Name: Isolierung von mononukleären Zellen aus dem zentralen Nervensystem von Ratten mit EAE (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2007-12-04T04:23:00.000+00:00
Duration: 20 min 51 s
Description: Erfahren Sie die Isolierung mononukleärer Zellen aus dem ZNS von Ratten mit EAE. Diese Methode nutzt Herzkatheter-Perfusion und Dichtegradientenzentrifugation für immunologische Analysen.

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<ol><li> Tief betäuben Ratten. Spray mit 70% Ethanol und machen Sie einen kardialen Perfusion mit PBS für 10 min, um Zellen aus den Blutgefäßen (cut dem rechten Vorhof und perfuse durch den linken Ventrikel) zu entfernen. </li><li> Entfernen Sie die Gehirn und Rückenmark und in ein 50 ml Röhrchen mit eiskaltem PBS. Schneiden Sie die Gehirn und Rückenmark in einem 70 mm Zellsieb in einer 10 cm Petrischale mit 10 ml eiskaltem PBS gelegt. Drücken Sie jedes Stück Orgel durch die Zelle Sieb mit der Rückseite einer sterilen 1 ml Spritzenkolben. Sammeln Sie die einzelnen Zellsuspension in ein 50 ml Röhrchen auf Eis. Waschen Sie die Zell-Sieb mit PBS und fügen Sie die Röhre, bis die Lösung klar ist. </li><li> Zentrifuge für 8-10 min bei 390 g. </li><li> Resuspendieren der Zellen in 20 ml PBS + 30% Percoll und Overlay auf 10 ml PBS + 70% Percoll. </li><li> Zentrifugation bei 390 g für 20 min bei Raumtemperatur. </li><li> Entfernen Sie das Fett am oberen Ende der Röhre. Sammeln Sie die Zellen aus der Schnittstelle und zwei Waschgänge mit PBS. Count. </li></ol>

<ol><li>Beeton, C., Chandy, K. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+and+clinical+scoring+of+chronic-relapsing+experimental+autoimmune+encephalomyelitis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Induction and clinical scoring of chronic-relapsing experimental autoimmune encephalomyelitis.</a> Journal of Visualized Experiments. 5, Forthcoming.</li>
</ol>

Dieses Verfahren, da alle Verfahren mit lebenden Tieren, muss von Ihrer Institution Tier Nutzung und Pflege Ausschuss genehmigt werden. Wir empfehlen, einen Tierarzt oder eine tierärztliche Techniker anwesend sein bei der Durchführung der ersten Herz-Infusionen auf ein ausreichendes Niveau der Anästhesie zu gewährleisten ist, um das Tier vor und während des Verfahrens gegeben, und dass die Tiere nicht unterziehen unnötige Schmerzen oder Leiden.

<table><tbody><tr><td>PBS, 1x, steril</td><td>Reagenz</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>14190-250</td><td></td></tr><tr><td>Zellsieb, 70 µm</td><td>Werkzeug</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-771-2</td><td></td></tr><tr><td>Percoll</td><td>Reagenz</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P1644</td><td></td></tr></tbody></table>

isolierung von mononukleären zellen aus dem zentralen nervensystem von ratten mit eae

Isolation of Mononuclear Cells from the Central Nervous System of Rats with EAE

Ob das Studium eine Autoimmunerkrankung gerichtet an das zentrale Nervensystem (ZNS), wie experimentellen autoimmunen Enzephalomyelitis (EAE, 1), oder die Immunantwort auf eine Infektion des ZNS, wie Kinderlähmung, Lyme Neuroborreliose oder Neurosyphilis, ist es oft notwendig, um die ZNS-infiltrierenden Immunzellen zu isolieren. In diesem Video-Protokoll zeigen wir, wie man mononukleären Zellen (MNC) aus dem ZNS der Ratte mit EAE zu isolieren. Der erste Schritt dieses Verfahrens erfordert eine kardiale Perfusion der Nager mit einer Kochsalzlösung, um sicherzustellen, dass kein Blut in den Blutgefäßen Bewässerung des ZNS bleibt. Jede Kontamination mit Blut wird künstlich erhöhen die Anzahl der scheinbaren ZNS-infiltrierenden multinationalen Unternehmen und kann die scheinbare Zusammensetzung des Immunsystems zu infiltrieren ändern. Wir haben dann zeigen, wie das Gehirn und das Rückenmark der Ratte für nachfolgende Kanalkrümmung entfernen, um ein Single-Cell-Suspension herzustellen. Diese Suspension wird auf einem Zwei-Schicht-Percoll-Gradienten getrennt, um die Multis zu isolieren. Nach dem Waschen werden diese Zellen dann bereit, alle erforderlichen Verfahren zu unterziehen. Mononukleären Zellen isoliert mit diesem Verfahren sind lebensfähig und können für die Elektrophysiologie, Durchflusszytometrie (FACS), oder der Biochemie eingesetzt werden. Wenn die Technik unter sterilen Bedingungen durchgeführt wird (unter Verwendung von sterilen Instrumenten in einer Gewebekultur Haube) können die Zellen auch in Gewebekultur gezüchtet werden. Eine bestimmte Zellpopulation kann weiter gereinigt werden entweder mit magnetischen Trennverfahren oder eine FACS.

In diesem Video zeigen wir, wie man mononukleären Zellen aus dem zentralen Nervensystem von Ratten mit experimenteller autoimmuner Enzephalomyelitis isolieren.

Isolierung von mononukleären Zellen aus dem zentralen Nervensystem von Ratten mit EAE

Ob man nun eine gegen das Zentralnervensystem (ZNS) gerichtete Autoimmunerkrankung untersucht, wie die experimentelle autoimmune Enzephalomyelitis (EAE, 1), oder die ...

Okay. Hallo, ich bin Christine Beaton. Ich bin wissenschaftliche Mitarbeiterin im Labor von George Chen am Department für Physiologie und Biophysik der University of California Irvine. Heute zeige ich Ihnen, wie man mononukleäre Zellen aus dem zentralen Nervensystem von Ratten isoliert.Bei diesem Verfahren wird die Ratte tief anästhesiert, um eine Herzperfusion durchzuführen, sodass keine kontaminierenden Blutbestandteile im zentralen Nervensystem verbleiben. Danach entnehmen wir das Gehirn, isolieren das Rückenmark und stellen eine Einzelzell-Suspension mithilfe eines Zellsiebs her. Anschließend werden wir die mononukleären Zellen mittels eines zweilagigen Percoll-Gradienten isolieren. Beginnen wir also.Ich bin nun bereit, die Herzperfusion durchzuführen, daher werde ich nun alle Materialien zeigen, die ich dafür benötige. Das Erste, was wir brauchen, ist ein Bell-Glas, und darunter haben wir mit flüchtigem Anästhetikum getränkte Papiertücher platziert. Sie können Halan oder Isofluran verwenden.Als Nächstes benötigen wir etwas, um die Ratte zu halten, und etwas, um das Blut zu sammeln. Dazu verfügen wir über diese provisorische Vorrichtung zur Perfundierung der Ratten. Sie verwenden eine 21-Gauge-Nadel, und wir führen eine Kochsalzlösung über ein intravenöses Perfusionsystem, das durch Schwerkraft gespeist wird.Wenn Sie nicht auf eines dieser Systeme zugreifen können, können Sie auch mehrere Spritzen mit Kochsalzlösung füllen und manuell perfundieren. Aber das hier ist viel einfacher. Und außerdem benötigen wir einen 10-ml-Spritzenzylinder, in den wir Kim-Tücher eingefüllt haben.Und ich werde das Anästhetikum, etwas von dem Anästhetikum, hineingeben, um es auf die Nase der Ratte aufzutragen, um sicherzustellen, dass sie während des Eingriffs tief anästhesiert bleibt. Und natürlich benötigen Sie Instrumente. Heute werde ich jedoch keinen sterilen Eingriff durchführen, da ich die Zellen nicht in Kultur bringen werde.Die von mir verwendeten Instrumente sind also keimfrei. Wenn Sie jedoch Ihre Zellen in Kultur bringen möchten, sollten Sie natürlich sterile Instrumente verwenden. Für die Zwecke dieses Videos werde ich eine Ratte verwenden, die tatsächlich tot ist.Ich kann das Verfahren daher langsam durchführen, um es Ihnen Schritt für Schritt zu zeigen. Bei einem echten Eingriff benötigen Sie jedoch eine stark anästhesierte Ratte, die nicht tot ist. Das Herz sollte weiterhin schlagen.Beginnen wir also mit dieser Ratte. Ich habe die Ratte so platziert, dass ihr Rücken von mir wegzeigt, und die angefeuchteten Tücher über ihre Nase gelegt. Als Erstes werde ich überprüfen, ob die Ratte tief anästhesiert ist.Sie müssen dies also vor jedem dieser Eingriffe tun. Ich nehme meine Pinzette und zwicke die Ratte, und es erfolgt keinerlei Reaktion. Falls eine Reaktion auftritt, müssen Sie die Ratte zurück in die Belger-Halterung legen, um sicherzustellen, dass sie tief anästhesiert ist.Dann werde ich 70 % Ethanol verwenden, um die obere Körperhälfte der Ratte einzutauchen. Anschließend werde ich die Brusthöhle öffnen. Zuerst entferne ich die Haut und öffne die Seite.Dann öffne ich die eigentliche Körperhöhle. Diese Masse hier ist das Herz. Hier sehen Sie das rechte Vorhof.Das werde ich durchtrennen, um das Austreten des Blutes zu ermöglichen. Und um den gesamten Körper zu perfundieren, muss ich meine Nadel in den linken Ventrikel einführen. Ich werde die Nadel also genau hier einführen.Und sobald die Nadel eingeführt ist, öffne ich den Infusionschlauch, damit die Kochsalzlösung durchfließen kann, und lasse sie fünf bis zehn Minuten lang laufen. Wenn die Perfusion gut ist, werden Sie eine Verfärbung des roten Pulses sowie der roten Nase und der Augen der Ratte sehen, was natürlich zeigt, dass das Blut den Körper der Ratte verlässt. Das bedeutet, die Perfusion sollte gut sein.Hier ist die Maus nach der Herzperfusion. Wie Sie sehen können, sind die Nase, die Ohren und die Augen dieser Maus nicht mehr rosa oder rot. Sie sind vollständig weiß, was zeigt, dass die Perfusion gut funktioniert hat.Das gesamte oder größtenteils Blut hat die Rattenspuren verlassen. Da die Ratte nun kardial perfundiert wurde, muss ich ihr den Kopf abtrennen. Ich muss die Ratte enthaupten.Dafür werde ich normale Laborausrüstung verwenden. Nun werde ich das Gehirn aus der Ratte entfernen. Dazu werde ich das gesamte Fell mit 70 % Ethanol durchnässen, um zu verhindern, dass Fell herumfliegt.Dann werde ich zuerst die Haut entfernen. Und da ich das Gehirn nicht für die Histologie verwenden möchte und es in kleine Stücke schneiden werde, achte ich nicht besonders darauf, es sauber und in einem Stück herauszunehmen. Ich werde hier meine Schere am Schädelbasisansatz einsetzen, dort, wo das Gehirn mit dem Rückenmark verbunden ist.Und ich werde den Knochen auf jeder Seite durchtrennen und dann die Oberseite entfernen. Und das werde ich immer wiederholen. So ist das Gehirn vollständig freigelegt.Und wie Sie sehen können, hat die Perfusion gut funktioniert, da das Gehirn vollständig klar ist. Bei einem nicht perfundierten Tier wäre die oberste Schicht des Gehirns vollständig mit roten Kapillaren, roten Blutkapillaren, bedeckt, sodass man sie überhaupt nicht sehen würde. Das bedeutet, dass die Perfusion erfolgreich war. Nun werde ich das Gehirn herausschöpfen und darauf achten, dass ich den Riechkolben nicht zurücklasse, und es in ein Gefäß mit etwas Eis namens PBS geben.Jetzt werde ich das Gehirn, ohne besonders vorsichtig darauf zu achten, es intakt zu halten, in das Röhrchen mit PBS geben und anschließend die Sehnerven durchtrennen; dann lässt es sich mithilfe eines Spatels ziemlich leicht herausnehmen. Nun werde ich das Rückenmark derselben Ratte entfernen. Auch hier, da wir es in kleine Stücke schneiden werden, achte ich nicht allzu sehr darauf, es besonders sauber herauszunehmen, solange ich alles vollständig entferne.Ich schneide zunächst die Haut entlang der Wirbelsäule auf, wodurch die Wirbelsäule hier sichtbar wird. Danach werde ich das Gewebe hier entfernen, sodass die Wirbelsäule über ihre gesamte Länge freigelegt ist. Und genau hier können Sie das Rückenmark sehen.Bei einer Maus können Sie beide Enden durchschneiden und PBS mit der Spritze einfüllen, sodass das Rückenmark nahezu vollständig austritt. Bei Ratten ist dies jedoch nicht so einfach. Ich muss es öffnen und das Rückenmark herausnehmen.Jetzt schneide ich auf beiden Seiten und entferne, wie bereits beim Gehirn, das Gehirn und den Knochen, um das Rückenmark freizulegen. Wie beim Gehirn ist auch das Rückenmark vollständig weiß, was zeigt, dass die Herzperfusion gut funktioniert hat. Dies führe ich entlang der gesamten Wirbelsäule durch.Und ich gehe bis etwa auf die Höhe der rechten Hüfte, also genau hier. Dann nehme ich die Pinzette und ziehe einfach das Rückenmark heraus – das sieht nicht besonders schön aus – und lege es in mein Röhrchen mit dem Gehirn. Nun befinden sich in meinem Röhrchen sowohl das Gehirn als auch das Rückenmark der Ratte, und jetzt bin ich bereit, meine Einzelzell-Suspension herzustellen.Jetzt bin ich bereit, eine Einzelzell-Suspension aus meinem zentralen Nervensystem herzustellen. Dazu benötige ich eine 10 cm große Petrischale, in die ich einen 70-Mikron-Zellsieb lege. Außerdem verwende ich den Kolben einer 1-mL-Spritze sowie Pinzette und Schere.Ich werde meine Probe in den Zellfilter geben und sicherstellen, dass nichts im Reagenzglas zurückbleibt. Anschließend werde ich sie in kleine Stücke schneiden, sowohl das Gehirn als auch das Rückenmark, gut vermischt. Wenn alles schließlich fein zerkleinert ist, werde ich den Kolben der Einmalspritze verwenden und die Probe damit durch den Filter pressen.Sie werden sehen, dass das PBS außerhalb des Zelltrichters zunehmend trüber wird, während einzelne Zellen hindurchtreten. Wenn ich meine Zellsuspension steril halten wollte, würde ich dies natürlich in einer Zellkulturbank durchführen und meine Finger nicht hineinstecken. Da das PBS nun trüb ist, werde ich es zum ersten Mal sammeln und in ein 50-ml-Gefäß geben.Aber ich werde auch weiterhin beobachten und etwas mehr PBS zu meinem Zelltrichter hinzufügen, und ich werde erneut durchquetschen. Da das ZNS so viel Fett enthält, ist es eines der Organe, von denen ich die Zellsuspension mit dieser Methode am schwierigsten herstellen kann. Daher habe ich mein gesamtes ZNS mehrfach durch den Zelltrichter gedrückt und die gesamte Einzelzell-Suspension gesammelt.Und hier ist das Röhrchen, das ich bis zu 50 ml mit PBS aufgefüllt habe, das meine Einzelzell-Suspension enthält, die aus dem ZNS rechts gewonnen wurde. Nun werde ich dieses Röhrchen abzentrifugieren, um es für den Gradienten vorzubereiten. Die Zellen sind fertig zentrifugiert. Wir haben nun ein Pellet, daher werde ich den Überstand verwerfen und meine Zellen in 20 Milliliter Percoll mit 30 % Percoll in PBS resuspendieren.Und ich werde dies über 10 ml 70 % Perkol in PBS geben, um die Migration zu ermöglichen. Ich entsorge das Überstandmedium, löse das Pellet auf, um sicherzustellen, dass die Zellen einzeln suspendiert und nicht klumpenartig im Pellet vorliegen.Jetzt habe ich meine Suspension von ZNS-Zellen in Einzelzell-Suspension. Ich werde diese Zellen in 20 ml 30 %iger Percoll in PBS suspendieren und dann diese 20 ml auf 10 ml 70 %igen Percoll in PBS aufschichten. Anschließend werde ich sie abzentrifugieren.Jetzt nehme ich meine 20 ml CNS-Suspension und werde sie langsam auf die 70%ige Percoll-Schicht auftragen, um es einfacher zu machen. Man kann auch einen Farbstoff wie Phenolrot in eine der Schichten geben, aber ich bin mir nicht sicher, welche Wirkung dies auf die Zellen hat, falls überhaupt eine vorhanden ist. Daher versuche ich, ihn zu vermeiden.Sie sollten langsam genug vorgehen, damit sich die beiden Schichten nicht vermischen, und daher keine starke Turbulenz in der unteren Schicht erzeugen. Und je dicker die obere Schicht wird, desto schneller können Sie arbeiten. Nun habe ich meine Zellen dem Gradienten hinzugefügt.Die klare Schicht hier unten ist die 70 %ige Percoll-Schicht, und die trübe Schicht oben ist eine 30 %ige Percoll-Schicht, die meine Einzelzell-Suspension enthält. Ich werde dieses Röhrchen nun 20 Minuten lang in die Zentrifuge geben und anschließend die Schicht der Monocle-Zellen sichtbar machen können, falls ich sorgfältig gearbeitet habe. Nun haben wir das Zentrifugieren des Gradienten abgeschlossen.Wie immer, wenn Sie ein Gradientenpräparat zentrifugieren, achten Sie darauf, die Bremse auszuschalten, damit diese das Gradientenpräparat nicht stört, indem sie zu stark abgebremst wird. Nun haben wir unsere Schichten. Auf dem Gradienten befindet sich eine Fettschicht, die ich entfernen werde, um die Kontamination meiner Zellsuspension zu vermeiden.Und an der Grenzfläche zwischen den beiden Schichten aus 30 und 70 % Perkel sehen Sie, dass die Grenzfläche nicht scharf, sondern verschwommen ist, und genau dort befinden sich die Zellen. Sobald ich die Zellen entfernt habe, werden Sie sehen, dass die Grenzfläche deutlich schärfer wird. Ich werde nun den größten Teil des Fetts in der oberen Schicht entfernen und einfach in meinen Abfall entsorgen.Ich muss nicht alles entfernen, aber ich möchte genug entfernen, damit es meine Pipette nicht vollständig bedeckt, wenn ich hinuntergehe, um die Monocle-Zellen zu entnehmen. Als Nächstes werde ich mit einer anderen Transferpipette auf die Ebene der Grenzfläche gehen und meine Zellen gewinnen. So habe ich nun mehrere Milliliter an der Grenzfläche gesammelt.Ich habe also wahrscheinlich alle Zellen erhalten, die verfügbar waren. Die Anzahl der Monocle-Zellen im ZNS war sehr gering. Nun habe ich meine mononukleären Zellen in der Röhre.Ich werde das Gefäß mit PBS bis auf 50 ml auffüllen und die Zellen abzentrifugieren, um sie zu pelletieren, wodurch das Perle entfernt wird. Ich empfehle, die Zellen mindestens zwei- oder dreimal mit einem vollen Gefäß PBS zu waschen, um sicherzustellen, dass sämtliches Perle entfernt ist. Danach sind die Zellen bereit für jeden gewünschten weiteren Eingriff.Heute habe ich Ihnen gezeigt, wie man mononukleäre Zellen aus dem zentralen Nervensystem von Ratten isoliert. Wenn Sie diese mononukleären Zellen einmal erhalten haben, können Sie sie natürlich weiter aufreinigen, um beispielsweise T-Lymphozyten aus der Population zu isolieren. Mit diesen Zellen werde ich einen Durchflusszytometrie-Test durchführen, um die Zellpopulationen nachzuweisen, die in meinem Gehirn vorhanden waren.Viel Erfolg bei Ihrer Zellisolierung.

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Forschung

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Biology

Biologie

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Erfahren Sie die Isolierung mononukleärer Zellen aus dem ZNS von Ratten mit EAE. Diese Methode nutzt Herzkatheter-Perfusion und Dichtegradientenzentrifugation für immunologische Analysen.

Isolierung von mononukleären Zellen aus dem zentralen Nervensystem von Ratten mit EAE

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