Name: Ein Verfahren zum Fern Silencing neuronale Aktivität in Nagetiere Während diskreter Phasen des Lernens (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-06-22T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 22 s
Description: Erfahren Sie ein Verfahren zur Fern-Silencing neuronaler Aktivität in Ratten während diskreter Lernphasen. Diese pharmakogenetische Methode ermöglicht präzise Untersuchungen von Lern- und Gedächtnisprozessen im Verhaltensneurowissenschaftlichen Kontext.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Wir danken den Autoren von Robinson et al. 12 für ihre Beiträge zu dem Manuskript, aus dem dieses Protokoll teilweise abgeleitet.

Die Verwendung von Tieren werden durch das Oberlin College Institutional Animal Care genehmigt und Verwenden Ausschuss und sind in Übereinstimmung mit dem Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren 21. 1. Vorbereitung für Viral Infusion Hinweis: Dieses Protokoll verwendet BSL-1 Vorsichtsmaßnahmen. Beim Einsatz BSL-2 Vorsichtsmaßnahmen, eine Einweg-Kittel, Handschuhe, Überschuhe, Augenschutz und soll ein Beatmungsgerät (Typ N95) erforderlich. Alle Individuen Umgang BSL-2-Verbindungen müssen fit für ein Beatmungsgerät getestet von einer lokalen Einrichtung des Gesundheitswesens werden. Siehe Lowery &amp; Majewska (2010) 22 für weitere Informationen zur Handhabung und Lagerung von viralen Vektoren. <ol><li> Beim ersten Gebrauch aliquoten und speichern nicht verwendete Virus in 20 ul Reaktionsgefäße zu wiederholtem Einfrieren und Auftauen vermeiden. </li><li> Bereiten Sie die Arbeitsfläche, indem Sie alle nicht benötigten Objekte und Sterilisieren der Oberfläche mit 70% Ethanol. Bereiten Sie eine 10% Bleichlösung zur Dekontamination von AAV Abfall. Legen Sie einen Becher voll von der Bleichlösung und einer sterilen 10 &amp; mgr; l-Spritze auf die Arbeitsfläche. Setzen Sie den Mikrozentrifugenröhrchen mit dem AAV in einen Behälter mit Crushed Ice im Aufbau. </li><li> Setzen Sie den Mikrozentrifugenröhrchen mit dem Virus in eine Standard-Schraubstock. Laden Sie eine 10 &amp; mgr; l-Spritze mit mindestens 4 ul AAV. Darauf achten, dass die Spitze der Spritze gegen den Boden der Mikrozentrifugenröhrchen während des Ladens zu biegen. Sicherzustellen, dass sich keine Luftblasen in den 4 ul AAV Lösung in der Spritze. </li><li> Entsorgen Sie das leere Virusrohr in das Becherglas, das 10% Bleichmittel. Bewahren Sie unbenutzte Teile des Virus, wie vom Hersteller angegeben. </li><li> Fügen Sie zusätzliche 10% Bleichmittel auf den Abfallbehälter und lassen Abfälle zu 30 Minuten vor der Entsorgung der dekontaminierten flüssigen Abfall zu sitzen. </li><li> Entsorgen Sie die Schutzausrüstung und Kunststoffabfälle in einem Behälter für biologischen wie von den Richtlinien des Instituts beauftragt. Decontaminate jedes Gerät oder Oberflächen, die in Kontakt mit dem Virus mit 10% Bleich kam. </li></ol> 2. Chirurgie <ol><li> Bereiten Sie den OP-Bereich, indem absorbierenden Papierbank unter der stereotaktischen Apparat und auf einer als dedizierte Virenhandhabungsbereich bezeichnet angrenzenden Raum. <ol><li> Legen Sie eine 10% Bleichabfallbehälter in den dedizierten Virus Handhabungsbereich in der Nähe der Operationsvorrichtung. </li></ol></li><li> Induzieren einen stetigen Niveau der Anästhesie und bereiten die Ratte für die Chirurgie. <ol><li> Zeigen die Ratte in einer Induktionskammer, die eine Mischung von Isofluran Gas (im Bereich von 1 bis 3%) und Sauerstoff (100% auf etwa 1 l / min) enthält, bis es zu einem Verlust des Bewusstseins und Fehlens des Brutto gezielte Bewegung. Aufrechtzuerhalten Isoflurananästhesie gesamten chirurgischen Prozedur. </li><li> Nach 6 tiefe Narkose erreicht ist, rasieren die Ratte aus zwischen den Augen bis leicht hinter den Ohren. </li><li> Legen Sie die Ratte zurück in die Induktionskammer für einweitere 1-3 min. </li><li> Sicherzustellen, dass der Isoflurananästhesie System ist mit dem Nasenkonus des stereotaktischen Chirurgie verbunden sind. Öffnen des Hahnes auf das Isofluran Schlauch, um den Fluss von Isofluran zum stereotax beginnen. Aufrechterhaltung der Isofluran und Sauerstoff bei den oben genannten Ebenen. </li><li> Legen Sie die Ratte in einem stereotaktischen Apparat durch die Sicherung der Mund auf den Biss Bar und der Sicherung der Ohr-Bars. </li><li> Gelten Augensalbe für die Augen und Betadin zum Operationsort vor Einschnitt. </li></ol></li><li> Machen Sie eine 2,4 cm Mittellinienschnitt der Haut auf der dorsalen Oberfläche des Schädels ab ca. 2 mm kaudal auf die Augen. Ziehen Sie die Haut, um den Schädel freizulegen. Von Zeit zu Zeit zu vermitteln steriler 0,9% iger steriler Kochsalzlösung an den Rändern der Operationsstelle zu Geweben vor dem Austrocknen zu verhindern. </li><li> Klare membranöse Gewebe vom Schädel bis Bregma und Lambda sind deutlich sichtbar. </li><li> Stellen Sie sicher, dass der Schädel ist Ebene durch Messung der dorsal-ventralen Koordinaten anBregma und Lambda. Stellen Sie den stereotaktischen Gerät entsprechend bis dorsal-ventralen Koordinaten Bregma und Lambda um nicht mehr als 0,04 mm. </li><li> Zu dieser Zeit reduzieren die Isofluran Gas zwischen 2 und 2,5%. </li><li> Bringen Sie den Bohrer zu Bregma, Rezero den Koordinaten und bewegen Sie dann den Bohrer auf die gewünschte medial-lateral und anterior-posterior zu koordinieren. </li><li> Bohren Sie ein Loch an der Koordinate mit einem 0,9 mm Bohrer, da sie eine geeignete Größe Loch für eine 28 G Infusionsspritze erzeugt. </li><li> Stellen Sie die Infusionspumpe Virus bei einer Rate von 0,2 ml / min zu liefern. Legen Sie die Spritze in die Infusions Arm der stereotaktischen Gerät und senken Sie die Spritze in die gewünschte koordinieren. Geben Sie die gewünschte Menge an Virus (Bereich 0,1 bis 0,8 &amp; mgr; l). Zum Beispiel liefern 0,8 ul von AAV als 4 min. Anmerkung: Pilotstudien durchzuführen, um die ideale Infusionsvolumen und die typische Ausbreitung des Virus in jeder Region von Interesse zu bestimmen. <ol><li> Nach der Lieferung von Virus cosolute Lassen Sie die Spritze in Platz für 10 min zum Rückfluss in den Nadeltrakt zu verhindern. Langsam heben Sie die Spritze mit einer Geschwindigkeit von etwa 5 mm / min. Wiederholen, bis alle Koordinaten mit AAV infundiert worden. </li></ol></li><li> Schließen Sie die Wunde mit Operationsklammern und Mantel die Wunde mit topischen antibiotischen Salbe. </li><li> Folgen Sie den Richtlinien des Instituts für die postoperative Schmerztherapie. </li><li> Legen Sie die Ratte in einem Käfig mit Decken und Kissen, einem Deckel und ordnungsgemäße Beschilderung und gibt die Ratte auf die Tierhaltung. <ol><li> Wenn Arbeiten unter BSL-2 Vorsichtsmaßnahmen, sammeln Bettwäsche für die Höhe der Zeit (in der Regel 48 bis 72 h) von institutionellen Richtlinien festgelegt. Zeigen Betten in ein biohazard Abfallbehälter. </li><li> Entsorgen Sie alle AAV-kontaminierten Materialien wie von Richtlinien für ihre sichere Entsorgung angegeben. </li></ol></li></ol> 3. Behavioral Vorrichtung Hinweis: Die sensorischen Präkonditionierung Gerät besteht aus einem Standard-operante Konditionierung Chamber (12 &quot;L x 9.5&quot; W x 11.5 &quot;H) mit einem Edelstahl-Gitterboden, 2 Seitenwänden aus Plexiglas und 2 Metallwände. <ol><li> Montieren Sie eine 2,8 W Licht auf eine der Aluminiumwände, die als Hauslicht dienen und als visueller Reiz, wenn sie bei 2 Hz blinkt. Montieren Sie einen Lautsprecher an der Kammer, um die auditive Reize liefern (10 sec, 1500 Hz, 78 dB und einen reinen Ton dB Rauschen 10 sec 78). <ol><li> Verwenden Sie eine Futterraufe auf 45 mg Futterpellets in die Nahrungs Tasse zu liefern. In der Lebensmittelbecher, Infrarotlichtschranken erkennen die gesamte Zeit in der Lebensmittel Tasse verbrachte vor, während und nach der Präsentation der Reize und Lebensmittel Belohnungen. </li><li> Haus die Kammern in schalldämpfenden Gehäuse (22 &quot;W x 22&quot; H x 16 &quot;D) mit Abluftventilatoren ausgestattet (~ 68 dB). </li><li> Verwenden Sie einen PC mit Med Associates-Software, um die operante Kammer zu steuern und erfassen die Daten. Während der Sitzungen Anlage, sammeln Daten über die Gesamtzeit, während presenta mit dem Kopf verbrachte in der Lebensmittel Tassetion der Lichtreiz (5 sec Epoche) und während der Präsentation der Speisen Belohnung (5 sec Epoche). Während der Test-Session, sammeln Daten über die Gesamtzeit, in der Lebensmittel Tasse an Präsentationen der auditive Reize verbrachte in Reaktion (10 sec Epoche Anfang, wenn die akustische Reize werden beendet). </li></ol></li></ol> 4. Überblick über die Sinnes Präkonditionierung Paradigm <ol><li> Nach Erholung von der Operation, nach und nach Nahrung zu beschränken, die Ratten zu 85% ihrer freien Fütterung Körpergewicht. Wenden Veterinärpersonal nach einem geeigneten Nahrungsmittelbeschränkung Paradigma. Anmerkung: Die 3-Phasen-sensorischen Vorkonditionierung Paradigma ist in Abbildung 2 dargestellt. </li><li> Präkonditionierung Sessions (Phase 1; Täglich 64 min Training über 4 aufeinanderfolgenden Tagen durchgeführt): <ol><li> Vorliegenden Ratten mit 12 vermischt Studien, die der Lieferung von auditiven und visuellen Stimuli bestehen. Gehören unter Untersuchungsintervalle, dass durchschnittlich 4,5 min (Bereich 4,0 bis 5,0 min) nach jeder einuditory Präsentation. </li><li> Am 6. der Versuche, ein Ton vorhanden (vorkonditioniert Stimulus) für 10 sec, unmittelbar gefolgt von einer 5 s Präsentation der blinkenden Lichtreiz. </li><li> An den anderen 6 Studien präsentieren die weiße Rauschen (ungepaarten Stimulus) allein für 10 sec. </li></ol></li><li> Anlage Sitzungen (Phase 2; Täglich 64 min Schulungen über 5 aufeinanderfolgenden Tagen durchgeführt): <ol><li> Vorliegenden Ratten mit 8 Studien, die der Lieferung der visuellen Reiz (die blinkende Lichtreiz) für 5 Sekunden aus, unmittelbar gefolgt von Lieferung von zwei 45 mg Futterpellets. Gehören unter Untersuchungsintervalle, dass durchschnittlich 7 Minuten (Bereich 6,0 bis 8,0 min) nach jedem Versuch. Gelegentlich Ratten benötigen mehr als 5 Anlage Sitzungen, um den Lichtnahrungs Verein zu lernen. </li></ol></li><li> Test Session (Phase 3; eine einzige Sitzung 78 min): <ol><li> Präsentieren Sie die Ratten, die mit 12 vermischt Studien, die der Lieferung der auditive Reize allein bestehen. Gehören unter Untersuchungsintervalle aveWut 4,5 min (Bereich 4,0 bis 5,0 min) nach jedem Gehör Präsentation. </li><li> Am 6. der Versuche stellen den Ton Reiz (Stimulus die vorkonditioniert) allein für 10 sec. </li><li> An den anderen 6 Studien präsentieren die weiße Rauschen (das ungepaarte Stimulus) allein für 10 sec. </li></ol></li><li> Gegengewicht zu den Stimuli durch die Vollendung der Studie mit einer zweiten Gruppe von Ratten, die weißes Rauschen als vorkonditioniert Reiz und den Klang wie die ungepaarten Reiz erhalten. </li></ol> 5. Pharmakologische und Verhaltensordnung <ol><li> Schalten Sie das Gerät an den Verhaltens Gerät und laden Sie die Med-PC-Code für das entsprechende Verhaltens Sitzung. Draht und die Verhaltens-Programm Gerät, so dass die Fans, die auf den Schalldämpfungsschränke montiert sind einzuschalten, wenn der Strom eingeschaltet ist. </li><li> Um eine 1 mg / ml-Lösung von Clozapin-N-oxid (CNO) vorzubereiten, wiegen 5,0 mg CNO in einen 15 ml konischen Rohr und 5 ml sterilem Wasser oder 5 ml steriler 0,9% saline. Vortex, bis die Lösung klar ist. <ol><li> Wenn CNO nicht in Lösung aufzulösen oder wenn konzentriertere Lösungen von CNO gewünscht hinzuzufügen ein Solubilisierungsmittel, wie DMSO 23. Insbesondere, um eine 1 mg / ml-Lösung von CNO mit 0,5% DMSO herzustellen, wiegt 5,0 mg CNO und füge 25 ul DMSO zu einer 15 ml konischen Röhrchen. Flick leicht sichergestellt wird, dass der Inhalt an der Basis der Röhre verbleiben. Wenn die Lösung klar wird, mit 5 ml sterilem Wasser oder 5 ml steriler 0,9% iger Kochsalzlösung. Weitere Anleitungen zur Herstellung von Lösungen von CNO sind auf der DREADD Wiki-Ressourcenseite 25 zur Verfügung. </li><li> Bereiten Sie jeden Tag, die es verabreicht wird, eine neue CNO-Lösung. </li></ol></li><li> Spritzen den CNO intraperitoneal in einer Dosis von 1 mg / kg, etwa 30 Minuten vor dem Verhaltenstests. B. spritzen ein 200 g Ratte mit 0,2 ml der 1 mg / ml Lösung CNO. Die Dosis und Zeitverlauf der CNO Verwaltung wurden auf der Grundlage bisher veröffentlichten Berichte 2,12 ausgewählt.<ol><li> Injizieren CNO 30 Minuten vor jeder Sitzung Präkonditionierung (Phase 1; insgesamt 4 Tagen Injektionen), sondern verwalten das Fahrzeug vor allen nachfolgenden Verhaltens Sitzungen. </li></ol></li><li> Nach 30 Minuten, legen Sie die Ratten in den Verhaltenstests Kammern und starten Sie die Computer-Code für die entsprechende Verhaltens Sitzung. </li><li> Nach Abschluss der verhaltens Aufgabe sofort den Ratten aus den Kammern und zurück die Ratten zur Tierkolonie. </li></ol> 6. Analyse der Verhaltensdaten Hinweis: Die abhängige Variable für alle Verhaltens Sitzungen ist die Zeitdauer, die den Kopf der Ratte ist in der Nahrungsmittelbecher durch Unterbrechung des Infrarot-Lichtschranken in der Lebensmittel Tasse erkannt. Die Daten (in sec) werden gesammelt und von der Computersoftware aufgezeichnet. <ol><li> Führen Sie keine Analysen auf Daten, die während der Vorkonditionierungsphase erzeugt. </li><li> Für die Konditionierung Sitzungen: Analysieren Sie jede Ratten einkeit, die leichte Kost Verein durch den Vergleich Food Tasse Verhalten während der Präsentation der visuellen Reiz über die 5 Verhaltenssitzungen erlernen. Genauer gesagt, die Berechnung der durchschnittlichen Zeit in der Lebensmittel Tasse verbrachte während der 5 sec Licht Epoche für jede 8 Studien / Sitzung (dh durchschnittlich 8 Studien, die jeweils 5 sec Dauer / Ratte sind). Vergleiche zwischen den mittleren Kontroll- und Versuchswerte für jede der 5 täglichen Sitzungen (siehe 3A). <ol><li> Analysieren Sie die Ratten &quot;Motivation, Futterbelohnung durch Vergleich Food Tasse Verhalten bei Auslieferung des Futterbelohnung (5 sec Epoche) über die 5 Verhaltens Sitzungen mit dem gleichen Berechnung wie für den 5 sec Licht Epoche oben genannten zu erhalten. Diese Werte werden ständig höher als die während der Präsentation der visuellen Stimulus erworben werden (siehe 3B). </li></ol></li><li> Für die Testsitzung: Berechnung eines Unterscheidungsquote, die die Ratten &quot;Food Tasse Verhalten als Reaktion auf pres beschreibttationen jedes auditorischen Reizes. <ol><li> Insbesondere wird für jede Ratte, unterteilen die durchschnittliche Zeit nach jedem von 6 Darstellungen der sensorischen vorkonditioniert Stimulus (dh der Ton) durch die Summe der durchschnittlichen Zeit, in der Lebensmittelbecher verbracht in der Lebensmittelbecher verbracht folgenden jeweils von 6 Darstellungen der sensorischen vorkonditioniert Stimulus (dh der Ton Anregung) plus dem Durchschnitt der Gesamtzeit in der Lebensmittelbecher verbracht folgenden jeweils von 6 Darstellungen der ungepaarten Stimulus (dh das weiße Rauschen Stimulus). Jede Epoche ist 10 Sekunden in Dauer. Hinweis: Eine Diskriminierung Score von 0,5 oder mehr zeigt, dass Ratten gelernt, die Verbände die sich aus der sensorischen Präkonditionierung Paradigma. </li></ol></li></ol> 7. Überprüfung der AAV Placement und Expression <ol><li> Betäuben und perfundieren die Ratten transkardial mit 4% Paraformaldehyd. Aufgrund der Verwendung von Fluoreszenzmarkern, keinen post-Fixierungszeit von 2 h nicht überschreiten zu minimize Verlust der Antigenität und um das Fluoreszenzsignal zu erhalten. </li><li> Dehydratisieren perfundierten Gehirnen indem sie in einen Gehirn Gefäß mit 30 ml einer 20% Saccharose-Lösung in phosphatgepufferter Kochsalzlösung (1x) für mindestens 2 Tage lang oder bis das Gehirn sinkt auf den Boden des Gehirns Glas. </li><li> Verwenden eine Gefrier Schlittenmikrotom koronalen Hirnschnitten (20-40 &amp; mgr; m) über den gesamten Umfang der rostrokaudale dem interessierenden Bereich zu machen. </li><li> Zuführen Immunhistochemie gegen den markierten Rezeptor oder dem Reporterprotein gerichtet, um den Ort und die Expression des Designers Rezeptor und / oder Reporter-12 zu ermitteln. Ein Immunhistochemie Färbung Protokoll basiert auf dem DREADD Wiki-Ressourcenseite 25 zur Verfügung gestellt. </li><li> Montieren Sie die Schnitte auf Superfrost-plus Folien und Deckglas mit 100-200 &amp; mgr; l einer wässrigen Eindeckmedium. </li><li> Führen Fluoreszenzmikroskopie auf Hirngewebe zu AAV Platzierung und Proteinexpression 12,24 überprüfen.</li>
</ol>

<ol><li>Armbruster, B. N., Li, X., Pausch, M. H., Herlitze, S., Roth, B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evolving+the+lock+to+fit+the+key+to+create+a+family+of+G-protein+coupled+receptors+potently+activated+by+an+inert+ligand%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Evolving the lock to fit the key to create a family of G-protein coupled receptors potently activated by an inert ligand.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 104 (12), 5163-5168 (2007).</li>
<li>Urban, D. J., Roth, B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DREADDs+%28Designer+Receptors+Exclusively+Activated+by+Designer+Drugs%29%3A+Chemogenetic+tools+with+therapeutic+utility%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Pharmacol.Toxicol%22%5BJournal%5D)">DREADDs (Designer Receptors Exclusively Activated by Designer Drugs): Chemogenetic tools with therapeutic utility.</a> Annu. Rev. Pharmacol.Toxicol. 55, 399-417 (2015).</li>
<li>Weiner, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+M1+muscarinic+receptor+agonism+of+N-desmethylclozapine+in+the+unique+clinical+effects+of+clozapine%5BTitle%5D)+AND+%22Psychopharm.+%28Berl%22%5BJournal%5D)">The role of M1 muscarinic receptor agonism of N-desmethylclozapine in the unique clinical effects of clozapine.</a> Psychopharm. (Berl. 177 (1-2), 1-2 (2004).</li>
<li>Cohen, N. J., Memory Eichenbaum, H. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCohen%2C+NJ+%22amnesia+and+the+hippocampal+system%22">amnesia and the hippocampal system</a>. , MIT Press. Cambridge, MA. (1993).</li>
<li>Strien, N. M., Cappaert, N. L., Witter, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+anatomy+of+memory%3A+an+interactive+overview+of+the+parahippocampal-hippocampal+network%29%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The anatomy of memory: an interactive overview of the parahippocampal-hippocampal network).</a> Nat. Rev. Neurosci. 10 (4), 272-282 (2009).</li>
<li>Agster, K. L., Burwell, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cortical+efferents+of+the+perirhinal%2C+postrhinal+and+entorhinal+cortices+of+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Hippocampus%22%5BJournal%5D)">Cortical efferents of the perirhinal, postrhinal and entorhinal cortices of the rat.</a> Hippocampus. 19 (12), 1159-1186 (2009).</li>
<li>Aggleton, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiple+anatomical+systems+embedded+within+the+primate+medial+temporal+lobe%3A+implications+for+hippocampal+function%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci.+Biobehav.+Rev%22%5BJournal%5D)">Multiple anatomical systems embedded within the primate medial temporal lobe: implications for hippocampal function.</a> Neurosci. Biobehav. Rev. 36, 1579-1596 (2012).</li>
<li>Robinson, S., Poorman, C. E., Marder, T. J., Bucci, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+functional+circuitry+between+retrosplenial+and+postrhinal+cortices+during+fear+conditioning%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Identification of functional circuitry between retrosplenial and postrhinal cortices during fear conditioning.</a> J. Neurosci. 32 (35), 12076-12086 (2012).</li>
<li>Bucci, D. J., Saddoris, M. P., Burwell, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Corticohippocampal+contributions+to+spatial+and+contextual+learning%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Corticohippocampal contributions to spatial and contextual learning.</a> J. Neurosci. 24 (15), 3826-3836 (2004).</li>
<li>Kaut, K. P., Bunsey, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+lesions+to+the+rat+hippocampus+or+rhinal+cortex+on+olfactory+and+spatial+memory%3A+retrograde+and+anterograde+findings%5BTitle%5D)+AND+%22Cogn.+Affect.+Behav.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The effects of lesions to the rat hippocampus or rhinal cortex on olfactory and spatial memory: retrograde and anterograde findings.</a> Cogn. Affect. Behav. Neurosci. 1 (3), 270-286 (2001).</li>
<li>Brogden, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sensory+preconditioning%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Psychol%22%5BJournal%5D)">Sensory preconditioning.</a> J. Exp. Psychol. 25, 323-332 (1939).</li>
<li>Robinson, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemogenetic+silencing+of+neurons+in+retrosplenial+cortex+disrupts+sensory+preconditioning%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Chemogenetic silencing of neurons in retrosplenial cortex disrupts sensory preconditioning.</a> J. Neurosci. 34 (33), 10982-10988 (2014).</li>
<li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NIH+guidelines+for+research+involving+recombinant+or+synthetic+nucleic+acid+molecules%5BTitle%5D)+AND+%22Available+from%3A+http%3A%2F%2Foba.od.nih.gov%2Frdna%2Fnih_guidelines_oba.html%22%5BJournal%5D)">NIH guidelines for research involving recombinant or synthetic nucleic acid molecules.</a> Available from: http://oba.od.nih.gov/rdna/nih_guidelines_oba.html. , (2013).</li>
<li>Samulski, R. J., Muzyczka, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AAV-mediated+gene+therapy+for+research+and+therapeutic+purposes%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Virol%22%5BJournal%5D)">AAV-mediated gene therapy for research and therapeutic purposes.</a> Annu. Rev. Virol. 1, 427-451 (2014).</li>
<li>Tenenbaum, L., Lehtonen, E., Monahan, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+risks+related+to+the+use+of+adeno-associated+virus-based+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Evaluation of risks related to the use of adeno-associated virus-based vectors.</a> Gene Ther. 3, 545-565 (2003).</li>
<li>Arechavaleta-Velasco, F., Ma, Y., Zhang, J., McGrath, C. M., Parry, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adeno-associated+virus-2+%28AAV-2%29+causes+trophoblast+dysfunction%2C+and+placental+AAV-2+infection+is+associated+with+preeclampsia%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Path%22%5BJournal%5D)">Adeno-associated virus-2 (AAV-2) causes trophoblast dysfunction, and placental AAV-2 infection is associated with preeclampsia.</a> Am J Path. 168 (6), 1951-1959 (2006).</li>
<li>Erles, K., Rohde, V., Thaele, M., Roth, S., Edler, L., Schlehofer, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+of+adeno-associated+virus+%28AAV%29+in+testicular+tissue+and+in+abnormal+semen+samples%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Reprod%22%5BJournal%5D)">DNA of adeno-associated virus (AAV) in testicular tissue and in abnormal semen samples.</a> Hum. Reprod. 16 (11), 2333-2337 (2001).</li>
<li>Donsante, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AAV+vector+integration+sites+in+mouse+hepatocellular+carcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">AAV vector integration sites in mouse hepatocellular carcinoma.</a> Science. 317 (5837), 477-47 (2007).</li>
<li>Donsante, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Observed+incidence+of+tumorigenesis+in+long-term+rodent+studies+of+rAAV+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Observed incidence of tumorigenesis in long-term rodent studies of rAAV vectors.</a> Gene Ther. 8 (17), 1343-1346 (2001).</li>
<li>Wu, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhanced+expression+of+Pctk1%2C+Tcf12+and+Ccnd+in+hippocampus+of+rats%3A+impact+on+cognitive+function%2C+synaptic+plasticity+and%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Enhanced expression of Pctk1, Tcf12 and Ccnd in hippocampus of rats: impact on cognitive function, synaptic plasticity and.</a> 97 (1), 69-80 (2011).</li>
<li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((National+Academy+Press.+Guide+for+the+Care+and+Use+of+Laboratory+Animals%5BTitle%5D)+AND+%22National+Academy+Press%22%5BJournal%5D)">National Academy Press. Guide for the Care and Use of Laboratory Animals.</a> National Academy Press. , Washington, DC. (1996).</li>
<li>Lowery, R. L., Majewska, A. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracranial+injection+of+adeno-associated+viral+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Intracranial injection of adeno-associated viral vectors.</a> J. Vis. Exp. (45), (2010).</li>
<li>Cavaletti, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+in+the+peripheral+nervous+system+of+systemically+administered+dimethylsulfoxide+in+the+rat%3A+a+neurophysiological+and+pathological%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Effect in the peripheral nervous system of systemically administered dimethylsulfoxide in the rat: a neurophysiological and pathological.</a> 119 (1-2), 1-2 (2000).</li>
<li>Parnaudeau, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mediodorsal+thalamus+hypofunction+impairs+flexible+goal-directed+behavior%5BTitle%5D)+AND+%22Biol.+Psychiatry%22%5BJournal%5D)">Mediodorsal thalamus hypofunction impairs flexible goal-directed behavior.</a> Biol. Psychiatry. 77 (5), 445-453 (2014).</li>
<li>wiki, D. R. E. A. D. D. , Available from: http://www.dreadd.org (2014).</li>
<li>Ferguson, S. M., Phillips, P. E. M., Roth, B. L., Wess, J., Neumaier, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct-pathway+striatal+neurons+regulate+the+retention+of+decision-making+strategies%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Direct-pathway striatal neurons regulate the retention of decision-making strategies.</a> J. Neurosci. 33 (28), 11668-11676 (2013).</li>
<li>Cassatarro, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reverse+pharmacogenetic+modulation+of+the+nucleus+accumbens+reduces+ethanol+consumption+in+a+limited+access+paradigm%5BTitle%5D)+AND+%22Neuropsychopharm%22%5BJournal%5D)">Reverse pharmacogenetic modulation of the nucleus accumbens reduces ethanol consumption in a limited access paradigm.</a> Neuropsychopharm. 39, 283-290 (2014).</li>
<li>Krashes, M. J., Shah, B. P., Koda, S., Lowell, B. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+versus+delayed+stimulation+of+feeding+by+the+endogenously+released+AgRP+neuron+mediators%5BTitle%5D)+AND+%22GABA%2C+NPY+and+AgRP.+Cell+Metab%22%5BJournal%5D)">Rapid versus delayed stimulation of feeding by the endogenously released AgRP neuron mediators.</a> GABA, NPY and AgRP. Cell Metab. 18 (4), 588-595 (2014).</li>
<li>Gage, F. H., Bjorklund, A., Stenevi, U., Dunnett, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+correlates+of+compensatory+collateral+sprouting+by+aminergic+and+cholinergic+afferents+in+the+hippocampal+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Functional correlates of compensatory collateral sprouting by aminergic and cholinergic afferents in the hippocampal formation.</a> Brain Res. 268 (1), 39-47 (1983).</li>
<li>Nelson, R. J., Young, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavior+in+mice+with+targeted+disruption+of+single+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci.+Biobehav.+Rev%22%5BJournal%5D)">Behavior in mice with targeted disruption of single genes.</a> Neurosci. Biobehav. Rev. 22 (3), 453-462 (1998).</li>
</ol>

Die Autoren erklären, dass sie keine konkurrierenden finanziellen Interessen haben.

Dieses Protokoll beschreibt, wie man einen pharmakogenetischen Ansatz (DREADD) anzuwenden, um zu untersuchen, wie eine bestimmte Hirnregion trägt zu einer Mehrphasen komplexen Lernaufgabe. Mit der Fähigkeit, vorübergehend zum Schweigen zu bringen und aus der Ferne neuronalen Aktivität in Hirnregionen in diskreten Phasen des Lernens, diese Kombination von Ansätzen bietet eine Plattform, um eine breite Palette von Verhaltensweisen, einschließlich differenzierter oder maskiert Lernformen zu untersuchen. Bei dem in diesem P...

Eine spannende Herausforderung auf dem Gebiet der Behavioral Neuroscience ist es, die neuronalen Substrate komplexe Verhaltensweisen zu bestimmen. Eine Anzahl von Techniken, wie beispielsweise Dauer Läsionen, temporäre Gehirn Inaktivierung über Kanülenimplantate und Optogenetik verwendet worden sind, um die Beiträge der einzelnen Gehirnregionen zu Subkomponenten komplexe Verhaltensweisen zu identifizieren. Während diese Ansätze informieren unser Verständnis der regionalen Spezifität beim Lernen, ist jede Technik nicht ohne Einschränkungen. Insbesondere werden Läsionen typischerweise permanent durchgeführt vor der Verhaltenstests, wodurch ihre Wirkung während der gesamten Dauer des Paradigmas vorliegen. Kanülierung Studien, die die Vorlage eines kurzfristigen neuronalen Inaktivator (zB Tetrodotoxin) beinhalten können erhebliche Schäden an Hirngewebe zu produzieren und können Stress bei Patienten kurz vor der Verhaltenstests zu induzieren. Weiterhin wird die Inaktivierung durch Kanülierung in die Region des Gewebes, die die Umgebung begrenztSpitze der Kanülen. Schließlich, während Optogenetik bietet eine Reihe von Flexibilität für die zeitliche Steuerung der Aktivität in bestimmten Hirnregionen, ist es kostspielig und technisch anspruchsvoll. Diese Einschränkungen können mit einer pharmakogenetischen Ansatz (Designer-Rezeptoren-Exklusiv-Activated-by-Designer-Drogen, DREADDs) 1,2 überwunden werden. Wichtig ist, dass, während das Konzept der Pharmakogenetik ist anspruchsvoll, ist die Ausführung der Technik unkompliziert. Ähnlich herkömmlichen stereotaktischen chirurgischen Methoden, die Infusion von Toxin (zB NMDA, Ibotensäure) in diskreten Gehirnbereichen beinhaltet diese Technik das Infundieren eines Adeno-assoziierten Virus (AAV), die ein DNA-Fragment für ein modifiziertes inhibitorische G-Protein-gekoppelten Rezeptor enthält beinhalten (hM4Di; der Designer-Rezeptor) in dem interessierenden Bereich von Standard-Labornagern (siehe Abbildung 1). Der virale Vektor enthält auch einen fluoreszierenden Reporter (mcitrine). Einmal in eingeauf Zellen, die Designer-Rezeptor (und Reporterprotein) maximal exprimiert ~ 3 Wochen nach der Infusion und selektiv für 2-5 Stunden nach der systemischen Verabreichung des ansonsten biologisch inert Designerdroge, Clozapin-N-oxid aktiviert werden (CNO) 1 , 3. Weil der Experimentator mit präziser, noch remote zeitliche Kontrolle über neuronale Aktivität in bestimmten Hirnregionen ausgestattet, kombiniert Pharmakogenetik besonders gut mit Verhaltensparadigmen, die in mehreren Phasen durchgeführt werden. In diesem Beispiel ist der Beitrag der retrosplenialen Cortex (RSC) auf einen Reiz-Stimulus Lernen wird zu seiner Rolle bei Pavlovian Lernens verglichen jedoch Kombination dieser beiden Ansätze ist gut geeignet, um eine beliebige Anzahl von Fragen, die zu ermitteln, wie bestimmte Hirnregionen tragen zu suchen komplexes Verhalten. Darüber hinaus, während in dem vorliegenden Protokoll beschrieben, können virale und transgene Ansätze verwendet werden, um Zelltyp-spezifische Expression DREADD 2 zu erzielen. Da ichs eigen Verhaltensparadigmen, die pharmakologischen und / oder andere Arten von experimentellen Manipulationen, sorgfältige Prüfung der Versuchsaufbau und die anschließende quantitative Analyse beteiligt ist erforderlich, wenn unter Verwendung der DREADD Ansatz. Experimentatoren neu in der DREADD Ansatz sind, um eine umfassende Überprüfung der derzeitigen DREADD Technik 2 bezeichnet. Jeden Tag Organismen lernen Sie neue Impulse und Ereignisse und ihre Beziehungen untereinander. Selbst in einer vertrauten Umgebung, wie zu Hause, ist eine schnell zu Veränderungen in den Beziehungen zwischen Reizen zu erkennen, weil diese Änderungen können prädiktiv für sinnvolle Veranstaltungen. Solche Stimulus-Stimulus (dh relational) beinhaltet die Lernzusammengehen mehrerer Reize und ist traditionell mit dem Hippocampus, die zentral innerhalb des medialen Temporallappens 4 wohnt in Verbindung gebracht. Allerdings ist der Hippocampus nicht vorhanden, noch isoliert handeln; kortikalen Regionen innerhalb und außerhalbSeite der medialen Temporallappen liefern wichtige sensorische Information an den Hippokampus 5-7. Traditionelle Permanent Läsion Studien liefern überzeugende Beweise für die Beteiligung einer Reihe von kortikalen Regionen (zB die retrosplenialen, postrhinal und entorhinalen Kortex) in hippocampalen abhängigen Lern sind jedoch in ihrer Fähigkeit, die Rolle eines bestimmten Bereichs bei diskreten Phasen unterscheiden begrenzt Lernen 8-10. Das vorliegende Protokoll testet die Hypothese, dass die RSC ist für Stimulus-Stimulus Lernen erforderlich, durch Schweigen den RSC während einer einzelnen Phase einer 3-Phasen-sensorische Präkonditionierung Paradigma 11,12. Kurz gesagt, erhalten Ratten Infusionen eines AAV, die die Designer-Rezeptor umfasst und ca. 3 Wochen später sind die Designer-Droge (CNO) 30 Minuten vor dem Beginn der Verhaltenstests verabreicht. In dem vorliegenden Protokoll zu empfangen Versuchsratten CNO während der ersten Phase der Prüfung (wenn Stimulus-Stimulus learning auftritt), und sie Fahrzeugs während der nächsten 2 Phasen des Tests unterzogen. Um unbeabsichtigte Auswirkungen der CNO auf Verhalten zu steuern, ziehen Ratten mit dem Designer-Rezeptor (hM4Di) und spritzen mit Fahrzeug statt CNO. Um die für die allgemeine Wirkung von viralen Infusion und Rezeptorexpression Konto, ziehen ein Steuer Virus, das nicht enthält den Designer-Rezeptor und verwalten CNO. Eine Anzahl von verschiedenen Serotypen von AAV verwendet werden, um genetisches Material zu liefern. Die aktuellen NIH Richtlinien für die Forschung an rekombinante oder synthetische Moleküle behält diese AAV (alle Serotypen) und rekombinante oder synthetische AAV-Konstrukte, in denen das Transgen nicht entweder eine potentiell tumorigenen Genprodukt oder ein Toxinmolekül kodieren, und werden in der Abwesenheit eines erzeugten Helfervirus erfordert BSL-1 Vorsichtsmaßnahmen (Anhang B-1. Risikogruppe 1 (RG1) Agents) 13. A Anzahl der Bewertungen im Zusammenhang mit AAV-Struktur, Nutzen und Sicherheit sind 14,15. Bemerkenswert ist, wenn, Aufgrund von Bedenken in Bezug auf mögliche Fortpflanzungs 16,17 und potenziellen karzinogenen Mechanismen 18-20 in Nagetieren, einige Institutionen erfordern die Verwendung von BSL-2 Vorsichtsmaßnahmen bei der Arbeit mit AAV. Überprüfen Sie die entsprechende BSL vor durch Rücksprache mit Aufsichtsgremien bei einzelnen Institutionen in denen die Forschung, die Centers for Disease Control und den NIH-Richtlinien für die Forschung an rekombinanten DNA-Moleküle 13 bei der Verwendung von viralen Vektoren für die Gen-Manipulation in den Vereinigten Staaten durchgeführt werden, zu nutzen. Personenschutz, Ermittler Ausbildung, Vektor-Containment, Dekontamination, Entsorgung dekontaminiert Materialien und Nacheinspritzung Tierhaltung Anforderungen werden von diesen Leitlinien festgelegt. Darüber hinaus beraten und folgen geeigneten Institutional Animal Care und Verwenden Ausschuss Richtlinien oder gleichwertig institutionellen Aufsichtsgremium Richtlinien, um die sichere Handhabung, Verwaltung und Veräußerung von AAV zu gewährleisten.

<table><tbody><tr><td>Männlich, Long Evans Ratten, 55-60 Tage alt</td><td>Hilltop Lab Animals Inc</td><td></td><td></td></tr><tr><td>rAAV8/hSyn-HA-hM4D(Gi)-IRES-mCitrine</td><td>Virus Vector Core</td><td></td><td>Vorsicht: Dies ist eine BSL-1-Verbindung</td></tr><tr><td>rAAV8/hSyn-GFP</td><td>Virus Vector Core</td><td></td><td>Vorsicht: Dies ist eine BSL-1-Verbindung</td></tr><tr><td>Clozapin-N-oxid</td><td>R& D Systems</td><td>4936-10</td><td>Designerdroge</td></tr><tr><td>Rattenkäfigdeckel (Polycarbonat)</td><td>Alternatives Design&nbsp;</td><td>FT 8XL-PC</td><td>Wird zum Abdecken von Tierkäfigen verwendet 48-72 Stunden nach der Infusion</td></tr><tr><td>Filterpapier (Ersatz)</td><td>Alternatives Design</td><td>FP-R-1018XAD</td><td>Filterpapier, das zu Käfigdeckeln passt</td></tr><tr><td>Tischschraubstock</td><td>JETS</td><td>2201-265</td><td>Zum Halten von Mikroscentrifuge-Röhrchen mit AAV in der Haube</td></tr><tr>Biohazard-Müllsäcke<td></td><td>Heftklammern</td><td>113444</td><td>Medline Biohazard-Auskleidungen</td></tr><tr><td>Biohazard-Mülleimer</td><td></td><td></td> Amazon.com <td>United Solutions 34 Gallonen rechteckiger Mülleimer auf Rädern mit Haken und Verschlussgriff</td></tr><tr><td>Isofluran, 100 ml</td><td>Patterson Veterinary Supply Inc.</td><td>07-890-8540</td><td>Anästhetikum</td></tr><tr><td>Duales stereotaktisches Kleintier mit Digitalanzeige Anzeigekonsole</td><td>David Kopf</td><td>Modell 942</td><td>Chirurgische Geräte</td></tr> Nicht <tr><td>reißende Ohrbügel, 2er Set (Ratte)</td><td>David Kopf</td><td>Modell 955</td><td>Chirurgische Geräte</td></tr><tr><td>Anästhesiemaske (Ratte)</td><td>David Kopf</td><td>Modell 906</td><td>Chirurgische Geräte</td></tr><tr><td>Der stereotaktische Hochgeschwindigkeitsbohrer umfasst eine Tischmotorsteuerung, ein Fußpedal, ein Handstück und einen stereotaktischen Handstückhalter</td><td>David Kopf</td><td>Modell 1474</td><td>Chirurgische Ausrüstung</td></tr><tr><td>Mikrobohrfräser, 0,9 mm</td><td>Fine Science Tools Inc</td><td>19007-09</td><td>Chirurgisches Zubehör</td></tr><tr><td>Automatisierte Spritzenpumpe mit Micro4-Controller</td><td>David Kopf</td><td>Modell UMP3-1</td><td>Chirurgische Ausrüstung</td></tr><tr><td>Abnehmbare Keramikklinge für Tiere Clipper-Kit</td><td>Ahdis</td><td>21420</td><td>Chirurgisches Zubehör</td></tr><tr><td>Betadine Hautreiniger</td><td>Perdue Products L.P</td><td>67618-149-04</td><td>Chirurgisches Zubehör</td></tr><tr><td>Dreifache antiobiotische Salbe</td><td>Medline Supply</td><td>53329-087-01</td><td>Chirurgisches Zubehör</td></tr><tr><td>Puralube Tierarztsalbe</td><td>Nur Veterinärbedarf</td><td>17033-211-38</td><td>Chirurgisches Zubehör</td></tr><tr><td>Dino-lite</td><td>Mikroskop</td><td>AD7013MTL</td><td>Eine Alternative zum herkömmlichen Präparierskop</td></tr><tr><td>Dino-lite starres Tischstativ mit Ausleger</td><td>Mikroskop</td><td>MS36B</td><td>Chirurgische Ausrüstung</td></tr><tr><td>28 G 10 &mu; l Spritze</td><td>Hamilton</td><td>80308-701SN</td><td>Chirurgische Ausrüstung</td></tr><tr><td>Extra hohe MDF-Schalldämpfungskabine</td><td>Med Associates, Inc</td><td>ENV-018MD</td><td>22' B x 22" H x 16" D</td></tr><tr><td>Extra hohe modulare Testkammer</td><td>Med Associates, Inc</td><td>ENV-007</td><td>Verhaltensausrüstung</td></tr><tr><td>Edelstahlgitterboden</td><td>Med Associates, Inc</td><td>ENV-005</td><td>Verhaltensausrüstung</td></tr><tr><td>Hausleuchte</td><td>Med Associates, Inc</td><td>ENV-215M</td><td>Wird als Hauslicht und Stimuluslicht verwendet</td></tr><tr><td>Modularer Pelletspender</td><td>Med Associates, Inc</td><td>ENV-203M-45</td><td>Verhaltensausrüstung</td></tr><tr><td>Pelletbehälter, Bechertyp</td><td>Med Associates, Inc</td><td>ENV-200R1M</td><td>Verhaltensausrüstung</td></tr><tr><td>Kopfeintrittsdetektor für Ratte</td><td>Med Associates, Inc</td><td>ENV-254-CB</td><td>Verhaltensausrüstung</td></tr><tr><td>Staubfreie Präzisions-Lebensmittelpellets, 45 mg</td><td>Bio-Serv</td><td>F0165</td><td>Verhaltensversorgung</td></tr><tr><td>Käfiglautsprecher für Rattenkammer</td><td>Med Associates, Inc</td><td>ENV-224AM</td><td>Verhaltensausrüstung</td></tr><tr><td>Programmierbarer Audiogenerator</td><td>Med Associates, Inc</td><td>ANL-926</td><td>Verhaltensausrüstung</td></tr><tr><td>Smart Ctrl 8 Eingabe/16 Ausgangspaket</td><td>Med Associates, Inc</td><td>DIG-716P2</td><td>Verhaltensausrüstung</td></tr><tr><td>Großer Tischschrank und Netzteil</td><td>Med Associates, Inc</td><td>SG-6510D PCI-Schnittstellenpaket</td> für <td>Verhaltensgeräte</td></tr><tr><td></td><td>Med Associates, Inc</td><td>DIG-700P2-R2</td><td>Verhaltensgeräte</td></tr><tr><td>MED Intel Core Computer Pkg mit X Pro 19" Monitor</td><td>Med Associates, Inc</td><td>COM-103V</td><td>Verhaltensgeräte</td></tr><tr><td>Paraformaldehyd (grannular), 1 kg</td><td>Elektronenmikroskopie Wissenschaft</td><td>19210</td><td>Gefahr: krebserregend,</td></tr> wiegen in <tr><td>der Haube Monoklonaler Kaninchen-Antikörper (HA-Tag)</td><td>Cell Signaling Technologies</td><td>3724S</td><td>Histologie-Reagenz</td></tr><tr><td>XP Kaninchen monoklonaler Antikörper (GFP)</td><td>Cell Signaling Technologies</td><td>2956S</td><td>Histologie-Reagenz</td></tr><tr><td>Anti-Kaninchen-IgG</td><td>Cell Signaling Technologies</td><td>4412S</td><td>Histology liefert</td></tr><tr><td>Superfrost plus Objektträger</td><td>VWR international</td><td>483111-703</td><td>Histologiebedarf</td></tr></tbody></table>

ein verfahren zum fern silencing neuronale aktivität in nagetiere während diskreter phasen des lernens

A Method for Remotely Silencing Neural Activity in Rodents During Discrete Phases of Learning

Dieses Protokoll beschreibt, wie vorübergehend zum Schweigen zu bringen und aus der Ferne die neuronale Aktivität in einzelnen Gehirnregionen, während die Tiere in Lern- und Gedächtnisaufgaben beschäftigt. Der Ansatz kombiniert Pharmakogenetik (Designer-Rezeptoren-Exklusiv-Activated-by-Designer-Drogen) mit einem Verhaltensparadigma (sensorischen Präkonditionierung) dazu bestimmt ist, zwischen verschiedenen Lernformen zu unterscheiden. Insbesondere wird viral-vermittelte Abgabe verwendet werden, um eine genetisch modifizierte inhibitorische G-Protein-gekoppelten Rezeptor (der Designer Receptor) in einer diskreten Region des Gehirns im Nagetier auszudrücken. Drei Wochen später, als Designer-Rezeptor-Expressionsniveaus hoch sind, ein pharmakologisches Mittel (der Designer Drug) wird systemisch 30 Minuten vor einem bestimmten Verhaltens Sitzung verabreicht. Das Arzneimittel besitzt eine Affinität für den Designer-Rezeptor und damit zu einer Hemmung der Neuronen, die den Designer-Rezeptor exprimieren, ist ansonsten biologisch inert. Die Hirnregion bleibt für 2-5 Stunden zum Schweigen (DEPENDing von der Dosis und dem Weg der Verabreichung). Nach Beendigung der Verhaltensparadigma wird Hirngewebe für die korrekte Platzierung und Rezeptor-Expression bewertet. Dieser Ansatz ist besonders nützlich für die Bestimmung der Anteile der einzelnen Gehirnregionen bestimmte Komponenten von Verhalten und kann über eine beliebige Anzahl von Verhaltensparadigmen verwendet werden.

Behavioral Ergebnisse Bei Beendigung des Versuchs sollte die Wirksamkeit der regionsspezifischen temporären Inaktivierung quantitativ und qualitativ bewertet werden. Das vorliegende Beispiel beinhaltet eine 3-Phasen-Verhaltensparadigma (sensorischen Präkonditionierung), in dem CNO wurde verabreicht, um die neuronale Aktivität in dem RSC während der Vorkonditionierung Sitzungen zu dämpfen, um die Hypothese, dass die RSC ist notwendig für die Bildung von Assoziationen zwischen neutralen Stimuli <...

Dieses Protokoll beschreibt, wie neuronale Aktivität in diskreten Gehirnregionen vorübergehend und aus der Ferne zum Schweigen gebracht werden kann, während Ratten mit Lern- und Gedächtnisaufgaben beschäftigt sind. Der Ansatz kombiniert Pharmakogenetik (Designer-Rezeptoren-Exklusiv-aktiviert-durch-Designer-Medikamente) mit einem Verhaltensparadigma (sensorische Präkonditionierung), das darauf ausgelegt ist, zwischen verschiedenen Komponenten des Lernens zu unterscheiden.

Ein Verfahren zum Fern Silencing neuronale Aktivität in Nagetiere Während diskreter Phasen des Lernens

This protocol describes how to temporarily and remotely silence neuronal activity in discrete brain regions while animals are engaged in learning and ...

Das Ziel dieses Verfahrens besteht darin, die neuronale Aktivität vorübergehend und aus der Ferne in definierten Hirnregionen zu unterdrücken, während die Tiere an Lern- und Gedächtnisaufgaben beteiligt sind. Dies wird erreicht, indem zunächst ein a a V, der einen Designerrezeptor und einen Reporter enthält, in eine Spritze zur Infusion gefüllt wird. Der zweite Schritt besteht darin, den a a V in die gewünschte Region des Rattenhirns zu infundieren.Anschließend werden das biologisch inaktive Designer-Medikament Clozapin und Oxid hergestellt und systemisch in die Ratte injiziert. Der letzte Schritt besteht in der Durchführung einer Verhaltensprüfung mithilfe eines sensorischen Präkonditionierungsparadigmas. Abschließend dient die Immunfluoreszenzmikroskopie an Rattengehirngewebe der Überprüfung der Platzierung des Designer-Rezeptors.Diese Methode kann dazu beitragen, zentrale Fragen auf dem Gebiet der Verhaltensneurowissenschaften zu beantworten, darunter unter anderem die Regulation von Motivation, Aufmerksamkeit sowie Lernen und Gedächtnis. Stellen Sie sicher, dass alle institutionellen Sicherheitsvorkehrungen für die Arbeit mit adeno-assoziierten Viren eingehalten werden; das in diesem Video verwendete Virus ist als Bio-Sicherheitsstufe-1-Substanz klassifiziert. Bereiten Sie eine 10 %ige Bleichmittel-Lösung vor. Zum Desinfizieren von Abfall stellen Sie eine Schale mit Bleichmittel-Lösung sowie eine sterile 10-Mikroliter-Spritze bereit.Platzieren Sie im Arbeitsbereich das Mikrozentrifugenröhrchen, das eine Aliquotprobe von a a V enthält, in eine Standard-Handschraubzwinge. Laden Sie eine 10-Mikroliter-Spritze mit mindestens vier Mikrolitern von a A v. Stellen Sie sicher, dass sich in den vier Mikrolitern der a a v-Lösung keine Luftblasen befinden. Entsorgen Sie das leere Virusröhrchen in der Spritze in dem Becher, der 10 % Bleiche enthält.Geben Sie zusätzlich 10 % Bleiche zum Abfallbehälter hinzu und lassen Sie den Abfall 30 Minuten lang stehen, bevor Sie die desinfizierte flüssige Abfallentsorgung gemäß den institutionellen Richtlinien entsorgen. Bereiten Sie den chirurgischen Bereich vor, indem Sie absorbierendes Arbeitspapier unter das stereotaktische Gerät und auf einen angrenzenden Bereich legen, der als separater Virenarbeitsplatz vorgesehen ist. Nach der Einleitung der Anästhesie mit 3 % Isofluran, Fluor und Sauerstoff mit einer Geschwindigkeit von einem Liter pro Minute.Rasiere das Fell vom Bereich zwischen den Augen leicht hinter die Ohren. Nach dem Rasieren stelle die Ratte für drei Minuten zurück in die Induktionskammer, wobei die Ratte in einer stereotaktischen Apparatur fixiert ist. Bedecken Sie die Augen mit Augensalbe und bereiten Sie die Inzisionsstelle vor, indem Sie sie mit Betadine reinigen.Nachdem ein 2,4 cm langer medianer Hautschnitt über dem Schädel, ausgehend von etwa zwei Millimetern kaudal der Augen, durchgeführt wurde, wird die Haut zurückgeklappt, um den Schädel freizulegen, und das membranöse Gewebe vom Schädel entfernt, bis bgma und Lambda deutlich sichtbar sind. Nach Überprüfung, ob der Schädel eben ist, wird der Bohrer am Punkt bgma positioniert, die Koordinaten auf null gesetzt und der Bohrer anschließend zu den gewünschten medialen, lateralen und anteroposterioren Koordinaten bewegt. Ein Loch wird mit einem 0,9, 0,7 oder 0,5 mm Bohrer gebohrt.Stellen Sie die Infusionspumpe so ein, dass das Virus mit einer Geschwindigkeit von 0,2 Mikrolitern pro Minute appliziert wird. Legen Sie die Spritze in den Infusionsarm des stereotaktischen Geräts und senken Sie die Spritze auf die gewünschte Koordinate ab. Verwenden Sie die Pumpe, um die gewünschte Menge des Virus zu applizieren, nachdem die Virenapplikation abgeschlossen ist.Lassen Sie die Spritze 10 Minuten lang an Ort und Stelle, um einen Rückfluss in die Nadel zu verhindern, und heben Sie die Spritze langsam mit einer Geschwindigkeit von etwa fünf Millimetern pro Minute an. Danach wechseln Sie zum nächsten Koordinatenpunkt und wiederholen Sie den Vorgang, bis alle Koordinaten mit a a v. infundiert wurden. Nach der Wundversorgung und Verabreichung einer postoperativen Analgesie gemäß dem genehmigten Protokoll platzieren Sie die Ratte in einen sauberen Käfig mit Einstreu, einem Deckel und der entsprechenden Beschriftung.Wenn sich die Ratte vollständig von der Anästhesie erholt hat, bringen Sie sie in den Unterbringungsraum zurück. Warten Sie drei oder mehr Wochen, bevor Sie mit den Verhaltensversuchen beginnen, um eine ausreichende Expression des Designer-Rezeptors sicherzustellen. Diese Abbildung zeigt die drei Phasen des sensorischen Präkonditionierungsparadigmas: die Präkonditionierungsphase, die Konditionierungsphase und die Testphase.Die Designerdroge Clozapin-N-Oxid oder CNO wird verwendet, um neuronale Aktivität zu unterdrücken, indem der konstruierte Rezeptor aktiviert wird. CNO kann vor jeder Testphase injiziert werden. Hier wird CNO 30 Minuten vor jeder Konditionierungssitzung verabreicht. Nachdem eine frische Lösung von einem Milligramm pro Milliliter Clozapin-N-Oxid gemäß den Anweisungen im schriftlichen Teil des Protokolls hergestellt wurde, injizieren Sie das CNO intraperitoneal in einer Dosis von einem Milligramm pro Kilogramm 30 Minuten vor der Verhaltensprüfung.Starten Sie den Computercode für die entsprechende Verhaltenssitzung. Nachdem 30 Minuten vergangen sind, stellen Sie die Ratten in die Testkammern und beginnen die erste von vier 64-minütigen Konditionierungssitzungen, indem Sie den Ratten 12 gemischte Versuche präsentieren, die aus der Darbietung akustischer und visueller Reize bestehen. Bei sechs der Versuche wird ein Ton als Konditionierungsreiz 10 Sekunden lang präsentiert, unmittelbar gefolgt von einer fünfsekündigen Darbietung des blinkenden Lichtreizes bei den anderen sechs Versuchen.Präsentieren Sie 10 Sekunden lang das weiße Rauschen, den ungezeigten Reiz allein. Nach Abschluss der Präkonditionierungsphase beginnen Sie die Konditionierungssitzungen, die über fünf aufeinanderfolgende Tage durchgeführt werden. Präsentieren Sie den Ratten acht Durchgänge, die aus der Darbietung des visuellen Reizes, dem blinkenden Licht für fünf Sekunden, bestehen, dem unmittelbar die Ausgabe von 2 × 45 Milligramm-Futterpellets folgt.Dieses Mal intertrial Intervalle einbeziehen, die sieben Minuten betragen, sobald die Konditionierungssitzungen abgeschlossen sind. Führen Sie die einzelne 78-minütige Testsitzung durch, indem Sie den Ratten 12 miteinander vermischt angebotene Versuche präsentieren, die aus der alleinigen Darbietung der akustischen Reize bestehen. Bei sechs der Versuche.Präsentieren Sie den Tonreiz, den Präkonditionierungsreiz allein für 10 Sekunden. Bei den anderen sechs Durchgängen präsentieren Sie das weiße Rauschen, den ungepaarten Reiz allein für 10 Sekunden. Unmittelbar nach Abschluss der Verhaltensaufgabe nehmen Sie die Ratten aus den Kammern und bringen Sie zurück in die Tierzuchtanlage.Analysieren Sie die Daten aus der Konditionierungs- und Testphase gemäß den detaillierten Anweisungen im schriftlichen Teil des Protokolls. Nach Durchführung der Immunhistochemie gegen den markierten Reporter oder das Reporterprotein untersuchen Sie die gefärbten Schnitte mittels Mikroskopie, um Ort und Expression des Designer-Rezeptors und/oder des Reporters zu bestimmen, wie erwartet. Kontroll- und experimentelle Ratten lernten während der Konditionierungssitzungen in ähnlicher Weise die pawlowsche Assoziation zwischen dem blinkenden Lichtreiz und dem Futter.In beiden Gruppen wurden die Tiere während der Konditionierungssitzung ebenfalls durch die Belohnung mit Futter motiviert. Im Gegensatz dazu konnten die experimentellen Ratten während der entscheidenden Testsitzung nicht zwischen den vorab konditionierten und den nicht präsentierten akustischen Reizen unterscheiden, während die Kontrollratten ein stärkeres Verhalten am Futterbehälter als Reaktion auf die Darbietung des Vorab-Reizes zeigten. Somit zeigten die Kontrollratten, nicht jedoch die experimentellen Ratten, den Effekt der sensorischen Präkonditionierung.Dieses Bild zeigt die histologische Überprüfung der Lage einer i.v.-Infusion in die Region von Interesse im Nagetierhirn nach deren Entwicklung. Diese Technik ebnete den Forschern auf dem Gebiet der Neurowissenschaften den Weg, um die Beiträge spezifischer Hirnregionen und/oder Zelltypen zu komplexen Verhaltensweisen in vivo zu untersuchen.

a-method-for-remotely-silencing-neural-activity-rodents-during

Research

Forschung

JoVE Journal

Behavior

Verhalten

In diesem Bericht präsentieren wir eine voll automatisierte und äußerst vielseitige System kann gleichzeitig testen Multi-kognitive Verhalten und die Aufnahme neuronaler Aktivitäten für Nagetiere.

Ein vollautomatisiertes und vielseitig verwendbares System zum Testen von Multi-kognitiven Funktionen und Aufnahme neuronaler Aktivitäten bei Nagetieren

Lege einen betäubten Neugeborenen auf ein Heizkissen.Desinfizieren Sie die Kopfhaut mit Ethanol.Füllen Sie eine Spritze mit einer viralen Lösung, die Adeno-assoziierte Viren enthält, die das Gen für einen medikamentenaktivierten inhibitorischen Rezeptor und einen Tracking-Farbstoff tragen.Richten Sie die Spritzenspitze auf den Kopf des Welpen aus und injizieren Sie das Virus langsam in das Gehirn, um es gleichmäßig zu verteilen.Lassen Sie den Welpen sich erholen.Während der Inkubation dringen...

Chemogenetische Stilllegung der neuronalen Aktivität bei einer neugeborenen Maus

Hemmung der neuronalen Aktivität und deren elektrophysiologischer Nachweis bei einer Ratte

Eine vollautomatische Protokoll für Nager operante Konditionierung vorgeschlagen. Das Protokoll stützt sich auf genaue zeitliche Steuerung der Verhaltens Ereignisse, um das Ausmaß, zu dem diese Steuer Einflüsse zugrunde liegenden neuronalen Aktivität sensomotorische Integration und kognitive Kontrollexperimenten zu untersuchen.

Eine vollautomatische Nageranlage Protokoll für die Integration sensorischer und kognitiver Kontrollexperimente

Das Erlernen neuer Stimulus-Antwort-Assoziationen greift in eine Vielzahl von neuronalen Prozesse, die letztlich in wechselnden Spitzenleistung von einzelnen Neuronen reflektiert werden. Hier beschreiben wir eine Verhaltensprotokoll, das für die kontinuierliche Registrierung von Single-Neuronen-Aktivität während Tiere zu erwerben, zu löschen und Wiedererlangung eine konditionierte Reaktion innerhalb eines einzigen experimentellen Sitzung.

Aufnahme von Aktionspotentialen einzelner Neuronen &quot;sich frei zu bewegen Tauben auf drei Stages of Learning

Hier stellen wir eine Glaspipette mit doppelter Funktion her: Hemmung tiefer Hirnstrukturen durch Mikroinjektionen von Medikamenten und Echtzeitüberwachung ihrer Wirkung durch gleichzeitige elektrophysiologische Aufzeichnungen.

Gleichzeitige Elektrophysiologische Aufzeichnung und Micro-Injektionen von Hemmstoffe im Gehirn von Nagetieren

Shuttle-box Vermeidung Lernen wird in Behavioral Neuroscience etablierte. Dieses Protokoll beschreibt, wie Shuttle-Box-Lernen bei Nagetieren mit ortsspezifischen elektrischen intracortical Mikrostimulation (ICMS) und gleichzeitige chronische in vivo-Aufnahmen als Werkzeug, um mehrere Aspekte des Lernens und Wahrnehmung studieren kombiniert werden.

Kombinierte Shuttle-Box-Training mit Elektrophysiologische Cortex Ableitung und Stimulation als ein Instrument zur Wahrnehmung und Lernen Studie

Vagusnervstimulation (VNS) hat sich als Instrument zur zielgerichteten synaptischen Plastizität im Vorderhirn zu veranlassen, eine Reihe von Verhaltensweisen ändern entstanden. Dieses Protokoll beschreibt, wie die Umsetzung VNS, um die Konsolidierung der Angst Aussterben Speicher zu erleichtern.

Vagusnervstimulation als Instrument zur Plastizität in Pathways Relevant für Extinction Learning herbei

Wir stellen Methoden zur Konstruktion von Elektroden vor, um gleichzeitig extrazelluläre neuronale Aktivität aufzuzeichnen und mehrere neuroaktive Substanzen in der Nähe der Aufzeichnungsstellen bei wachen Mäusen freizusetzen. Diese Technik ermöglicht die detaillierte Analyse mutmaßlicher lokaler synaptischer Eingaben an das interessierende Neuron.

Die extrazelluläre Aufnahme neuronaler Aktivität in Kombination mit Microiontophoretic Anwendung von neuroaktiven Substanzen in Awake Mäuse

Die Konstruktion und Montage von Mikroantriebe für in vivo elektrophysiologischen Aufnahmen von Gehirn Signale von der Maus beschrieben. Durch das Anbringen Mikroelektroden Bundles robust fahrbare Träger erlauben diese Techniken für die langfristige und stabile neuronale Aufnahmen. Das leichte Design ermöglicht uneingeschränkte Verhaltensleistung durch das Tier folgende Laufwerk Implantation.

Bau Microdrive Arrays für chronische Neural Recordings in Awake benimmt Mäuse

Erfahren Sie ein Verfahren zur Fern-Silencing neuronaler Aktivität in Ratten während diskreter Lernphasen. Diese pharmakogenetische Methode ermöglicht präzise Untersuchungen von Lern- und Gedächtnisprozessen im Verhaltensneurowissenschaftlichen Kontext.

Ein Verfahren zum Fern Silencing neuronale Aktivität in Nagetiere Während diskreter Phasen des Lernens

Weitere Videos entdecken