Name: Methoden zur Zytotoxizität und Immunsuppression mit brennbarem Tabakwaren Vorbereitungen Bewerten (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-01-10T16:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 25 s
Description: Erfahren Sie Methoden zur Bewertung von Zytotoxizität und Immunsuppression durch brennbare Tabakprodukte an humanen PBMCs mittels Durchflusszytometrie. Diese Technik ermöglicht die Analyse von Zytokinsekretion und zellulärer Zytotoxizität.

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Diese Arbeit wird von RJ Reynolds Tobacco Company (RJRT) im Rahmen eines Sonderforschungsvereinbarung mit der Wake Forest University School of Medicine finanziert. GL Prasad ist ein Vollzeit-Mitarbeiter von RJRT.

HINWEIS: Eine schriftliche Einverständniserklärung, diese Studie zu tun, wurde in einem örtlichen klinischen Forschergruppe unter IRB-Zulassung erhalten, pro Good Clinical Practices. Verarbeitung von Blut, werden Isolierung von PBMCs und andere Zellkulturexperimenten unter sterilen Bedingungen durchgeführt, unter Verwendung von mikrobiologisch Sterilgut und Reagenzien. 1. WS-CM Herstellung <ol><li> Generieren WS-CM, wie zuvor beschrieben 12. <ol><li> Bereiten Sie WS-CM, indem Rauch von vier 3R4F Referenz Zigaretten über Roswell Park Memorial Institute (RPMI) 1640-Medium ohne Phenolrot mit dem folgenden Raucher-Regime: 35-60-2, puff Volumen in ml, Blätterteig-Intervall in Sekunden, und puff Dauer in Sekunden auf. Jedes Präparat erzeugt eine 20 ml Probe. </li></ol></li><li> Label-Röhre (n) mit Datum, Uhrzeit abgeschlossen und Zigaretten Name und Nummer. Bewahren Sie die 500 ul Aliquots bei -80 ° C unmittelbar nach dem Rauchen beendet ist. </li><li> Analysieren Sie Teilmengen von gefrorenem WS-CM, Um die Mengen an Nikotin, spezifischen Nitrosamine und polycyclische aromatische Kohlenwasserstoffe zu bestimmen, wie zuvor beschrieben 12. </li></ol> 2. Isolierung von PBMCs <ol><li> Sammeln Sie frisches Blut von gesunden Spendern (der nicht-Konsumenten von Tabakerzeugnissen sind) Isolieren PBMCs von frischem Blut, wie nachstehend unter einer separaten Genehmigung von der Wake Forest Baptist Health IRB 15 beschrieben. <ol><li> Vor der Ankunft des Blutbeutels, eine 500 ml Flasche, Schere, Isolationspuffer und Dulbeccos phosphatgepufferter Kochsalzlösung (DPBS) (RT) bereit, in einer Biosicherheitsstufe 2 (BSL-2) Zellkultur Kapuze. Isolation Puffer muss vor Licht geschützt werden. </li><li> Halten Sie den Blutbeutel auf den Kopf und schneiden Sie das Rohr direkt unter, wo es eingespannt worden ist, bleibt mindestens 3 cm Schlauch. </li><li> Entfernen Sie die Kappe von der 500 ml Flasche und halten Sie den Schlauch über der Flaschenöffnung. Nehmen Sie den Blutbeutel und invertieren, damit das Blut ungehindert aus dem Beutel in t fließener die Flasche, bis der Beutel leer ist. Lassen Sie das Blut auf die Innenwand der Flasche gegenüber gerade nach unten zu fließen, wie um zu vermeiden, Blasen. </li><li> Gießen Sie Isolierungspuffer in die Flasche zu einem 1: 5-Verhältnis von Isolierungspuffer, um Blut. Verschließen Sie die Flasche fest und vorsichtig umdrehen es, end-over-end, 10-mal. Lassen Sie die Flasche in der Zellkultur Haube mit Beleuchtung inkubiert aus, für 1 h bei RT. </li><li> Ein leichtes, strohgelbe Schicht wird über dem Blut aufzubauen. Entfernen Sie diese Schicht unter Verwendung einer 25 ml serologische Pipette in 50 ml konische Röhrchen. Der gesammelte Betrag kann variieren von 50 - 300 ml, je nach dem Gegenstand, die Blut gespendet. </li><li> Zentrifugiere die Röhrchen bei 200 x g für 10 min bei RT. </li><li> Saugen Sie das durchscheinende Überstand, so dass die dunkle Blutfarbenen Pellets. Das Pellet wird lose aber viskos sein. </li><li> Pipette 3 ml Isolationspuffer in 15 ml konische Röhrchen. </li><li> Zu dem Pellet, 20 ml DPBS für je 50 ml strohfarbene Flüssigkeit in s gesammelttep 2.1.5. Vortex, um gründlich zu mischen, und Konsolidierung des resuspendierten Flüssigkeit aus mehreren Rohren. Diese Flüssigkeit suspendiert Blutkörperchen enthält. </li><li> Mit einer Transferpipette Transfer 5 ml der suspendierten Blutzellen auf 3 ml Isolationspuffer in Schritt 2.1.8. Kippen Sie die 15 ml konischen Röhrchen, die die Zellsuspension enthält langsam und sanft, zwei getrennte Schichten zu schaffen. Zentrifugiere die Röhrchen bei 400 × g für 40 min bei RT mit minimalen Beschleunigungs- und ohne Bremse. </li><li> Verwenden einer Transferpipette, die entstehende trübe Mittelschicht (buffy coat) enthält PBMCs in ein 50 ml konisches Röhrchen zu entfernen. Vermeiden Zeichnung andere klare Schichten darunter. Bringen Sie nicht mehr als 25 ml in jede 50 ml konischen Röhrchen. </li><li> 25 ml kaltem Puffer, um die Zellen zu waschen (oder mehr, die gesamte Restvolumen der 50 ml konischen Röhrchen zu füllen). Zentrifugiere die Zellen bei 400 g für 10 min bei 4 ° C. </li><li> Das Pellet mit 10 ml Laufpuffer. Diese enthält PBMCs. Zählen Sie die Zellen, und verwenden Sie immittelbar oder auf Eis zum Einfrieren. </li></ol></li></ol> 3. Einfrieren und Auftauen der PBMCs <ol><li> Zentrifugation der PBMCs, die in Schritt 2.1.13 für 10 min bei 400 x g gesammelt wurden. </li><li> Füllen Sie den Gefrierbehälter mit Isopropylalkohol pro Anweisungen des Herstellers. ACHTUNG: Isopropylalkohol ist brennbar und akut toxisch. </li><li> Das Pellet mit RPMI 1640-Medium (4 ° C), das 20% fötales Rinderserum (FBS) und 10% Dimethylsulfoxid (DMSO). Dies ist RPMI 1640 Einfriermedium. Das Pellet mit einer Menge an Gefriermedium, das in einer Suspension mit ca. 5 x 10 7 Zellen / ml auf. Die Anzahl der Zellen zum Einfrieren kann abweichen. </li><li> Dispense 1 ml Aliquots der Zellsuspension in 2 ml Kryoröhrchen und legen Sie die Kryoröhrchen im Gefrierbehälter. Stellen Sie das Gefrierbehälter mit Kryoröhrchen in einem Gefrierschrank bei -80 ° C bis O / N zu speichern und entfernen Sie die Kryoröhrchen und Transfer zum in einem GeschäftTiefkühlschranks zwischen -150 ° C bis -190 ° C. </li><li> Entfernen der Kryoröhrchen aus kryogenen Lagerung und Auftauen rasch unter leichtem Rühren in einem Wasserbad bei 37 ° C. </li><li> Die aufgetauten PBMCs in Kryoröhrchen sofortige Umsetzen in ein 15 ml konisches Röhrchen mit 10 ml RPMI 1640 Komplettmedium (4 ° C), das 10% FBS, 1% Pen / Strep und 1% L-Glutamin. Der Inhalt des aufgetauten Kryoröhrchen sollte so schnell wie möglich übertragen werden, um eine maximale Lebensfähigkeit der Zellen 15 zu erhalten. </li><li> Zentrifugieren PBMCs bei 400 × g für 10 min. </li><li> Das Pellet mit 5 ml RPMI 1640 Komplettmedium und zählen Sie die Zellen. </li><li> Messen Sie die Lebensfähigkeit der Zellen durch etablierte Verfahren wie Trypanblau-Ausschluss-Verfahren. Allgemein Zellviabilität bei dieser Methode ist zu 90 bis 95%. Die PBMCs können nun in Experimenten verwendet werden. </li></ol> 4. Cell Death Bestimmung HINWEIS: Verdünnungen hier aufgeführten sind für die Zwecke dieses study. Die Verdünnungen können entsprechend geändert werden. <ol><li> Verdünne WS-CM oder Nikotin in einer 96-Well-Platte unter Verwendung von RPMI Komplettmedium auf ein Gesamtvolumen von 100 ul / Vertiefung, wie unten angegeben. </li><li> Verdünne WS-CM auf die folgenden Konzentrationen: 0,1, 0,5, 1, 1,5, 2, 2,5, 3, 4, und 5 ug / ml in gleichem Nikotin Einheiten (basierend auf der Nikotingehalt in WS-CM) 12. </li><li> Verdünne Nikotin in RPMI-Medium mit den folgenden Konzentrationen: 100, 200, 500, 750, 1000, 2000 und 3000 ug / ml. ACHTUNG: Nikotin ist akut toxisch und umweltgefährdend. </li><li> 100 l PBMCs in RPMI Komplettmedium zu jeder suspendiert und bei einer Konzentration von 1 x 10 6 Zellen / Vertiefung. Das Gesamtvolumen der Zellen plus WS-CM oder Nikotin werden 200 ul / Vertiefung sein. </li><li> Für die Zwecke dieser Studie bereiten zwei Sätze von Platten, wie oben. Decken Sie die Platten und Inkubation eine Platte für 24 Stunden und eine Platte für 3 Stunden bei 37 ° C und 5% CO 2. Passen Zeitpunkte wie nötig. </li&gt; <li> Die Zellen werden bei Raumtemperatur durch Zentrifugation bei 300 × g für 3 min, Absaugen des Überstandes, Verwirbeln der Unterseite der Platte mit der Platte abgedeckt, und schließlich resuspendiert die Zellen mit 200 ul eiskaltem Laufpuffer, und ein weiteres Mal wiederholt den Waschschritt. </li><li> Hinzufügen 95 ul Laufpuffer, gefolgt von 5 &amp; mgr; l 7-Aminoactinomycin D (7AAD) in jede Vertiefung für ein Gesamtvolumen von 100 ul / Vertiefung. Inkubieren der Platte in der Dunkelheit bei Raumtemperatur für 15 min. </li><li> 100 l Laufpuffer zum Cluster Rohre. Übertragen das gesamte Volumen der Zellsuspension aus jeder Vertiefung der Platte, um die Cluster-Röhrchen und erwerben die Proben am Durchflusszytometer. </li><li> Bestimmen Sie den Prozentsatz der 7AAD-positiven Zellen mit Durchflusszytometrie-Analyse-Software. </li></ol> 5. EC 50 Bestimmung <ol><li> Die EC 50 -Werte von WS-CM und Nikotin werden von 7AAD-positive Färbung von PBMCs bestimmt. </li><li> Der EC 50 Wert wird als konzentrierte definiertentration, bei der 50% der Zellen wurden in einem 24-Stunden-Test nicht mehr lebensfähig, und die Werte sind als &amp; mgr; g equi-Nikotin-Einheiten / ml ausgedrückt. </li><li> Für die Zwecke dieser Studie wurden die EC 50 -Werte bestimmt als 1,56 &amp; mgr; g / ml und 1,650 &amp; mgr; g / ml für WS-CM und Nikotin auf. </li></ol> 6. Zytokine HINWEIS: hier aufgeführten Verdünnungen werden für die Zwecke dieser Studie. Die Verdünnungen können entsprechend angepasst werden. <ol><li> Verdünne WS-CM in einer 96-Well-Platte unter Verwendung von RPMI Komplettmedium auf ein Gesamtvolumen von 100 ul / Vertiefung in einer Konzentration von 0,3, 1,56, 3 und 5 ug / ml in gleichem Nikotineinheiten. </li><li> Verdünne Nikotin an den folgenden Konzentrationen: 100, 200, 500, 750, 1000, 2000 und 3000 ug / ml. ACHTUNG: Nikotin ist akut toxisch und umweltgefährdend. </li><li> 100 l PBMCs in RPMI Komplettmedium zu jeder suspendiert und bei einer Konzentration von 1 x 10 6 Zellen / Vertiefung.Das Gesamtvolumen der Zellen plus WS-CM oder Nikotin werden 200 ul / Vertiefung sein. </li><li> Die Platte und Inkubation für 3 Stunden bei 37 ° C und 5% CO 2. </li><li> Die Zellen werden bei Raumtemperatur durch Zentrifugation bei 300 × g für 3 min, Absaugen des Überstandes, Verwirbeln der Unterseite der Platte mit der Platte bedeckt und schließlich Suspendieren der Zellen mit 200 ul eiskaltem Laufpuffer und Wiederholen der Waschschritt noch einmal. </li><li> Fügen Sie 200 ul RPMI Komplettmedium, und ein weiteres Mal wiederholen Sie den Waschschritt. </li><li> Nach Zugabe von 200 ul von 10 ug / ml LPS Medium zu jeder Vertiefung. </li><li> Die Platte und Inkubation für 4 h, 24 h, 48 h oder 72 h bei 37 ° C und 5% CO 2. Einzustellen Inkubationszeiten wie nötig. </li><li> Zentrifugieren Sie die Platte bei 300 × g für 3 min. </li><li> Nehmen Sie 175 ul des Überstands aus jeder Vertiefung und an einem Gefrierschrank bei -80 ° C, um die Tests in den Schritten 7 und 8 durchzuführen. </li></ol> 7. Cytometric Bead Array Assay &lt;ol&gt; <li> Tauen die Zellüberstände aus Schritt 6.10 und den Einsatz in der CBA Assay vorbereitet. Führen Sie die Cytometric Bead Array (CBA) Assay gemäß den Anweisungen des Herstellers. </li></ol> 8. IL-8-ELISA <ol><li> Tauen die Zellüberstände aus Schritt 6.10 und den Einsatz in der IL-8-ELISA. Führen der ELISA-Assay gemäß den Anweisungen des Herstellers. </li></ol> 9. intrazelluläre Färbung und Durchflusszytometrie HINWEIS: hier aufgeführten Verdünnungen werden für die Zwecke dieser Studie. Die Verdünnungen können entsprechend angepasst werden. <ol><li> Verdünne WS-CM in einer 96-Well-Platte unter Verwendung von RPMI Komplettmedium auf ein Gesamtvolumen von 100 ul / Vertiefung in einer Konzentration von 0,3, 1,56, 3 und 5 ug / ml in gleichem Nikotineinheiten. </li><li> In der gleichen Platte, verdünnten Nikotin den folgenden Konzentrationen: 2, 10, 50, 100, 500, 2000 und 4000 ug / ml. ACHTUNG: Nikotin ist akut toxisch und umwelt hazardous. </li><li> 100 l PBMCs in RPMI-Vollmedium suspendiert bei einer Konzentration von 1 × 10 6 Zellen / Vertiefung. Das Gesamtvolumen der Zellen plus WS-CM oder Nikotin werden 200 ul / Vertiefung sein. </li><li> Die Platte und Inkubation für 3 Stunden bei 37 ° C und 5% CO 2. </li><li> Die Zellen werden bei Raumtemperatur durch Zentrifugation bei 300 × g für 3 min, Absaugen des Überstandes, Verwirbeln der Unterseite der Platte mit der Platte abgedeckt, und schließlich resuspendiert die Zellen mit 200 ul eiskaltem Laufpuffer, und ein weiteres Mal wiederholt den Waschschritt. </li><li> Fügen Sie 200 ul RPMI Komplettmedium auf die Platte, und ein weiteres Mal wiederholen Sie den Waschschritt. </li><li> Bereiten Sie die Arbeitskonzentrationen von 2 ul / ml GolgiPlug und 10 ug / ml LPS mit RPMI Komplettmedium und 200 ul in jede Vertiefung. </li><li> Inkubieren der Platte für 6 h bei 37 ° C und 5% CO 2. </li><li> Am Ende von Schritt 9.8, Waschen der Zellen mit Laufpuffer (4 ° C) und Schleudern bei 300g für 3 min bei 4 ° C. </li><li> 100 l Cytofix in jede Vertiefung und Inkubation für 20 min bei 4 ° C. </li><li> Die Zellen werden 3 Mal wie in Schritt 9.9 mit 1x Permwash (4 ° C) bei 300 g für 3 min bei 4 ° C beschrieben. </li><li> Hinzufügen 45 ul 1x Cytoperm zu jeder Vertiefung, gefolgt von 5 ul jeder einer der folgenden Antikörper zu jeder Vertiefung: TNF-α-Alexa Fluor 488, IFN-γ V500, MIP-1α PE. Inkubieren bei 4 ° C für 30 min. </li><li> Waschen Sie die Zellen zweimal wie in Schritt 9.9 mit 1x Permwash (4 ° C) und einmal mit Laufpuffer (4 ° C) bei 300 g für 3 min bei 4 ° C beschrieben. </li><li> Die Zellen werden mit 200 ul 2% igem Paraformaldehyd (4 ° C). Übertragen Sie die Zellen in 12 × 75 mm Rohre, und die Proben auf Flow Cytometer analysiert. ACHTUNG: Paraformaldehyd ist ätzend, akut giftig und gesundheitsschädlich. </li></ol> 10. K562 Töten Assay HINWEIS: K562 Zellen sollten kultiviert werdenin der Kultur bei 37 ° C und 5% CO 2 mit RPMI Komplettmedium, bis sie bis zu 80% Konfluenz vor dem Assay. <ol><li> Bereiten Sie eine 5 mM Carboxyfluoresceinsuccinimidylester (CFSE) Stammlösung durch Zugabe von 18 &amp; mgr; l DMSO in das Fläschchen. </li><li> Verdünne WS-CM oder Nikotin in einer 96-Well-Platte unter Verwendung von RPMI Komplettmedium auf ein Gesamtvolumen von 100 ul / Vertiefung zu den gewünschten gleichwinklig Nikotineinheiten oder Nikotinkonzentrationen für jede Vertiefung zu erzielen. ACHTUNG: Nikotin ist akut toxisch und umweltgefährdend. </li><li> 100 l PBMCs in RPMI Komplettmedium in einer Konzentration von 1,5 x 10 6 Zellen / Vertiefung. Das Gesamtvolumen der Zellen, die mit WS-CM oder Nikotin werden 200 ul / Vertiefung sein. </li><li> Die Platte und Inkubation für 3 Stunden bei 37 ° C und 5% CO 2. </li><li> Waschen Sie die K562-Zellen durch Zugabe von 10 ml DPBS und Zentrifuge bei 400 × g für 8 Minuten bei RT. </li><li> Die Zellen mit 10 ml DPBS und zählen Sie die K562-Zellen. </li><li> Bereiten CFSE working Lösung durch Zugabe von 1 ul CFSE-Stammlösung zu 1 ml DPBS. </li><li> 1 ml des CFSE-Arbeitslösung in 1 ml der K562-Zellsuspension, die 1 - 2 x 10 7 Zellen. Vortex und Inkubation genau 2 Minuten lang bei RT. </li><li> Sofort im 200 ul FBS. Vortex und Inkubation genau 2 Minuten lang bei RT. </li><li> 10 ml RPMI Komplettmedium und Zentrifugieren Sie die Röhrchen bei 400 g für 8 Minuten bei Raumtemperatur. </li><li> Entfernen Sie den Überstand RPMI und brechen die Pellets und die Zellen werden mit 10 ml RPMI Komplettmedium und zählen Sie die CFSE-markierte K562-Zellen. </li><li> Durch Zentrifugieren der Platte bei 300 × g für 3 min bei RT Waschen der PBMCs. Saugen Sie den Überstand durch Dekantieren der Flüssigkeit. Setzen Sie den Deckel und mischen Sie den Boden der Platte. Fügen Sie 200 ul RPMI Komplettmedium und ein weiteres Mal wiederholen Waschschritt. </li><li> Hinzufügen CFSE-markierte K562-Zellen in einem Verhältnis von 1:15 (100.000 K562s: 1.5 x 10 6 PBMCs) in jede Probenvertiefung der PBMC Platte und weiteren incubate 5 h bei 37 ° C und 5% CO 2. </li><li> Durch Zentrifugation bei 300 × g für 3 min bei RT Waschen der Zellmischung. Saugen Sie den Überstand durch die Flüssigkeit verworfen. Setzen Sie den Deckel und mischen Sie den Boden der Platte. </li><li> Fügen Sie 200 ul des Laufpuffers und wiederholen Sie die in Schritt 10,14 noch einmal beschrieben Waschschritt. </li><li> Hinzufügen 95 ul Laufpuffer, gefolgt von 5 ul 7AAD zu jeder Vertiefung für ein Gesamtvolumen von 100 ul / Vertiefung. Inkubieren der Platte in der Dunkelheit bei Raumtemperatur für 15 min. </li><li> Füge 100 ul Laufpuffer in jede Vertiefung und übertragen das gesamte Volumen der Zellsuspension aus jeder Vertiefung der Platte, um die Cluster-Röhrchen und Zytometer erwerben die Proben auf Fluss. </li><li> Bestimmen Sie den Prozentsatz der 7AAD-positive und CFSE-positiven Zellen mit Durchflusszytometrie-Analyse-Software. </li></ol>

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<li>Taga, K., Yamauchi, A., Kabashima, K., Bloom, E. T., Muller, J., Tosato, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Target-induced+death+by+apoptosis+in+human+lymphokine-activated+natural+killer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Target-induced death by apoptosis in human lymphokine-activated natural killer cells.</a> Blood. 87, 2411-2418 (1996).</li>
</ol>

Die Autoren erklären, dass keine Interessenkonflikte bestehen.

Wir und andere haben vorher gezeigt, dass die Behandlung der PBMCs mit TPPs drückt mehreren Antworten, von denen die Expression und Sekretion von Zytokinen und funktionellen Maßnahmen wie Ziel zelltötende 14. Die in der bisherigen Arbeit beschriebenen experimentellen Methoden erfordern längere Inkubationszeiten und waren bescheiden in der Größe 14. Angesichts der potentiellen Anwendungen dieser attraktiven ex vivo Modell für Grundlagen- und angewandten Forschung haben wir untersucht, ob ei...

Ein wesentlicher Körper des Wissens verweist auf die negativen gesundheitlichen Auswirkungen von chronischen Zigarettenrauchen, einschließlich Herz-Kreislauf-Erkrankungen (CVD), chronisch-obstruktiver Lungenerkrankung (COPD) und Krebs 1,2. Chronischen Rauchens ist bekannt, Entzündung und Immunsuppression verursachen, und diese Veränderungen werden berichtet, um zu einer erhöhten Gefahr der mikrobiellen Infektion und Krebs bei Rauchern 3 beitragen. In-vitro- und ex-vivo-Techniken nützlich sind bei der Aufklärung der molekularen Grundlage der pathophysiologischen Wirkungen Zigarettenrauch 4-9 (Tabelle 1) und werden als wichtige Instrumente zur Führung des Schwellen Regulierung verschiedener Tabakwaren 10,11 anerkannt. Zum Beispiel haben wir gezeigt, dass brennbare Tabakprodukt Zubereitungen (TPPs) wie Vollrauch konditioniertes Medium (WS-CM) und die Gesamtpartikelmaterial (TPM) sind weitaus zytotoxische und schädlich fürDNA als nichtbrennbar TPPs oder Nikotin 12,13. In Übereinstimmung mit der veröffentlichten Arbeiten wurde kürzlich berichtet, dass brennbare TPPs oder Nikotin 12,13. In Übereinstimmung mit der veröffentlichten Arbeiten, die wir vor kurzem berichtet, dass brennbare TPPs verursacht deutliche Immunsuppression. Dies wurde durch die Suppression der Toll-like Rezeptor (TLR) -Liganden belegt, stimuliert Zytokinsekretion und Zielzelle (K562) Tötung durch PBMCs in einem ex vivo-Modell 14. Angesichts der Bedeutung der Entzündung im Zigarettenrauch induzierten Krankheitsprozesse wird eine weitere Optimierung der Testbedingungen, die immunmodulatorische Wirkung von Zigarettenrauch zu bewerten in diesem Bericht. Die ex-vivo-Untersuchungen in der Regel gemessen und intrazelluläre Zytokine sowie die zytolytische Funktion von zytotoxischen T und NK-Zellen in K562-Zellen zu töten Assays 14. Die Assays beteiligt Vorinkubation mit WS-CM und Nikotin und nachfolgende Stimulation von PBMCs mit TLR-Agonisten über einen Zeitraum von 3 Tagen; die endgültige Auslesen durchgeführt werden unter Verwendung von Enzym-Immuntests (ELISAs) und / oder Durchflusszytometrie. Wir verwendeten bakteriellen Lipopolysaccharid (LPS), die TLR-4-Rezeptoren bindet und stimuliert PBMCs, was zur Produktion von intrazellulären Cytokinen und Sekretion von Zytokinen. Zusätzlich zur Optimierung der verschiedenen Assayschritte zum Auswerten der immunmodulatorischen Wirkung von TPPS präsentieren wir auch Verfahren zur Isolierung von PBMCs, Zelltodassays und IL-8 Quantifizierung. Diese Methoden angewendet werden, um andere Forschungsfragen anzugehen und weiter verfeinert, um Tabakwaren in der Regelungszusammenhang zu bewerten. Tabelle 1 veröffentlichte Berichte über In-vitro- und Ex-vivo-Methoden zur Varilux pathophysiologischen Wirkungen von Tabakprodukt Vorbereitungen studieren CS, Zigarettenrauch Medium. CSC, Zigarettenrauch Kondensat; CSE, Zigarettenrauch-Extrakt; ELISA, enzyme-linked immunosorbent assay; GADPH, Glyceraldehyd-3-phosphatdehydrogenase; qPCR, quantitative Polymerase-Kettenreaktion; RT, Echtzeit quantitative Polymerase-Kettenreaktion; TS, Tabakrauch. <table><tbody><tr><td> Autor (Studienjahr) </td><td> Laan et al. (2004) </td><td> Moodie et al. (2004) </td><td> Oltmanns et al. (2005) </td><td> Vayssier (1998) </td><td> Erden et al. (2004) </td><td> Birrell et al. (2008) </td></tr><tr><td> Verwendeten Zellen </td><td> Menschen bronchiale Endothelzellen (BEAS-2B), humanen Neutrophilen </td><td> Menschen Alveolarepithelzellen (A549) </td><td> Menschlichen glatten Atemwegsmuskulatur (HASMC) </td><td> Menschen premonocytic U937-Zellen, menschlichen Monozyten </td><td> Alveolaren Typ II Epithelzellen (ATII) </td><td> Humanen monozytärenZellinie (THP-1), menschliche Lungenmakrophagen </td></tr><tr><td> TPP verwendet </td><td> CSE </td><td> CSC </td><td> CSE </td><td> TS </td><td> CSE </td><td> CS </td></tr><tr><td> Methode verwendet </td><td> ELISA, qPCR, Migration, Elektroschalt </td><td> Immunhistochemische Chemie, Elektrophorese Array Kit, RT-PCR, ELISA </td><td> ELISA, RT-PCR, qPCR, Elektrophorese </td><td> Gel-Mobility-Shift- </td><td> Lichtmikroskopie, Elektronenmikroskopie, Elektrophorese, ELISA </td><td> qPCR, ELISA, E-toxate Kits (Sigma), p65-Platten-Assay (TransAM), Elektrophorese, verschiedenen Immunoassay-Kits </td></tr><tr><td> Maßnahme </td><td> IL-8, GM-CF, AP-1, NF-KB, Migration </td><td> Histonacetyltransferasen, Histondeacetylasen, NF-kappaB, IL-8, pI &amp; kgr; B-α, GADPH </td><td> HO-1, GADPH, RANTES, IL-8, Eotaxin </td><td> Hitzeschock / Stressproteine ​​(HSP / Hsp70), HF-Transkriptionsfaktor, NF-kB,TNF-α </td><td> Surfactant Protein (SP-A, SP-C), IL-8, MCP-1, GRO-α, TNF-α, IL-1β, IFN-γ </td><td> IL-8, IL-1β, IL-6, TNF-α, MIP1-α, GRO-α, MAPK / JNK / ERK-Phosphorylierung cJun: DNA-Bindung, Glutathion, p65: DNA-Bindung </td></tr><tr><td> Endergebnis </td><td> CSE herunterreguliert Zytokin-Produktion durch Unterdrückung der AP-1-Aktivierung. </td><td> H 2 O 2 und CSC verbessern Acetylierung von Histon-Proteine, zu verringern Histon-Deacetylase-Aktivität, differenziell reguliert proinflammatorische Zytokin-Freisetzung. </td><td> Zigarettenrauch kann die Freisetzung von IL-8 aus HASMC, durch TNF-α, 20% CSE weniger IL-8-Freisetzung, Hemmung der Eotaxin und RANTES erweitert durch Zigarettenrauch verursacht. </td><td> TS aktiviert HF Transkriptionsfaktor, der mit Hsp70-Überexpression und Hemmung der NFkB-Bindungsaktivität und TNF-α Freisetzung assoziiert war. </td><td> Reduzierte ATII Zellen abgeleiteten Chemokin Ebenen Kompromisse alveolar Reparatur, einen Beitrag zur Zigarettenrauch induzierten Alveolarschaden und Emphysem. </td><td> Daten liefern mechanistische Erklärung dafür, warum Raucher haben erhöhte Atmungsinfektionen. Unterdrückung des unspezifischen Reaktion wird durch einen Anstieg der IL-8 begleitet. </td></tr></tbody></table>

<table><tbody><tr><td>12 x 75 mm Röhrchen</td><td>BD Falcon</td><td>352058</td><td></td></tr><tr><td>15 ml konische Röhrchen</td><td>Corning</td><td>430790</td><td></td></tr><tr><td>2 ml Mikroröhrchen</td><td>Axygen</td><td>MCT-150-C-S</td><td></td></tr><tr><td>3R4F Referenzzigaretten</td><td>Univ. of Kentucky, College of Agriculture</td><td>3R4F</td><td></td></tr><tr><td>50 ml konische Röhrchen</td><td>Corning</td><td>430828</td><td></td></tr><tr><td>500 ml Flasche</td><td>Corning</td><td>430282</td><td></td></tr><tr><td>7AAD</td><td>BD Pharmingen</td><td>559925</td><td></td></tr><tr><td>96-Well-Flachbodenplatte</td><td>Termo Nunc</td><td>439454</td><td></td></tr><tr><td>96-Well-Rundbodenplatten</td><td>BD Falcon</td><td>353077</td><td></td></tr><tr><td>Zellkulturhaube</td><td>Thermo Scientific</td><td>1300 Series A2</td><td></td></tr><tr><td>Zentrifuge</td><td>Eppendorf</td><td>58110R</td><td></td></tr><tr><td>CFSE</td><td>Molekulare Sonden Life Technologies</td><td>C34554</td><td></td></tr><tr><td>Cluster-Röhrchen</td><td>Corning</td><td>4401</td><td>Gesundheitsschädlich bei Verschlucken, krebserregend</td></tr><tr><td>Cytofix/Cytoperm (Permwash)</td><td>BD Biosciences</td><td>555028</td><td>Entzündliches</td></tr><tr><td>DMSO (Dimethylsulfoxid)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>D8418</td><td></td></tr><tr><td>DPBS</td><td>Lonza</td><td>17-512F</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F2442</td><td></td></tr><tr><td>FCAP Array</td><td>BD Biosciences</td><td>652099</td><td>Software analysiert CBA-Daten</td></tr><tr><td>Filtereinheit</td><td>Nalgene</td><td>156-4020</td><td></td></tr><tr><td>Durchflusszytometer</td><td>BD Biosciences</td><td>FACS Canto II</td><td>8 Farben, bei Ex 405 und Em 785.</td></tr><tr><td>Durchflusszytometer</td><td>BD Biosciences</td><td>FACS Calibur</td><td>4 Farben bei Ex 495 und Em 785.</td></tr><tr><td>Software für die Durchflusszytometrie-Analyse</td><td>Tree Star</td><td>FlowJo</td><td></td></tr><tr><td>Gefrierbehälter</td><td>Nalgene</td><td>5100-0001</td><td>Enthält DMSO, Reizstoff</td></tr><tr><td>GogliPlug</td><td>BD Biosciences</td><td>555029</td><td>Karzinogen, reizend, ätzend</td></tr><tr><td>H2SO4</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>339741</td><td></td></tr><tr><td>Humanes entzündliches Zytokin Kit</td><td>BD Biosciences</td><td>551811</td><td></td></tr><tr><td>IFN-&gamma; V-500 Antikörper</td><td>BD Horizon</td><td>561980</td><td>Hautsensibilisator</td></tr><tr><td>IL-8 ELISA Kit</td><td>R and D Systems</td><td>DY208</td><td></td></tr><tr><td>Isolationspuffer</td><td>Isolymphe, CTL Scientific Corp.</td><td>1114868</td><td>Entzündbare Flüssigkeit, reizend</td></tr><tr><td>Isopropylalkohol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>W292907</td><td></td></tr><tr><td>L-Glutamin</td><td>Gibco Life Technologies</td><td>25030-081</td><td></td></tr><tr><td>LPS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L2630</td><td></td></tr><tr><td>MIP1-&alpha; PE Antikörper</td><td>BD Pharmingen</td><td>554730</td><td>Akute Toxizität, oral</td></tr><tr><td>Monensin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M5273</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S7653</td><td></td></tr><tr><td>Nikotin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>N3876</td><td>Akute Toxizität, Umweltgefahr</td></tr><tr><td>Parafilm</td><td>Bemis</td><td>" M"</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehyd</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P6148</td><td>Entzündlich, Hautreizung</td></tr><tr><td>Stift/Streptokokken</td><td>Gibco Life Technologies</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640</td><td>Gibco Life Technologies</td><td>11875-093</td><td></td></tr><tr><td>Laufpuffer</td><td>MACS Laufpuffer, Miltenyi Biotech</td><td>130-091-221</td><td></td></tr><tr><td>Th1/Th2 CBA Kit</td><td>BD Biosciences</td><td>551809</td><td></td></tr><tr><td>TNF-&alpha; Alexa Fluor 488 Antikörper</td><td>BioLegend</td><td>502915</td><td></td></tr><tr><td>Transferpipette</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-711-20</td><td></td></tr><tr><td>Tris Base</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T1503</td><td></td></tr></tbody></table>

methoden zur zytotoxizität und immunsuppression mit brennbarem tabakwaren vorbereitungen bewerten

Methods to Evaluate Cytotoxicity and Immunosuppression of Combustible Tobacco Product Preparations

Unter anderen pathophysiologischen Veränderungen, chronische Exposition gegenüber Zigarettenrauch verursacht Entzündungen und Immununterdrückung, die mit einer erhöhten Anfälligkeit von Rauchern um mikrobielle Infektionen und Tumorhäufigkeit in Verbindung gebracht wurden. Ex-vivo-Unterdrückung der Rezeptor-vermittelten Immunantworten in humanen peripheren mononukleären Blutzellen (PBMCs) mit Rauchbestandteile behandelt ist ein attraktiver Ansatz für die Mechanismen untersuchen und bewerten die möglichen langfristigen Auswirkungen der Exposition gegenüber Tabakwaren. Hier optimierten wir Methoden zur Ex-vivo-Tests unter Verwendung von PBMCs durch bakterielles Lipopolysaccharid, ein Toll-like Rezeptor-4-Liganden stimuliert durchzuführen. Die Auswirkungen der ganze Rauch-konditioniertes Medium (WS-CM) wurde eine brennbare Tabakprodukt Zubereitung (TPP) und Nikotin auf die Zytokinsekretion und die Zielzelle Tötung durch PBMCs in den ex-vivo-Tests untersucht. Wir zeigen, dass Zytokine IFN-γ, TNF, IL-10, IL-6 und IL-8 und intrazellulären Cytokinen IFN-47 ;, TNF-α und MIP-1α in WS-CM-belichteten PBMCs drückt. Die cytolytische Funktion von Effektorzellen PBMCs, wie durch einen K562 Targetzelle töten Assay bestimmt wurde ebenfalls durch Einwirkung von WS-cm verringert; Nikotin war minimal wirksam in diesen Assays. Zusammenfassend stellen wir eine Reihe von verbesserten Assays, um die Auswirkungen TPPs in ex-vivo-Untersuchungen zu bewerten und diese Methoden ohne weiteres zur Prüfung andere Produkte von Interesse angepasst werden.

Die Ergebnisse wurden als Mittelwert ± Standardfehler des Mittelwerts (vier Spenderproben) dargestellt. Des Studenten-t-Tests zwischen den behandelten und unbehandelten Kontrollproben wurde unter Verwendung von Excel-Software sowie die T-Testvergleiche für alle Behandlungen mit ihren entsprechenden Kontrollen. Die statistische Signifikanz wurde angegeben: * P &lt;0,05; ** P &lt;0,005; *** P &lt;0,0005. Um den Effekt der Einwirkung von WS-CM und Nikotin zu messen, wurden PBMCs mit verschieden...

Unter Verwendung optimierter ex vivo Assays aus humanen mononukleären Blutzellen (PBMC) haben wir gezeigt, dass ein brennbares Tabakprodukt die rezeptorvermittelten intrazellulär sekretierten Zytokine und die zytolytische Fähigkeit von Effektor-PBMCs deutlich unterdrückt. Diese Schnelltests können bei der Produktbewertung und dem Verständnis der potenziellen Langzeitwirkungen der Tabakexposition nützlich sein.

Methoden zur Zytotoxizität und Immunsuppression mit brennbarem Tabakwaren Vorbereitungen Bewerten

Among other pathophysiological changes, chronic exposure to cigarette smoke causes inflammation and immune suppression, which have been linked to ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, die Auswirkungen der Zubereitung von Tabakprodukten auf die Zytokinausschüttung und die Zielzelllyse durch PBMCs zu bewerten. Dies wird erreicht, indem kultivierte PBMCs zunächst mit ganzem Rauchkondensat, Medium oder Nikotin behandelt werden und anschließend eine intrazelluläre Färbung der behandelten PBMCs durchgeführt wird, um ihre Zytokinproduktion zu bestimmen. Alternativ werden mit CFSE markierte K562-Zellen gemeinsam mit PBMC-Effektorzellen kultiviert, die mit ganzem Rauchkondensat behandeltes Medium erhalten haben, und die Vitalität der K562-Zellen wird mittels 7-AAD-Färbung bestimmt.Schließlich werden die Wirkungen der rauchbaren Tabakproduktpartikel auf die P-BMCs aus beiden Assays mittels Durchflusszytometrie gemessen. Die Hauptvorteile unserer Methoden gegenüber bestehenden Methoden wie dem Chromfreisetzungsassay oder dem ALI-Spot sind, dass unsere Methoden hochdurchsatzfähig, nicht radioaktiv sind und wir die Zellfunktionalität messen können. Obwohl diese Methode Einblicke in die biologischen Wirkungen von Tabakproduktpartikeln ermöglicht.Es kann auch zur Bewertung anderer Verbindungen angewendet werden, die die Toll-ähnlichen Rezeptor-vermittelten und STIC-Funktionen von PBMC-Effektorzellen beeinflussen. Vor Beginn der Färbeprozedur: Verdünnen Sie das konditionierte Gesamtrauch, Medium und Nikotin in RPMI-Vollmedium auf die angegebenen Konzentrationen auf ein Gesamtvolumen von 100 Mikrolitern pro Vertiefung in einer 96-Loch-Platte.Anschließend 100 µL P-BMCs hinzufügen, die in komplettem Medium bei einer Konzentration von 1 × 10⁶ Zellen pro Vertiefung suspendiert sind, sodass sich ein Gesamtvolumen von 200 µL pro Vertiefung ergibt. Danach die Platte abdecken und bei 37 °C und 5 % CO₂ inkubieren. Nach drei Stunden die Zellen waschen und den Überstand abpipettieren.Danach die Platte erneut abdecken und vortexen, um die Pellets aufzulösen. Die Zellen zwei weitere Male waschen, einmal mit eiskaltem Puffer und einmal nach der zweiten Wäsche mit komplettem Medium. Behandeln Sie sie mit 200 µL pro Vertiefung komplettem Medium, das mit Golgi-Plug und LPS ergänzt wurde, für sechs Stunden bei 37 °C und 5 % CO2.Waschen Sie die Zellen anschließend mit eiskaltem Puffer und behandeln Sie sie nach 20 Minuten mit je 100 Mikrolitern Cyto-Fix pro Mulde bei vier Grad Celsius. Waschen Sie die Zellen dreimal mit eiskaltem Perm-Wash. Geben Sie dann je 45 Mikroliter Cyto-Perm in jede Mulde, gefolgt von jeweils fünf Mikrolitern der aufgeführten Antikörper. Nach 30 Minuten bei vier Grad Celsius waschen Sie die Zellen dreimal und fixieren sie in 200 Mikrolitern eiskalter, 2 %iger Paraformaldehydlösung.Überführen Sie die Zellen anschließend in 12 × 75 mm-Röhrchen und analysieren Sie die Proben an einem Durchflusszytometer. Nachdem eine Platte mit nikotinhaltigen Produkten behandelten PBMC wie gerade gezeigt hergestellt wurde, waschen Sie eine Kultur von K 5 62-Zellen, die bei 80 % Konfluenz in 10 Milliliter DPBS geerntet wurden. Suspendieren Sie das Pellet in fünf Milliliter DPBS und zählen Sie die Zellen.Fügen Sie dann ein Milliliter frisch zubereitete CFSE-Arbeitslösung zu ein bis zwei mal 10 hoch 7 K 5 62-Zellen in einem Milliliter komplettem Medium hinzu und dispergieren Sie die Zellfärbung durch Vortexen. Inkubieren Sie die Zellen bei Raumtemperatur; fügen Sie nach genau zwei Minuten 200 Mikroliter FBS hinzu und vortexen Sie die Zellen erneut, gefolgt von einer weiteren zweiminütigen Inkubation. Nach der zweiten Inkubation waschen Sie die Zellen in 10 Milliliter komplettem Medium, resuspendieren das Pellet anschließend in weiteren 10 Milliliter komplettem Medium und zählen Sie die Zellen.Zentrifugieren Sie nun die mit Tabak behandelten pBMCs und dekantieren Sie das Überstand. Danach setzen Sie den Deckel wieder auf, resuspendieren die Zellen durch Vortexen und waschen sie mit 200 µL komplettem Medium pro Vertiefung. Um den Killerversuch zu starten, geben Sie die mit CFSE markierten K562-Zellen in einem Verhältnis von 1 zu 15 zu den PBMCs hinzu und inkubieren die Kokultur bei 37 °C und 5 % CO2.Nach fünf Stunden die Zellen abzentrifugieren und den Überstand verwerfen. Die Pellets durch Vortexen suspendieren und die Zellen anschließend mit 200 Mikrolitern Laufpuffer pro Vertiefung waschen, dann 95 Mikroliter Laufpuffer sowie 5 Mikroliter 7 A a d hinzufügen, sodass ein Gesamtvolumen von 100 Mikrolitern pro Vertiefung vorliegt. Abschließend die Zellen 15 Minuten im Dunkeln bei Raumtemperatur inkubieren.Dann 100 Mikroliter Laufpuffer zu jedem Well hinzufügen und das gesamte Volumen in die entsprechenden passenden Fax-Röhrchen überführen, um den Prozentsatz an sieben a a D- und CFSE-positiven Zellen zu bestimmen. Mithilfe der Durchflusszytometrie wird eine dosisabhängige Zunahme des Zelltods nach 24 Stunden mit vollständigem rauchkonditioniertem Medium beobachtet, wobei nahezu 80 % der Zellen bei vier Mikrogramm pro Milliliter equin-nicotinischer Einheiten tot sind. Die Behandlung der pBMCs jedoch über lediglich drei Stunden führt selbst bei fünf Mikrogramm pro Milliliter equin-nicotinischer Einheiten des vollständigen rauchkonditionierten Mediums nach 24 Stunden nicht zu einer signifikanten Toxizität.Ein vergleichbarer Grad an Zelltod wird nicht vor der Behandlung mit 3000 Mikrogramm pro Milliliter Nikotin nach drei Stunden beobachtet; die Nikotinbehandlung verursacht keinen messbaren Zelltod vor der Konzentration von 2000 Mikrogramm pro Milliliter unter Ganzrauchbedingungen, Medium und Nikotin. Die anschließende Stimulation des TLR4-Rezeptors durch LPS führt zu einer dosisabhängigen Abnahme der sezernierten Zytokine, obwohl das Ausmaß der Suppression zwischen den einzelnen Zytokinen variiert. Außerdem wird bei gleichzeitiger Behandlung der Zellen mit LPS und Golgi-Plug über einen Zeitraum von nur sechs Stunden eine Abnahme der Anzahl intrazellulär zytokinpositiver Zellen nach Exposition gegenüber dem Ganzrauchbedingungsmedium beobachtet, selbst bei niedrigeren äquinikotinären Einheitskonzentrationen im Vergleich zur Nikotinexposition.Tatsächlich zeigen die Ergebnisse dieses Abtötungsassays, dass die Exposition gegenüber 1,56 Mikrogramm pro Milliliter vollständigem Rauchkonditionmedium die Abtötungsfähigkeit der effektorischen PBMC-Population im Vergleich zur Kontrolle und den niedrigeren Dosen signifikant verringert. Währenddessen beeinträchtigt die Behandlung mit Nikotin in hohen oder niedrigen Konzentrationen die Abtötungsfähigkeit der effektorischen PBMC-Population nicht. Bei der Durchführung dieser Verfahren ist es wichtig, präzise bei der CFSE-Markierung sowie bei den Antikörperserien, der Markierungszeit und den Inkubationstemperaturen vorzugehen.Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man Antikörperfärbetechniken in der Durchflusszytometrie anwendet, um die Wirkungen von Tabakprodukten oder anderen Behandlungen auf periphere mononukleäre Blutzellen zu bestimmen.

methods-to-evaluate-cytotoxicity-immunosuppression-combustible

Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie und Infektion

Pulmonale Epithelzellen aus den Atemwegen von Mäusen isoliert und kultiviert bei Luft-Flüssigkeit-Grenzfläche als ein Modell der differenzierten respiratorischen Epithels. Ein Protokoll ist für die Isolierung, Kultivierung und Freilegen dieser Zellen zu Mainstream Zigarettenrauch beschrieben, um molekulare Antworten zu diesem Umweltgift zu studieren.

Isolierung von Maus respiratorischen Epithelzellen und der Exposition gegenüber Experimental Zigarettenrauch bei Air Liquid-Interface

Dieses Video zeigt die Wirkung von Tabakproduktzubereitungen, TPPs, auf die Zytokinproduktion aus menschlichen mononukleären Zellen im peripheren Blut mittels Durchflusszytometrie. Die Behandlung der Zellen mit TPP reguliert die Produktion von proinflammatorischen Zytokinen herunter, die nach Lipopolysaccharidstimulation geschätzt wird, gefolgt von Immunfärbung und Durchflusszytometrie-Analyse.

Analyse der Wirkung von Tabakproduktzubereitungen auf die Zytokinproduktion mittels intrazellulärer Färbung und Durchflusszytometrie

In diesem Video untersuchen wir die Wirkung eines ganzen rauchkonditionierten Mediums, einer brennbaren Tabakproduktzubereitung, auf die Abtötung von K562-Zellen durch mononukleäre Zellen des Effektorsperipheriebluts.

Abtötung von K562-Zellen durch mononukleäre Zellen des peripheren Blutes, die Tabakzubereitungen ausgesetzt waren

Dieses Video veranschaulicht eine Technik zur Bewertung der Zytotoxizität in menschlichen präzisionsgeschnittenen Lungenschnitten durch den WST-1-Assay. Menschliche, präzisionsgeschnittene Lungenscheiben werden inkrementellen Konzentrationen einer zytotoxischen Chemikalie ausgesetzt, um ihre Zytotoxizität zu quantifizieren. Eine Abnahme der Farbintensität dient als Bestätigung für die schädliche Wirkung der Chemikalie auf die Lungenzellen.

Ein Assay zur Messung der chemisch induzierten Zytotoxizität in präzisionsgeschnittenen Lungenscheiben von Menschen

Das Ziel dieses Protokolls ist es, menschliche organotypische 3D-Bronchial- und Nasengewebemodelle dem Mainstream-Zigarettenrauch (CS) an der Luft-Flüssig-Grenzfläche auszusetzen. Der Einfluss von CS auf das Gewebe wird dann mit Hilfe eines Cytochrom-P450-Aktivitätsassays, einer Zilienschlagmessung und eines systembiologischen Ansatzes untersucht.

Folgenabschätzung Wiederholte Exposition von organotypischen 3D bronchiale und nasale Zellkulturmodelle zu Whole Zigarettenrauch

Ziel der Studie war es, die biologische Wirkung von 15 Zigarettenrauchbestandteilen mit einer Kombination aus einem impedanzbasierten Echtzeit-Zellanalysator und einer High-Content-Screening (HCS)-basierten Plattform für die toxikologische Bewertung in vitro zu bewerten. Diese Studie gibt Aufschluss über die wirksamen Dosen, die Toxizität und die Wirkungsweisen der getesteten Verbindungen.

High Content Screening-Analyse die toxikologischen Wirkungen von gefährlichen und potenziell gefährlichen Inhaltsstoffe (HPHC) zur Bewertung

Dieses Protokoll beschreibt eine Methode, um Nagetiere elektronischen Zigarettendampf (E-Dampf) und Zigarettenrauch auszusetzen. Die Belichtungskammern werden durch die Modifizierung von Anästhesiekammern mit einem automatisierten Pumpensystem konstruiert, das E-Dampf- oder Zigarettenrauch an Nagetiere liefert. Dieses System kann leicht modifiziert werden, um viele experimentelle Endpunkte unterzubringen.

Vergleich der Effekte von elektronischen Zigarettendampf und Zigarettenrauch in einem Roman<em&gt; In vivo</em&gt; Belichtungssystem

Hier beschreiben wir eine programmierbare Laborgerät, das verwendet werden kann, um Auszüge der herkömmlichen Zigarette Rauch und elektronische Zigarette Aerosol zu erstellen. Diese Methode bietet ein nützliches Werkzeug, um direkte Vergleiche zwischen herkömmlichen Zigaretten und e-Zigaretten und ist zugänglich Einstiegspunkt in die elektronische Zigarette-Forschung.

Ein Mikrocontroller betrieben Gerät zur Erzeugung von flüssige Extrakte aus herkömmlichen Zigarette Rauch und elektronische Zigarette Aerosol

Im Hinblick auf die 3R-Prinzips entwickeln sich Atemwege Modelle als Alternativen zum Tierversuch. Vor allem für die Risikobewertung der Atemwege Substanzen ist ein Mangel an entsprechenden Assays. Hier beschreiben wir die Verwendung von menschlichen Lunge präzise geschliffenen Scheiben für die Bewertung von Stoffen in der Luft.

Bewertung der zytotoxischen und immunmodulatorische Wirkung von Substanzen im menschlichen Precision-Cut Lung Slices

Elektronische Zigarette (e-Cig) Benutzer steigen weltweit. Jedoch ist wenig, über die gesundheitlichen Auswirkungen induziert durch eingeatmete e-Cig Aerosole bekannt. Dieser Artikel beschreibt eine e-Cig Aerosol Generation Technik für tierische Belichtungen und anschließende toxikologische Studien geeignet. Solche Protokolle sind erforderlich, um experimentell reproduzierbar und standardisierte e-Cig Belichtung Systeme zu etablieren.

Generation der elektronischen Zigarette Aerosol durch einen dritten Generation Maschine dampfen: Anwendung auf toxikologische Studien

Wir etablieren ein standardisiertes in vitro Modell zur Untersuchung der Exposition von Cannabisdampf an der Grenzfläche zwischen Luft und Flüssigkeit. Dieses Modell bietet einen systematischen Ansatz zur Untersuchung der Auswirkungen von verdampftem Cannabis und adressiert das wachsende Interesse an Cannabis-Vaporizern als Alternative zum Rauchen.

In vitro Cannabis-Exposition von Lungenepithelzellen an der Luft-Flüssigkeits-Grenzfläche

Erfahren Sie Methoden zur Bewertung von Zytotoxizität und Immunsuppression durch brennbare Tabakprodukte an humanen PBMCs mittels Durchflusszytometrie. Diese Technik ermöglicht die Analyse von Zytokinsekretion und zellulärer Zytotoxizität.

Methoden zur Zytotoxizität und Immunsuppression mit brennbarem Tabakwaren Vorbereitungen Bewerten

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