ähnlichen Proteine ​​Mit dem Metazoan Modellorganismus<em&gt; C. elegans</em

Prions are unconventional self-propagating proteinaceous particles, devoid of any coding nucleic acid. These proteinaceous seeds serve as templates for ...

Das übergeordnete Ziel der folgenden Experimente ist es, die Ausbreitung und komplexe Toxizität von PreOn-ähnlichen Proteinen mit Hilfe des Metazoen-Modellorganismus C elegance zu untersuchen. Dies wird durch die Überwachung des intra- und intrazellulären Transports von Vesikel, die das PreOn-ähnliche Protein enthalten, mit Hilfe der Zeitraffer-Fluoreszenzmikroskopie erreicht. Als nächstes folgen gewebespezifische Faltungssensoren und ubiquitär exprimierter Stress.Reporter werden verwendet, um zellautonome und nicht-zellautonome Effekte auf die zelluläre Fitness zu bewerten. Anschließend wird ein genomweites RNAi-Screening durchgeführt, um neue Modifikatoren der PreOn-induzierten Toxizität zu identifizieren. Das Screening wird in Flüssigkultur durchgeführt, wobei Thrashing als Messwert für die Toxizität verwendet wird.Schließlich wird der Wurmtracker, ein Plugin für Bild J, verwendet, um die Bewegung von C elegance in Kombination zu quantifizieren. Diese Methoden ermöglichen es, genetische Signalwege, die an der interzellulären Bewegung von PreOn-ähnlichen Proteinen beteiligt sind, und ihre nicht-zellautonome Toxizität auseinanderzukitzeln. Nach der Herstellung von synchronisierten transgenen Linien der Sea Elegance-Kontrolle und der PreOn-Domäne und 10%-Agros-Pads pipettieren Sie gemäß dem beigefügten Textprotokoll drei Mikroliter 100 Nanogramm Polystyrolkügelchen und drei Mikroliter vier Millimolar Limassol in das Agros-Pad.Mit einem Platindraht-Plektrum werden Würmer im gewünschten Alter von einer Platte in die Lösung übertragen und mit einem Deckglas die Würmer auf subzellulärer Ebene abgebildet. Legen Sie einen Objektträger in den Objektträgerhalter eines konfokalen Mikroskops und verwenden Sie ein 63 x oder 100 x 1,4 NA Ölobjektiv. Öffnen Sie als Nächstes METAMORPH und wählen Sie Multidimensionale Erfassung.Aktivieren Sie auf der Registerkarte "Haupt" die Kontrollkästchen für Zeitraffer und Journale ausführen. Wählen Sie auf der Registerkarte "Speichern" den Verzeichnisordner zum Speichern von Dateien aus oder erstellen Sie ihn und weisen Sie der Datei einen Namen zu. Verwenden Sie auf der Registerkarte "Wellenlänge" Yoko Quad Red oder eine gleichwertige Beleuchtung der MRFP-Bildgebung und stellen Sie die Belichtung auf 100 bis 300 Millisekunden und die Kameraverstärkung auf 100 bis 300 ein. Legen Sie anschließend auf der Registerkarte Zeitraffer das Zeitintervall auf eine Sekunde, die Dauer auf fünf Minuten und die Anzahl der Zeitpunkte auf 301 fest.Unter der Registerkarte Journale. Für die Journalauswahl wählen Sie A FC setzen, Z halten und A FC zurück zu Z halten für den Typ Select Special zweimal und für Anfangspunkt den Beginn des Zeitpunkts und das Ende des Zeitpunkts auswählen. Wenn die Einrichtung abgeschlossen ist, drücken Sie die Erfassungstaste. Nach diesem Verfahren können andere Methoden wie Partikelverfolgungsanwendungen verwendet werden, um die dynamischen Eigenschaften von Discus zu messen.Nach der Synchronisierung der transgenen und vom Typ Nematoden der Prionendomäne und dem Kopieren der inger RNAI-Bibliotheksplatten gemäß dem Textprotokoll werden duplizierte RNAi-Platten bei 37 Grad Celsius und 300 U/min inkubiert, um HT ein 15 E coli-Bakterium mit dem leeren Vektor L 4 4 4 0 als Kontrolle zu verwenden. Züchten Sie es separat in einem Kulturröhrchen und übertragen Sie dann mit einer Mehrkanalpipette 65 Mikroliter der Kultur in ein Viertel der Vertiefungen von 2 96. Well-Platten mit einer automatisierten Workstation, die einen Mehrkanalkopf enthält.10 Mikroliter von fünf Millimolaren verdünntem IPTG in jede Vertiefung der RNAi-Bakterien und Kontrollplatten geben. Verschließen Sie sie wieder, bevor Sie sie drei Stunden lang inkubieren, während die Bakterien inkubieren. Mischen Sie die synchronisierte Wildtyp-Kontrolle und transgene L-1-Larven und M-Neun-Puffer gut und pipettieren Sie fünf bis 10 Mikroliter auf ein Glasmikroskop.Schieben Sie die Zählung der Würmer und berechnen Sie die Anzahl der Würmer pro Mikroliter. Nach der dreistündigen bakteriellen Inkubation nehmen Sie die Platten aus dem Inkubator und lassen sie auf Raumtemperatur kommen, um zu vermeiden, dass die Würmer durch Hitze gestresst werden. Ergänzen Sie anschließend den M neun Puffer mit IPTG-Cholesterin und Antibiotika gemäß dem Textprotokoll.Und fügen Sie das entsprechende Volumen der transgenen Wurmlösung der PreOn-Domäne bis zu einer Endkonzentration von 15 Würmern pro Mikrolitermischung hinzu, um sie gleichmäßig zu verteilen. Geben Sie dann 50 Mikroliter in jede Vertiefung der RNAi-Platten und in die Vertiefungen einer der leeren Vektorkontrollplatten. Geben Sie die Wildtyp-Wurmlösung in die zweite Kontrollplatte.Lassen Sie dann alle Platten unversiegelt, um eine Belüftung zu ermöglichen und die Flüssigkultur am Verdampfen zu hindern, indem Sie vier bis fünf Platten aufeinander stapeln und sie mit einem feuchten Papiertuch umwickeln, gefolgt von Aluminiumfolie. Inkubieren Sie die Platten vier Tage lang bei 20 Grad Celsius und 200 U/min. Verwenden Sie für die Platten eine Falcon 4 M 60-Kamera, die an einen Computer mit einem Monitor angeschlossen ist, um im Vergleich zu kontrollbehandelten transgenen Tieren aus der PreOn-Domäne eine visuelle Sichtprüfung durchzuführen.Der Hauptvorteil der Verwendung einer automatisierten Liquid-Handling-Workstation zur Abgabe der Würmer in die R-RNAi-Platten besteht darin, dass die Variabilität und die Anzahl der Würmer pro Vertiefung erheblich reduziert werden. Um einen Motilitätsassay auf festen Platten durchzuführen und RNAi-Klonkandidaten zu validieren, züchten RNAi-Bakterien über Nacht gemäß dem Textprotokoll. Verwenden Sie dann ein millimolares IPTG, um die Expression von DS-RNA drei Stunden lang zu induzieren.Verwenden Sie 150 Mikroliter jedes RNAi-Bakterienklons, um zuvor vorbereitete NGM-Platten zu säen und in einer dünnen Schicht zu verteilen. Lassen Sie die Bakterien zwei Tage lang bei Raumtemperatur im Dunkeln unter einem Stereomikroskop trocknen. Bestimmen Sie die Menge der synchronisierten Würmer und der Suspension wie oben beschrieben und geben Sie 25 bis 30 l eine Larve in jede Versuchsplatte.Inkubieren Sie die Nematoden vier Tage lang bei 20 Grad Celsius, bis die Würmer erreichen. Am zweiten Tag des Erwachsenenalters, um die Beweglichkeit von Würmern zu quantifizieren, schalten Sie die Kamera und die einfache PCI-Bildgebungssoftware ein. Klicken Sie auf das Kamerasymbol, um die Anpassung der Bildgebungsbedingungen zu aktivieren.Richten Sie als Nächstes die Imaging-Bedingung wie folgt ein. Stellen Sie die Verstärkung auf den Zero-Light-Modus, den High-Speed-Index auf eins und das Binning auf zwei ein. Klicken Sie dann auf Live und Auto Exposure und passen Sie die Lichtverhältnisse an, indem Sie die Mikroskopspiegel sowie die Helligkeits- und Kontrastregler bewegen.Klicken Sie auf Zeit, scannen und geben Sie einen Ordner und einen Dateinamen ein, setzen Sie die Feldverzögerung auf 20 Millisekunden und die Stoppzeit auf 30 Sekunden. Drücken Sie auf Live-Review, um den Bereich der Platte auszuwählen, der aufgenommen werden soll. Dann klopfen Sie den Teller drei- bis viermal auf die Bühne.Bestätigen Sie schnell seine Position im Sichtfeld und drücken Sie Start, nachdem die Aufnahme des Films beendet ist, klicken Sie mit der rechten Maustaste auf das Bild und wählen Sie Montagesequenz exportieren, um den Film aus einem CXD-Format in eine A VI-Datei zu exportieren. Um die Motilitätsvideos zu analysieren, öffnen Sie Bild J, wählen Sie die Registerkarte Plugins, wählen Sie dann Wurmtracker und wählen Sie Worm Tracker Batch, und wählen Sie das Verzeichnis aus, das alle zu analysierenden Dateien enthält. Laden Sie im Haupteingabefenster von Worm Tracker Batch die Eingabewerte, wie hier beschrieben. Eine Erklärung für jeden der Parameter finden Sie in den Anweisungen, die dem Plugin beiliegen.Klicken Sie auf OK und lassen Sie die Bewegungsanalyse laufen. Um die Ergebnisse zu kuratieren, bestätigen Sie schließlich, dass alle erkannten Spuren von tatsächlicher Meereseleganz stammen, und beseitigen Sie Artefakte. Öffnen Sie die TXT-Dateien, die für jeden Film erstellt wurden, und kopieren Sie die Informationen in eine Datei mit einer Datenanalysesoftware.Öffnen Sie die erstellten Etiketten-ZIP-Dateien und führen Sie die resultierenden Etiketten-TIFF-Dateien aus, um falsche Wurmspuren manuell zu überprüfen und zu entfernen. Yesper Peterson, ein ehemaliger Postdoc im Labor, hatte zuerst die Idee für den Wurmtracker als Ersatz für unsere manuelle Bewertung von CL Elegance motil, die eine Aussage für die Toxizität ist. Der Wurm-Tracker ermöglicht es uns, diese Experimente automatisiert und ohne Verzerrung durch den Benutzer durchzuführen und gleichzeitig mehr Bedingungen in kürzerer Zeit mit Hilfe von Zeitraffer-Bildgebung zu bewerten.Das RFP mit R two E two, das sich in röhrenförmigen Vesikeln ansammelt, wurde innerhalb und zwischen Zellen transportiert, indem Coex einen Faltungssensor oder Stressreporter exprimierte. Zusammen mit der PreOn-ähnlichen Proteinzelle können autonome und nicht-zellautonome Effekte bewertet werden. Die Expression von R zwei E zwei in Muskelzellen führt zu einem früheren Beginn der Q 44-Aggregation im Darm, was zeigt, dass R zwei E zwei nicht-zellautonome Auswirkungen auf die Proteostase hat Co-Expression von R zwei E zwei Mit dem SOD drei PGFP Transkriptioneller oxidativer Stress Reporter führt zu einer Hochregulierung des Reporters in verschiedenen Geweben, Dies zeigt, dass die PreOn-Domäne eine oxidative Stressantwort induziert, die nicht zellulär autonom dem gesamten Genom-Screen folgt.Dieser Film zeigt, dass hochauflösende Bildgebung und Visualisierung auf dem Computerbildschirm das gleichzeitige Screening eines Viertels einer Platte ermöglichen. Einmal gemeistert, kann dieses Screening-Protokoll in 12 Runden mit 25 Platten pro Sitzung durchgeführt werden. Wenn zwei Sitzungen pro Woche durchgeführt werden, kann die gesamte RNAi-Bibliothek innerhalb von sechs Wochen gescreent werden. Der Wurmtracker wurde verwendet, um die Motilität der C-Eleganz zu quantifizieren, wie hier zu sehen.Worm Tracker konvertiert ein Originalvideo in ein Binärformat und jedem Wurm wird eine Spur zugewiesen. Verarbeitete Videos können mit überlagerten Spuren angezeigt werden, um Artefakte manuell zu entfernen. Der Parameter Körperlängen pro Sekunde normalisiert sich für mögliche Größenunterschiede. Fadenwürmer.Mit dieser Methode wurden 35 Suppressoren der PreOn-induzierten Toxizität identifiziert, die den Motilitätsphänotyp auf mindestens 133 % und bis zu 256 % im Vergleich zu kontrolliert behandelten Würmern erhöhten. Beim Leasing des Wurmtrackers ist es wichtig, daran zu denken, die erhaltenen Wurmspuren manuell zu überprüfen. Die Software leistet hervorragende Arbeit bei der Identifizierung der Würmer, aber manchmal kann der Hintergrund immer noch fälschlicherweise als Tier identifiziert werden.Denken Sie daher daran, Ihre Videos zu überprüfen, nachdem Sie den Wurm-Tracker auf ihnen ausgeführt haben. Diese Methoden können helfen, zentrale Fragen im Bereich neurodegenerativer Erkrankungen zu beantworten, z. B. ob ein bestimmtes Krankheitsverbindungsprotein in der Lage ist, sich von Zelle zu Zelle auszubreiten, oder ob es einen Zusammenhang zwischen der interzellulären Übertragung und der komplexen Toxizität dieser Proteine gibt. Kinder.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Biology

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Assaying β-Amyloid-Toxizität mit Hilfe eines transgenen C. elegans Modell

Dieses Video zeigt das Verfahren zur in vivo-Bildgebung von C. elegans, die prionenähnliche Proteine exprimieren, die mit rot fluoreszierendem Protein markiert sind. Das Protokoll beinhaltet die Immobilisierung von Nematoden auf einem Agarose-Pad für die konfokale Zeitraffermikroskopie, um die Proteinaggregation und den Transport innerhalb und zwischen den Zellen aufzudecken. Diese Technik ist entscheidend für die Untersuchung der Proteinaggregation im Zusammenhang mit neurodegenerativen...

Zeitraffer-Bildgebung zur Überwachung der transzellulären Ausbreitung prionenähnlicher Proteine in transgenen Nematoden

Wir beschreiben Methoden, um Aspekte der amylopathies in der Schnecke zu...

A<em&gt; Caenorhabditis elegans</em&gt; Modell-System für Amylopathy Study

Hier präsentieren wir Ihnen den Fadenwurm Caenorhabditis Elegans als eine vielseitige Grundmodell, mikrobielle Wechselwirkungen zu studieren.

Der Fadenwurm Caenorhabditis Elegans - ein vielseitig In Vivo Modell zur Host-Mikroben-Interaktionen

Hier stellen wir ein Protokoll zur einfachen Isolierung bestimmter Gruppen lebender neuronaler Zellen vor, die grünes fluoreszierendes Protein aus transgenen Caenorhabditis elegans-Linien exdrücken. Diese Methode ermöglicht eine Vielzahl von Ex-vivo-Studien, die sich auf bestimmte Neuronen konzentrieren und hat die Fähigkeit, Zellen für eine weitere kurzfristige Kultivierung zu isolieren.

Isolierung spezifischer Neuronenpopulationen von Roundworm Caenorhabditis elegans

Hier führen wir weithin zugängliche Methoden mit einigen vielseitigen Nematodenmodellen ein, einschließlich hyperaktivierter Ionenkanal-induzierter Nekrose und Protein-Aggregat-induzierter Neurotoxizität, um die zellulären und molekularen Grundlagen altersassoziierter neurodegenerativer Erkrankungen zu überwachen und zu sezieren.

Modellierung altersassoziierter neurodegenerativer Erkrankungen bei Caenorhabditis elegans

Hier stellen wir ein Protokoll zur Beurteilung der neuroprotektiven Aktivitäten von Testverbindungen in Caenorhabditis elegans vor, einschließlich Polyglutaminaggregation, neuronalem Tod und Chemovermeidungsverhalten, sowie eine beispielhafte Integration mehrerer Phänotypen.

Caenorhabditis elegans als Modellsystem zur Entdeckung bioaktiver Verbindungen gegen Polyglutamin-vermittelte Neurotoxizität

Hier wird eine Methode zur Analyse der Proteinaggregationskinetik im Fadenwurm Caenorhabditis elegans vorgestellt. Tiere aus einer alterssynchronisierten Population werden zu verschiedenen Zeitpunkten abgebildet, gefolgt von einer halbautomatischen Inklusionszählung in CellProfiler und Anpassung an ein mathematisches Modell in AmyloFit.

Überwachung der Proteinaggregationskinetik in vivo mittels automatisierter Einschlusszählung bei Caenorhabditis elegans

Dieses Video zeigt die Technik der Mikroinjektion in die Gonade von C. elegans, um transgene Tiere zu schaffen.

Generierung von stabilen transgenen C. elegans mit Mikroinjektion

Die Anwendung der Elektrophysiologie, barrierefreie Synapsen eine quantifizierbare Messung der synaptischen Aktivität, nützlich bei der Analyse synaptischer Mutanten. Dieser Artikel beschreibt ein Dissektion Methode verwendet, um die motorischen Endplatten (NMJ) von...

Dissecting und Aufnahme von C. elegans neuromuskulären Synapse

Erfahren Sie die Untersuchung prion-ähnlicher Proteinverbreitung und Toxizität mit dem Modellorganismus C. elegans. Diese Methode nutzt Fluoreszenzmikroskopie und RNAi-Screening zur Identifizierung neuer Modulatoren.

Untersuchung der Verbreitung und Toxizität von Prion-ähnlichen Proteine ​​Mit dem Metazoan Modellorganismus

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