Name: Ein All-Laser Endothelial Transplant (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-07-06T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 59 s
Description: Erfahren Sie die minimalinvasive All-Laser-Endotheltransplantation mit Femtosekundenlaser zur präzisen Spendergewebeparation. Diese Methode reduziert das Risiko einer Lappenverlagerung und verbessert die Heilung.

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Die Autoren möchten FORTE Projekt, das von der Region Toskana (POR Creo FESR 2007-2013 Bando Unico R &amp; S 2012) finanziert werden, die EU FP7 ECHORD ++ Experiment LA-Rosen, die teilweise die Forschungsaktivitäten unterstützt und das RP7 BiophotonicPlus Projekt &quot;LITE&quot; gewährt danke von der Region Toskana.

Die Studie wurde prospektiv mit der Genehmigung der Ethikkommission des Krankenhauses durchgeführt; informierte Zustimmung erhalten. Die Studie wurde im Festhalten an den Grundsätzen der Deklaration von Helsinki. 1. Donor Endothel Vorbereitung <ol><li> Verwenden Sie eine Spenderhornhaut wurden von den lokalen Hautbank bei Raumtemperatur hergestellt. </li><li> Im Operationssaal, ziehen Sie die Spenderhornhaut von der Liefer Behälter und abheben die Lösung für Gewebekonservierung und Ernährung, die für die Hornhauttransport verwendet wird. </li><li> Setzen Sie den Spender-Hornhaut Sklerarand über eine künstliche Vorderkammer, in die eine Flüssigkeit fließen kann und eine variable Druck; decken die Hornhaut mit der Gewebehaltekopf. </li><li> Verbinden den künstlichen Vorderkammer (AAC) durch ein 3-Wege-Verbinder, um eine Spritze mit der Kornea Konservierung und Ernährung Flüssigkeit gefüllt. </li><li> Verwenden Sie den Kompressionsring, um den Halter sicher an seinem Platz zu halten. </li><li> Verwenden Sie die syringe verbunden ist, um die AAC, um den Druck aufrecht zu erhalten intracameral: die Vorderkammer mit der Gewebekonservierungslösung füllen bis zum Erreichen der optimalen Druck (siehe 1.7). Schließen Sie den Stecker. </li><li> Testen der Druck innerhalb der vorderen Kammer mit einem Finger. Ändern Sie den inneren Druck bis zum Erreichen des rechten Innendruck (im Bereich von 60 bis 70 mmHg). Schließen Sie das 3-Wege-Anschluss. </li><li> Messen Sie die Dicke der Spenderhornhaut mit Optical Coherence Thomography (OCT). Pflegen Sie die Vorderkammer mit dieser Hornhaut in einer festen Position vor den Geräteoptik und dann eine volle Dicke-OCT Erwerb. </li></ol> 2. Femtosekundenlaser Herstellung von Donor Endothel <ol><li> Zuführen Applanation der Spenderhornhaut unter dem Femtosekundenlaser-Vorrichtung. Verwenden Sie die femtosec Laser die Spendergewebe mit drei nachfolgenden Schnitte geschnitten: hintere Seite geschnitten, voller Lamellen und vorderen Seitenschnitt. Stellen Sie die folgenden Parameter für die drei Schnitte.<ol><li> Für das Gesamtlamellenschnitt (Rastermuster, beginnen), stellen Sie die Schnitttiefe entspricht der dünnsten Stelle der Spenderhornhaut (gemessen mit OCT, wie in 1.8 beschrieben), immer Subtraktion 95 &amp; mgr; m. Stellen Sie die Pulsenergie im Bereich von 0,8 bis 0,9 &amp; mgr; J (je nach Arbeitstiefe). Stellen Sie die Durchmesser bis 8,7 mm. Stellen Sie die tangential Punktabstand bis 2 um. Stellen Sie den Radialpunktabstand bis 2 um. </li><li> Für die vorderen Seitenschnitt, stellen Sie den hinteren Tiefe 30 &amp; mgr; m tiefer als die vorherige vollständige Lamellen Schnitt. Stellen Sie die Pulsenergie bis 2,10 &amp; mgr; J; der Durchmesser auf 8,6 mm; die Fleckseparation bis 3 um, während die Schichttrennung bis 3 um. </li><li> Für die hinteren Seitenschnitt, suchen Sie die vordere Tiefe der hinteren Seite geschnitten 30 &amp; mgr; m nach vorn als die volle Lamellen Schnitt. Stellen Sie die hintere Tiefe bis 900 um. Stellen Sie die Pulsenergie bis 2,10 &amp; mgr; J; der Durchmesser auf 8,3 mm; der Spot Trennung bis 2 um; die Schichttrennung bis 2 um. </li></ol></li&gt; </ol> 3. Empfänger Eye Vorbereitung <ol><li> Bereiten Sie den Patienten für die Chirurgie. Machen Sie einen 4,00 mm Hornhautschnitt um 12 Uhr mit einem 4,0 mm vorkalibriert Klinge. Machen Sie einen Limbus Parazentese mit einem 1,2 mm vorkalibriert Klinge, um 2 Uhr platziert. Stellen Sie einen anderen Limbus Parazentese bei 6 Uhr mit einem 30 ° stab Messer. </li><li> Legen Sie eine vordere Kammer Betreuer in der vorderen Augenkammer des Patienten, durch die 2.00 Parazentese. </li><li> Führen Sie einen 8,2 mm Durchmesser Kreis descemetorexis mit der dedizierten Haken. </li><li> Isolieren Sie die Descemet-Membran und Endothel von der hinteren Stroma und entfernen Sie das Gewebe mit einem Descemet Haken. </li></ol> 4. Chromophor Vorbereitung <ol><li> Setzen Sie 1 mg Indocyaningrün Pulver in einem 1,5 ml Mikrozentrifugenröhrchen. </li><li> Hinzuzufügen 9 mg steriles Wasser (der ICG-Wasserlösung ist 10% w / w). </li><li> Manuell mischen die ICG-Pulver und das Wasser mit einem Metall Rührer. </li&gt; </ol> 5. Die Färbung der Donor Endothel <ol><li> Setzen Sie den Spender Endothel auf die breiteren Teil eines Busin-Injektor, mit der Innenseite in Kontakt mit der Einspritzfläche. </li><li> Flecken auf der Innenseite der Spender Endothel mit der Chromophor-Lösung in ihrem Randbereich, mit einem Spatel. Die richtig gefärbten Gewebe eine homogene grünliche Farbe. 3 min warten, bevor Sie Schritt 5.3. </li><li> Ziehen Sie den Geber Endothel am vorderen Teil des Busin-Injektor, gerollt. </li></ol> 6. Einsetzen der Donor Endothel <ol><li> Fassen Sie und legen Sie die gefalteten Spender Endothel mit einer atraumatischen koaxialen Zange für endothelial Linse. </li><li> Entfernen Sie die Vorderkammer Betreuer. </li><li> Naht der Hornhautschnitt und die Punktion (in Schritt 3.1 durchgeführt) mit einem Nylon 10,0 einzigen Stich. </li><li> Spritzen Sie eine Luftblase, um die Spendergewebe entfalten und gegen den Empfänger Hornhaut drücken. Die Luftblase muss compdie Vorderkammerraum letely zu füllen. </li></ol> 7. Laser Welding <ol><li> Platzieren des Spenders Linse in der Mitte des Empfängerhornhaut, von innen mit einem Haken oder einem Transport der Luftblase von der Außenseite der Hornhaut mit einem Spatel. </li><li> Mit einem Dioden-Laser mit Emission bei 810 nm, mit einem 300 &amp; mgr; m Kerndurchmesser sterile Glasfaser ausgestattet, mit 0,22 als die numerische Apertur (NA). </li><li> Halten Sie die Faserspitze außerhalb des Augapfels, und liefern die Laserlicht in Richtung des gefärbten Endothels, durch die transparente Hornhautgewebe. Die Faserspitze ist in berührungslose Konfiguration. </li><li> Verwenden Sie die folgenden Einstellungen für den Laser: single spot Emissionsmodus, 70-80 ms Impulsdauer, 35-40 mJ pro Puls. He-Ne-Zielstrahl auf. </li><li> Liefern einzelnen Laserspots auf der gefärbten Peripherie des Spenders Endothel. Liefern die Punkte nacheinander: der letzte Aspekt ist ein Ring von Punkten in dem Umfang der Geber Linse. Der Abstand zwischen zwei adjaCent-Spots Zentrum ist die Doppel eines Punktdurchmesser. </li><li> Tragen Sie eine Kontaktlinse auf dem Patientenauge, zusammen mit 0,3% Tobramycin und 0,1% Dexamethason ophthalmische Suspension. </li></ol>

<ol><li>Tan, D. T., Dart, J. K., Holland, E. J., Kinoshita, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Corneal+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Corneal transplantation.</a> Lancet. 379 (9827), 1749-1761 (2012).</li>
<li>El Husseiny, M. A., Manero, F., Gris, O., Elies, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Historical+Review+and+Update+of+Surgical+Treatment+for+Corneal+Endothelial+Diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Ophthalmol+Ther%22%5BJournal%5D)">Historical Review and Update of Surgical Treatment for Corneal Endothelial Diseases.</a> Ophthalmol Ther. , (2014).</li>
<li>Rossi, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+tissue+welding+in+ophthalmic+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biophotonics%22%5BJournal%5D)">Laser tissue welding in ophthalmic surgery.</a> J Biophotonics. 1 (4), 331-342 (2008).</li>
<li>Pini, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combining+femtosecond+laser+ablation+and+diode+laser+welding+in+lamellar+and+endothelial+corneal+transplants%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+SPIE+Ophthalmic+Technologies+XVIII%22%5BJournal%5D)">Combining femtosecond laser ablation and diode laser welding in lamellar and endothelial corneal transplants.</a> Proc. SPIE Ophthalmic Technologies XVIII. 6 (844), 684411-1-684411-7 (2008).</li>
<li>Rossi, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((All-laser%27+endothelial+corneal+transplant+in+human+patients%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+SPIE+Ophthalmic+Technologies+XXII%22%5BJournal%5D)">All-laser' endothelial corneal transplant in human patients.</a> Proc. SPIE Ophthalmic Technologies XXII. 8209, 82091O-1-82091O-3 (2012).</li>
<li>Rossi, F., Pini, R., Menabuoni, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+and+model+analysis+on+the+temperature+dynamics+during+diode+laser+welding+of+the+cornea%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Opt%22%5BJournal%5D)">Experimental and model analysis on the temperature dynamics during diode laser welding of the cornea.</a> J Biomed Opt. 12 (1), 014031-1-014031-7 (2007).</li>
<li>Menabuoni, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser-assisted+corneal+welding+in+cataract+surgery%3A+retrospective+study%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cataract+Refract+Surg%22%5BJournal%5D)">Laser-assisted corneal welding in cataract surgery: retrospective study.</a> J Cataract Refract Surg. 33 (9), 1608-1612 (2007).</li>
<li>Buzzonetti, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+Welding+in+Penetrating+Keratoplasty+and+Cataract+Surgery+in+Pediatric+Patients.+Early+Results%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cataract+Refract+Surg%22%5BJournal%5D)">Laser Welding in Penetrating Keratoplasty and Cataract Surgery in Pediatric Patients. Early Results.</a> J Cataract Refract Surg. 39 (12), 1829-1834 (2013).</li>
<li>Menabuoni, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+%27anvil%27+profile+in+femtosecond+laser-assistedpenetrating+keratoplasty%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">The 'anvil' profile in femtosecond laser-assistedpenetrating keratoplasty.</a> Acta Ophthalmol. 91 (6), e494-e495 (2013).</li>
<li>Canovetti, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser-assisted+penetrating+keratoplasty%3A+one+year%E2%80%99s+results+in+patients%2C+using+a+laser-welded+%E2%80%9Canvil%E2%80%9D-profiled+graft%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Laser-assisted penetrating keratoplasty: one year’s results in patients, using a laser-welded “anvil”-profiled graft.</a> Am J Ophthalmol. 158 (4), 664-670 (2014).</li>
</ol>

Die Autoren erklären, dass sie keine konkurrierenden finanziellen Interessen haben.

Das &quot;all-Laser&quot; endotheliale Transplantat ist eine ursprüngliche Ansatz zur minimal-invasiven Hornhauttransplantation. Alle innerhalb des Protokolls beschriebenen Verfahren wurden im Operationssaal durchgeführt wird, unter Berücksichtigung der hygienischen und Sterilisationsverfahren, das gemeinsame Praktiken bei Operationen, wie zum Beispiel den Einsatz von sterilisierten Handschuhe, Kittel, Maske und Kappe sind. Der ICG-Lösung wurde in den Operationsraum kurz vor seiner Anwendung...

In dieser Arbeit stellen wir eine originelle Herangehensweise an endothelialen Keratoplastik, die auf der Verwendung eines Femtosekundenlasers zur Spendergewebe und eine Nah-Infrarot-Dioden-Laser, um es auf den Empfänger Bett schweißen vorzubereiten. Intraoperative Messung der Spenderhornhaut erforderlich ist, um die Spendergewebe Abmessungen korrekt zu entwerfen. Endothelialen Keratoplastik hat sich in den letzten Jahren vorgeschlagen worden, Keratoplastik bei der Behandlung von Endothelzellen Krankheit 1,2 ersetzen. Der Hauptvorteil dieser Technik ist eine schnellere visuelle Rückgewinnung, in Bezug auf Keratoplastik, reduziert Anästhesie während der Operation, einem verringerten Risiko einer Transplantatabstoßung und die Erhaltung der Integrität Auge. Der Hauptrisikofaktor ist die postoperative Spender Linse Luxation. Die Standardtechnik wird durch Einsetzen der Spender Endothel in seine endgültige Position, wo es durch die Injektion von einer Luftblase aufrechterhalten wird durchgeführt: keine Nähte aufgrund der mechanischen, biophysikalischen und Dimensions charaban verwendetcteristics des Endothels. Darüber hinaus kann die Sehschärfe Erholung vor allem wegen einer Nichtübereinstimmung zwischen Spender und Empfänger Gewebe aufgrund eines dicken Gewebe transplantiert begrenzt. Hier präsentieren wir eine Vorgehensweise bei der Durchführung von endothelialen Keratoplastik, die diese Hauptprobleme überwinden kann. Der Spender Endothel können in ihrer endgültigen Position durch die Verwendung der Laserschweißtechnik gewährleistet sein. Dies ist eine kontrollierte und lokalisierte photothermische Verfahren: Sie kann an der Donor / Empfängerschnittstelle induziert wird. Es hat sich in den letzten zehn Jahren untersucht und in Keratoplastik und in der Transplantation von Endothel 3-5 vorgeschlagen. Das Licht im nahen Infrarot (Wellenlänge: 810 nm) von einem niedrigen Leistungs Diodenlaser emittiert wird, in Richtung des biologischen Gewebes an der Wundstelle zugeführt. Die Hornhaut ist natürlich durchlässig für diese Wellenlänge: um dieses Gewebe zu machen, um das Laserlicht zu absorbieren, ist es notwendig, sie mit einem Chromophor zu färben. Die vorgeschlagene Farbstoff ein steriles Sättigungd Wasserlösung von Indocyaningrün (ICG). Wir zeigten, dass, wenn das Hornhautgewebe in geeigneter Weise auf diesem ICG Herstellung gefärbt, zeigt er ein Absorptionsmaximum bei 810 nm. 6 Darüber hinaus wird ICG weit verbreitet in der klinischen Diagnostik eingesetzt und seine Sicherheit wurde bereits beim Menschen nachgewiesen. Die gefärbten Kornea absorbiert die Diodenlaserlichtenergie und der Haupt resultierende Effekt ist eine kontrollierte Temperaturanstieg an der Schweißstelle. Keine thermische Effekte sind in den ungefärbten Geweben induziert. Die Temperatursteigerung bewirkt reversible thermische Denaturierung in stromalen Kollagen, mit einer sofortigen closuring der Wundwände beim Abkühlen. Das Laserschweißen Effekt wurde zum einen in der Kataraktchirurgie 7,8 und Keratoplastik 9,10 demonstriert. Eine optimierte Ansatz, den wir in diesem Papier präsentiert wurde für den Einsatz in endothelialen Keratoplastik untersucht. In der vorgeschlagenen Operation einzelnen Laserspots (Dauer Zehn msec) are an das Gewebe geliefert wird, was zu einer photothermischen Effekt innerhalb des Flecks Dimension (einige hundert &amp; mgr; m im Durchmesser) lokalisiert: die induzierte Effekt ist ein Festlaserschweißen, die aus einer Lichtkoagulation des Kollagens in der Donor / Host-Schnittstelle beschränkt. Das Ergebnis der Kollagen einer Denaturierung an der Schweißstelle ist eine starke Haftung zwischen dem Donor- und dem Wirtsgewebe, wodurch eine Nahteffekt, unmöglich, mit Standardverfahren (Stiche) zu erhalten. Das Gewebe wieder seine natürliche Optik in einer kurzen Follow-up (1 Monat) und die Haftung zwischen Donor / Wirtsgewebe wird durch die Schweiß in einem sehr frühen Stadium des Heilungsphase vorgesehen verbessert. Um die anderen Hauptrisiko der endothelialen Keratoplastik, also die Transplantation eines dicken Spendergewebe zu vermeiden, wird intra die optische Kohärenztomographie (OCT) verwendet: ein kommerzielles Gerät misst die Dicke der Spenderhornhaut, so dass eine korrekte Schnittprofil kann mit gestaltet sein diefemtosec Laser. Die vorgeschlagene &quot;all-Laser&quot; endothelial Transplantation scheint also, um die klinischen Ergebnisse dieser minimal-invasiven Chirurgie zu verbessern.

<table><tbody><tr><td>Indocyanin Green</td><td>Pulsion Medical Systems, Deutschland</td><td>ICG-PULSION (http://www.pulsion.com/international-english/perfusion/icg-pulsion/)</td><td>Alternatives Produkt: IC-GREEN, Akorn&nbsp; Inc., Lake Forest, Illinois- US (http://www.icginjection.com/)</td></tr><tr><td>Femtosekunden-Laser&nbsp;</td><td>Abbott Medical Optics,&nbsp; Abbott Laboratories Inc. Abbott Park, Illinois, USA</td><td>iFS150 (http://www.abbottmedicaloptics.com/products/refractive/ilasik/ifs-advanced-femtosecond-laser)</td><td></td></tr><tr><td>Optische Kohärenztomographie (OCT)</td><td>Carl-Zeiss Meditec, Dublin, Kalifornien- USA (http://www.zeiss.com/meditec/en_de/home.html)</td><td>Visante</td><td></td></tr><tr><td>Diodenlaser</td><td>E.l.En. Gruppe s.pa., Calenzano-FI, Italien (http://www.elengroup.com/en/divisions/medical)</td><td>Mod. WELD 800</td><td></td></tr><tr><td>Artificial Fronterior Chamber</td><td>CORONET, Produkte für Hornhauttransplantate. Network Medical Products Ltd. Coronet House, Kearsley Road, Ripon, North Yorkshire, HG4 2SG, UK</td><td>Künstliche Vorderkammer (A.A.C.) mit großen und kleinen gewebeerhaltenden Köpfen. Code 51-935 (http://www.networkmedical.co.uk/ophthalmic_artificial_ anterior_chamber.html)</td><td></td></tr><tr><td>Lösung zur Gewebekonservierung und Ernährung&nbsp; &nbsp;</td><td>al. CHI.MI.A. Srl, Viale Austria 14, 35020 - Ponte S. Nicol&ograve; - PD &nbsp; ITALIEN</td><td>Carry-C Medium für Hornhautstörungen und Transport bei Raumtemperatur - 12 x 50 ml (http://www.alchimiasrl.com/en/organ-culture-at-31&deg;-c-eb/carry-c-eb)</td><td></td></tr></tbody></table>

ein &quot;all-laser&quot; endothelial transplant

An &#8220;All-laser&#8221; Endothelial Transplant

Die "volllaser"-assistierte endotheliale Keratoplastik ist ein Verfahren, das mit einem Femtosekundenlaser durchgeführt wird, der verwendet wird, um das Spendergewebe in einer bestimmten Tiefe zu schneiden, und einem Nahinfrarot-Diodenlaser, um das Hornhautgewebe zu schweißen. Die vorgeschlagene Technik ermöglicht es, die drei Hauptziele der endothelialen Keratoplastik zu erreichen: eine präzise Kontrolle der Dicke des Spendergewebes; Das einfache Einsetzen in das Empfängerbett und das Risiko einer Luxation der Spenderlentikel ist geringer. Die Dicke der Spenderhornhaut wird im Operationssaal mit der optischen Kohärenztomographie (OCT) gemessen, um die Abmessungen des Spendergewebes korrekt zu bestimmen. Mit einem Femtosekundenlaser wird die Spenderhornhaut geschnitten. Das Empfängerauge wird durch manuelles Abstreifen der Deszemetikmembran präpariert. Das Donorendothel wird in einen Busin-Injektor eingeführt, die periphere Innenseite wird mit einem geeigneten Chromophor (einer wässrigen Lösung von Indocyaningrün) gefärbt und dann in die vordere Kammer gezogen. Das transplantierte Gewebe wird an der endgültigen und richtigen Stelle platziert und dann wird das Diodenlaserschweißen von außerhalb des Augapfels induziert. Der Eingriff wurde an mehr als 15 Patienten durchgeführt, was eine Verbesserung der Operationsleistung mit einer guten Wiederherstellung der Sehschärfe und einem reduzierten Ereignis der Spenderlentikelluxation zeigt.

Die &quot;Alles-Laser&quot; chirurgische Verfahren wird vorgeschlagen, um minimal-invasive Hornhauttransplantation durchzuführen. Das Verfahren ist einfach durchzuführen (siehe Abbildung 1): in Bezug auf eine Standard endothelial Transplantation nur die Schritte der Messung der Hornhautdicke, Anfärben des Spendergewebes und zum Liefern des Laserlichts werden zugegeben. Die erzielten Vorteile weitestgehend kompensieren eine erhöhte Operationsdauer von einigen min. Die Anwendung von intraoperativen Oktobe...

Bei der Endotheltransplantation wird ein reines Laserverfahren vorgeschlagen. Die Operationstechnik basiert auf der Verwendung eines Femtosekundenlasers zur Aufbereitung des Spendergewebes. Anschließend wird die Laserschweißtechnik verwendet, um das Donorenendothel in der richtigen Position zu fixieren.

Ein &quot;All-Laser&quot; Endothelial Transplant

The &#8220;all laser&#8221; assisted endothelial keratoplasty is a procedure that is performed with a femtosecond laser used to cut the donor tissue at an ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens ist die Durchführung einer minimal-invasiven Laseroperation zur Transplantation dünner Hornhautententen. Dies wird erreicht, indem zuerst die Spenderhornhaut vermessen und mit einem Femto-Zweitlaser geschnitten wird. Als nächstes werden Schnitte im Hornhautbett des Empfängers vorgenommen und die Desme-Membran und das Endothel entfernt, um das Spendergewebe vorzubereiten.Dann wird der Spenderlappen gefärbt und in seine endgültige Position eingeführt. Zum Schluss wird der geliehene Becher des Spenders mit dem Laser an die Hornhaut des Empfängers geschweißt. Letztendlich ist die Adhäsion des Spenderendothels einen Tag nach der Operation zu sehen.Die Hauptverbesserung dieser Technik gegenüber der bestehenden Methode besteht darin, dass beim Laserschwingen des Lappens das Risiko einer Luxation nach der Operation reduziert wird. Die Auswirkungen dieser Technik erstrecken sich auf die Chirurgie der Hornhauttransplantation, da die Anwendung des Laserschweißverfahrens auch in der Neurochirurgie und HNO untersucht wurde. Im Allgemeinen werden Menschen, die mit dieser Methode noch nicht vertraut sind, keine Schwierigkeiten haben, da sie sehr einfach durchzuführen ist.Um im Operationssaal zu beginnen, nehmen Sie die Spenderhornhaut bei Raumtemperatur aus dem Entbindungsbehälter und stellen Sie die Hornhauttransportlösung beiseite. Verbinden Sie die künstliche Vorderkammer oder ein C über einen Drei-Wege-Konnektor mit einer Spritze, die mit Hornhautkonservierung und -nahrung gefüllt ist. Flüssigkeit. Platzieren Sie den Spenderhornhaut-Sklera-Rand über einer künstlichen Kammer, in die eine Flüssigkeit fließen und einen variablen Druck erzeugen kann.Bedecken Sie dann mit dem gewebehaltenden Kopf die Hornhaut. Verwenden Sie dann einen Kompressionsring, um die Halterung sicher an Ort und Stelle zu halten. Wenn die Spritze mit dem A A C verbunden ist, verwenden Sie anschließend eine Gewebekonservierungslösung, um die Vorderkammer zu füllen, bis der optimale Druck erreicht ist, um den intrakameralen Druck aufrechtzuerhalten.Schließen Sie dann den Drei-Wege-Stecker mit einem Finger. Testen Sie den Druck in der Vorderkammer und stellen Sie ihn so lange ein, bis der richtige Innendruck erreicht ist. Um die Dicke der Spenderhornhaut zu messen, halten Sie die Vorderkammer mit einer Hornhaut in einer festen Position und mit optischer Kohärenztomographie oder OCT.Führen Sie eine OCT-Messung in voller Dicke durch, um das Spendergewebe zu schneiden Beginnen Sie nach der App-Erklärung mit einem vollständigen Lam oder Schnitt, indem Sie die Schnitttiefe einstellen, die der dünnsten Stelle der Spenderhornhaut minus 95 Mikrometer entspricht. Stellen Sie die Pulsenergie im Bereich von 0,8 bis 0,9 Mikrojoule ein. Stellen Sie den Durchmesser auf 8,7 Millimeter ein.Stellen Sie den tangentialen Punktabstand auf zwei Mikrometer und den radialen Punktabstand auf zwei Mikrometer ein, wo die vordere Seite schneidet. Stellen Sie die hintere Tiefe 30 Mikrometer tiefer ein als die vorherige volle Lamirie. Schneiden. Stellen Sie die Pulsenergie auf 2,10 Mikrojoule ein, den Durchmesser auf 8,6 Millimeter für die hintere Seite. Schneiden.Lokalisieren Sie die vordere Tiefe der hinteren Seite und schneiden Sie 30 Mikrometer nach vorne bis zum vollen Lam oder Schnitt. Stellen Sie die hintere Tiefe auf 900 Mikrometer ein. Stellen Sie die Pulsenergie auf 2,10 Mikrojoule ein.Der Durchmesser auf 8,3 Millimeter, der Punktabstand auf zwei Mikrometer und der Lagenabstand auf zwei Mikrometer. Führen Sie dann den Schnitt durch, um den Patienten mit einer 1,2 Millimeter dicken, vorkalibrierten Klinge auf die Operation vorzubereiten. Machen Sie eine limbale Parazentese bei zwei Uhr durch die Zwei-Uhr-Parazentese.Setzen Sie einen Vorderkammerhalter in die Vorderkammer des Patienten ein. Dann mit einem 30-Grad-Stichmesser. Führen Sie eine zweite limbale Parazentese bei sechs Uhr durch.Verwenden Sie eine 2,0 Millimeter große, vorkalibrierte Klinge, um einen 2,00 Hornhautschnitt bei 12 Uhr vorzunehmen. Führen Sie dann mit einem speziellen Haken eine kreisförmige Desme oder Achse mit einem Durchmesser von 8,2 Millimetern aus. Entfernen Sie die Desme-Membran und das Endothel vom hinteren Stroma und verwenden Sie einen Desme-Haken, um das Gewebe zu entfernen.Um das Chromophor für die Färbung des Spendergewebes vorzubereiten, geben Sie ein Milligramm Indocyaningrün oder ICG-Pulver in ein 1,5-Milliliter-Mikrozentrifugenröhrchen. Fügen Sie dann neun Milligramm steriles Wasser mit einem Metallrührer hinzu. Mischen Sie die ICG-Lösung manuell, um das Pulver zu suspendieren.Platzieren Sie das Spenderendothel auf dem breiteren Teil eines Missbrauchs- und Injektors, wobei die Innenseite mit der Oberfläche des Injektors in Kontakt kommt. Geben Sie mit einem Spachtel die Chromo-Vier-Lösung auf die Innenseite des Spenderendothels, um es in einer homogenen grünen Farbe zu färben. Nachdem Sie drei Minuten gewartet haben, rollen Sie das Endothel und führen Sie es in den vorderen Teil des Busin-Injektors ein.Greifen Sie mit einer atraumatischen koaxialen Pinzette das gefaltete Spenderendothel und führen Sie es mit einem einzigen 10,0-Nylonstich ein. Vernähen Sie den Hornhautschnitt und die Parazentese. Injizieren Sie eine Luftblase, die den Raum der Vorderkammer vollständig ausfüllt, um das Spendergewebe zu entfalten und gegen die Hornhaut des Empfängers zu drücken.Entfernen Sie dann den vorderen Kammerhalter von innen mit einem Haken oder mit einem Spatel, um die Luftblase von außen zu bewegen. Platzieren Sie die Spenderlenti in der Mitte der Empfängerhornhaut. Stellen Sie einen DDE-Laser ein, der auf 810 Nanometer emittiert, mit einem Kerndurchmesser von 300 Mikrometern, einer sterilen Faseroptik und einer numerischen Apertur von 0,22 unter Verwendung der hier aufgeführten Einstellungen für den Laser und während die Faseroptik außerhalb des Augapfels und in berührungsloser Konfiguration nacheinander bleibt, indem Sie einzelne Laserpunkte entlang der Peripherie des gefärbten Endothels durch das transparente Hornhautgewebe abgeben.Der letzte Aspekt ist ein Ring von Flecken in der Peripherie des Spender-Lenti. Der Abstand zwischen den Mittelpunkten zweier benachbarter Punkte ist das Doppelte eines Punktdurchmessers. Wenn das Laserschweißen abgeschlossen ist, tragen Sie 0,3 % Tobramycin und 0,1 % Dexamethason Ophthalmische Suspension auf das Auge des Patienten auf.Setze dann eine Kontaktlinse auf. Bei diesem rein laserchirurgischen Verfahren wird eine minimalinvasive Hornhauttransplantation im Vergleich zu einem Standard-Endotheltransplantat durchgeführt. Es kommen nur die Schritte der Messung der Hornhautdicke, der Färbung des Spendergewebes und der Abgabe des Laserlichts hinzu.Die erzielten Vorteile kompensieren weitestgehend eine erhöhte Operationszeit von wenigen Minuten. Die Verwendung der intraoperativen OCT zur Messung der Hornhautdicke des Spenders und des Femtosekundenlasers zur Anpassung der Abmessungen des Spenderlentikels ermöglicht eine Verbesserung der Adhäsion an der Schnittstelle des Donorwirts im Vergleich zur Nichtdurchführung der Dickenmessung der Spenderhornhaut, wie hier gezeigt, was zu einer schlechten Adhäsion an der Peripherie führt. Dabei wird die Operation nach den Bedürfnissen und morphologischen Merkmalen des einzelnen Patienten gestaltet.Bei einer Standardtechnik ist es aufgrund seiner biomechanischen Eigenschaften und Lage nicht möglich, das Spendergewebe in irgendeiner Weise zu vernähen. Das Laserschweißverfahren liefert jedoch einen vollständigen Ring von Punkten, der den Außendurchmesser der Spenderempfängerschnittstelle abdeckt, und ermöglicht einen sofortigen Verschluss der Grenzfläche. Einen Tag nach der Operation zeigt ein teilweise verschweißtes Endothel eine Luxation des Spenderbelegs, außer an den Schweißstellen.Nach diesem Verfahren können andere Methoden wie die anteriore ulare Otoplastik durchgeführt werden, um zusätzliche Fragen zu beantworten, z. B. wie die Verwendung von Standardklagen nach ihrer Entwicklung vermieden werden kann. Diese Technik ebnete den Weg für Forscher auf dem Gebiet der Mikrochirurgie, um das Nähen in dünnen Geweben, unzugänglichen Stellen, wie z. B. bei der End-to-End-Anastomose in der Hirnchirurgie, zu erforschen. Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie eine gute Vorstellung davon haben, wie Sie eine endotheliale Kerotoplastik mit einem geringen Risiko einer Linusverschiebung nach der Operation durchführen können.Diese Angelegenheit liefert uns eine sehr dünne Linika, die mit der Empfängermedikation zur guten Zufriedenheit unseres Patienten haftet.

Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Dieses Video zeigt ein nicht-invasives lasergestütztes Verfahren zur selektiven Schädigung der Hornhaut-Endothelzellen im Schweineauge. Das entwickelte ex vivo-Modell der Schädigung von Endothelzellen kann zur Untersuchung von Erkrankungen des Hornhautendothels verwendet werden.

Lasergestützte selektive Ablation von Hornhaut-Endothelzellen von Schweinen: Eine Technik zur Induktion einer fokussierten Schädigung der Hornhaut von Schweinen für ex vivo-Studien

Vaskularisierte Verbund Allotransplantations (VCA) haben eine klinische Realität werden. Allerdings ist eine breite klinische Anwendung des VCA durch chronische Multi-Drug-Immunsuppression begrenzt. Die Autoren stellen eine zuverlässige und reproduzierbare Großtiermodell, um neue immunmodulatorische Strategien, die Minimierung oder Beseitigung potenziell die Notwendigkeit der Immunsuppression in VCA übersetzen kann.

Eine modifizierte Heterotope Schweine Hind Gliedmaßen-Transplantation Modell für Translationale Vaskularisierte Composite-Allotransplantation (VCA) Forschung

Hilfslebertransplantation bietet eine temporäre Unterstützung in akuten Leberversagen, bis die Regeneration der Leberversagen. Die heterotope Hilfslebertransplantation (HALT) mit Pfortader Arterialisation (PVA) macht ausreichende Leberfunktion. Wir entwickelten eine analoge Technik in der Ratte, um den Einfluss der Pfortader Arterialisation auf die Morphologie und Funktion des Transplantats zu untersuchen.

Heterotope Hilfs Ratte Leber-Transplantation mit strömungs geregelt Pfortader Arterialisation in akutes Leberversagen

Bei einigen Patienten ist die einzige Option für die Erhaltung der Fruchtbarkeit Kryokonservierung von Ovargewebe. Leider untergräbt verzögerte Revaskularisation follikulären Lebensfähigkeit. Hier präsentieren wir Ihnen ein Protokoll zur menschlichen eierstockgewebe mit Endothelzellen für Nutzung als Kombination von Zell-basierte Strategie beschleunigt Perfusion mit einer direkten Parakrine Lieferung von bioaktiven Moleküle Co zu verpflanzen.

Co Transplantation von menschlichen Eierstockgewebe mit veränderter Endothelzellen: eine Zell-basierte Strategie-Kombination beschleunigt Perfusion mit direkten Parakrine Lieferung

Descemet's Stripping Only ist ein experimentelles Verfahren, bei dem Patienten mit zentralen Hornhautguttae, die aus Fuchs Endothelial Corneal Dystrophy resultieren, Descemets Membran für periphere Zellen abgestreift haben, um die Endothelschicht zu regenerieren. Wir stellen eine neuartige Methodik vor, die DSO in dystrophischen menschlichen Hornhäuten ex vivo mit beschleunigter Heilung simuliert, die durch eFGF1 (NM141) stimuliert wird.

Ein menschliches Hornhautorgan-Kulturmodell des Descemet-Strippings nur mit beschleunigter Heilung, stimuliert durch den künstlichen Fibroblasten-Wachstumsfaktor 1

Hier beschreiben wir eine Plattform, die die nicht-invasive In-vivo-Bildgebung von Lebersphäroiden ermöglicht, die in die vordere Kammer des Mausauges transplantiert wurden. Der Arbeitsablauf reicht von der Erzeugung von Sphäroiden aus primären Leberzellen über die Transplantation in das Mausauge bis hin zur In-vivo-Bildgebung mit zellulärer Auflösung durch konfokale Mikroskopie.

In-vivo-Bildgebung von Lebersphäroiden, die in die vordere Kammer des Mausauges transplantiert wurden

Dieses Protokoll beschreibt ein Ratten-basiertes Darmtransplantationsmodell mit Ileostomie zur zeitlichen Beurteilung der medikamentösen Intervention bei der Abstoßung von Transplantaten.

Ein Modell zur Abstoßung von Rattentransplantaten bei der Darmtransplantation mit exteriorisierter Ileostomie zur Beurteilung der Längsschnittprognose

In dieser Arbeit wird ein Protokoll für die präzise ultraschallgesteuerte Abgabe von vaskulären Stammzellen an die Aortengefäßwand vorgestellt. Die Technik zielt effektiv auf die Gefäßwand ab und fördert die Gefäßreparatur bei Aortenaneurysmen und Dissektionen.

Präzisionsultraschallgesteuerte Stammzellabgabe für die Gefäßreparatur bei Aortenerkrankungen

Wir präsentieren ein reproduzierbares Mausmodell der heterotopischen Becken-zu-Hals-vaskularisierten Komposit-Allotransplantation. Dieses supermikrochirurgische Protokoll, das 0,3–0,5 mm Gefäßanastomosen umfasst, integriert Nylon-Filamentführung und venöse Manschetten. Es bietet eine verlässliche Plattform für translationale Studien zu Toleranz, Ischämie-Reperfusionsverletzungen und immunologischen Mechanismen bei der vaskularisierten Kompositenallotransplantation.

Heterotopische Hintergliedmaßen-zu-Hals-Transplantation bei der Maus: Ein supermikrochirurgisches Modell der vaskularisierten zusammengesetzten Allotransplantation

Bestimmung Donorzelle Transplantation stellt eine Herausforderung in der Maus Knochenmarktransplantation Modelle, die gut definierte phänotypische Marker fehlen. Wir beschrieben eine Methode zur männlichen Spenders Engraftment bei weiblichen Transplantatempfängers Mäusen zu quantifizieren. Dieses Verfahren kann in allen Mausstämmen zur Untersuchung von HSC-Funktionen verwendet werden.

Mittels quantitativer real-time PCR zum Donor Cell Engraftment in einem Competitive Murine Bone Marrow Transplantation Modell fest

Erfahren Sie die minimalinvasive All-Laser-Endotheltransplantation mit Femtosekundenlaser zur präzisen Spendergewebeparation. Diese Methode reduziert das Risiko einer Lappenverlagerung und verbessert die Heilung.

Ein "All-Laser" Endothelial Transplant

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