Name: Charakterisierung von metabolischen Status in nicht-menschlichen Primaten mit der intravenösen Glukosetoleranztest (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-11-13T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 59 s
Description: Erfahren Sie die Durchführung des intravenösen Glukosetoleranztests bei Makaken zur Charakterisierung des metabolischen Status. Diese Methode ermöglicht die Erforschung von Insulinresistenz und Diabetes.

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Die Autoren möchten die starke Unterstützung der DHMRI CLAS Tierpflegepersonal, Facility Manager Herr Daniel Peralta und behandelnde Tierarzt, Dr. Glicerio Ignacio, DVM MRCVS anzuerkennen.

Alle Tierverfahren des David H. Murdock Research Institute IACUC auf dem North Carolina Research Campus (NCRC) gelegen genehmigt wurden, unter Protokoll 14-017, Charakterisierung eines nicht-menschlichen Primatenmodell von Diabetes und Prädiabetes / Insulin-Resistenz und Wirksamkeit von Therapeutika zu verbessern Insulinempfindlichkeit und metabolischen Funktion. 1. Tierauswahl und Studienvorbereitung <ol><li> Wählen Sie Ernährung und Gewicht stabil Tiere auf Basis von monatlichen Nahrungsaufnahme und das Körpergewicht Aufzeichnungen. HINWEIS: Tiere, die eine jüngste Rückgang der Appetit gezeigt haben, sollte nicht gekennzeichnet werden, bis ihre Nahrungsaufnahme stabilisiert hat. <ol><li> Für die reife Tiere (&gt; 5 - 6 Jahre), wählen Sie nicht Tiere, deren Körpergewicht zwischen aufeinander folgenden Monaten um mehr als 10%, ohne zuerst den Affen untersuchen und Ausschluss anderer Ursachen als eine Änderung metabolischen Status für die dramatische Gewichtsänderung. </li></ol></li><li> Für Glukose, Insulin und C-Peptide Analyten, bereiten K 2 EDTA Probenröhrchen mit Protease - Inhibitor (Aprotinin und DPP4I). HINWEIS: Die DPP4I + Aprotinin Cocktail bietet ein breites Spektrum an Proteaseinhibition sollte diese zusätzliche Analyten (Glucagon, GLP-1) erforderlich. In dem Fall, dass zusätzliche Analyten nicht gesammelt werden, sollten die Blutröhrchen in der gleichen Weise hergestellt werden Konsistenz in Probensammlung zu halten. Die Proben für die Tests nicht für diese Methode validiert werden separat gesammelt werden, entsprechend den Empfehlungen des Herstellers. <ol><li> Bereiten Sie die Protease-Inhibitor-Cocktail durch Mischen von 100 mg lyophilisiertes Aprotinin mit 10 ml DPP4I. Fügen Sie 10 &amp; mgr; l des Aprotinin + DPP4I Mischung auf jedem Blutröhrchen für jeden Milliliter Blut gesammelt. </li><li> Fügen Sie weitere 10 &amp; mgr; l der Protease-Inhibitor-Cocktail in jedes Röhrchen für mögliche Sammlung overage. Lagern Sie die behandelten Blutröhrchen bei -20 ° C bis zur Verwendung. Halten Sie die Rohre auf nassem Eis während der procedure und Spin bei 4 ° C. </li><li> Verwenden Sie ein Serumtrennrohr eine Blutprobe zu Beginn der Studie für Standard-Serumchemie-Analyse zu sammeln. Für die Blutbild (CBC), mit einem Standard - K 2 EDTA ohne Proteaseinhibitoren. Verwenden Kryovials zu aliquoten Plasma und Serum nach den Blutproben wurden zentrifugiert. </li><li> Beschriften Sie die Blutröhrchen und die Kryovials geeigneter Weise mit dem Tieridentifikation, Datum, Verfahren, Zeitpunkt und Probenvolumen. Beschriften Sie die Kryoröhrchen mit dem Analyten (s) im Plasma nach geeigneten Assays. </li></ol></li><li> Bereiten Sie die heparinisierte Kochsalzspülung von 0,15 ml von 1.000 USP-Einheiten pro ml Heparin in einen 250 ml Beutel mit physiologischer Kochsalzlösung injiziert wird. Besorgen Sie sich eine Lösung von 0,06 mg Heparin / ml. Zeichne 40-60 ml dieser Lösung in einer Salzsperre für zwischen den Proben zu spülen. Zeichne eine zusätzliche 1 ml und 5 ml in separate Spritzen zur Spülung des Dextrose-Infusionsöffnung vor und nach der Infusion auf. </li></ol> 2.Tier Sedation und Vorbereitung <ol><li> Entfernen Sie Lebensmittel aus dem Käfig des Tieres nicht weniger als 14 Stunden vor dem Eingriff, und nicht mehr als 18 Stunden. HINWEIS: Es ist wichtig, dass die Tiere für das Verfahren jede postprandialen Variation der glykämischen Werte zu vermeiden gefastet werden. Es ist auch eine Vorkehrung Regurgitation und Aspiration von Mageninhalt zu vermeiden, während anästhesiert. </li><li> Sedate Tiere für die Dauer des Verfahrens IVGTT mit Ketamin intramuskulär als allgemeine Betäubung gegeben, bei 10 mg / kg. Administrieren zusätzliche Ketamin (5-10 mg / kg) im Abstand von 20 - 30 min, oder nach Bedarf, während des Verfahrens. <ol><li> Wiegen Sie die sedierten Tier. Legen Sie das Tier in eine seitlich liegende Position auf einem beheizten Verfahren Tisch. </li><li> Überwachen der klinischen Parameter alle 15 bis 20 Minuten das Tier, um sicherzustellen, in einer stabilen Ebene der Anästhesie ist. Messen Sie die Herzfrequenz (100-200 bpm) und SPO 2 (&gt; 92%) mit einem Pulsoximeter. Messen Sie die Atemfrequenz (20 bis 50 Atemzüge / min) w<html> ith einer Stoppuhr, Zählen respirations visuell oder mit der Hand über 15 Sekunden multipliziert mit vier. Temperatur messen (&gt; 97 ° F) rektal. Überwachen Sie die Farbe der Schleimhaut um das Zahnfleisch und Lippen (feucht, pink). </li></ol></li><li> Bereiten Sie zwei Kanüle Standorten. Verwenden Sie Haarschneider die Haare aus dem Bereich von Interesse zu trimmen, wo der Katheter eingeführt wird, und zu sterilisieren, die gesamte Region mit abwechselnden scheuert von Chlorhexidin und 70% Alkohol. <ol><li> Setzen Sie einen Katheter in den Bereich der linken oder rechten cephalica oder Saphenavenen und verbinden Sie es mit einer Heparin Kochsalzlçsung (0,06 mg Heparin / ml) mit einem Dreiwegehahn. Dies ist die Probenahme Blutentnahme Ort. </li><li> Legen Sie die zweite Katheter in einem anderen Bein oder Arm im Bereich der cephalica oder Saphenavenen und einen Port anschließen. Verwenden Sie diese Seite für die Dextrose-Infusion. Verwenden Sie einen kleinen, 1 ml Spülung von heparinisierter Kochsalzlösung, die Kanüle Patent vor Dextrose Infusion zu halten. </li></ol></li></ol>e_title &quot;&gt; 3. IVGTT Verfahren HINWEIS: Die IVGTT Prozedur besteht aus 8 Blutentnahme Abtast - Zeitpunkte (Tabelle 1). <ol><li> Nehmen Sie die Basisprobe und die Verwendung einer Hand gehalten glucometer die Nüchtern-Blutzuckerspiegel zu messen. Besorgen Sie sich eine Serumprobe für Standard-Chemie-Analyse, sowie eine Vollblutprobe für eine CBC, um die allgemeine Gesundheit des Tieres zu beurteilen. Sammeln Plasmaproben Glucose- und Insulinspiegel zu testen , von der Basisprobe ein Kit zur Verwendung mit Makaken gemäß den Anweisungen des Herstellers 8, 9 validiert werden. HINWEIS: Es ist wichtig, eine Pre-Unentschieden von 0,5 ml aus der Kanüle zu vor genommen zu haben, jede Probe für die Blutentnahme unter Restblut oder Heparin in den Totraum der Kanüle zu entfernen. </li><li> Nachdem die Basisprobe zu erhalten, die Dosis von 50% Dextrose (250 mg / kg) über 30 sec in die Dextrose Infusionsöffnung infundieren. HINWEIS: Die höhere Dosis Modelle (500 mg / kg) verwendet werden,obwohl die Dosis sollte über Verfahren zu machen, um Längsvergleiche fixiert werden. <ol><li> Spülen Sie den Infusionsanschluss mit 5 ml heparinisierter Kochsalzlösung, um sicherzustellen, dass es keine Dextrose im Hafen links ist. Das Ende der Infusion ist die T0. Haben die Techniker die Handschuhe zu ersetzen, als Rest Traubenzucker aus der Infusions nachfolgende Blutproben verunreinigen können. </li></ol></li><li> Die erste nach der Infusion Abtastzeit Punkt bei T3 min, von dem Ende des Dextrose-Infusion, gefolgt von T5 min, T7 min, T10 min, T15 min, T20 min, und der letzte Abtastwert Zeitpunkt ist bei T30 min. Sammeln von Plasma aus jedem Zeitpunkt zu Test Glukose und Insulinspiegel mit der Basisprobe (siehe Schritt 3.1). <ol><li> Am T3 min Zeitpunkt, verwenden Sie die Hand glucometer erneut, um den Blutzuckerspiegel überprüfen. HINWEIS: Die glucometer Lesungen zu Beginn der Studie und T3 sind nur die Infusion der Dextrose zu bestätigen. Der Blutzuckerspiegel an der T3 min Zeitpunkt sollte ~ 100 mg / dl höher co seinzum Fasten Basisplasmaglukosespiegel mpared. </li></ol></li></ol> 4. Tierrettung und Probenbearbeitung <ol><li> Entfernen Sie die Kanülen und Druck auf die katheterisierte Stellen für Hämostase nach dem T30 min Zeitpunkt. Überwachen Sie das Tier, bis er das Bewusstsein wiedererlangt hat und sitzt. Angebot Futtermittel, sobald das Tier vollständig erholt. </li><li> Unmittelbar danach ist jede Vollblutprobe in K 2 EDTA - Röhrchen auf Eis. Zentrifuge bei 3000 Umdrehungen pro Minute bei einer Temperatur von 4 ° C innerhalb von 10 Minuten der Sammlung. Aliquotieren Plasmaproben in Kryoröhrchen, einfrieren und bei -80 ° C bis zur Analyse. <ol><li> Ermöglichen es dem Blut in das Serum Rohr für Standardserumchemie-Analyse bei Raumtemperatur für nicht weniger als 20 min und nicht mehr als 30 min vor der Zentrifugation bei 3000 Upm bei RT zu sitzen. Frieren Sie die Serumproben, bis innerhalb von 48 Stunden der Entnahme untersucht. HINWEIS: Gekühlt Vollblut für CBC-Analyse gesammelt, bis alsinnerhalb von 24 Stunden von Sammlung Sayed. </li></ol></li></ol> 5. Datenbehandlung <ol><li> Die Plasmainsulin und Glukosekurven Nach dem Aufbau, bestimmen die Glukose - Clearance - Rate K aus der Steigung des natürlichen Logarithmus der Glukosewerte über die Basislinie 16, 17. HINWEIS: Eine gesunde NHP kann über 1 eine Glukose - Clearance - Rate K gut zu haben , erwarten, oft größer als 2 oder mehr, als ein gesundes Tier oft auf ihre Basisglukosewerte innerhalb von 30 Minuten zurück. Als Insulinproduktion abfällt, wird die Glukose-Clearance-Rate K mehr drastisch sinken, unter 1 fallen. </li><li> Berechne die AUC als Ganzes, als die Summe der Summen der Fläche der Trapeze die Fläche unter der Kurve jedes Liniensegments zwischen den Zeitpunkten repräsentiert, durch T30 16, 17. HINWEIS: Traditionell ist die AUC von den ersten zehn Minuten des Verfahrens gilt die acute Insulinantwort auf Glucose (AIR), während die AUC von den letzten 20 min des Verfahrens der späte Insulinreaktion angesehen wird (LIR). Da das Tier mehr dysmetabolische wird, wird das Insulin AUC erhöhen, Kompensation reflektieren Insulinunempfindlichkeit zu erhöhen. Da die Tierübergänge zu manifester Diabetes, jedoch nimmt die AUC, die oft zunächst in der akuten Phase Insulin durch die AIR erfasst. </li></ol>

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Die Autoren sind mit einem Auftragsforschungsinstitut (Crown Bioscience) aktiv auf dem Gebiet der Stoffwechselerkrankungen assoziiert.

Die IVGTT bewertet die Fähigkeit von Glukose-stimulierte Freisetzung von Insulin durch eine einzige Dextrose Infusion basierend auf dem Körpergewicht 5, 12, 13. Aus dem Test, der Nüchternblutzucker und Insulinspiegel erreicht wird , und es ermöglicht eine Beurteilung der Fähigkeit des Tieres Release Insulin und gibt die erhöhte Glukosespiegel zu den Ausgangswerten. Dies bietet dem Benutzer Informationen das Tier als eine normale Glucose und Insulinspiegel gesunden Kontrolle wurde ein hyperinsulinemic dysmetab...

Die IVGTT ist eine bequeme funktionellen Assay, der routinemßig eingesetzt wird , um die β-Zellfunktion beim Menschen bei verschiedenen metabolischen Zuständen 5, 7 zu bestimmen. In Tiermodellen von T2D ist es gut als Werkzeug erkannt Tiere zu kennzeichnen , die von metabolischen Krankheitsprogression zeigen eine gesunde zu einem dysmetabolische hyperglykämischen Zustand 8, 9. Das nächstgelegene Tiermodell der T2D ist in nicht - menschlichen Primaten (NHP) gezeigt, von denen Rhesus und Cynomolgus - Makaken bemerkenswerte Beispiele sind. Diese Tiere entwickeln natürlich T2D mit den gleichen Risikofaktoren von Alter und Adipositas beitragen zu seiner Häufigkeit als beim Menschen 10. Darüber hinaus gibt es eine ähnliche Krankheitsprogression und Bauchspeicheldrüsen Pathologie Amyloidablagerungen zeigt wie die dysmetabolischen Krankheit 11 fortschreitet. Wir berichten hier über unsere Standard-Verfahren zur Herstellung eines IVGTT in NHPs als Teil unserer Kolonie Charakterisierung von metabolischen Status bei diesen Tieren durchführen. Diese Methode istleicht im Vergleich zu anderen, mehr Zeit auszuführen raubend und kostspielig Techniken 2. Die IVGTT ist nützlich für eine große Kolonie von Tieren schnell und häufig zu charakterisieren. Wenn in Betracht mit dem Niveau von glykiertem Hämoglobin (HbA1C) genommen, der Nahrung des Tieres und die Nahrungsaufnahme Geschichte, sowie deren Prozent Muskelmasse und Körperfett ist die IVGTT normalerweise ausreichend für die Charakterisierung von 6 eines Tieres metabolischen Status und Fortschritt zu manifester Diabetes 8. HbA1C stellt den durchschnittlichen glykämischen Ebene über die Lebensdauer der roten Blutkörperchen, eine zuverlässige Messung der Glucosespiegel im Laufe der letzten sechs Wochen bis drei Monate bietet. Wenn von der nüchternen Basis Blutprobe des IVGTT gemessen, stellt dieser Wert ein Fenster in die glykämische Kontrolle in den Monaten zwischen Prozeduren. Wenn das Tier von dysmetabolische transitioned hat seit ihrem letzten IVGTT, ein HbA1c-Wert viel höher als ihre vorherigen Wert diabetischen würde bedeuten,dass der Übergang bald nach ihrem letzten IVGTT begann, während ein HbA1c-Wert näher an ihren bisherigen Wert anzeigen würde, dass sie erst vor kurzem umgestellt haben. In der Regel in Rhesus - Makaken, Werte HbA1C von mehr als 6% anormal sind, und deuten auf eine schlechte Blutzuckerkontrolle 10, 23. Glykämischen Niveaus sollten im Rahmen des Verhaltens und der allgemeinen Gesundheit des Tieres als Ganzes interpretiert werden. Diabetische Makaken - wie Menschen - Ausstellung hyperphagia, Polydipsie und Polyurie. Gruppenhaltung der Tiere bietet erhebliche Herausforderungen für die Messung dieser Indikatoren und die individuelle Betreuung, die für dysmetabolische und diabetischen Affen. Wir empfehlen , das Gehäuse einzeln die Tiere , damit mehr persönliche Betreuung zur Verfügung gestellt werden können, und Verhaltensmarker für die Gesundheit des Affen leichter 8 überwacht werden. Darüber hinaus wird diabetischen Makaken Gewichtsverlust aufweisen, sowie eine erhöhte Lipidprofil (erhöhteCholesterin, Hypertriglyceridämie) und gestörten Mineralstoffwechsel in Serumchemie. Es ist wichtig , Marker der Leber- und Nierenfunktion in Serumchemie zu messen, wie Schädigung dieser Organe sind oft von Komplikationen Stoffwechselstörung / Diabetes Vorschieben und kann zusammen Determinanten von glykämischen, Lipid- und Mineral Unwuchten 9, 11, 18, 24 sein , . Bei Verwendung dieser Methode, erzeugt die historischen Werte aus mehreren, häufige Charakterisierungen über das Leben eines Affen von besonderem Wert sind. Wenn andere Verfahren, wie zum Beispiel eine Glucose-Clamp oder abgestuft Glukoseinfusion (GGI), werden benötigt, um vollständig ein Tiergesundheit beurteilen zu können, ist es häufig bei der anfänglichen Charakterisierung, wenn ihre Geschichte nicht verfügbar ist. Sobald jedoch eine Basislinie, wiederholt IVGTTs einer Frequenz alle drei Monate festgestellt worden sind normalerweise ausreichend, eines Tieres Fortschritt zu verfolgen. Dies ist besonders wichtig, wenn die Tiere in mehreren Studien über einen eingeschrieben sindKalenderjahr auf der Grundlage ihrer metabolischen Status. Während ihre Gesundheit seit Jahren zu einer Zeit relativ stabil bleiben, wenn die Stoffwechsellage eines Tieres verschlechtert, kann eine drastische Zunahme der Insulinresistenz und Glukoseintoleranz sehr schnell erfolgen. HbA1c-Werte ermöglichen eine gewisse Interpolation des Rückgangs oder Verbesserung des Gesundheitszustandes des Tieres zwischen Prozeduren Abstand von drei Monaten geplant. Aus diesem Grund ist dieses Verfahren ideal für Tiere verwendet in mehrfachen, longitudinalen Studien über den Verlauf ihrer natürlichen Lebensdauer charakterisieren.

<table><tbody><tr><td>Allegra X-15R Zentrifuge</td><td></td><td></td><td>Plasma: 4 &#176; C bei 3.000 U/min für 10 min</td></tr><tr><td>Sorvall ST16R Zentrifugenserum</td><td></td><td></td><td>: 22 &#176; C bei 3.000 U/min für 10 min</td></tr><tr><td>Thermo Scientific -86 &#176; C Gefrierschrank, Forma 88000 Serie</td><td></td><td>Modell: 88500A</td><td></td></tr><tr><td>Dextrose 50% (D50)</td><td>Webster</td><td>07-8008986</td><td>I.V. Glukoseinfusat</td></tr><tr><td>3 ml Luer-Lock-Spritze</td><td>Midwest Veterinary Suppy</td><td></td><td>serielle Blutabnahme</td></tr><tr><td>5 ml Luer-Lock-Spritze</td><td>Midwest Veterinary Suppy</td><td></td><td>heparinisierte Kochsalzlösung</td></tr><tr><td>Spülung 10 ml Luer-Lock-Spritze</td><td>Midwest Veterinary Suppy</td><td></td><td>Lieferung von I.V. D50</td></tr><tr><td>Mullschwämmen 2 x 2</td><td>Midwest Veterinary Suppy</td><td>366.23000.4</td><td>Gebraucht Trocken, mit 70% Alkohol und 2% Chlorohex Lösung</td></tr><tr><td>4 ml Serum-Separator-Röhrchen &nbsp;</td><td>Midwest Veterinary Supply</td><td>366.45000.4</td><td>Blutentnahmeröhrchen für Superchem Panel</td></tr><tr><td>K2EDTA, 2 ml</td><td>VWR</td><td>95057-239</td><td>Blutentnahmeröhrchen</td></tr><tr><td>Aprotinin, 100 mg</td><td>Sigma</td><td>A1153-100MG</td><td>Blutentnahmeröhrchen Proteasezusatz</td></tr><tr><td>22 G x 1" Katheter</td><td>Midwest Veterinary Suppy</td><td>193.75250.2</td><td>I.V. Katheter</td></tr><tr><td>Injektionsstopfen mit Kappe</td><td>Midwest Veterinary Suppy</td><td>001.11500.2</td><td>%50 Dextrose-Infusionsanschluss</td></tr><tr><td>Porus Tape, 1/2" x 10 yd</td><td>Midwest Veterinary Suppy</td><td>001.85000.2</td><td>halten die Haftung von Kathetern und Hep aufrecht. Schlösser</td></tr><tr><td>Chlorhexidin Lösung 2%</td><td>Midwest Veterinary Suppy</td><td>193.08855.3</td><td>Vorbereitung Katheterstelle</td></tr><tr><td>70% Ethanol</td><td>VWR</td><td>71001-654</td><td>Vorbereitung Katheterstelle</td></tr><tr><td>Tourniquet</td><td>Webster</td><td>07-8003432</td><td></td></tr><tr><td>3-Wege Absperrhahn</td><td>Midwest Veterinary Supply</td><td>366.28510.4</td><td>Hep. Schloss</td></tr><tr><td>37" Erweiterungsset</td><td>Webster</td><td>07-8454200</td><td>Hep. Lock</td></tr><tr><td>Exel 50-60cc LL Spritzen</td><td>Midwest Veterinary Suppy</td><td>001.12250.2</td><td>Heparinisierte Kochsalzlösung Spülung</td></tr><tr><td>250 ml Beutel 0,9% Kochsalzlösung</td><td>Webster</td><td>07-8365593</td><td>Spülung</td></tr><tr><td>1.000 U Heparin, 10 ml</td><td>Webster</td><td>07-883-4916</td><td></td></tr><tr><td>Ketamin (Ketaset) 100&nbsp; mg/ml</td><td>Fort Dodge</td> <td>(AV bestellt)</td><td></td></tr><tr><td>Precision Xtra Glukoseteststreifen 50/bx</td><td>Abbott (American Diabetes Wholesale)</td><td>9381599728K7</td><td>Test Baseline/T3 Blutzuckerspiegel</td></tr><tr><td>Masimo Rad 57</td><td>DRE</td><td>6052057V</td><td>Pulsoximeter</td></tr><tr><td>Pavia Rektalthermometer</td><td>Patterson</td><td>07-8391335</td><td></td></tr><tr><td>Precision Xtra Blutzuckermessgerät</td><td>Abbott</td><td>9381599728K7</td><td>Handheld-Blutzuckermessgerät</td></tr></tbody></table>

charakterisierung von metabolischen status in nicht-menschlichen primaten mit der intravenösen glukosetoleranztest

Characterization of Metabolic Status in Nonhuman Primates with the Intravenous Glucose Tolerance Test

Die intravenöse Glukosetoleranztest (IVGTT) spielt eine wichtige Rolle bei der Charakterisierung von Glukose-Homöostase. Zusammengenommen mit Serum biochemische Profile einschließlich der Blutglucosespiegel sowohl im fed und nüchternen Zustand, HbA1c, Insulinspiegel, der klinischen Geschichte der Ernährung, der Körperzusammensetzung und des Körpergewichts-Status, eine Beurteilung normaler und abnormaler glykämische Kontrolle vorgenommen werden können . Interpretation eines IVGTT durch Messung von Veränderungen in Glukose- und Insulinspiegel über die Zeit in Bezug auf die Dextrose Herausforderung getan. Kritische Komponenten berücksichtigt werden , sind: peak Glucose- und Insulinspiegel in Bezug auf T0 (Ende der Glukoseinfusion) erreicht hat , die Glucose - Clearance - Rate K aus der Steigung abgeleitet von schnellen Glukose - Clearance in den ersten 20 min (T1 bis T20), der Zeit , zu Glukose Basis zurückzukehren, und die Fläche unter der Kurve (AUC). Diese werden IVGTT Maßnahmen charakteristische Veränderungen wie Glukose - Homöostase bewegt sich von einem gesunden t zeigenoa erkrankten metabolischen Zustand 5. Hier werden wir die Charakterisierung von nicht-menschlichen Primaten (Rhesus und Cynomolgus-Makaken) beschreiben, die die relevantesten Tiermodell der Typ-II-Diabetes (T2D) beim Menschen und die IVGTT und klinische Profile dieser Tiere von einem mageren gesund, zu fettleibig dysmetabolische sind, und T2D Zustand 8, 10, 11.

Die Ergebnisse sind in Abbildung 1 dargestellt sind demonstrative typischer Glukose und Insulin - Kurven aus reifen, gesunden und diabetischen Cynomolgus - Makaken im Laufe von 30 min IVGTT. Daten von gesunden und fortgeschrittener diabetischer Affen gezeigt, um die offensichtlichen Unterschiede zwischen den Tieren aus den beiden äußersten Enden des Bereichs der metabolischen Charakterisierung zu kontrastieren. Dieses IVGTT Protokoll wurde in Rhesus-Makaken mit ähnlichen...

Das Ziel dieses Protokolls ist ein Standardverfahren zu präsentieren intravenösen Glukosetoleranztests (IVGTTs) zur Durchführung der glykämischen Kontrolle bei nicht-menschlichen Primaten zu bewerten und zu beurteilen, ihre metabolischen Status von gesunden zu dysmetabolische.

Charakterisierung von metabolischen Status in nicht-menschlichen Primaten mit der intravenösen Glukosetoleranztest

The intravenous glucose tolerance test (IVGTT) plays a key role in the characterization of glucose homeostasis. When taken together with serum biochemical ...

Das übergeordnete Ziel dieses intravenösen Glukosetoleranztests (IVGTT) besteht darin, den Verlauf einer Stoffwechselerkrankung bei Makaken von einem gesunden zu einem dismetabolischen, hyperglykämischen Zustand zu charakterisieren. Diese Methode kann verwendet werden, um Kohorten von Versuchstieren zu bilden, die nach ihrem Stoffwechselstatus stratifiziert sind, um die therapeutische Wirksamkeit von Behandlungen bei Insulinresistenz bei Diabetes in diätetischen oder pharmakologischen Untersuchungen zu erforschen. Der Hauptvorteil dieser Technik liegt darin, dass sie im Vergleich zu anderen zeitaufwändigeren und kostspieligeren Methoden einfach durchzuführen ist.14 bis 18 Stunden vor Beginn des Verfahrens wird das Futter aus dem Käfig des Makaken entfernt, um postprandiale Schwankungen der Blutzuckerwerte zu vermeiden. Am nächsten Morgen wird das sedierte Tier gewogen. Anschließend wird das Primat in Seitenlage auf einen beheizten Behandlungstisch gelegt.Alle 15 bis 20 Minuten verwenden Sie ein Pulsoximeter, um die Herzfrequenz und die periphere kapillare Sauerstoffsättigung zu messen. Verwenden Sie eine Stoppuhr, um die Atemfrequenz zu bestimmen, und ein Thermometer, um die Temper

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Die hyperinsulinämische-euglykämische Clamp-oder Insulin-Clamp, ist der Goldstandard für die Beurteilung der Wirkung von...

Hyperinsulinämische-euglykämische Schellen in dem Bewusstsein, Unrestrained Mäuse

Dieses Video zeigt, wie man einen oralen Glukosetoleranztest an einer Labormaus durchführt.

Oraler Glukosetoleranztest (OGTT): Messung des Glukosestoffwechsels bei Mäusen

Der aktuelle Artikel beschreibt die Erzeugung und metabolische Charakterisierung von fettreichen Diät gefütterten Mäusen als Modell für Diät-induzierten Insulinresistenz und Fettleibigkeit. Freuen Sie sich auf weitere detaillierte Protokolle, um die oralen Glukose-Toleranz-Test und die Insulin-Toleranz-Test, Ganzkörper-Veränderungen der Glukose Stoffwechsel in VivoÜberwachung durchführen.

Studie von In Vivo Metabolismus von Glukose in fettreichen Diät gefüttert Mäuse mit oralen Glukosetoleranztest (OGTT) und Insulin-Toleranz-Test (ITT)

Die Inzidenz der Adipositas steigt und erhöht das Risiko von chronischen Lungenerkrankungen. Die zugrunde liegenden Mechanismen und Präventionsstrategien, wohldefinierte Tier sind Modelle erforderlich. Hier bieten wir drei Methoden (Glukose-Toleranz-Test, Body-Plethysmographie und Lunge Fixierung), um die Wirkung der Fettleibigkeit auf die pulmonale Ergebnisse bei Mäusen untersuchen.

Intraperitoneale Glucose-Toleranz-Test, Messung der Lungenfunktion und Fixierung der Lunge, um die Auswirkungen von Übergewicht und beeinträchtigter Stoffwechsel auf pulmonale Ergebnisse studieren

Dieses Protokoll beschreibt die Verwendung einer Zusammensetzung Körperanalyse und metabolische Tier Überwachungssystem Körperzusammensetzung und metabolischen Parametern bei Mäusen zu charakterisieren. Eine Adipositas-Modell induziert durch fettreiche Fütterung dient als Beispiel für die Anwendung dieser Techniken.

Körperzusammensetzung und festsetzende Stoffwechselanalyse bei hohen Fett Fed Mäusen

Der aktuelle Artikel beschreibt ein detailliertes Protokoll für isokalorisches 2:1 intermittierendes Fasten zum Schutz und zur Behandlung vor Fettleibigkeit und gestörtem Glukosestoffwechsel bei Wildtyp- und Ob-/Ob-Mäusen.

Bewertung der metabolischen Wirkungen des isokalorischen 2:1 Intermittierendes Fasten bei Mäusen

Dieses Protokoll demonstriert die genaue und reproduzierbare Messung des Sauerstoffverbrauchs in nichtmenschlichen Pankreasinseln. Die Beladetechniken der Isleten und die Beschichtung der Mikroplatte bieten einen Rahmen für eine effiziente Messung der Atmung in anderen Arten von kultivierten Sphäroiden.

Analyse des Sauerstoffverbrauchs der nichtmenschlichen Primaten-Pankreas-Islet

Diese Studie beschreibt die direkte Messung der hepatischen Glukoseproduktion in einem Mausmodell mit polyzystischem Ovarialsyndrom unter Verwendung eines stabilen Isotopenglukose-Tracers über die Schwanzvene sowohl im nüchternen als auch im glukosereichen Zustand im Tandem.

Evaluierung der hepatischen Glukoseproduktion in einem Mausmodell mit polyzystischem Ovarialsyndrom

In dieser Arbeit stellen wir ein Protokoll vor, um die physiologische Bedeutung des Einflusses der Aktivität des braunen Fettgewebes (BAT) auf den menschlichen Stoffwechsel zu quantifizieren. Dies wird durch die Kombination von Kohlenhydratbeladung und indirekter Kalorimetrie mit Messungen supraklavikulärer Temperaturänderungen erreicht. Dieser neuartige Ansatz kann dazu beitragen, ein pharmakologisches Ziel für die BAT-Thermogenese beim Menschen zu entwickeln.

Verwendung einer Kombination aus indirekter Kalorimetrie, Infrarot-Thermografie und Blutzuckerspiegeln zur Messung der Thermogenese von braunem Fettgewebe beim Menschen

Ein Test-Batterie (IMAP) für die Durchführung einer eingehenden Beurteilung der auditiven und kognitiven Fähigkeiten einen Beitrag zu Hörverständnis beschrieben. Es ist schnell zu verwalten, kindgerecht und frei von sprachlichen verwechselt. Stimulus-Generation und Protokoll-Management erfolgt über eine Software-Plattform (IGV-STAR), um reproduzierbare Verfahren zu gewährleisten gesteuert.

Making Sense of Listening: Der IMAP-Test Battery

Erfahren Sie die Durchführung des intravenösen Glukosetoleranztests bei Makaken zur Charakterisierung des metabolischen Status. Diese Methode ermöglicht die Erforschung von Insulinresistenz und Diabetes.

Charakterisierung von metabolischen Status in nicht-menschlichen Primaten mit der intravenösen Glukosetoleranztest

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