Name: Die intranasale Verabreichung von rekombinantem Influenza Vaccines in chimären Maus-Modelle zu Mucosale Immunität Studieren (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-06-25T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 39 s
Description: Lernen Sie die intranasale Verabreichung von rekombinanten Influenza-Impfstoffen in chimären Mausmodellen zur Untersuchung der mukosalen Immunität. Diese Methode ermöglicht die Analyse dendritischer Zellen und T-Zell-Antworten.

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Wir danken Sergio Gómez-Medina für die hervorragende technische Unterstützung bei Mausexperimenten. Diese Arbeit wurde aus Mitteln der Leibniz-Gemeinschaft und des Leibniz-Zentrums für Infektionen unterstützt. A.L. ist Stipendiatin eines Pre-Doctoral Fellowships der Leibniz Graduate School.

Tierversuche wurden nach anerkannten Protokollen und nach den Richtlinien des Deutschen Tierschutzgesetz durchgeführt. Alle Mitarbeiter Durchführung von Tierversuchen geführt Trainingsprogramme nach Kategorie B oder C der Federation of European Laboratory Animal Science Associations. 1. Erzeugung rekombinanter lebenden attenuierten Influenza-Impfstoffe durch reverse Genetik HINWEIS: Die ausführliche Protokoll für die Erzeugung von rekombinanten Grippeviren durch reverse Genetik wurde von früheren Studien 5 beschrieben worden ist und aus dem Rahmen dieses Berichts. Kurz gesagt, Rettung der kälteangepassten Influenza-Impfstoffe (CAV) in einem biologischen Sicherheitsschrank der Klasse II unter Biosicherheitsstufe 2 (BSL2) Containment durchgeführt und beinhaltet Schritte unten detailliert beschrieben. Die Transfektion und Infektion Protokoll folgt, daß der Martinez-Sobrido et al. 5. <ol><li> Generieren Sie eine Reassortante kälteangepassten InfluenzaImpfstoff mit als Hintergrund die kälteangepassten Stamm A / Ann Arbor / 6/60 (H2N2), sowie die Hämagglutinin (HA) und ein modifiziertes Neuraminidase (NA) des A / PR / 8/34 (H1N1) Stamms ( 1A). Die Abwandlung in der NA-Gen besteht aus einem PCR-basierten Austausch einer konservierten Sequenz im Protein Stiel (Reste 65 bis 72) durch einen kurzen cDNA-Sequenz, die Hühner-Ovalbumin (OVA) abgeleitetes Peptid SIINFEKL (1B) kodiert. Das SIINFEKL-Peptid ist ein hochimmundominanten Peptids in Zusammenhang mit der H-2b-MHC-Klasse-I-restringierte Antwort von C57BL / 6-Mäusen 12. </li><li> Platte 10 6 293T-Zellen pro Vertiefung in Platten mit 6 Vertiefungen mit DMEM 10% fötalem Rinderserum (FBS) mit 1% Penicillin / Streptomycin (P / E) ergänzt. </li><li> Vorbereitung Plasmid Transfektionsgemisch: 1 &amp; mgr; g von jedem der Plasmide cDNAs für PB2, PB1, PA, NP, M, NS vom Influenza A / Ann Arbor / 6/60-Stamm, und 1 ug der Plasmide für die NA kodieren -SIINFEKL undHA von Influenza-A / PR / 8/34. Add vorgewärmtem OptiMEM (15 &amp; mgr; l für ein Endvolumen von 100 ul / Vertiefung). </li><li> Inkubieren Transfektionsmischung für 30 min bei RT. </li><li> 100 l Transfektionsmischung / Vertiefung und Inkubation für 16 Stunden bei 37 ° C und 5% CO 2. </li><li> Ändern Zellmedium durch DMEM 0,3% BSA 1% P / E bei 33 ° C und 5% CO 2 für 5 Stunden. </li><li> Werden 10 6 Influenza permissive MDCK-Zellen in DMSO, enthaltend 1 ug / ml Trypsin aus Rinderpankreas mit L-1-Tosylamid-2-phenylethyl-chlormethylketon (TPCK-Trypsin) behandelt. Die 293T-MDCK Co-Kulturen für 2 zu halten - 3 Tage bei 33 ° C und 5% CO 2. </li><li> Sammeln Ständen von MDCK-293T Zell Kokulturen und klar durch Zentrifugation bei 260 × g für 5 min. </li><li> Impfen 9 - 10 Tage alten Hühner befruchteten Eiern in sterilen Bedingungen. Um dies zu tun, machen Sie ein Loch an der Spitze der Eierschale, wie Martinez-Sobrido et al. 5 angedeutet. </li><li> Decken Sie die Eierschale with geschmolzenes Wachs mit einem Wattestäbchen und bebrüten die geimpft Hühnereiern für 3 Tage bei 33 ° C. </li><li> Ernten Sie die Allantoisflüssigkeit aus infizierten bebrüteten Eiern: Waschen Sie die Eierschalen mit 70% Ethanol. Öffnen Sie das Ei mit einem sehr sachte knacken im oberen Teil und nehmen Sie die Allantois-Membran unter Verwendung einer sterilen Pinzette. Verwenden Sie eine 10 ml-Pipette, um so viel Flüssigkeit wie möglich zu sammeln (in der Regel 6 bis 10 ml). Zentrifuge bei 260 × g für 10 min bei 4 ° C geklärt Allantoisflüssigkeit übertragen in neue Röhrchen. </li></ol> 2. Tracking-Impfstoff-spezifische Immunität <ol><li> Tracing von Peptid-tragenden dendritischen Zellen (DCs) <ol><li> Für Maus-Impfung, betäuben Mäuse mit 5% Isofluran in Sauerstoff unter Verwendung eines Präzisions-Verdampfer. Verwenden eine 200 ul-Pipette 50 ul PBS, enthaltend 10 3 Plaque-bildende Einheiten (pfu) der Impfstoff das SIINFEKL-Peptid über Tröpfchen direkt exprimieren den Maus Nase zu verabreichen. </li><li> Drei Tage nach der Impfung, euthanize Mäusen über Isoflurananästhesie durch Genickbruch folgte. </li><li> Heben Sie die Haut von Mäusen an der Mittellinie direkt unter dem Brustkorb mit einer Pinzette und schneiden Sie einen kleinen Schnitt durch die Haut mit einer Schere. Unter dem Aspekt der Einschnitt, machen Sie eine 3-5 cm lange durch die Haut in Richtung sowohl Kopf und Schwanz von jedem Ende geschnitten, dann zwei 2 cm Einschnitte von der Mittellinie seitlich. Ziehen Sie die Haut um die Peritonealdialyse und Brusthöhle zu offenbaren. Vorsichtig durch die Membranen rund um das Bauchfell, um den Brustkorb freizulegen geschnitten. </li><li> Für den Zugriff auf das Mediastinum schneiden die diafragma und den Boden des Käfigs Rippe. Finden und zu entfernen 2 mediastinalen Lymphknoten (MLNS), leicht dorsal und lateral neben dem Thymus, medial neben dem Truncus brachiocephalicus, in der Nähe der Bauchseite der Trachea. </li><li> Zu ernten die MLNs verwenden gebogenen Pinzette. Zeigen Zange unterhalb der Lymphknoten und ziehen Sie sie vorsichtig ab. Platzieren Lymphknoten in einer 6-Well-Platte mit 1 ml DMEM und keine connecti entfernenve oder Fettgewebe rund um den Knoten. <ol><li> Necken jeder Probe gründlich mit zwei 26 G Nadeln auf 1 ml Spritzen befestigt. Um die Lymphknoten zu necken, halten Sie sie gedrückt, während mit einer Nadel Aufbrechen der Lymphknoten mit der anderen Nadel. Wenn dies richtig gemacht wird, sind konzentrierte Zellen platzen aus dem Lymphknoten leicht in den Medien beobachtet. Geben Sie das Gewebematerial durch einen 70 &amp; mgr; m Nylon-Filter, um Einzelzellsuspensionen zu erhalten. </li></ol></li><li> Zentrifuge Einzelzellsuspensionen für 10 Minuten bei 260 × g in einer gekühlten Zentrifuge. Zellpellet in 2 ml Rotes Blutkörperchen lysierende (RbCl) Puffer, um rote Blutkörperchen zu lysieren. Ermöglichen Lyse für 3 min bei RT ablaufen. </li><li> Neutralisieren RbCl Puffer durch Zentrifugation und Zell Resuspension in 2 ml eiskaltem PBS. </li><li> Platten Zellen in U-förmigen 96-Well-Platten bei einer Konzentration von 10 7 Zellen / ml in einem Endvolumen von 100 ul. </li><li> Für die Durchflusszytometrie-Analyse, Blockzelle Fc-Rezeptoren mit Hilfe1 ug anti-Maus-CD16 / CD32-Antikörper pro 10 6 Zellen für 15 Minuten auf Eis. </li><li> Zentrifugenplatten und entsorgen Überständen durch flicking Platte. Inkubieren einzelnen Wells mit der Oberfläche Antikörper Kombination der Wahl. Typischerweise für die Detektion von dendritischen Zellen in Lymphknoten, sollte die Antikörpermischung sind: 0,25 &amp; mgr; g anti-CD11c, 0,25 ug CD11b, 0,5 ug von MHC-Klasse II, 0,25 ug CD103 und 0,15 ug CD8a in einem Endvolumen von 100 ul. </li><li> Bei negativen Gating, fügen 0,25 ug anti-CD3, CD19, NK1.1 oder einer Linie Cocktail (2A). Alternative Gating-Strategien sowie Protokolle für die angemessene Entschädigung von mehreren Fluoreszenzfarbstoffen können auf der Website des immunologischen Genome Project gefunden werden. Zusätzlich zu den Oberflächenmarker der Wahl wird mit 1 ug eines Antikörpers gegen H-2K b verpflichtet, dem Cocktail SIINFEKL. Das im Handel erhältliche Antikörper Visualisierung von DCs i ermöglichenn, die der SIINFEKL Peptid gebunden ist, an die Oberfläche MHC Klasse I. </li><li> Zellen, die mit Oberflächen Antikörper inkubieren für 30 Minuten auf Eis. Schützen Platte aus Licht. Zentrifuge Platten bei 260 × g für 5 min und wäscht mit 2 ml PBS zweimal. Übertragen Zellen Zytometrie zur Analyse Strömungsrohre. </li></ol></li><li> Beurteilung der Impfstoff-spezifischen T-Zellproliferation <ol><li> Erhalten Spender-T-Zellen aus kommerziell erhältlichen TCR-transgene Mäuse (OT-I-Mäusen) (C57BL / 6-Tg (Tcr ATCRB) 1100Mjb / J), bei dem alle erzeugten CD8 T-Zellen spezifisch für das SIINFEKL-Peptid. Euthanize Mäusen durch Isofluran-Narkose durch Genickbruch folgte. Ernte Milz durch Ausführen eines Schnittes in der Bauchhöhle. Zeigen Milz / s in 2 ml DMEM / Milz und entfernen Binde- und Fettgewebe. </li><li> Generieren Einzelzellsuspensionen aus Milz nach der in 2.1.2 und 2.1.3 beschriebenen Verfahren. </li><li> Weiter bereichern die Einzelzellsuspension auf T-Zellen, gelten Magnetic Bead Separation Protokolleentweder mit positiven oder negativen Selektionsverfahren 12. Um Spender von Empfängerzellen zu unterscheiden, verwenden kongenen Mäusen, so dass beispielsweise Empfängermäuse drücken die Leukozytenmarker CD45.1 während Spender-T-Zellen exprimieren CD45.2 12. </li><li> T-Zellen zu markieren, inkubieren in 1 ml PBS, das 5 &amp; mgr; M Carboxyfluorescein Succinimidylester (CFSE) in einer optimalen Zelldichte von 5 x 10 6 Zellen / ml. Inkubieren Zellen für 20 min bei 37 ° C von Belichtung geschützt. Nach der Inkubation Zentrifuge Zellen bei 260 g für 5 min, Überstand verwerfen und Resuspension Zellen in 3 ml fötales Rinderserum (FBS) zu CFSE neutralisieren. </li><li> Zentrifuge Zellen bei 260 · g während 10 min und resuspendieren in der adäquaten Volumen PBS, so dass 100 &amp; mgr; l-Lösung enthält 2 x 10 6 Zellen. Infundieren Empfänger kongenen Mäusen mit 2 x 10 6 Zellen / Maus über retro-orbitalen Sinus Einspritzung 13. </li><li> Euthanize Empfängermäuse an den Tagen 3, 4 und 5 post-Impfung mit Isofluran-Narkose durch Genickbruch folgte. Ernten Lymphknoten und bereiten Einzelzellsuspensionen für die Durchflusszytometrie als in 2.1.2-2.1.5 angezeigt. </li><li> Identifizieren Spenderzellen durch Färben der Einzelzellsuspensionen in 100 ul einer Antikörper-Cocktail, enthaltend: 0,25 ug anti-Maus-CD3, CD4 und CD8-Antikörper; 0,5 ug anti-Maus CD45.1 oder CD45.2-Antikörpers (abhängig von dem Phänotyp der Spenderzellen). Verlassen Sie die FL-1-Kanal des Durchflusszytometers offen (FITC), um die Verdünnung Profil CFSE 12 (2B) zu bestimmen. </li></ol></li></ol> 3. chimären Mäusen auf Gene-spezifischen Impfstoff Antworten Dissect HINWEIS: Die Erzeugung von Wettbewerbsknochenmarkchimären mit DTR-basierte Mausmodelle ermöglicht die Unterscheidung von zellspezifischen Funktionen während der Immunantwort auf Impfstoffe. Hier zeigen wir eine weitere Strategie, mit der Kombination von DTR-exprimierenden Spender cEllen mit Zellen von Knockout-Mäusen erlaubt die Gen-spezifischen Funktionen bei der Immunität in spezifische Zellkompartimente zu studieren. Im Beispiel erzeugen wir Mäuse mit spezifischen Deletion von Toll-like Rezeptor 3 (TLR3) in Langerin + CD103 + DCs. <ol><li> Herstellung von Knochenmarkspenderzellen <ol><li> Die Arbeiten im Rahmen einer Sicherheitsstufe II Schrank. Vermeiden Sie Verschmutzung durch die Verwendung ausschließlich im Autoklaven Instrumente. </li><li> Um Knochenmark chimären Mäuse zu generieren, verwenden kongenen CD45.1 + C57BL / 6 weiblichen Mäusen als Empfänger, und verwenden Sie TLR3 - / -, Langerin-DTR / EGFP oder Gew Mäusen, CD45.2 + als Spender. Verwendung kongenen Spender- und Empfänger-Mäusen erlaubt die Differenzierung von Spender- und Empfängerzellen mittels Durchflusszytometrie und dies ermöglicht engraftment bewertet werden. </li><li> Spenderknochenmarkszellen zu erhalten, einschläfern Spendermäusen mit Isofluran-Narkose durch Genickbruch folgte. Mit einer scharfen Schere durchführen Einschnitte um die Knöchel, so dass die mouse Muskulatur freiliegt. </li><li> Verwendung stumpfen Pinzette ziehen Maus Haut und Fell sanft vom Knöchel zur Hüfte hin, so dass die Beinmuskulatur zu sehen sind. </li><li> Mit einer scharfen Schere geschnitten Maus Beinen auf der Höhe der Hüfte und über dem Kopf des Oberschenkelknochens. </li><li> Platzieren Beine auf einer Petrischale und auf Eis. Arbeiten Sie schnell und entfernen Sie alle Muskeln, die Knochen freizulegen. </li><li> Separate Oberschenkelknochen und Schienbeinen. Platzieren Knochen in einer Lösung von 70% Ethanol für 5 Minuten, um mögliche Bakterien entfernen und sie sofort auf eine andere Petrischale mit 5 ml serumfreiem DMEM. Geschnitten Knochenenden mit einer scharfen Schere und spülen Sie das Knochenmark in das DMEM. Um so in den Knochen durch Einsetzen einer 26 G-Nadel in eine 5 ml Spritze befestigt tun, flush 1 ml DMEM. Stellen Sie sicher, die Knochen schauen weiß (leer) Nach dem Spülen. </li><li> Sammle alle Knochenmarkszellen aus Spendermäusen in 10 ml DMEM. Generieren Einzelzellsuspensionen von Knochenmarkzellen, indem man die Ernte durch einen 70 &amp; mgr; m Zellsieb. </li><li> ClOhreinzelzellsuspensionen von Knochenmarkzellen durch Zentrifugation bei 260 × g für 10 min bei 4 ° C in einer Kühlzentrifuge. Resuspendieren Zellpellet in 10 ml PBS. Abbau roter Blutkörperchen mit RbCl Lösung nach 2.1.3 und 2.1.4 beschrieben. </li><li> Graf Knochenmarkzellen unter Verwendung von entweder einer Zählkammer oder eines automatisierten Zellzählers. Beurteilen Sie die Lebensfähigkeit der Zellen durch Bestimmung der toten Zellen mittels Trypanblau-Färbung 13. Optimalerweise ein einziges Tier Erträge um 3 x 10 7 Leukozyten / Maus mit einer Tragfähigkeit von mindestens 80%. </li><li> Im Falle von Gesamtknochenmarkschimären, bereiten TLR-3 - / - oder Gew Spenderzellen. Die optimale Zellkonzentration 2 x 10 7 Zellen / ml, da 2 x 10 6 Zellen in 100 ul PBS für die Transplantation verwendet werden. Wenn es nicht sofort verwendet wird, zu erhalten Spenderzellen bei -80 ° C unter Verwendung von langsamen Einfrieren Techniken und FBS mit 10% DMSO. Für den gemischten Chimären-Modell, mischen Langerin-DTR-Spenderzellen und TLR3 - / - </sup&gt; Spenderzellen in einem Verhältnis von 75:25. Bereiten Sie eine Mischung von 75: 25 Langerin-DTR: Gew Knochenmarkszellen, die Kontrolle Mäuse zu erzeugen. </li></ol></li><li> Maus-Bestrahlung und Transplantation <ol><li> Bestrahlen weiblichen Mäusen von 6 - 8 Wochen in einem Cäsium-137 Quelle-Strahler. Geben Sie Mäusen zwei Dosen von 550 rad 4 Stunden auseinander. Split Bestrahlung minimiert akuten Lebertoxizität und reduziert somit Maus Letalität aufgrund der Bestrahlung Protokoll. </li><li> Nach der Bestrahlung halten Mäuse unter der Behandlung mit Antibiotika für zwei Wochen. Geben Antibiotika mit dem Trinkwasser in 2,5-5 mg Baytril / kg. </li><li> 2-4 Stunden nach der zweiten Bestrahlung, Transplantations Mäusen mit Spenderknochenmarkzellen intravenös. Führen die Injektion von Spenderzellen durch Retroorbitalsinus Einspritzung 13 und unter Isofluran-Narkose mit Maximalvolumen von 100 ul PBS, das 2 x 10 6 Zellen. </li><li> Vier Wochen nach der Transplantation, zu bewerten engraftment in einer Probe von 100ul peripheren Blut mittels Durchflußzytometrie unter Verwendung einer Maschine in der Lage, mindestens zwei Farben zu lesen. Um zwischen Spender und Empfänger Radio-resistente Zellen zu unterscheiden, verwenden Sie handelsüblichen Fluoreszenz-markierten CD45.1 und CD45.2 Anti-Maus-Antikörper unter Verwendung von Verdünnungen zwischen 1/100 und 1/200. Optimale Einwachsen von Spenderzellen sollte mindestens 80% der gesamten hämatopoetischen Zellen im peripheren Blut. </li></ol></li><li> Impfung und gezielte Verarmung <ol><li> Impfung von Mäusen mit rekombinanten attenuierten Influenza-Impfstoff intranasal über. Für Maus-Impfung, betäuben Mäuse mit 5% Isofluran in Sauerstoff unter Verwendung eines Präzisions-Verdampfer. Verwenden eine 200 ul-Pipette 50 ul PBS, enthaltend 10 3 Plaque-bildenden Einheiten (pfu) der Vakzine zu verabreichen. </li><li> Um die endgültige Maus-Modell zu generieren, Behandlung von Mäusen mit 50 ng der DT in 50 ul PBS intranasal verdünnt. Verwalten DT tropfen direkt an den Nasenlöchern des narkotisierten Mäusen, wie in 3.3.1 beschrieben. Treat miCE mit Tagesdosen Beginn der Behandlung an Tag -2 vor der Impfung bis zum Tag 2 nach der Impfung (3B). </li></ol></li></ol>

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</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

In dieser Studie beschreiben wir, wie reverse Genetik und chimären Maus-Modelle können verwendet werden, um die physiologischen und molekularen Mechanismen der Impfstoff-induzierte Immunität aufzuklären. Influenza reversen Genetik wird in vielen Laboren etabliert und hat eine Hauptrolle im Verständnis Influenza Pathogenese, Replikation und Getriebe 17 gespielt. Ein wichtiger Punkt in unserem Protokoll ist Rettung von kälteangepassten Grippeimpfstoffen Expression fremder Epitope. Während die Strategie der Einf...

Die Erzeugung von immunologischen Gedächtnisses in Abwesenheit der Krankheit ist die physiologische Grundlage für die effektive Impfung 1. In jüngster Zeit Systeme biologischer Ansätze haben gezeigt, dass eine erfolgreiche Impfstoffe wie die Gelbfiebervakzin, induzieren eine starke Induktion der angeborenen Immunantwort und Aktivierung verschiedener Untergruppen von dendritischen Zellen (DCs), die wiederum führen zur Aktivierung der antigen multilineärer spezifische T-Zellen 2,3. Da DCs sind die einzigen Immunzellpopulation mit der Fähigkeit, Antigen-spezifische T-Zellen naive 4 zu aktivieren, ist die Untersuchung von deren Funktion bei der Impfung kritisch für die Immunantwort auf Impfstoffe zu verstehen und zukünftige Strategien gegen herausfordernde Pathogene zu entwickeln. Ein System, Rückverfolgung von verschiedenen DCs Teilmengen während der Immunantwort auf Impfstoffe wären wünschenswert, um eine genaue Kinetik der DC Migration auf lymphatischen Gewebe zu schaffen, und es daher,Einblick in die physiologischen Mechanismen für die Einleitung der Impfstoff-spezifischen adaptiven Immunität verantwortlich. Reverse Genetik basierte Ansätze bieten die Möglichkeit, modifizierte erzeugen attenuierten Impfstoffen, die experimentell mit diesem Zweck verwendet werden können. Seit ihrer Umsetzung am Influenza-Forschung hat Plasmid-basierte reversen Genetik weit verbreitet eingesetzt worden, um rekombinante Influenza-Stämme einschließlich LAIVs generieren. Standardprotokolle zur Rettung rekombinanten Influenza-Viren erfordern Mehr Transfektion von hoch transfektierbare Zelllinien mit AmbiSense Plasmide (Herstellung von positiven und negativen Sinn RNA), welche die acht Influenzavirus-Segmente sowie Verstärkung in eine permissive System wie Madin-Darby canine kidney ( MDCK-Zellen) und / oder Huhn embryonierten Eiern 5. Die Anwendung der reversen Genetik, molekulare Werkzeuge, um die Immunmechanismen der Impfung zu untersuchen erzeugen bleibt unerforscht. Die Erzeugungneuer Mausmodelle ermöglicht spezifische Depletion von Immunzellpopulationen, einschließlich DCs hat neue Möglichkeiten eröffnet, um die grundlegenden Immunmechanismen durch Impfung hervorgerufen Schutz zugrunde zu verstehen. Der Vergleich zwischen DC Teilfunktionen in Mäusen und Menschen haben gezeigt, dass, in einem großen Ausmaß, Maus und Mensch DCs sind funktionell homolog 6,7 diese Ergebnisse stark darauf hin, dass die Entwicklung eines Maus-Modelle erlauben spezifische Depletion der DC in dem stationären Zustand und bei entzündlichen Erkrankungen, kann dazu dienen, die Physiologie der DC Reaktionen in Menschen zu verstehen. In den letzten Jahren eine Reihe von Mausmodelle erzeugt worden Durchführung Transgene Simian Diphtherietoxin (DT) Rezeptor (DTR) unter der Kontrolle der Promotorregion eines Gens von Interesse exprimieren 8,9. Seit Mausgeweben nicht natürlich auszudrücken DTR, diese Modelle zu ermöglichen bedingte Erschöpfung der Zell-Untergruppen trägt die gezielte Gen von Interesse auf der Maus Inokulation mit DT. Damit unsere ability, spezifische DCs und anderen Leukozyten in vivo bei physiologischen Prozessen führen, wurde stark von der Entwicklung der DTR-basierten ro verbessert. Während jedoch diese transgenen Mausmodelle sind sehr häufig benutzt worden, um die Ontogenese des Immunsystems zu verstehen, deren Anwendung auf die Entwicklung von Impfstoffen wurde kaum getestet. Hier wird durch die Kombination von Influenza reversen Genetik und DTR-basierten Wettbewerbsknochenmarkchimären, schlagen wir eine Methode, um die Kinetik der Impfstoff die Immunität als auch einzelne Gen-Funktion während der Immunantwort auf Impfstoffe in vivo zu untersuchen. Die Anwendung dieser Technologie für die präklinische Evaluierung neuer Impfstoffe gegen Infektionskrankheiten anspruchs könnte helfen, Impfstoffentwicklung zu rationalisieren und Impfstoffkandidaten in vivo zu testen.

<table><tbody><tr><td>Dulbecco&akut; s Modified Eagle Medium (DMEM 1x)</td><td>Gibco RL-Life Technologies</td><td>41965-039</td><td></td></tr><tr><td>OptiMEM</td><td>Gibco RL-Life Technologies</td><td>31985-047</td><td></td></tr><tr><td>Lipofectamine 2000</td><td>Invitrogen-Life Technologies</td><td>11668-027</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin-Streptomycin (10.000 U/ml)</td><td>PAA</td><td>p11-010</td><td></td></tr><tr><td>Rinderserumalbumin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A2153</td><td></td></tr><tr><td>Embryonierte Eizellen</td><td>Valo biomedia Gmbh</td><td></td><td></td></tr><tr><td>PBS (1x)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8537</td><td></td></tr><tr><td>70 &mu; M Nylon Filter</td><td>Greiner-Biorad</td><td>542-070</td><td></td></tr><tr><td>Lysing Puffer für rote Blutkörperchen (RBCL) 10x</td><td>BD Bioscience</td><td>555899</td><td></td></tr><tr><td>CD16/CD32 Maus BD Fc Block (2.4G2)</td><td>BD Pharmigen</td><td>553142</td><td></td></tr><tr><td>APC-Anti-Maus SIINFEKL-H2kb (25 D1.16)</td><td>Biolegend</td><td>141605</td><td></td></tr><tr><td>PE-Anti-Maus CD11c (HLA3)</td><td>BD Biosciences</td><td>553802</td><td></td></tr><tr><td>eFluor 450-Anti-Maus MHCII (Md/114.15.2)</td><td>eBioscience</td><td>48-5321-82</td><td></td></tr><tr><td>PE-Cy7-Anti-Maus CD11b (M1/70)</td><td>Biolegend</td><td>101216</td><td></td></tr><tr><td>PerCp/Cy5.5-Anti-Maus CD103 (2E7)</td><td>Biolegend</td><td>121416</td><td></td></tr><tr><td>PE-Anti-Maus CD45.1 (A20)</td><td>eBioscience</td><td>12-0453-82</td><td></td></tr><tr><td>V500-Anti-Maus CD45.2 (1O4)</td><td>BD Bioscience</td><td>562130</td><td></td></tr><tr><td>PerCp-eFluor710 -Anti-Maus CD8a (53-6.7)</td><td>eBioscience</td><td>46-0081-80</td><td></td></tr><tr><td>APC-Cy7-Anti-Maus CD3&epsilon; (145-2611)</td><td>Biolegend</td><td>100325</td><td></td></tr><tr><td>eFluor450-Anti-Maus CD4 (GK 1,5)</td><td>eBioscience</td><td>48-0041-80</td><td></td></tr><tr><td>CFSE-Proliferationsfarbstoff</td><td>eBioscience</td><td>65-0850-85</td><td></td></tr><tr><td>Baytril 2,5%</td><td>Bayer</td><td>65-0850-85</td><td></td></tr><tr><td>Dymethil-Sulfoxid (DMSO)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D2650</td><td></td></tr><tr><td>Ovalbumin&nbsp;</td><td>Molekulare Sonden&nbsp;</td><td>O23020</td><td></td></tr><tr><td>Diphterientoxin (DT)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D0564</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin-TPCK</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T1426</td><td></td></tr><tr><td>BD FACsCanto II Durchflusszytometer</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>FlowJo Zellanalysesoftware 9.5</td><td>Flowjo inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Trypanblauer Fleck (0,4 %)&nbsp;</td><td>Life technologies</td><td>T10282</td><td></td></tr><tr><td>Gräfin Automatischer Zellzähler</td><td>Invitrogen-Life Technologies</td><td>C10227</td><td></td></tr></tbody></table>

die intranasale verabreichung von rekombinantem influenza vaccines in chimären maus-modelle zu mucosale immunität studieren

Intranasal Administration of Recombinant Influenza Vaccines in Chimeric Mouse Models to Study Mucosal Immunity

Impfstoffe sind eine der größten Errungenschaften der Menschheit und haben im letzten Jahrhundert Millionen von Leben gerettet. Paradoxerweise ist wenig über die physiologischen Mechanismen bekannt, die Immunreaktionen auf Impfstoffe vermitteln, möglicherweise aufgrund des Gesamterfolgs der Impfung, der das Interesse an den molekularen und physiologischen Mechanismen der Impfstoffimmunität verringert hat. Mehrere wichtige Krankheitserreger des Menschen, darunter das Influenzavirus, stellen jedoch nach wie vor eine Herausforderung für die Impfung dar und könnten von immunbasierten Strategien profitieren. 
Obwohl die Influenza-Reverse-Genetik erfolgreich zur Erzeugung von abgeschwächten Lebend-Influenza-Impfstoffen (LAIVs) angewendet wurde, wurde die Zugabe von molekularen Werkzeugen in Impfstoffpräparaten wie Tracer-Komponenten zur Nachverfolgung der Kinetik der Impfung in vivo nicht berücksichtigt. Darüber hinaus hat die jüngste Generation von Mausmodellen, die eine spezifische Depletion von Leukozyten während kinetischer Studien ermöglichen, ein Zeitfenster eröffnet, um die grundlegenden Immunmechanismen zu verstehen, die dem durch den Impfstoff ausgelösten Schutz zugrunde liegen. Hier beschreiben wir, wie die Kombination von reverser Genetik und chimären Mausmodellen dazu beitragen kann, neue Einblicke in die Wirkungsweise von Impfstoffen auf physiologischer und molekularer Ebene zu gewinnen, am Beispiel eines rekombinanten, kälteadaptierten, abgeschwächten Influenzaimpfstoffs (LAIV). Wir verwendeten laborgenerierte LAIVs, die sowohl Zelltracer als auch kompetitive Knochenmarkchimären (BMCs) beherbergen, um die frühe Kinetik der Impfstoffimmunität und die wichtigsten physiologischen Mechanismen zu bestimmen, die für die Initiierung der impfstoffspezifischen adaptiven Immunität verantwortlich sind. Darüber hinaus zeigen wir, wie diese Technik Genfunktionsstudien an einzelnen Tieren während der Immunantwort auf Impfstoffe erleichtern kann. Wir schlagen vor, dass diese Technik angewendet werden kann, um aktuelle prophylaktische Strategien gegen Krankheitserreger zu verbessern, für die dringende medizinische Gegenmaßnahmen erforderlich sind, z. B. Influenza-, HIV-, Plasmodium- und hämorrhagische Fieberviren wie das Ebola-Virus.

Erzeugung rekombinanter abgeschwächter Lebendinfluenzaimpfstoffe können durch Transfektion von Plasmiden, die die acht Segmente der Influenza-Virus unter der Kontrolle des bidirektionalen Promotoren 5 kodierende Gene erreicht werden. Ein kälteangepassten Influenza-Impfstoff enthält üblicherweise sechs Segmenten eines kälteangepassten Stamm sowie die HA und NA von Influenza-Stamm der Wahl (zB H1N1) (1A). Das Prinzip der Kälteadaptierung an virus beschränkt Replikation bei 33 ° C, die ...

Es besteht ein allgemeiner Mangel an Wissen darüber, wie Impfstoffe wirken. Hier schlagen wir die kombinierte Verwendung von reverser Genetik und chimären Knochenmarkmäusen vor, um Einblicke in die frühen Immunantworten des Wirts auf Impfstoffe zu erhalten, mit besonderem Fokus auf dendritische Zellen und T-Zell-Immunität.

Die intranasale Verabreichung von rekombinantem Influenza Vaccines in chimären Maus-Modelle zu Mucosale Immunität Studieren

Vaccines are one of the greatest achievements of mankind, and have saved millions of lives over the last century. Paradoxically, little is known about the ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, ein System zur Beurteilung der physiologischen Initiierung einer impfstoffspezifischen adaptiven Immunität zu beschreiben. Dies wird zunächst durch die Anwendung der Reversen Genetik erreicht, um lebende, abgeschwächte Influenza-Impfstoffe herzustellen, die ein bestimmtes immunogenes Peptid enthalten, gefolgt von der Vermehrung des Virus in einem Hühnerembryo. Anschließend werden Zellen aus den Lymphknoten geimpfter Mäuse gewonnen, und mittels FACS-Analyse wird die Wanderung dendritischer Zellen verfolgt.Im nächsten Test werden CD8-positive T-Zellen, die auf das immunogene Peptid reagieren, markiert und in geimpfte Mäuse injiziert, gefolgt von einer FACS-Analyse zur Messung der Proliferation dieser Zellen, um die Immunantwort detaillierter zu analysieren. Ein kompetitiver Knochenmark-Chimär wird erzeugt, indem Knochenmarkzellen, die den Diphtherietoxinrezeptor exprimieren, in bestrahlte kongene Mäuse infundiert werden, die anschließend Diphtherietoxin ausgesetzt werden. Nach einer erfolgreichen Ausschöpfung wird die Maus geimpft, und markierte Antikörper sowie Tetramere werden verwendet, um CD8-positive T-Zellen zu identifizieren.Erkennung des spezifischen Peptids. Diese Methode kann helfen, zentrale Fragen im Bereich der Impfstoffforschung zu beantworten, beispielsweise wie ein Impfstoff auf neurologischer Ebene wirkt, welche zellulären und molekularen Zielstrukturen des Impfstoffs maßgeblich sind und, am wichtigsten, wie wir aktuelle prophylaktische Strategien verbessern können. Die Durchführung der Prozedur wird Sanmen Medina übernehmen.Unsere Laborleiterin und ich stellen mit diesem Protokoll einen reassortierten, kaltadaptierten Influenza-Impfstoff her, der den kaltadaptierten Stamm A Ann Arbor 6/60 als Grundlage verwendet und mit Hämagglutinin sowie einer modifizierten Neuraminidase des A/PR/8/34-Stamms kombiniert ist.Ein Teil der Protein-Stalk-Sequenz des Neuraminidase-Gens wird durch eine kurze cDNA-Sequenz ersetzt, die das Hühner-Peptid syn fecal kodiert. Dieses Peptid ist im H-2-b-MHC-Klasse-I-Genom von C57BL/6-Mäusen hochgradig immundominant und fungiert als nachverfolgbares Element.Beginnen Sie damit, 1.000.002 93T-Zellen pro Vertiefung einer 6-Loch-Platte mit DMEM, das 10 % fötales Kälberserum und 1 % Penicillin-Streptomycin enthält, zu bebrüten. Bereiten Sie anschließend ausreichend Plasmid-Transfektionsgemisch für 100 µL pro Vertiefung vor. Kombinieren Sie ein Mikrogramm jedes Plasmids und füllen Sie das Röhrchen mit vorgewärmtem Opti-MEM-Zellkulturmedium auf 50 µL in einem weiteren Röhrchen auf.Geben Sie das doppelte Volumen von Lipectomy 2000 entsprechend der Gesamtmenge des zu transfectierenden Plasmids hinzu und ergänzen Sie die Röhre mit Opti MEM auf 50 Mikroliter, bevor Sie das Transfektionsgemisch den Zellen hinzufügen. Lassen Sie es 30 Minuten bei Raumtemperatur stehen. Anschließend 100 Mikroliter des Transfektionsgemischs zu jedem Well hinzufügen und die Platte für 16 Stunden in einen Inkubator stellen.Am nächsten Tag wechseln Sie das Medium in DMEM mit 0,3 % BSA und 1 % Pen/Strep. Anschließend bringen Sie die Zellen für fünf Stunden auf 33 Grad Celsius mit 5 % Kohlendioxid. Nach fünf Stunden.Fügen Sie eine Überlagerung von einer Million influenza-permissiven MDCK-Zellen in Tripsin-supplementiertem DMEM hinzu. Kultivieren Sie die Kokulturen zwei bis drei Tage lang unter einer Inkubationsbedingung von 33 Grad Celsius, um das Virus zu erzeugen und zu amplifizieren. Entfernen Sie anschließend die Zelltrümmer durch eine fünfminütige Zentrifugation mit 260 ×g. Sammeln Sie danach die Überstände und impfen Sie unter sterilen Bedingungen neun- bis zehntägige bebrütete Hühncheneier. Um dies durchzuführen, bohren Sie ein Loch in die Oberseite der Eierschale und geben das Virus in einer Verdünnung von 100 x 10 x oder 1 x hinzu. Bedecken Sie die Eierschale mit geschmolzenem Wachs, indem Sie einen Wattestäbchen verwenden, und inkubieren Sie die infizierten Hühnereier drei Tage lang bei 33 Grad Celsius. Anschließend gewinnen Sie die Allantoisflüssigkeit aus den infizierten Eiern.Waschen Sie die Eierschalen mit 70 % Ethanol. Öffnen Sie das Ei durch vorsichtiges Anritzen im oberen Bereich und entfernen Sie die Alan Toic-Membran mit sterilen Pinzetten. Sammeln Sie mithilfe einer 10-Milliliter-Pipette so viel Flüssigkeit wie möglich ein.Typischerweise sechs bis 10 Milliliter. Zentrifugieren Sie die Flüssigkeit bei 260 ×g für 10 Minuten bei vier Grad Celsius und überführen Sie die klare Alan Toic-Flüssigkeit in neue Röhrchen. Nach der Anästhesie eines Spendermäuschens und dem chirurgischen Zugang zum Mediastinum gewinnen Sie die Lymphknoten mit einer gebogenen Pinzette.Überführen Sie die Lymphknoten in eine sechswellige Platte, die ein Milliliter DMEM enthält. Nachdem das umgebende Bindegewebe oder Fettgewebe vom Lymphknoten entfernt wurde, befestigen Sie den Lymphknoten mit einer Nadel und öffnen ihn mit der anderen Nadel. Dadurch sollten die Zellen aus dem Lymphknoten austreten und sich im Medium sammeln, um die Zellen zu gewinnen.Zunächst wird das gesamte Gewebematerial durch einen 70-Mikron-Nylonfilter gegeben, um eine Zellsuspension zu erhalten, die für die Zentrifugation bereit ist. Das Zellpellet in zwei Milliliter RBC-Lysierungspuffer resuspendieren. Die Lysierungsreaktion drei Minuten bei Raumtemperatur ablaufen lassen und mit der Zugabe von zwei Milliliter eiskaltem PBS beenden, anschließend die Zellen gemäß dem schriftlichen Protokoll einfärben.Stellen Sie sicher, dass Sie Plattenflimmern verwenden, um das Überstand vor der Antikörbemalung zu entfernen und zu verwerfen. Kennzeichnen Sie Donor-T-Zellen aus kommerziell erhältlichen TCR-transgenen Mäusen und inkubieren Sie 5 Millionen Zellen in einem Milliliter PBS mit fünf Mikromolar CFSE. Lassen Sie die Inkubation 20 Minuten bei 37 Grad Celsius im Dunkeln andauern.Anschließend sammeln Sie die Zellen bei 2 Millionen pro 100 Mikroliter PBS und verabreichen Empfängermäusen mit kongener Verwandtschaft einen Bolus von 100 Mikrolitern über eine retroorbitale Sinusinjektion. Nach drei bis fünf Tagen euthanasieren Sie die Mäuse, entnehmen die mediastinalen Lymphknoten und stellen eine Einzelzell-Suspension für die Durchflusszytometrie her. Wie zuvor.Anschließend identifizieren Sie die Donorzellen durch Färbung der Einzelzell-Suspensionen mit einem Antikörper-Cocktail. Für die Analyse lassen Sie den FL1-Kanal des Durchflusszytometers offen, um das Verdünnungsprofil von CFSE zu bestimmen.Nachdem Sie die Tibia und den Femur einer euthanasierten Maus entfernt und desinfiziert haben, sammeln Sie diese in einer Schale mit DMEM. Schneiden Sie die Knochenenden mit einer scharfen Schere ab und spülen Sie das Knochenmark in das DMEM aus. Bestrahlen Sie nun sechs bis acht Wochen alte weibliche Mäuse mithilfe eines Cäsium-137-Bestrahlungsgeräts nach den Standardmethoden. Zwei bis vier Stunden nach der Bestrahlung betäuben Sie die Mäuse und transplantieren ihnen mittels Injektion in die retroorbitale Vene 2 Millionen Zellen in 100 Mikrolitern PBS als Spender-Knochenmarkzellen. Versorgen Sie die Mäuse in den folgenden zwei Wochen über das Trinkwasser mit 2,5 bis fünf Milligramm Baal pro Kilogramm Körpergewicht.Beginnend zwei Tage vor der Impfung, verabreichen Sie 50 Nanogramm DT, verdünnt in 50 Mikroliter PBS, tropfenweise direkt in die Nasenlöcher anästhesierter Mäuse. Setzen Sie diese Behandlung drei Tage nach der Impfung fort. Weitere Einzelheiten zur Erzeugung des endgültigen Mausmodells finden Sie im Textprotokoll.Impfen Sie die Mäuse mit einem rekombinanten, lebend abgeschwächten Influenzavirus mittels intranasaler Injektion unter Anästhesie. Verabreichen Sie 1000 PFU Impfstoff aus einer 200-Mikroliter-Pipette in 50 Mikrolitern PBS. Die Herstellung rekombinanter, lebend abgeschwächter Influenzaimpfstoffe kann durch Transfektion von Plasmiden erreicht werden, die die acht Segmente des Influenzavirus unter Kontrolle bidirektionaler Promotoren kodieren. Ein kälteadaptierter Influenza-Impfstoff enthält gewöhnlich sechs Segmente eines kälteadaptierten Stammes sowie das HA- und NA-Gen des gewünschten Influenzastamms, beispielsweise H1N1.Die Kälteanpassung ermöglicht eine auf 33 Grad Celsius beschränkte Virusvermehrung, der Temperatur der oberen Atemwege bei Mäusen und Menschen, verhindert jedoch die Replikation in den unteren Atemwegen, sodass keine Pneumonie-Fusion auftreten kann. PCR wurde verwendet, um einen konservierten Bereich im Stamm der viralen Neuraminidase durch ein nachverfolgbares, aus OVA abgeleitetes Peptid zu ersetzen. Das nachverfolgbare Peptid-Modell wurde zwischen drei und sechs Tagen nach der Impfung in Mäuse eingeleitet.Das nachweisbare Protein syn fäkal wurde in den lungendrainierenden Lymphknoten detektiert. Die multiparametrische Durchflusszytometrie wurde verwendet, um die durch den Impfstoff verursachte Antigenpräsentation in Echtzeit zu quantifizieren. Ebenso ermöglichte die Infusion von syn fäkal-spezifischen T-Zellen die Quantifizierung von impfstoffspezifischen CD8+-T-Zell-Antworten, um gen-spezifische Funktionen während der Impfung zu bewerten.Ein Mausmodell, das die DTR-Technologie und einen kompetitiven Knochenmarkswettbewerb kombiniert, wurde verwendet. So konnte der Verlust der Genfunktion gezielt auf bestimmte Zellkompartimente beschränkt werden, und zwar im Verlauf immunologischer Reaktionen auf eine Impfung. Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, werden Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie molekulare und physiologische Signalwege analysiert werden können, die an der Modulation der durch Impfstoffe induzierten Immunität im Wirt beteiligt sind.Außerdem liefert diese Technik neue Erkenntnisse bei der Bestimmung der zellulären Zielstrukturen des Impfstoffs und trägt somit zur Bewertung neuer Impfstoffplattformen bei.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie und Infektion

Quelle: Lenhard, A. et al. Ein Mausmodell für den Übergang von Streptococcus pneumoniae vom Kolonisator zum Erreger bei viraler Koinfektion wiederholt altersbedingte Erkrankungen. J. Vis. Exp. (2022)Dieses Video demonstriert ein Modell der Maus-Koinfektion, bei dem das Influenzavirus den Übergang von Streptococcus pneumoniae vom Kolonisator zu einem Krankheitserreger auslöst. Es beschreibt die Schritte, die bei bakterieller Besiedlung, Virusinfektion und Krankheitsprogression beteiligt sind.

Ein Mausmodell zur Untersuchung des pathogenen Übergangs von Streptococcus pneumoniae nach viraler Koinfektion

Source: Wang, M., et al, Evaluation of T Follicular Helper Cells and Germinal Center Response During Influenza A Virus Infection in Mice. J. Vis. Exp. (2020).This video demonstrates intranasal infection of a mouse with a pathogenic influenza virus to establish a respiratory tract infection. The procedure outlines the administration of the virus into the nasal cavity. The virus enters host cells, replicates, and activates the immune system.

Intranasal Infection of a Mouse with a Pathogenic Influenza Virus

Dieses Video zeigt die intranasale BCG-Immunisierung bei Mäusen, die sowohl die angeborene als auch die adaptive Immunantwort aktiviert, was zur Entwicklung von lungenresidenten Gedächtnis-T-Zellen und Effektor-B-Zellen führt und so den Schutz vor Mycobacterium-Infektionen verbessert.

Intranasale Immunisierung mit BCG im Mausmodell

Das Video zeigt eine Methode zur Herstellung von kälteadaptierten rekombinanten Influenzaviren. Dabei werden menschliche Zellen mit bidirektionalen Plasmiden transfiziert, gefolgt von einer Inkubation bei niedrigeren Temperaturen, um Viren zu erhalten, die für die Impfstoffproduktion geeignet sind und sich durch eine verminderte Replikation unter wärmeren Bedingungen auszeichnen.

Erzeugung rekombinanter abgeschwächter Lebend-Influenzaviren für Impfstoffe

Wir demonstrieren das Verfahren zur intratrachealen Inokulation von Haemophilus influenzae in die unteren Atemwege von Mäusen. Dies ist ein sehr nützliches Werkzeug, um Signalwege zu untersuchen, die die Entzündung der Atemwege in Mausmodellen regulieren.

Intratracheale Verabreichung von<em&gt; Haemophilus influenzae</em&gt; In Mausmodelle zur Untersuchung Atemwegsentzündung

Influenza A-Viren (IAVs) sind wichtige Humanpathogene Atemwege. Die Pathogenität von IAVs verstehen und neuartigen Impfstoff präklinischen Erprobung durchführen, sind Tiermodelle imitiert menschliche Physiologie erforderlich. Hier beschreiben wir Techniken zur Bewertung IAV Pathogenese, humorale Reaktionen und Wirksamkeit des Impfstoffes mit einem Maus-Modell der Infektion.

Influenza-A-Virus-Studien in einem Mausmodell der Infektion

In dieser Studie stellen wir ein Protokoll zur zwei-Photon intravitalen Bildgebung und Zelle Interaktionsanalyse in der murinen trachealen Schleimhaut nach Infektion mit Influenza-Virus führen. Dieses Protokoll wird für Forscher Immunzelle Dynamik bei Atemwegsinfektionen relevant sein.

Bildgebung Zelle Interaktion in Trachealen Schleimhaut während der Influenza-Virus-Infektion mit Intravitalen zwei-Photonen-Mikroskopie

Hier präsentieren wir eine elegante Protokoll für in Vivo Evaluierung der Impfstoff Wirksamkeit und Host Immunantworten. Dieses Protokoll kann für Impfstoff-Modelle, die studieren, virale, bakterielle oder parasitäre Erreger angepasst werden.

Bewertung der Wirt-Pathogen-Antworten und Wirksamkeit des Impfstoffes bei Mäusen

Dieses Papier beschreibt Protokolle zur Bewertung der Tfh- und GC-B-Antwort im Mausmodell einer Influenza-Virusinfektion.

Bewertung von T Follicular Helper Cells und Germinal Center Response During Influenza A Virus Infection in Mice

Dieses Protokoll enthält Anweisungen für die intranasale Verabreichung von IAV und die nachgelagerte Analyse von Lungenschäden an Mäusen und damit verbundenen transkriptionellen Veränderungen an Lungenzelltypen.

Modellierung der dysplastischen und funktionellen Lungenalveolarreparatur nach einer Influenzainfektion

Lernen Sie die intranasale Verabreichung von rekombinanten Influenza-Impfstoffen in chimären Mausmodellen zur Untersuchung der mukosalen Immunität. Diese Methode ermöglicht die Analyse dendritischer Zellen und T-Zell-Antworten.

Die intranasale Verabreichung von rekombinantem Influenza Vaccines in chimären Maus-Modelle zu Mucosale Immunität Studieren

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