Schritt für Schritt: Mikrochirurgische Trainingsmethode die Kombination von zwei nicht lebenden Tiermodellen
9. Mai 2015
Hier beschreiben wir, wie man eine kleine mikrochirurgische Übungsstation und eine einfache und kostengünstige Methode für das Training der Mikrochirurgie mit nicht lebenden Tiermodellen einrichtet.
Das übergeordnete Ziel des folgenden Experiments ist es, eine mikrochirurgische Trainingsmethode zu entwickeln, die zwei mikrochirurgische Modelle von nicht lebenden Tieren kombiniert. Für einen Auszubildenden ohne vorherige mikrochirurgische Erfahrung wird zunächst eine mikroskopische Dissektion eines handelsüblichen Hähnchenschenkels empfohlen, um die Oberschenkelarterie, die Vene und den Nerv freizulegen. Das Gewebe wird dann unter das Mikroskop gelegt, um die gewünschte mikrochirurgische Technik durchzuführen.
Zum Beispiel eine Ende-zu-Ende-Naht der Oberschenkelarterie des Huhns. Wenn der Auszubildende mit dem Oberschenkelgewebe vertraut ist, kann das Verfahren mit einer kleineren Armarterie geübt werden, die in kommerziell erhältlichen Hühnerflügeln zu finden ist. Letztendlich kann die Perfektionierung dieser mikrochirurgischen Techniken mit den Oberschenkel- und Armarterien des Huhns den Neurochirurgen auf die Arbeit in kleineren lebenden Tiermodellen und in klinischen Szenarien vorbereiten.
Der Hauptvorteil dieser Technik gegenüber einer anderen bestehenden Technik wie dem Micros Soldier-Training mit Ratten besteht darin, dass unsere Technik keine Anästhesie benötigt und auch keine speziellen Einrichtungen benötigt, wodurch die wirtschaftliche Haltung und Tieropfer minimiert werden. Die Femurgefäße und der Ischiasnerv des Hähnchenschenkels können leicht freigelegt werden, indem ein Finger gerade medial zum Oberschenkelschaft geführt wird. Der Femurkopf kann dann in der Nähe der Präparierebene beobachtet werden, die sich genau parallel zum Femurschaft befindet, um eine End-to-End-Anastomose mit der One-Way-up-Technik an der Oberschenkelarterie des Huhns zu üben.
Legen Sie anschließend das Gewebe unter das Mikroskop. Die Lage der Vena femoralis und des Ischiasnervs sollte nun beobachtet werden. Befreien Sie die Arterie von den darunter liegenden Geweben und teilen Sie sie horizontal.
Trimmen Sie dann mit Mikro-Tonabnehmern und Mikroscheren alle Adventitien, die über dem arteriellen Lumen liegen, gefolgt von einer Spülung des inneren Lumens mit normalem Leitungswasser. Wenn Sie Zeit trainieren, notieren Sie die Startzeit, platzieren Sie dann den ersten Stich beginnend an der Rückwand der Oberschenkelarterie auf der anderen Seite des Gewebes und führen Sie die Nadel von der Außenseite der Arterie in Richtung Lumen und dann vom Lumen zur Außenseite der Arterie durch, um den Stich zu binden. Führen Sie zuerst einen Doppelknoten aus, gefolgt von zwei einfachen Würfen in abwechselnde Richtungen.
Vervollständige dann die gesamte hintere Wand und führe die Nadel hin und her, wie gerade gezeigt. Setze dann einen einzelnen Stich an der Vorderwand des Gefäßes von außen zum Lumen und dann vom Lumen nach außen. Binden Sie dann den Knoten wie gerade gezeigt und vervollständigen Sie die Vorderwand mit einzelnen Stichen wie zuvor beschrieben.
Und nehmen Sie den Abgang auf. Zeit, um an der Arteria brachialis des Huhns zu üben. Zuerst schneidest du die Haut mit einer Schere in Längsrichtung von der Schulter bis zur Flügelspitze ein.
Man kann nun beobachten, dass die Arterie zwischen dem Bizeps und dem Trizeps brachii verläuft, wie die Pfeilspitzen anzeigen. Um die Durchgängigkeit eines der beiden mikrochirurgischen Eingriffe zu testen, kreuzen Sie einen glatten 20- oder 27-Gauge-Angio-Katheter durch die Anastomose, um nach Obstruktionen zu suchen. Befestigen Sie dann eine mit handelsüblichem Lebensmittelfarbstoff beladene Spritze am Ende des Katheters und perfundierten Sie den Farbstoff in die Arterie, um ihn auf Undichtigkeit zu testen.
Öffnen Sie schließlich die Arterie in Längsrichtung, um die Nähte, ihre Parallelität und die Menge der hier aufgenommenen Wand zu visualisieren. Es wird ein mikroskopisches Bild der End-to-End-Naht der Oberschenkelarterie gezeigt, die durch eine One-Way-Up-Technik mit einzelnen Nähten erreicht wurde, wie gerade gezeigt. In diesem Bild ist eine repräsentative End-to-End-Naht einer Hühner-Armialarterie zu sehen.
Die Arteria brachialis ist viel kleiner als die Arteria femoralis, was zu einem technisch wesentlich anspruchsvolleren Eingriff führt. Das Hähnchenschenkelmodell ist sehr vielseitig und ermöglicht verschiedene Arten von Übungsübungen. In diesem repräsentativen Experiment wurde nämlich eine Reparatur der Oberschenkelarterie mit einem Venentransplantat durchgeführt, das aus der Oberschenkelvene entnommen wurde.
Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie Sie eine durchgehende Arterienanastomose oder eine Oberschenkel- oder Rial-Hühnerarterie herstellen. So beurteilen Sie die Schwangerschaft Ihrer Ergebnisse Aufnahmen.
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Übersicht
Dieser Artikel beschreibt eine Methode zur Ausbildung in der Mikrochirurgie unter Verwendung nicht lebender Tiermodelle. Er skizziert den Aufbau einer mikrochirurgischen Praxisstation und bietet einen schrittweisen Ansatz für Auszubildende zur Entwicklung ihrer Fähigkeiten.
Wichtige Studienkomponenten
Wissensgebiet
- Mikrochirurgie
- Ausbildungsmethoden
- Nicht lebende Modelle
Hintergrund
- Mikrochirurgie erfordert präzise Fähigkeiten, die durch Übung entwickelt werden können.
- Nicht lebende Tiermodelle bieten eine sichere und kostengünstige Trainingsoption.
- Hühnerschenkel und -flügel werden als Modelle für die Praxis mikrochirurgischer Techniken verwendet.
- Das Training an diesen Modellen bereitet Auszubildende auf komplexere Verfahren vor.
Zweck der Studie
- Entwicklung einer Trainingsmethode für die Mikrochirurgie.
- Nutzung nicht lebender Tiermodelle für den Erwerb von Fähigkeiten.
- Verbesserung der Bereitschaft der Auszubildenden für Operationen an lebenden Tieren.
Verwendete Methoden
- Mikroskopische Dissektion des Hühnerschenkels zur Freilegung von Arterie, Vene und Nerv.
- Übung von End-zu-End-Nähtechniken an der freigelegten Femoralarterie.
- Fortschritt zu kleineren Brachialarterien in Hühnerflügeln für fortgeschrittenes Training.
- Verwendung eines Mikroskops für erhöhte Präzision während der Verfahren.
Hauptergebnisse
- Auszubildende können mikrochirurgische Techniken effektiv mithilfe nicht lebender Modelle erlernen.
- Das Üben an Hühnermodellen steigert das Selbstvertrauen und die Fähigkeiten.
- Erfolgreiche Durchführung von Verfahren bereitet Auszubildende auf Operationen an lebenden Tieren vor.
- Methode ist kostengünstig und für Trainingszwecke zugänglich.
Schlussfolgerungen
- Die beschriebene Trainingsmethode ist vorteilhaft für angehende Mikrochirurgen.
- Nicht lebende Modelle dienen als praktische Alternative zum Training an lebenden Tieren.
- Effektives Training kann zu verbesserten chirurgischen Ergebnissen in klinischen Umgebungen führen.
Häufig gestellte Fragen
Executive Industry Relevance
Microsurgical skill development is a critical bottleneck in neurosurgical and vascular surgery training, where access to live animal models is constrained by cost, ethics, and facility availability. This method provides a scalable, reproducible platform for foundational skill acquisition using accessible biological tissues, enabling early-stage competency building before transition to complex models. By reducing reliance on live animals, it supports ethical training practices while maintaining anatomical fidelity relevant to procedural readiness.
Strategic Applications in Biopharma R&D
Early Discovery & Target Validation
- Scientific Value: Enables mechanistic understanding of vascular repair processes through hands-on practice of anastomosis techniques on biologically relevant tissues.
- Operational Value: Uses commercially available chicken tissues to establish low-cost, high-repeatability training modules for surgical skill assessment.
Screening & Assay Development
- Scientific Value: Supports development of standardized microsurgical proficiency assays using quantifiable endpoints such as suture patency and dye leakage testing.
- Operational Value: Facilitates reproducible training workflows where tissue preparation, anastomosis execution, and functional validation follow a consistent protocol.
Translational & Preclinical Research
- Scientific Value: Bridges ex vivo skill training to in vivo applicability by modeling arterial repair in progressively smaller vessels, mirroring clinical scaling challenges.
- Operational Value: Allows iterative practice on femoral and brachial arteries to refine technique before application in rodent or large animal survival models.
Pipeline & Workflow Integration
This method fits within the early discovery phase as a biological skills enablement tool, supporting handoff to preclinical validation where microsurgical precision is required for device testing, graft evaluation, or injury model generation.
- Discovery Biology: Supports hypothesis testing in vascular biology by enabling precise tissue manipulation and repair observation under microscopy.
- Screening: Enables standardized assessment of microsurgical competency through timed anastomosis and functional perfusion testing.
- Analytics: Generates measurable outputs including suture integrity, luminal patency via catheter passage, and leakage quantification via dye perfusion.
- Translational Research: Prepares trainees for survival surgery models by building foundational skills in vessel handling and anastomosis reliability.
- Enterprise Reuse: Establishes a reusable training platform across surgical teams using standardized tissue sourcing and microscope-based workflows.
Operational & Enterprise Impact
- Scientific Value: Reduces mechanistic ambiguity in surgical skill acquisition by providing direct visualization of tissue response to suturing techniques.
- Operational Value: Ensures reproducibility through standardized tissue dissection, microscopy setup, and suture technique protocols.
- Strategic Value: Improves go/no-go readiness decisions for live animal studies by confirming baseline microsurgical proficiency.
- Portfolio Impact: Enables risk-adjusted advancement to complex models by validating foundational skills before resource-intensive experiments.
Implementation Considerations
- Requires basic microsurgical instrumentation including micro forceps, micro scissors, and a stereo microscope.
- Dependent on access to a dissection workspace and sterile irrigation supplies such as tap water for lumen rinsing.
- Necessitates training in vessel identification and handling techniques specific to avian femoral and brachial arteries.
- Involves adaptation considerations when transitioning from chicken models to mammalian systems due to differences in vessel size and wall thickness.
- Limited to ex vivo training; does not replicate hemodynamic conditions or biological healing responses present in live systems.
