Name: Entwicklung von Inhibitoren von Protein-Protein-Wechselwirkungen durch REPLACE: Anwendung auf die Konzeption und Entwicklung Nicht ATP Competitive CDK-Inhibitoren (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-10-26T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 33 s
Description: Erfahren Sie die REPLACE-Strategie zur Entwicklung von Inhibitoren für Protein-Protein-Wechselwirkungen durch rechnergestützte Chemie und Fragmentidentifikation. Diese Methode wandelt Peptid-Inhibitoren in arzneimittelähnliche Moleküle um.

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Wir danken Dr. Douglas Pittman und Michael Wyatt für ihre Unterstützung bei der Zellkultur und Dr. Wyatt und Frau Erin Anderson für ihre Hilfe bei der Entwicklung der Bindungsassays. Wir danken Mike Walla und Bill Cotham vom Department of Chemistry and Biochemistry an der University of South Carolina für ihre Unterstützung bei der Massenspektrometrie, Helga Cohen und Dr. Perry Pellechia für die NMR-Spektrometrie. Diese Arbeit wurde von den National Institutes of Health durch das Forschungsprojektstipendium 5R01CA131368 finanziert.

1. Computational Identifizierung potenzieller Kleinmolekül Verkappungsgruppen Hinweis: Im Prinzip kann eine Vielzahl von Docken oder Pharmakophor Suchverfahren verwendet werden, um potentielle Verkappungsgruppen vorherzusagen. Der Hauptzweck der theoretischen Studien in REPLACE ist es, kleine Moleküle, die die Eigenschaften und Wechselwirkungen der Aminosäuren, die substituiert sind, behalten zu identifizieren. <ol><li> Validierung des LigandFit Docking-Protokoll 14 </li></ol> Hinweis: In früheren Studien, die Docking-Verfahren (LigandFit 15, ein Modul in der Molecular Modelling-Programm-Suite, Entdeckung Studio 3.0) wurde überprüft, um sicherzustellen, dass dieser Algorithmus ist ausreichend, um die Bindungsarten bekannt Ncaps zu reproduzieren und zu zeigen, dass die Ergebnisse für die erhaltenen unbekannte Verbindungen sind vorausschauende 14. <ol style="margin-left: 40px;"><li> Mit den folgenden Schritten (1,2 bis 1,5), zu identifizieren optimalen Parameter für LigandFit wie folgt: PLP1 enEnergiegitter für Pose Generation, Minimierung der erzeugten Posen und der PLP1-Bewertungsfunktion für die Analyse von Posen. </li><li> Um die erhaltenen Konformationen zu beschränken und Liganden in geeigneter Weise zur Bildung einer kovalenten Bindung in dem verkappten Peptid Position befindet, die Indol-Stickstoff und Amid-Stickstoffatome von Trp217 und Gln254 jeweils als Wechselwirkung Filter für Wasserstoffbrückenbindung. </li><li> Design und Dock eine Bibliothek von Fragment Alternativen in die CDK2 / Cyclin A-Rezeptor (2UUE). Priorisieren Potenzial Capping-Gruppen zur Synthese und kommerzielle Sourcing auf Basis von Scoring-PLP1, Interaktionen mit Interaktionsfilter und Komplementarität mit der CBG. Die verschiedenen Schritte für LigandFit Docking erforderlich sind wie folgt. </li></ol><ol start="2"><li> Herstellung der Rezeptorbindungsstelle 14 <ol><li> Importieren Sie die CDK2 / Cyclin eine Kristallstruktur (PDB ID: 2UUE) in eine Visualisierungsfenster in der Software. Diese Struktur enthält die zuvor identifizierten FLIP 5-methyl-1-phenyl-1H-1, 2,4-triazol-3-carboxamido (3,5-DCPT) RLIF den Cyclin Nut gebunden (Figur 3). </li><li> Löschen oder halten Sie an Ort und Stelle die Reste RLIF (C-Terminus). Wenn die Peptidsequenz beibehalten wird, verwenden die N-terminale Aminogruppe des Peptids als Interaktionsfilter für den Liganden. Von den &quot;Rezeptor-Ligand-Interaktionen&quot; Werkzeuge, erstellen Sie eine Kugel um den N-Kappe 3,5-DCPT von Show / site ausblenden Kugel. Die Kugel wird erstellt, um den aktiven Bereich in der Bindungsstelle in dem die Liganden-Rezeptor-Wechselwirkungen dürfen während der Bindung auftreten definieren. </li><li> Definieren Sie die Bindungsstelle weiter von der &quot;zu finden Website als Volumen von ausgewählten Liganden&quot;, und löschen Sie den Liganden 3,5-DCPT aus dem Protein. Führen Sie diesen Schritt, um die Lautstärke der Bindung innerhalb der Sphäre geschaffen definieren. </li><li> Eingestellt Indolstickstoff und Amid-Stickstoffatome der Reste Trp217 und Gln254 als Interaktionsfilter zur Wasserstoffbrückenbindung. Stellen Sie die Interaktion Filter, so dass nur die Posen, die interact mit den Atomen des Satzes Rückstände während des Docking-Prozess daher die Erhaltung wichtigen Wechselwirkungen in den angedockten Posen gefiltert werden. </li></ol></li><li> Herstellung von Liganden 14 <ol><li> Design eine Bibliothek von 100 Potential Verkappungsgruppen anhand von Kriterien, einschließlich Molekulargewicht von weniger als 500, das Vorhandensein einer Carboxylatgruppe zur Ligation mit dem trunkierten Peptids und Aufnahme geeigneter hydrophober Gruppen (substituierte Phenylgruppe) Van der Waals-Wechselwirkung im Sekundärfach als in Tabelle 1 gezeigt. </li><li> Wählen heterocyclische Ringe zum Nachahmen Peptid Wasserstoffbindungswechsel mit Trp217 und Substituenten enthalten zum Ersetzen Ionenpaar-Wechselwirkungen zwischen basischen Seitenketten des HAKRRLIF. Dock und die Liganden als jeweilige Aldehydmolekülen so daß der Carbonylsauerstoff mit dem Amid-Stickstoffatom Gln254 ähnlichen Peptid-Rückgrat in der Stammpeptids (Tabelle 1) zu interagieren. </li><li> Vor docKönig, zu minimieren, entwickelt Liganden auf einen niedrigen Energie Konformation und bereiten in geeigneter Ionisationszustand mit der &quot;Prepare-Liganden&quot; Protokoll. Zu ziehen und in die Software importiert exportieren diese potenziellen N-Kappen in der SDF-Datei-Format in ChemDraw für ein Spreadsheet vor. Hinweis: Bereiten Liganden-Protokoll wird verwendet, um alle Liganden zu minimieren, um auf den niedrigsten Energiezustände angedockt werden und die Ionisation Kosten wurden den geltenden Atomen angewandt. Default-Parameter für diesen Schritt verwendet. </li></ol></li><li> Docking der Liganden in die Cyclin A Groove 14 <ol><li> Wählen Sie das LigandFit Routine von Rezeptor-Ligand-Interaktionen Protokollsatz der Software. Verwenden Sie den Rezeptor und die vorbereiteten Liganden als Eingabe für dieses Protokoll. </li><li> Für diese Läufe wählen PLP1 als Energienetz, stellt fest, dass Energie minimiert werden, und dass die Anzahl der erzeugten Posen als 10. Lassen Sie alle anderen Parameter auf die Standardwerte. Hinweis: LigandFit isteine Docking-Verfahren, das mit der aktiven Stelle eines Proteins unter Verwendung einer Form basiert Vergleichsfilter, die mit einer Monte Carlo Konformationssuche Algorithmus kombiniert wird, zu erkennen und erzeugen kann Posen des hohen Grad an Komplementarität und potentielle Affinität. Das Energienetz von der Docking-Programm verwendet wird, ist das Kraftfeld zur Erzeugung von Ligand-Rezeptor-Wechselwirkungen und mögliche Posen. PLP1 stückweise linear Potential der spezifisch priorisiert Wasserstoffbindungswechsel und wobei die PLP Atomtyp wird für jeden Nicht-Wasserstoffligandenatom oder Nicht-Wasserstoff-Rezeptor Atom zugewiesen. </li></ol></li><li> Analyse der Ergebnisse <ol><li> In der ersten Instanz, stellt Anzeige im Visualizer Programm und dann sortieren nach absteigenden Werten der PLP1-Score. Verwenden Bewertungsfunktionen wie PLP1 abzuschätzen die Bindungsaffinität eines verankerten Liganden, der einen Ligandenkandidaten darstellen Geometrie und nicht-kovalente Wechselwirkung mit der Zielrezeptorstruktur. Hinweis: Hier wird das PLP1 Bewertungsfunktion zu g gefunden wurdeive die besten Ergebnisse, da es eine Abschätzung der Wasserstoffbrückenbindungen enthält. </li><li> Analysieren Sie visuell den oberen 25% der erzielte Posen für 1) superimposability mit dem bekannten Capping-Gruppe (mit einer relativen mittlere quadratische Abweichung (RMSD) Wert von weniger als 2 a), 2) erfüllt Interaktion Filter und 3) visuelle Komplementarität mit dem Cyclin Nut . Es wird angenommen, daß ein korrekt angedockt darstellen (im Vergleich zu einem experimentellen Aufbau) eine RMSD-Wert von &lt;2 A. </li><li> Untersuchen Posen für visuelle Komplementarität, die als mit effizienten Füllung der Bindungstasche in einer Weise, die mit bekannten Struktur-Wirkungsbeziehungen ist definiert ist. Interaktion Filter sind so eingestellt, Atom Beschränkungen, die intermolekularen Kontakte bekannt kritisch für die Bindung und / oder sind erforderlich, um das Potenzial Capping-Gruppe in die richtige Geometrie für Amidbindungsbildung positionieren zu sein erfordern. Drei Beispiele für angedockt Posen der potentielle N-Verkappungsgruppen machen Wasserstoffbrücken mit Zusan Filter werden in 4 gezeigt. </li></ol></li></ol> 2. Synthese und Charakterisierung von potentiellen N -capping Gruppen <ol start="1"><li> Synthese von N-Verkappungsgruppen. </li><li> Für die Synthese, verwenden alle kommerziellen Ausgangsmaterialien, Lösungsmittel und Reagenzien, wie erhalten. Synthetisieren potentielle N-Verkappungsgruppen mit herkömmlichen organischen Synthesechemie (Figur 5 12,13 für ein Beispiel). </li><li> Zuführen Dünnschichtchromatographie (TLC) auf Kieselgel zum Überwachen Reaktionen. <ol><li> Löse das Ausgangsmaterial und die Reaktionsmischung (1 mg) in der mobilen Phase und vor Ort sie auf der DC-Platte unter Verwendung von Kapillaren. </li><li> Legen Sie die DC-Platte in der Kammer enthält, mobile Phase (Ethylacetat und Hexan in einem 35:65 Verhältnis). Sobald die mobile Phase 90% der DC-Platte erreicht, zu entfernen und an der Luft trocknen Sie die Platte. </li><li> Verwenden Sie UV-Licht auf das Ausgangsmaterial und Reaktionsmischungen als sichtbare Flecken zu erkennen. Calculate die R f aller Punkte (Verhältnis der Entfernung von der Stelle und der mobilen Phase gereist). Anmerkung: Die Reaktion ist beendet, wenn kein Punkt an der R f des Ausgangsmaterials gesehen. </li></ol></li><li> Nach der Vollendung der Reaktion Aufarbeitung des Reaktionsgemisches, indem in einem Scheidetrichter und Waschen mit wässrigen Säure- oder Basenlösung entsprechend. Sammeln des organischen Lösungsmittels verdampft es in einem Rotationsverdampfer und Trocknen des Rohproduktes im Vakuum erhalten. </li><li> Man löst 500 mg Rohprodukt in 3-5 ml geeigneten Lösungsmittel, und fügen Sie zu einer 1 g Kieselsäure oder RP18 Samplet und unter Luft trocknen. Legen Sie die Samplet enthält das rohe Produkt in den Silica / RP SNAP Flash-Kartuschen und das rohe Material mit automatisierten Hochleistungs Flash-Chromatographie (nach Herstellerprotokoll) unter Verwendung eines SNAP 100 g Säule mit einem Gradienten Lauf ausgehend von 6% Ethylacetat: 94 % Hexan bis 50% Ethylacetat und 50% Hexan als15 Säulenvolumina. </li><li> Trocknen des gereinigten Produkts mit einem Rotationsverdampfer in einem Lösungsmittel aus dem Flash-Chromatographie gesammelten durch Verdampfen das gesamte Lösungsmittel zur Trockene und das Produkt weiter unter Vakuum getrocknet, um alle Restlösungsmittel zu entfernen. Zuführen Charakterisierung des gereinigten Produkts durch NMR, MS und analytische HPLC. <ol><li> 1 H-NMR und 13 C-NMR, ein Gewicht von etwa 10 mg des gereinigten Probe, löst ihn in einer entsprechenden deuterierten Lösungsmittel und der Inhalt in einem trockenen NMR-Röhrchen für die Aufnahme der NMR-Spektren 2,14. </li><li> Notieren Sie die 1 H-NMR und 13 C-NMR-Spektren mit hoher Feld NMR-Spektrometer (mindestens 300 MHz). Erwerben Massenspektren mit einer QTOF (Tandem Vierfach-1-Flugzeit-Massenspektrometer), Elektrospray-Ionisation (ESI) oder einem VG-70S (Doppelfokus-Magnetsektor-Massenspektrometer, EI) 2,14. </li><li> Analyse der Reinheit der Produkte durch HPLC mit Diodenarray-Detektor und ausgestattet mitein C18 (2) 100 A, 250 × 4,6 mm, 5 &amp; mgr; m-Säule für die Analyse. Verwenden Sie einen Farbverlauf Lauf ausgehend von 100% Wasser (0,1% Trifluoressigsäure) auf 60% Acetonitril (0,1% Trifluoressigsäure) über 30 Minuten und halten Sie den Farbverlauf für 4 min. Extrahieren Sie die Chromatogramme bei 226 und 254 nm 2,14. Anmerkung: Analytical Reinheiten ausgewertet Verbindungen waren&gt; 95%. </li></ol></li></ol> 3. Festphasensynthese zur Erzeugung von FLIPs 2 <ol start="1"><li> Synthese von N-capped FLIPs <ol><li> Montieren N bedeckten Peptidverbindungen durch Standard-Festphasen-Syntheseverfahren mit den folgenden Schritten. <ol><li> Aktivieren 5 Äquivalente der C-terminalen Aminosäure (Fmoc-Phe) in 4,4 Äquivalenten O -Benzotriazole- N, N, N &#39;, N&#39; N&#39;-tetramethyluroniumhexafluorphosphat-Hexafluor-phosphat (HBTU, 221.93 mg) in 2 ml DMF für 5 min. Laden Sie die Fmoc-Phe HBTU Mischung auf die Rink-Harz mit 6 Äquivalenten Diisopropylethylamin (DIPEA, 103,13mg) für 1 h bei RT. </li><li> Entfernen der Fmoc-Schutzgruppe von der C-terminalen Rest mit 20% Piperidin in 3 ml DMF für 10 min. Paar nachfolgenden Aminosäuren (beispielsweise Fmoc-Ile, Fmoc-Leu, Fmoc-Arg-PMC) Schritt für Schritt. Bei jedem Schritt Paar 5 Äquiv der nächsten Aminosäure mit 6 Äquivalenten DIPEA (103,13 mg) und 4.4 Äquivalenten HBTU (221.93 mg) in 2 ml DMF 1 Stunde bei RT. </li><li> Gelten Waschzyklen (5 x 10 ml DMF + 5 x 10 ml DCM) Nach der oben beschriebenen Aminosäure-Kupplung und Fmoc Entschützungsschritte. Nach der Peptidanordnung Paar N-Verkappungsgruppen mit 6 Äquivalenten DIPEA (103,13 mg) und 4.4 Äquivalenten HBTU (221.93 mg) in 2 ml DMF 1 Stunde bei RT. </li><li> Nach Abschluss der Peptidsynthese, Behandlung des Reaktionsgemisches mit 2 ml der Abspaltungsmischung (90: 5: 5 TFA / H 2 O / TIPS) O / N Seitenkettenschutzgruppen zu entfernen, und spalten Flips von dem Harz. Verreiben des resultierenden Produkts mit kaltem Diethylether ausgefällt und if erforderlichen Konzentrat in einem Rotationsverdampfer. </li></ol></li></ol></li><li> Synthese von N-capped-C bedeckten FLIPs <ol><li> Wiegen und lösen Sie die N-terminal verschlossen und geschützt Arg-Leu-Peptid (16,1 mg, 0,02 mmol) in Dichlormethan, und fügen Sie [4- (3-Chlorphenoxy) pyridin-2-yl] methan (C-Cap) zusammen mit O - Benzotriazol-N, N, N &#39;, N&#39; N&#39;-tetramethyluroniumhexafluorphosphat (HBTU; 16,7 mg, 0,02 mmol) und N, N-Diisopropylethylamin (DIPEA, 6,5 mg, 0,02 mmol). </li><li> Rühren und Überwachung der Reaktion bei RT, bis die TLC / HPLC zeigt den vollständigen Verbrauch des Ausgangsmaterials. Nach der Beendigung der Reaktion konzentriert man das rohe Reaktionsgemisch mit einem Rotationsverdampfer und dann zwischen Ethylacetat und Wasser. </li><li> Trenne die wässrige und organische Schicht; die organische Phase wird mit 1 N NaOH, 1 N HCl und Kochsalzlösung. Trocknen der organischen Schicht mit etwa 1 g Natriumsulfat und konzentriert, um ein Produkt in einem Rotationsverdampfer. Finally Das Produkt O / N mit dem Spaltungsgemisch (95: 2,5: 2,5 Trifluoressigsäure / H 2 O / TIPS) zur Entfernung der Schutzgruppe. </li><li> Verreiben des resultierenden Produkts mit kaltem Diethylether und gegebenenfalls Konzentrat in Rotationsverdampfer zur Trockene, um das gesamte Lösungsmittel zu entfernen abzuschließen. Das Produkt weiter zu trocknen unter Vakuum, um alle Restlösemittel zu entfernen. </li></ol></li><li> Reinigung und Charakterisierung von FLIPs <ol><li> Reinige rohe FLIPs mit halb präparative Umkehrphasen-HPLC-Verfahren. Lyophilisieren die gereinigten Flips und charakterisieren ihre Molekülmasse unter Verwendung von Massenspektrometrie 2,14. </li><li> Bestimmung der analytischen Reinheit der FLIPs durch HPLC mit einem Diodenarray-Detektor und mit einem C18 (2) 100 A ausgestattet ist, 250 x 4,6 mm, 5 &amp; mgr; m-Säule. Verwenden ein Gradientenverfahren hend von 95% H 2 O (0,1% Trifluoressigsäure) / 5% Acetonitril (0,1% Trifluoressigsäure) auf 35% H 2 O (0,1% Trifluoressigsäure) / 65% Acetonitril (0,1% trifluoroacetic Säure) über 30 Minuten und halten Sie den Farbverlauf für 4 min. Extract Chromatogramme bei 226 und 254 nm. </li></ol></li></ol> 4. Fluoreszenzpolarisation Binding Assay zur Bestimmung der kompetitiven Bindung 2,14 <ol start="1"><li> Führen Sie den Test in schwarzen 384-Loch (138 ul) Platten mit dem folgenden Verfahren. </li><li> Verdünnen der Proben Tracer Peptide (4 nM) und Kinasekomplexe (CDK2 / Cyclin-A - 18 &amp; mgr; g / ml, CDK4 / Cyclin D - 37 ug / ml) zur erforderlichen Konzentrationen in Testpuffer (25 mM HEPES pH 7, 10 mM NaCl, 0,01% Nonidet P-40, 1 mM Dithiothreitol (DTT). </li><li> Zu jeder Vertiefung der 384-Well-Platte, hinzuzufügen: 5 ul CDK4D1 oder CDK2CA (0,3 ug / Vertiefung gereinigten rekombinanten humanen Kinase-Komplex), 5 ul Verbindungslösung, 5 ul 30 nM Tracer-Peptid (Fluoresceinyl-Ahx-Pro-Val -Lys-Arg-Arg-Leu- (3ClPhe) -Gly oder Fluoresceinyl-Ahx-Pro-Val-Lys-Arg-Arg-Leu-Phe-Gly-Tracer-Peptid). Verwenden 5 ul jeder DMSO (6%), buffer, Tracer und 5 ul DMSO (6%), Kinase-Komplex, Tracer als Kontrollvertiefungen </li><li> Nach der Zugabe der alle Komponenten, zentrifugieren Sie die Platte bei 500 UpM für 1 Minute (41,16 · g) bei RT und dann inkubieren Sie die Platte unter Rühren für 45 min bei RT. Mit Hilfe eines Multimode-Plattenlesegerät und Detektor mit 485 nm / 535 nm Anregungs- / Emissionsfilter und einem dichroitischen Spiegel ausgestattet lesen Sie die Fluorescein Intensität jeder Vertiefung in der Platte. </li><li> Berechnung der relativen mittleren Polarisation (mp) für alle Testproben unter Verwendung der unten stehenden Gleichung zeigt. Bestimmen Sie IC 50 -Werte durch logarithmische Regression durch Korrelation gegen mps und Testkonzentrationen. </li></ol><img alt="Gleichung 1" src="/files/ftp_upload/52441/52441eq1.jpg" />

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<li>Cannon, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pharmaceutics+and+drug+delivery+aspects+of+heme+and+porphyrin+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pharm+Sci%22%5BJournal%5D)">Pharmaceutics and drug delivery aspects of heme and porphyrin therapy.</a> J Pharm Sci. 82, 435-446 (1993).</li>
</ol>

Die Autoren erklären, dass sie keine konkurrierenden finanziellen Interessen haben.

Die Ausrichtung auf Protein-Protein-Wechselwirkungen (PPI) in der Wirkstoffforschung ist eine große Herausforderung, da diese typischerweise eine große flache Kontaktschnittstelle beinhalten, die aus zahlreichen und diffusen Kontakten besteht19. Darüber hinaus sind peptidische Verbindungen, die PPIs hemmen und für die Wirkstoffforschung zugänglich sind, aufgrund ihrer höheren Molekülmasse, metabolischen Instabilität und schlechten Bioverfügbarkeit problematisch20. Zu den aktuellen Strategien, die fü...

In diesem Artikel wird eine Fallstudie über die Anwendung des REPLACE (Replacement mit Teilliganden Alternativen mit Rechen Anreicherung) Strategie, peptidische Inhibitoren der Protein-Protein-Interaktionen in mehreren pharmazeutisch relevanter Moleküle umzuwandeln beschrieben 1-3. Während EPI stellen eine reiche, aber wenig genutzt Quelle potentieller Wirkstoff-Targets werden bestehende Methoden weitgehend unzureichenden diese allgemein zugänglich zu machen. Aktuelle Strategien einschließlich Fragment basierte Entwurf 4, Hochdurchsatzscreening 5 und 6 geheftet Peptide haben Fortschritte vorgesehen, aber diese sind in vielen Fällen unwirksam. Als Ergebnis werden mehr Fortschritte und effizienter Ansätze erforderlich. REPLACE ist vollständig in der Entwicklung von Kinase-Inhibitoren, die arzneimittelähnliche verbesserte Eigenschaften haben und Entwicklungspotential als Antitumortherapeutika validiert. Diese Strategie ist in der Entwicklung von nicht-ATP Inhibitoren der Zell exemplifiziertZyklus CDKs und umfasst: 1) Erhalten von 3D Strukturinformationen über die Wechselwirkungen HAKRRLIF / RRLIF mit Cyclin-Bindungsfurche; 2) Bestimmung der wichtigsten Bindungsdeterminanten für Peptid-Wechselwirkung; 3) Verkürzung des Peptids N-Terminus enthält, eine oder mehrere Bindungsfaktoren; 4) rechnerische Ermittlung potentieller kleines Molekül Alternativen (partielle Ligand Alternativen PLAs) für den kegelstumpfförmigen Teil des Peptids und dem Bindung wichtiger Wechselwirkungen des Stammpeptids; 5) Synthese oder gewerblichen Beschaffung von PLAs vorausgesagt, um eifrig mit dem Unter Website zuvor von der gelöscht Peptidrest (n) besetzt binden; 6) Synthese von blättert durch Ligation der besten PLAs, um das verkürzte Peptid unter Verwendung der Festphasensynthese; 7) Test des FLIPs in einem In-vitro-Bindung oder funktionelle Assays (Fluoreszenzpolarisation in der CDK / Cyclin-Kontext), gefolgt von weiteren Charakterisierung in einem Zelllebensfähigkeitstest. Eine schematische Darstellung strateg REPLACEy ist in Figur 1 dargestellt ist. In diesem Artikel werden die Iterationen des REPLACE-Strategie diskutiert und die Anwendung auf CDK2 / Cyclin A im Detail beschrieben. CDKs wird angenommen, dass in der Mehrzahl der Tumoren direkt oder indirekt dereguliert werden und sind daher geeignete Krebs-Medikament Ziele 7 betrachtet. CDKs erfordern Zusammenarbeit mit Cycline für die vollständige Aktivierung und anschließend phosphoryliert Schlüsselproteine ​​in der Zellzyklusregulation 8 beteiligt. Die zwei Hauptgruppen von CDKs sind die Isotypen, die Zellzyklus-Checkpoints kontrollieren [G1 / S (CDK4 / Cyclin D, CDK6 / Cyclin D und CDK4 / Cyclin E), S-Phase (CDK2 / Cyclin A) und G2 / M (CDK1 / Cyclin B)], und die Aufsichtsbehörden der RNA-Polymerase durch Phosphorylierung (CDK7 / Cyclin H, CDK8 / Cyclin C, CDK9 / Cyclin-T). Ein Schlüsselschritt in der S-Phase auftritt, wenn der Fort E2F1 Transkriptionsfaktor einen Komplex mit dem DP-Protein, das eine Bindung mit DNA und initiiert Gentranskription bildet. CDK2 / Cyclin A erforderlich ist, um E2F1 Transkriptions neutralisierenAktivität durch Phosphorylierung wodurch die zu der E2F1-DP-Komplex und dessen nachfolgenden Abbau freigeben. Die Hemmung von CDK2 / Cyclin A wird angenommen, dass E2F1 in seiner DNA-gebundenen Zustand anhaltender Aktivierung führt zu halten. Die sich ergebende Niveau von E2F-1-Aktivität wird die erforderlich ist, um p53 unabhängige Apoptose zu induzieren, damit was auf eine therapeutische Strategie Schwelle zu übertreffen. Aufgrund dereguliert p53 und pRb Wegen hohe E2F-1 häufig in Krebszellen und Inhibierung von CDK2 / Cyclin A auftreten sollten, um eine selektive Apoptose in Tumoren führen und kann als validiert Krebs-Target 7 betrachtet werden. Klinisch untersucht CDK-Inhibitoren zielen auf den hoch konservierten ATP-Bindungsstelle, die zu Reaktivität unter den mehr als 500 Proteinkinasen im menschlichen Kinoms überqueren und möglicherweise, die zu Wirkungen und Toxizität 9 Seite. Ein alternativer Ansatz ist nicht-ATP-kompetitive Hemmung durch gezielte Substrat Rekrutierung durch die CBGauf Cyclin positive regulatorische Untereinheit vorhanden ist und die daher unterschiedliche und weit entfernt von ATP-Bindungsstelle 10,11 ist. Das CBG ist hauptsächlich eine hydrophobe Rille in Cyclin A, Cyclin D und Cyclin E vorhanden und es wurde gezeigt, um eine Konsensus-Sequenz in Substraten und Tumorsuppressoren gefunden erkennen. Als ein isoliertes Peptid, das Cyclin-Bindungsmotiv (CBM) bindet an das CBG und wurde gezeigt, dass die Kinaseaktivität der Zellzyklus-CDKs inhibieren. Das CBM wurde Octapeptids optimiert (HAKRRLIF, CDK2 / Cyclin A IC 50 0,07 ± 0,02 uM, CDK4 / Cyclin D, IC 50 0,88 ± 0,34 uM) und außerdem an einen trunkierten Pentapeptid repräsentiert einen guten Kompromiss zwischen dem Molekulargewicht für Drogen- Gleichheit und Potenz (RRLIF, CDK2 / Cyclin A IC 50 1,01 ± 0,17 &amp; mgr; M, CDK4 / Cyclin D, IC 50 25,12 ± 2,97 uM) 12,13. Die CBGs bestehen aus einer großen primären und sekundären kleinere hydrophobe Tasche, die durch eine acidi überbrückt werdenc Bereich (beinhaltet Glu220, Glu224 und Asp283). Die wichtigsten Bindungsdeterminanten HAKRRLIF beinhalten die Wechselwirkung von Ala2 mit den sekundären hydrophoben Tasche, Ionenpaarung und Wasserstoffbrückenbindungen Lys3, Arg 4 und arg5 mit dem sauren Bereich und einem hohen Grad an Komplementarität Leu6 und Phe8 mit dem primären lipophilen Ort. Darüber hinaus werden zahlreiche Wasserstoff-Bindungen vom Peptid-Rückgrat beigetragen während Ile7 wirkt als ein Abstandshalter-Rest ermöglicht einen optimalen Kontakt mit dem primären Tasche. Das Bindungsmotiv und Wechselwirkungen HAKRRLIF mit CBG ist in Abbildung 2 dargestellt. Zur Förderung der CBM / CBG Protein-Protein-Wechselwirkung, wobei die Kinase-Aktivität von CDK2 / Cyclin A, CDK2 / Cyclin E &amp; CDK4 / Cyclin-D zu hemmen, und dies sollte E2F1 auslösen vermittelte Apoptose von Krebszellen, während nicht normale Zellen 7 zu beeinträchtigen. Obwohl CBM abgeleitete Peptide sind wirksame Inhibitoren der CDKs beeinflussen, ist es unwahrscheinlich, dass sie als Arzneimittel nützlich sein, die aufgrund ihrer StoffwechselInstabilität und allgemeiner Mangel an Zellpermeabilität. Zu diesem Zweck haben wir die REPLACE-Strategie, um diese potenten peptidischen Inhibitoren in mehrere wirkstoffähnlichen Verbindungen für die weitere Entwicklung der Anti-Tumor-Therapeutika Ausnutzung dereguliert E2F1 durch CDK2 / Cyclin-A-Hemmung zu konvertieren angewendet. Das folgende Protokoll fasst Arbeit, die bei der Anwendung ersetzen, um die Cyclin Nutfertigung. Im ersten Fall wurden arzneimittelähnliche Cappinggruppe Ersatz für die N-terminale Tetrapeptid der HAKRRLIF identifiziert. Darüber hinaus Verbesserungen in diesen Gruppen wurden in einem zusätzlichen Validierungsstudie für REPLACE sucht. Repräsentative Ergebnisse aus diesen Studien werden ebenfalls vorgestellt.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Computational Chemistry</td></tr><tr><td>Accelyrs Discovery Studio 3.0</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dell Optiplex Workstations</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Synthetische organische Chemie<</td></tr><tr>td colspan="4">Kieselgel (GF-254 Platten) für DC, Biotage (Uppsala, Schweden) für die Flash-Chromatographie, Waters Alliance 2695 HPLC mit einem 2996 Diodenarray-Detektor und ausgestattet mit einem C18 (2) 100 A, 250 x 4,6&nbsp; mm, 5&nbsp; &mu; m-Säule (Phenomenox Luna) zur Reinheitsbestimmung, 1H NMR- und 13C NMR-Spektren wurden mit einem Varian Mercury 300 bzw. 400 Spektrometer aufgenommen. Die Massenspektren wurden mit einem Micromass QTOF (Tandem quadruple-1 time of flight Massenspektrometer), Elektrospray-Ionisation (ESI) und VG 70S (Double-focusing magnetic sector mass spectrometer, EI) gemessen.</td></tr><tr><td colspan="4">Flourescence Polarization Assay</td></tr><tr><td>384 Mikrotiterplatten, Mikropipetten</td><td>Grenier Bio-one</td><td>110256602</td><td></td></tr><tr><td>CDK4D1 und CDK2CA (gut gereinigter rekombinanter humaner Kinase-Komplex)</td><td>BPS Bio Sciences</td><td>40094(CDK4/Cyclin D), 41101(CDK2/Cyclin A)</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Assay-Puffer (25 nM HEPES pH 7, 10 mM NaCl, 0,01% Nonidet P-40, 1&nbsp; mM Dithiothretiol (DTT))25</td></tr> <tr><td>nM HEPES</td><td>CALBIOCHEM</td><td></td><td></td></tr> 375368 <tr><td>NaCl</td><td>Fisher</td><td>127838</td><td></td></tr><tr><td>Nonidet P-40</td><td>US Biologisches</td><td>N3500</td><td></td></tr><tr><td>DTT</td><td>Aldrich-70</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>&#176; C Gefrierschrank</td><td>Revco (Ultima II)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>DTX880 Multimode-Detektor ausgestattet mit 485&nbsp; NM/535&nbsp; nm Anregungs-/Emissionsfilter und ein dichroitischer Spiegel, geeignet für Fluorescein</td><td>Beckman Coulter, Brea, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Cell Culture</td></tr><tr><td>96 Well-Platten</td><td>Fisher</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Frozen Stocks of U2OS (Osteosarkom) und DU145 (Prostatakrebs) Zelllinien</td><td>ATCC</td><td></td><td></td></tr><tr><td>NU Serum, DMEM-Medien, Trypsin, PEN/STRIP, MTT Reagenz</td><td>Fisher, Lebenstechnik, Alfa Aesar</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hämozytometer</td><td>VWR-70</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>&#176; C Gefrierschrank</td><td>Revco (Ultima II)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Inkubator</td><td>Thermo Electron Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zentrifuge</td><td>Eppendorf</td><td>5804 R</td><td></td></tr><tr><td>Kühlschrank 4-8 &#176; C</td><td>Isotemp Fisher</td><td></td><td></td></tr><tr><td>DTX880 Multimode-Detektor ausgestattet mit 595&nbsp; nm-Filter</td><td>Beckman Coulter, Brea, CA</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

entwicklung von inhibitoren von protein-protein-wechselwirkungen durch replace: anwendung auf die konzeption und entwicklung nicht atp competitive cdk-inhibitoren

Development of Inhibitors of Protein-protein Interactions through REPLACE: Application to the Design and Development Non-ATP Competitive CDK Inhibitors

REPLACE ist eine einzigartige Strategie entwickelt, um zielgerichteter Protein-Protein-Wechselwirkungen (PPI). Es zielt auf verfügbare Medikament Zielraum durch eine verbesserte Methode für die Identifizierung von Inhibitoren für solche Bindungsstellen und die sich ausdehnen stellen die Mehrheit potentieller Arzneimittelziele. Das Hauptziel dieser Arbeit ist es, einen methodischen Überblick über die Nutzung und Anwendung des REPLACE-Strategie, die Rechen- und Synthesechemie Ansätze beinhaltet bereitzustellen. REPLACE ist durch seine Anwendung auf die Entwicklung von nicht-ATP Wettbewerbs Cyclin-abhängigen Kinasen (CDK) Inhibitoren als anti-Tumor Therapeutika, beispielhaft dargestellt. CDKs werden häufig in der Krebs dereguliert und damit als wichtige Ziele für die Medikamentenentwicklung berücksichtigt. Inhibition von CDK2 / Cyclin A in der S-Phase ist berichtet worden, um eine selektive Apoptose von Krebszellen in einem p53-unabhängigen Weise durch die E2F1 Wegs zu fördern. Targeting die Protein-Protein-Wechselwirkung an der Cyclin Binding Nut (CBG) ist ein Ansatz, der die spezifische Hemmung des Zellzyklus über Transkriptions CDKs ermöglichen wird. Die CBG wird durch eine Konsensus-Sequenz von CDK Substrate und Tumor-Suppressor-Proteine ​​abgeleitet anerkannt bezeichnet das Cyclin-Bindungsmotiv (CBM). Die CBM hat bereits zu einem Octapeptid aus p21Waf (HAKRRIF) und dann weiter auf ein Pentapeptid Beibehaltung ausreichender Aktivität (RRLIF) abgeschnitten optimiert. Peptide sind im allgemeinen nicht zelldurchlässig ist, metabolisch instabil und damit die REPLACE (Ersetzen mit seitlichem Ligand Alternativen durch Computational Enrichment) Strategie, um mehr arzneimittelähnliche Inhibitoren erzeugen angewendet. Die Strategie beginnt mit der Konstruktion Fragment ligiert inhibitorischen Peptide (FLIPs), die selektiv Zellzyklus CDK / Cyclin-Komplexe hemmen. FLIPs wurden durch iterative Ersetzen von Resten von HAKRRLIF / RRLIF mit Fragment wie kleine Moleküle (Verkappungsgruppen), ausgehend vom N-Terminus (Ncaps) erzeugt, gefolgt von Ersatz fürder C-Terminus. Diese Verbindungen sind Ausgangspunkt für die Erzeugung von nicht-ATP Wettbewerbs CDK-Inhibitoren als anti-Tumor Therapeutika.

Die Wechselwirkungen von HAKRRLIF mit Cyclin Nut sind in Abbildung 2 dargestellt. Die Peptid-Reste, die die wichtigsten Bindungsdeterminanten dar umfassen Ala2, Arg4, Leu6 und Phe8 mit anderen Resten Bereitstellen kleinere Beiträge 12,13,18. In dieser Fallstudie die REPLACE-Strategie hat, um Fragment Alternativen für Rückstände in der N-terminalen Tetrapeptid der HAKRRLIF, in erster Linie imitiert die Wechselwirkungen von Ala2 und Arg4 finden verwendet worden. Eine Bibliothek potentieller Nca...

Wir beschreiben die Implementierung der REPLACE-Strategie, um Protein-Protein-Wechselwirkungen zu fördern. REPLACE ist eine iterative Strategie, die synthetische und rechnerische Ansätze für die Umwandlung von optimierten peptidischen Inhibitoren in wirkstoffähnliche Moleküle umfasst.

Entwicklung von Inhibitoren von Protein-Protein-Wechselwirkungen durch REPLACE: Anwendung auf die Konzeption und Entwicklung Nicht ATP Competitive CDK-Inhibitoren

REPLACE is a unique strategy developed to more effectively target protein-protein interactions (PPIs). It aims to expand available drug target space by ...

Das übergeordnete Ziel der Strategie ist es, ein wirksames niedermolekulares arzneimittelähnliches Therapeutikum durch Umwandlung eines Peptidinhibitors einer Protein-Protein-Wechselwirkung zu generieren. Dies wird erreicht, indem in einem zweiten Schritt eine Struktur-Wirkungs-Beziehung für die gewünschte Peptidprotein-Interaktion hergestellt wird, um zu verstehen, welche Teile effektiv ersetzt werden können. Computerchemie wird verwendet, um praktikable Fragmentalternativen für die bekannten Peptiddeterminanten zu identifizieren, die dann zur Synthese einer Bibliothek von Fragmentpeptidhybriden verwendet werden können.Als nächstes wird eine Bibliothek von Hybriden zwischen diesen Fragmenten und dem verkürzten Peptid synthetisiert, um Moleküle zu erzeugen, die in einem In-vitro-Assay getestet werden können, um Moleküle zu identifizieren, die medikamentenähnlicher sind und die Aktivität des nativen Peptids rekapitulieren. Die Ergebnisse zeigen, dass mit der Methodik mehr wirkstoffähnliche Verbindungen identifiziert werden können, und diese stellen effektive Ausgangspunkte für die Wirkstoffforschung von Inhibitoren von Protein-Protein-Wechselwirkungen dar. Der Hauptvorteil dieser Technik gegenüber bestehenden Methoden wie dem Hochdurchsatz-Screening besteht also darin, dass die Traktion von Proteinen aus Sicht der Wirkstoffforschung eine große Herausforderung darstellt und herkömmliche Methoden nicht gut funktionieren.Die Ersetzungsstrategie beinhaltet den schrittweisen iterativen Ansatz und kann daher länger dauern oder ist auf lange Sicht effektiver. Heute werde ich die meisten Verfahren selbst demonstrieren, mit etwas Unterstützung von meiner Mitarbeiterin, Dr. Sandra Craig, die einige der Reaktionen und Verfahren einrichten wird. Beginnen Sie dieses Verfahren mit der Validierung des Andockprotokolls, gefolgt von der Vorbereitung der Rezeptorbindungsstelle und der Liganden, wie im Textprotokoll beschrieben, um die Liganden in die Cyclin-Rille anzudocken.Wählen Sie zunächst die Ligandenanpassungsroutine aus dem Rezeptor-Liganden-Interaktionsprotokoll aus, das auf die Software eingestellt ist, und verwenden Sie den Rezeptor und die vorbereiteten Liganden als Eingabe für dieses Protokoll. Wählen Sie für diese Läufe PLP one als Energienetz aus. Das Energiegitter, das vom Andockprogramm verwendet wird, ist das Kraftfeld zur Erzeugung von Ligandenrezeptor-Wechselwirkungen und potenziellen Posen.Plp eins ist ein friedensbezogenes lineares Potential, das speziell die Wechselwirkungen von Wasserstoffbrückenbindungen priorisiert. Geben Sie an, dass die Energie der Posen minimiert wird und die Anzahl der generierten Posen 10 beträgt. Belassen Sie alle anderen Parameter in der ersten Instanz auf den Standardwerten.Zeigen Sie die Posen im Visualizer-Programm an und sortieren Sie dann nach absteigenden Werten der PLP one Score. Verwenden Sie Scoring-Funktionen wie plp, um die Bindungsaffinität eines angedockten Liganden basierend auf der Pose, der Geometrie und der nicht-kovalenten Interaktion mit der Zielrezeptorstruktur eines Liganden zu schätzen. Analysieren Sie visuell die besten 25% der bewerteten Posen auf Super-Unmöglichkeit mit der bekannten Capping-Gruppe.Beobachten Sie auch, ob die Pose Wechselwirkungsfilter erfüllt hat, die so eingestellt sind, dass sie Atombeschränkungen enthalten, die intermolekulare Kontakte erfordern, von denen bekannt ist, dass sie für die Bindung entscheidend sind, und oder die erforderlich sind, um die potenzielle Deckungsgruppe in der richtigen Geometrie für die Bildung von Amidbindungen zu positionieren. Untersuchen Sie schließlich Posen auf visuelle Komplementarität, die definiert ist als eine effiziente Füllung der Bindungstasche in einer Weise, die mit der bekannten Strukturaktivität übereinstimmt. Beziehungen für die Synthese von Endkappengruppen, Verwendung aller kommerziellen Ausgangsmaterialien, Lösungsmittel und Reagenzien und Synthese durch konventionelle synthetische organische Chemie.Führen Sie zur Überwachung von Reaktionen eine Dünnschichtchromatographie oder DC-Chromatographie oder DC-Chromatographie auf Kieselgel durch, indem Sie zuerst das Ausgangsmaterial und das Reaktionsgemisch in der mobilen Phase auflösen. Anschließend wird das gelöste Ausgangsmaterial und das Reaktionsgemisch mit Kapillarröhrchen auf die DC-Platte aufgetupft. Setzen Sie die DC-Platte in die Kammer ein, in der sich die mobile Phase befindet.Sobald die mobile Phase 90 % der DC-Platte erreicht hat, entfernen Sie die Platte und trocknen Sie sie an der Luft. Verwenden Sie UV-Licht, um das Ausgangsmaterial und Reaktionsgemische als sichtbare Flecken zu erkennen. Berechnen Sie dann die HF jedes Spots, d. h. das Verhältnis der vom Spot zurückgelegten Strecke und der mobilen Phase.Anschließend wird das Reaktionsgemisch in einen Scheidetrichter gegeben und gegebenenfalls mit wässriger Säure oder basischer Lösung gewaschen. Sammeln Sie das organische Lösungsmittel und verdampfen Sie es vor dem Trocknen in einem Rotationsverdampfer. Das unter Vakuum gewonnene Rohprodukt löst 500 Milligramm Rohprodukt in drei bis fünf Millilitern geeignetem Lösungsmittel auf und wird vor dem Trocknen an der Luft zu einer Kieselsäure- oder RP 18-Probe gegeben, eine Probe, die das Rohprodukt enthält, in Kieselsäure-Umkehrphasen-Schnapppatronen gelegt.Reinigen Sie das Rohmaterial mit automatisierter Hochleistungs-Flash-Chromatographie. Verwenden Sie eine 100-Gramm-Säule mit einem Farbverlauf. Führen Sie mehr als 15 Spaltenvolumes aus.Trocknen Sie das gereinigte Produkt, das aus der Flash-Chromatographie in Lösungsmittel gewonnen wurde, mit einem Rotationsverdampfer, indem Sie das gesamte Lösungsmittel bis zur Trockenheit verdampfen. Trocknen Sie das Produkt dann unter Vakuum weiter, um alle Lösungsmittelreste zu entfernen. Durchführung der Charakterisierung des gereinigten Produkts durch NMR, MS und analytische HPLC, wie im Textprotokoll beschrieben, um das endcaped Fragment, ligierte inhibitorische Peptide oder Flips zu synthetisieren.Beendete peptische Verbindungen durch Standard-Festphasensynthesemethoden. Aktivieren Sie fünf Äquivalente der C-terminalen Aminosäure in 4,4 Äquivalenten HBTU in zwei Millilitern DIMETHYLFORMAMID oder DMF für fünf Minuten. Die Mischung wird eine Stunde lang bei Raumtemperatur mit sechs Äquivalenten Di-Isopropylethylamin auf Eisbahnharz aufgebracht.Entfernen Sie die FM-Schutzgruppe von den C-terminalen Rückständen mit 20 % INE in drei Millilitern DMF für 10 Minuten. Koppeln Sie die nachfolgenden Aminosäuren Schritt für Schritt bei jedem Schritt. Koppeln Sie fünf Äquivalente der nächsten Aminosäure mit sechs Äquivalenten DI-Isopropyl, Ethylamin und 4,4 Äquivalenten HBTU in zwei Millilitern DMF für eine Stunde.Bei Raumtemperatur Waschzyklen nach der Aminosäurekopplung und FM D-Schutzschritte nach der Peptidassemblierung anwenden. Koppeln Sie N-Capping-Gruppen mit sechs Äquivalenten DI-Isopropyl, Ethylamin und 4,4 Äquivalenten HBTU in zwei Millilitern DMF für eine Stunde bei Raumtemperatur nach Abschluss der Peptidassemblierung. Behandeln Sie das Reaktionsgemisch über Nacht mit zwei Millilitern des Spaltgemisches, um Seitenkettenschutzgruppen und Cleve-Flips aus dem Harz zu entfernen, tritrieren Sie das resultierende Produkt mit kaltem Dathylether zur Ausfällung und konzentrieren Sie gegebenenfalls in einem Rotationsverdampfer, filtern Sie den entstehenden Feststoff und trocknen Sie ihn unter Vakuum oder gefriertrocknen Sie ihn unter Verwendung eines Lyophilisators.Fahren Sie an diesem Punkt mit dem Fluoreszenzpolarisations-Bindungsassay fort, wie im Textprotokoll zur Bestimmung der kompetitiven Bindung beschrieben. Die Modellstruktur von H-A-K-R-R-L-I-F, gebunden an die Zyklon-Bindungsrinne, ist dargestellt. Die Radrille besteht aus zwei hydrophoben Taschen, einer größeren Primärtasche und einer kleineren Sekundärtasche, die von rot dargestellten sauren Rückständen überbrückt werden.Weitere wichtige Wechselwirkungen sind Wasserstoffbrückenbindungskontakte des Peptidrückgrats und Ionenpaarungswechselwirkungen der drei basischen Reste des Peptids; hier ist der Bindungsmodus von drei fünf D-C-P-T-R-L-I-F dargestellt, dargestellt mit Wasserstoffbrückenbindungswechselwirkungen mit Seitenkettenatomen von Tryptophan, zwei 17 und Glutamin 2,54 angedockt. Es sind Posen von drei repräsentativen und kappenden Gruppen dargestellt, wobei jede dieser Verbindungen Wasserstoffbrückenbindungen mit den Wechselwirkungsfilteratomen von Tryptophan zwei 17 und Glutamin 2 54 besitzt. Wie durch grün gestrichelte Linien dargestellt, bewirkt der Fenchelsubsistent die Wechselwirkungen der Vander-Wand mit der sekundären hydrophoben Tasche.Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, haben Sie ein besseres Verständnis dafür, wie Sie die Ersetzungsstrategie durchführen und anwenden, um einen bekannten Peptidinhibitor in ein arzneimittelähnlicheres Molekül umzuwandeln, das eine Proteintraktion hemmt und ein Ausgangspunkt für die therapeutische Entwicklung ist.

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Entwicklung von Inhibitoren von Protein-Protein-Wechselwirkungen durch REPLACE: Anwendung auf die Konzeption und Entwicklung Nicht ATP Competitive CDK-Inhibitoren (Video) | JoVE Journal

Entwicklung von Inhibitoren von Protein-Protein-Wechselwirkungen durch REPLACE: Anwendung auf die Konzeption und Entwicklung Nicht ATP Competitive CDK-Inhibitoren

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