Name: Phasendiagramm Charakterisierung mit Magnetic Beads als flüssige Träger (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-09-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 37 s
Description: Lernen Sie die Charakterisierung von Phasendiagrammen mit magnetischen Mikropartikeln als flüssige Träger in einem Lab-in-Tube-System. Diese Methode ermöglicht die präzise Analyse von Phasenübergängen in komplexen Mehrkomponentensystemen.

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Die Autoren danken vielen nützlichen Gesprächen mit M. Caggioni und der Unterstützung von Proctor and Gamble in Form eines Praktikums für die NAB.

1. Herstellung der einmaligen Gebrauch Materialien im Geräte- <ol><li> Herstellung von Rohr <ol><li> Schneiden Sie die Rohrleitung in 15 cm-Segmente. Tubing hat 1,6 mm Innendurchmesser und 3,2 mm Außendurchmesser. </li><li> Hang Rohrsegmente vertikal mit Klebeband. Zeigen Papiertuch unter Rohren, um das überschüssige Fluorpolymerlösung zu sammeln. </li><li> Injizieren 100 ul Fluorpolymerlösung in die obere Öffnung jedes Rohrsegment mit Spritze, so dass er in Kontakt mit gesamten Umfang an der Innenwand kommen. </li><li> Erlauben Rohrsegmente, um im Platz für 1 h hängen, um überschüssige Menge an Fluorpolymerlösung zu entfernen. </li><li> Reinigen Sie jede Fluorpolymerlösung von Unterseite der Röhre, die nicht tropft hat aus. Schlauch entfernen hängenden Position und entsorgen Papierhandtücher. </li><li> Ort Rohrsegmente in den Ofen bei 100 ° C für 1 Stunde, um die Fluorpolymerbeschichtungsschicht zu tempern. </li><li> Entfernen Rohrsegmente aus dem Ofen. Verwenden einer Pinzette, als Rohr seggen wird heiß. </li></ol></li><li> Herstellung von verdünnten magnetischen Bead-Lösung <ol><li> Berechnen Magnetperlenkonzentration, um die gewünschte Übertragsvolumen zu erreichen, wie durch die Beziehung zwischen der Übertrag Volumen und MB Masse in 2 gezeigt bestimmt. Anmerkung: Die ursprüngliche MB Lösung 1 g MBs in 50 ml Lösung. Unter Berücksichtigung einer Testkammervolumen von 20 ul verdünnte ursprüngliche MB Lösung mit destilliertem Wasser auf ein Verhältnis von 6: 4 (MB Lösung: Wasser), um einen Übertrag Volumen von ~ 0,4 &amp; mgr; l zu erhalten. Passen Verdünnungsverhältnis bei verschiedenen Übertragsvolumen erwünscht ist. </li><li> Legen Sie ein 20 ml Probenfläschchen auf eine Mikrowaage. Null das Gleichgewicht. </li><li> Man schüttelt die magnetischen Kügelchen Lösungsbehälter, dann zurückzutreten 0,6 ml unter Verwendung einer Mikropipette. </li><li> Verzichten pipettierten Lösung in das Probengefäß auf Unruh. </li><li> Verzichtet werden 0,4 ml destilliertem Wasser in die Probenampulle. </li></ol></li><li> Fluoreszenzfarbstoff lBeläge auf LCD Vorbereitung <ol><li> Löse 2 Gew.% Des Farbstoffes in deionisiertem Wasser durch Verwirbeln der Lösung für 1 min. </li></ol></li></ol> 2. Vorbereitung der Versuchsaufbau für Fluoreszenzexperimente <ol><li> Herstellung der Schlauchvorrichtung. <ol><li> Legen Sie eine Luer-Lock-Anschluss an einem Ende des Schlauchs. </li><li> Das Röhrchen wird in einem Luer-Lock-Spritze, die eine 3 ml Volumen und 0,1 ml Graduierung hat. </li><li> Legen Sie die Spritze in die Spritzenpumpe und stellen Sie die Vorschubgeschwindigkeit bei 2 ml / h. </li><li> Zum genauen Einführen von Flüssigkeiten in den Schlauch, zu verwenden, die Spritzenpumpe, um die Lösung, welche die magnetischen Kügelchen und Fluoreszenzfarbstoff zurückzuziehen. </li><li> Legen Sie 20 ul magnetischen Kügelchen-Lösung in das Rohr mit Spritzenpumpe Rückzug. Diese Flüssigkeit Segments wird als die Testkammer (Testkammervolumen je nach Experiment variieren) bezeichnet. Mischen Sie den Behälter mit Magnet-Bead-Lösung für 1 min und dann von Hand rühren während<html> der Rückzug-Zyklus, um eine einheitliche MB Dispersionen bilden. </li><li> Nach der Testkammer Flüssigkeit Einsetzen abgeschlossen ist, zurückziehen 6 l Luft in den Schlauch. Dieses Luftvolumen bildet später ein Ventil zwischen den beiden Flüssigkeitssegmente. </li><li> Nach dem Luftspalt Einsetzen abgeschlossen ist, beginnen Rückzug 180 ul der Flüssigkeit mit Fluoreszenzfarbstoff. Dieser Flüssigkeitssegment wird als Reservoir bezeichnet. Reservoirvolumen kann je nach Experiment variieren. Größere Behältervolumen ist vorteilhaft, die Änderung der Farbstoffkonzentration zu minimieren. </li><li> Platzieren eines zweiten weiblichen Luer-Lock-Stecker an dem anderen Ende des Rohres. </li><li> Entfernen Sie die Rohrvorrichtung aus der Spritze. </li><li> Zeigen Luer-Lock-Kappen an beiden Enden des Geräts. </li></ol></li><li> Optics Setup für Fluoreszenzexperimente <ol><li> Schalten Sie alle an das inverse Mikroskop angeschlossenen Komponenten. </li><li> Schalten Sie den Computer und öffnen Sie das Mikroskop Imaging-Software. </li></ol></li></ol>&quot;&gt; 3. Versuchsdurchführung für Fluoreszenzexperimente <ol><li> Nehmen anfängliche Fluoreszenzintensität Messung der Testkammer und das Reservoir mit dem inversen Mikroskop. Bei der Analyse der Fluoreszenz der Probe, zu gewährleisten, dass der Fokus in der Mittelstellung (in beiden Richtungen x und y) des Flüssigkeitssegment in dem Rohr. Nehmen Sie Messungen im Datentabellenkalkulation. </li><li> Zeigen Gerät über Oberseite des Würfels Magneten, so dass die magnetischen Beads alle zu trennen, um einen Bereich in der Testkammer. Übertragen Sie die Perlen in den Vorratsbehälter, indem Sie das Gerät über Oberseite des Magneten (~ 10 sec). Die 1-Zoll-Neodym-Würfel-Magnet ist Grad N48 mit einer Zugkraft von 45,6 kg. </li><li> Sobald Magnetkügelchen Cluster wird durch den Luftspalt und in das Reservoir überführt, schüttelt die magnetischen Kügelchen indem die Vorrichtung über die Oberseite des Magneten und sich dreht, um die Flüssigkeit, die innerhalb des Clusters eingeschlossen zugeben. Weiterhin Rühren der magnetischen Beads bis zur Homogenisierung des Reservoirs wurdeabgeschlossen (~ 30-45 sec). </li><li> Setzvorrichtung über die Oberseite des Magneten derart, dass die magnetischen Kügelchen in dem Reservoir alle entmischen einem Bereich. Übertragen Sie die Magnetic-Bead-Cluster zurück in die Testkammer. </li><li> Sobald der Cluster die Testkammer erreicht, rühren die magnetischen Kügelchen, indem das Gerät über Oberseite des Magneten und Drehen, um die eingeschlossenen fluoreszierenden Flüssigkeit innerhalb lösen. Weiterhin Rühren der magnetischen Beads bis zur Homogenisierung der Testkammer abgeschlossen ist (~ 30-45 sec). </li><li> Nehmen Fluoreszenzintensitätsmessungen sowohl der Testkammer und das Reservoir mit dem inversen Mikroskop. Nehmen Sie Messungen im Datentabellenkalkulation. </li><li> Schritte 3,2-3,6 werden wiederholt, bis die beiden flüssigen Segmente konvergieren ähnliche Fluoreszenzintensitäten (~ 100 Zyklen). </li></ol> 4. Numerische Analysis von Fluoreszenzdaten <ol><li> Mit dem Fluoreszenzintensitätsdaten in eine Tabelle gespeichert ist, durchführen numerische Analyse mit MATLAB. </li><li> Derive Gleichungen, um einen theoretischen Wert der Fluoreszenzintensität in sowohl dem Reservoir und Testkammer zu berechnen. Integrieren Sie die folgenden Gleichungen in eine MATLAB Skript-Datei: wobei I die Fluoreszenzintensität (AU) ist, V Volumen (ul), n ist die Anzahl der Übertragungen, R ist der Behälter, T ist die Testkammer und C Verschleppung. </li><li> Mit MATLAB erzeugen Grundstücke und zu analysieren, um die Übertragsvolumen für alle Versuche zu bestimmen. Verwenden Sie diese Daten, um Abbildung 2 zu produzieren. </li></ol> 5. Vorbereitung der Versuchsaufbau zur Surfactant Experimente <ol><li> Herstellung der Schlauchvorrichtung. <ol><li> Setzen Sie einen weiblichen Luer-Lock auf ein Ende des Schlauchs. </li><li> Das Röhrchen wird in einem Luer-Lock-Spritze. </li><li> Legen Sie die Spritze in die Spritzenpumpe und stellen Sie die Vorschubgeschwindigkeit bei 2 ml / h. </li><li> Zum genauen Einführen von Flüssigkeiten in den Schlauch, zu verwenden, die Spritzenpumpe, um die Lösung, welche die magnetischen Kügelchen und su zurückzuziehenrfactant. </li><li> Legen Sie 20 ul magnetischen Kügelchen-Lösung in das Rohr mit Spritzenpumpe Rückzug. Diese Flüssigkeit Segments wird als die Testkammer (Testkammervolumen je nach Experiment variieren) bezeichnet. Man schüttelt den Behälter mit Magnet-Bead-Lösung mit der Hand während der Widerrufszyklus zu einheitlichen MB Dispersionen bilden. </li><li> Nach der Testkammer Flüssigkeit Einsetzen abgeschlossen ist, zurückziehen 6 l Luft in den Schlauch. Das Luftvolumen wird später als Luftspalt bezeichnet. </li><li> Nach dem Luftspalt Einsetzen abgeschlossen ist, beginnen Rückzug 180 ul des reinen C12E5 Tensid. Dies wird später als Reservoir bezeichnet. </li></ol></li><li> Optics Setup für Tensid-Experimente. <ol><li> Bewegen Spritzenpumpe mit Schlauchvorrichtung, so dass die Testkammer mit Magnetkügelchen ist im Fokus mit dem Stereo-Mikroskop. </li><li> Legen Sie ein Blatt Polarisatorfilm oben auf einem LED-Lichtquelle. Schieben Sie die LED-Lichtquelle unter dem Rohr befestigtDie Spritzenpumpe. </li><li> Befestigen weiteres Polarisatorfilm zum Objektiv des Stereomikroskops mit Klebeband. Achten Sie darauf, dass die beiden Polarisationsfolien haben eine 90-Grad zueinander versetzt. </li><li> Montieren Sie einen CCD (Charge Coupled Device) Kamera mit dem Stereomikroskop. Schließen Sie die Kamera an den Computer an und öffnen Sie die Imaging-Software. </li></ol></li></ol> 6. Versuchsdurchführung für Surfactant Experimente <ol><li> Legen Sie die Würfel-Magnet neben der Testkammer, während der Magnet auf einem Ständer montiert. </li><li> Nachdem die magnetischen Kügelchen einen Cluster bilden, beginnt das Pumpen von Flüssigkeiten in das Rohr an der Zufuhrrate von 2 ml / h, so dass die magnetischen Kügelchen Cluster aus der Testkammer bewegt wird, über den Luftspalt und in das Tensid Reservoirkammer. </li><li> Sobald die Magnetkügelchen-Cluster den Mittelpunkt der Vorratskammer erreicht, beenden Sie den Pump auf der Spritzenpumpe. </li><li> Bewegen Sie den Würfel-Magnet weg von der Röhre, so dass für magnetische Kügelchen in eine separatend verringern die Diffusion der Flüssigkeit in dem Magnetperlengruppe eingeschlossen. </li><li> Sehen Sie den Bildschirm, um die H 2 O / C12E5 Mischung durchlaufen verschiedene Phasen beobachten. </li><li> Sobald die Diffusion und Phasenänderung der Flüssigkeit abgeschlossen ist, stellen den Magneten in seinem alten Ziels durch den Behälter, so dass die magnetischen Kügelchen zu bilden, in einem Cluster. </li><li> Verwendung der Spritzenpumpe, die Flüssigkeiten zurückziehen, so dass die magnetischen Kügelchen Cluster aus dem Tensid Reservoir übertragen wird, über den Luftspalt und in die H 2 O Prüfkammer. </li><li> Sobald die Magnetkügelchen-Cluster den Mittelpunkt der Testkammer erreicht, beenden Sie den Pump auf der Spritzenpumpe. </li><li> Bewegen Sie den Würfel-Magnet weg von der Röhre. Dies ermöglicht Magnetkügelchen zu trennen und wird dazu beitragen, die Diffusion der Flüssigkeit in dem Magnetperlengruppe eingeschlossen reduzieren. </li><li> Sehen Sie den Bildschirm, um die H 2 O / C12E5 Mischung durchlaufen verschiedene Phasen beobachten. </li&gt; <li> Sobald die Diffusion und Phasenänderung der Flüssigkeit abgeschlossen ist, stellen den Magneten in seinem alten Ziels durch die Testkammer, so dass die magnetischen Kügelchen zu bilden, in einem Cluster. </li><li> Wiederholen Sie die Schritte 6,2 bis 6,11, bis die Testkammer zeigt eine Phasenänderung. </li></ol>

<ol><li>Gijs, M. A., Lacharme, F., Lehmann, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+applications+of+magnetic+particles+for+biological+analysis+and+catalysis%5BTitle%5D)+AND+%22Chemical+review%22%5BJournal%5D)">Microfluidic applications of magnetic particles for biological analysis and catalysis.</a> Chemical review. 110, 1518-1563 (2009).</li>
<li>Kozissnik, B., Dobson, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biomedical+applications+of+mesoscale+magnetic+particles%5BTitle%5D)+AND+%22MRS+Bulleti%22%5BJournal%5D)">Biomedical applications of mesoscale magnetic particles.</a> MRS Bulleti. 38, 927-932 (2013).</li>
<li>Ali-Cherif, A., Begolo, S., Descroix, S., Viovy, J. -L., Malaquin, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Programmable+Magnetic+Tweezers+and+Droplet+Microfluidic+Device+for+High-Throughput+Nanoliter+Multi-Step+Assays%5BTitle%5D)+AND+%22Angewandte+Chemie+International+Editio%22%5BJournal%5D)">Programmable Magnetic Tweezers and Droplet Microfluidic Device for High-Throughput Nanoliter Multi-Step Assays.</a> Angewandte Chemie International Editio. 51, 10765-10769 (2012).</li>
<li>Blumenschein, N. A., Han, D., Caggioni, M., Steckl, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnetic+Particles+as+Liquid+Carriers+in+the+Microfluidic+Lab-in-Tube+Approach+To+Detect+Phase+Change%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Applied+Materials%2C+%26+Interface%22%5BJournal%5D)">Magnetic Particles as Liquid Carriers in the Microfluidic Lab-in-Tube Approach To Detect Phase Change.</a> ACS Applied Materials, & Interface. 6, 8066-8072 (2014).</li>
<li>Bordelon, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+low-resource+RNA+extraction+cassette+based+on+surface+tension+valves%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+applied+materials%22%5BJournal%5D)">Development of a low-resource RNA extraction cassette based on surface tension valves.</a> ACS applied materials. 3, 2161-2168 (2011).</li>
<li>Adams, N. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Design+criteria+for+developing+low-resource+magnetic+bead+assays+using+surface+tension+valves%5BTitle%5D)+AND+%22Biomicrofluidic%22%5BJournal%5D)">Design criteria for developing low-resource magnetic bead assays using surface tension valves.</a> Biomicrofluidic. 7, 014104(2013).</li>
<li>Hishida, M., Tanaka, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transition+of+the+hydration+state+of+a+surfactant+accompanying+structural+transitions+of+self-assembled+aggregates%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Physics%3A+Condensed+Matte%22%5BJournal%5D)">Transition of the hydration state of a surfactant accompanying structural transitions of self-assembled aggregates.</a> Journal of Physics: Condensed Matte. 24, 284113(2012).</li>
<li>Strey, R., Schomacker, R., Roux, D., Nallet, F., Olsson, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dilute+lamellar+and+L3+phases+in+the+binary+water-C12E5+system%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+Chemical+Society%2C+Faraday+Transaction%22%5BJournal%5D)">Dilute lamellar and L3 phases in the binary water-C12E5 system.</a> Journal of the Chemical Society, Faraday Transaction. 86, 2253-2261 (1990).</li>
<li>Chen, B. -H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissolution+Rates+of+Pure+Nonionic+Surfactants%5BTitle%5D)+AND+%22Langmui%22%5BJournal%5D)">Dissolution Rates of Pure Nonionic Surfactants.</a> Langmui. 16, 5276-5283 (2000).</li>
<li>Warren, P. B., Buchanan, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kinetics+of+surfactant+dissolution%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Colloid%2C+%26+Interface+Scienc%22%5BJournal%5D)">Kinetics of surfactant dissolution.</a> Current Opinion in Colloid, & Interface Scienc. 6, 287-293 (2001).</li>
<li>Laughlin, R. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLaughlin%2C+R+%22The+Aqueous+Phase+Behavior+of+Surfactant%22">The Aqueous Phase Behavior of Surfactant</a>. , Academic Press. New York. (1996).</li>
<li>Laughlin, R. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phase+Studies+by+Diffusive+Interfacial+Transport+Using+Near-Infrared+Analysis+for+Water+%28DIT-NIR%29%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Physical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Phase Studies by Diffusive Interfacial Transport Using Near-Infrared Analysis for Water (DIT-NIR).</a> The Journal of Physical Chemistry. 104, 7354-7362 (2000).</li>
<li>Lynch, M. L., Kochvar, K. A., Burns, J. L., Laughlin, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aqueous-Phase+Behavior+and+Cubic+Phase-Containing+Emulsions+in+the+C12E2%E2%88%92Water+System%5BTitle%5D)+AND+%22Langmui%22%5BJournal%5D)">Aqueous-Phase Behavior and Cubic Phase-Containing Emulsions in the C12E2−Water System.</a> Langmui. 16, 3537-3542 (2000).</li>
</ol>

Die Autoren haben keine konkurrierenden finanziellen Interessen.

In den meisten üblichen Techniken zur Phasendiagramm Untersuchung von mehreren Proben mit unterschiedlichen Zusammensetzungen und Verhältnisse müssen bereit und müssen thermodynamischen Gleichgewicht, die ein langwieriger Prozess und eine erhebliche Menge an Material führt zu erreichen. Einige Herausforderungen können durch DIT (diffusive Grenzverkehr) Methode gelöst werden unter Verwendung von Flach Kapillare und die Infrarot-Analyse-Methode, aber keiner von ihnen kann alle Herausforderungen, die mit niedrigen Kosten I...

Magnetischen Kügelchen (MB) in der Größenordnung von 1 Mikrometer im Durchmesser haben, in mikrofluidischen-basierten Anwendungen verwendet worden, 1,2 recht oft, insbesondere für biomedizinische Vorrichtungen. In diesen Vorrichtungen sind MBs Funktionen wie Zell- und Nukleinsäure Trennung, Kontrastmittel und Medikamentenausgabe angeboten, um nur einige zu nennen. Die Kombination von externen (Magnetfeld) Steuerung und tröpfchenbasierten Mikrofluidik hat 3 Kontrolle von Immuntests unter Verwendung von kleinen Mengen (&lt;100 nl) aktiviert. MBs haben auch gezeigt, Versprechen, wenn für die Flüssigkeitshandhabung 4 verwendet. Dieser Ansatz nutzt die MBs an Biomoleküle zwischen Flüssigkeitssegmente innerhalb eines Rohres durch ein Luftventil getrennt transportieren. Dieses Verfahren ist nicht so stark wie andere komplexere Lab-on-Chip-Bausteine ​​in der Vergangenheit gesehen, aber es ist wesentlich einfacher und erfordert bieten die Möglichkeit der Handhabung Mikroliter-Größe Flüssigkeitsvolumina. Ein ähnlicher Ansatz wurde kürzlich von Haselton Gruppe berichtet 5 und biomedizinische AnwendungAssays. Einer der wichtigste Aspekt dieser Vorrichtung ist die Flüssigkeit Segmenttrennung durch die Oberflächenspannung gesteuerten Luftventil angeboten. Mikrolitervolumina von Flüssigkeit zu MBs befestigt werden durch diesen Luftspalt zwischen Flüssigkeitssegmente unter Verwendung eines extern angelegten magnetischen Feld transportiert. Mikropartikel-MBs (von ~ 0,4-7 &amp; mgr; m im Durchmesser mit einem Mittelwert von 1,9 um) unter der Wirkung des äußeren Magnetfeldes erzeugen eine mikroporöse Cluster, die in Flüssigkeitsfallen. Die Stärke dieses Flüssigkeitseinschluss ist ausreichend, um die Kräfte der Oberflächenspannung beim Transport der MBs von einem Reservoir zu dem nächsten zu widerstehen. Typischerweise ist dieser Effekt unerwünscht, da die meisten Ansätze soll nur den Transport bestimmter Moleküle (wie Biomarker) innerhalb der Flüssigkeiten 6 enthalten. Wie jedoch in unserer Arbeit zu sehen ist, kann dieser Effekt verwendet werden, um eine positive Aspekt der Vorrichtung wird. Wir haben dieses &quot;lab-in-Rohr verwendet&quot;-Ansatz, Der schematisch in Figur 1 gezeigt, für die Analyse von Phasendiagrammen in binärer Materialsystemen. Das Tensid C12E5 wurde als Schwerpunkt der Charakterisierung ausgewählt worden ist, wie es ist weit verbreitet in industriellen Anwendungen wie Pharmazeutika, Lebensmitteln, Kosmetika, etc. Insbesondere verwendet wurde das H 2 O / C12E5 binären System untersucht, weil es eine reiche bietet Satz von Phasen zu erkunden. Wir haben an einem spezifischen Aspekt dieser chemischen Mischung, nämlich den Übergängen zu Flüssigkristallphasen unter bestimmten Konzentrationen 7-9 konzentriert. Dieser Übergang wird leicht in unserer Vorrichtung durch Einbau Polarisatoren in der optischen Mikroskopie Studien, um die Phasengrenzen markieren beobachtet. In der Lage, Phasendiagramme Karte ist ein sehr wichtiger Bereich der Studie, um die Kinetik mit Phasenübergang 10 zu verstehen. Die Fähigkeit, die Wechselwirkung der Tenside mit Lösungsmitteln eine genau bestimmennd andere Komponenten entscheidend ist aufgrund ihrer Komplexität und viele unterschiedliche Phasen 11. Viele andere Techniken wurden zuvor verwendet worden, um Phasenwechsel charakterisieren. Der herkömmliche Ansatz beinhaltet Herstellung vieler Proben, die jeweils aus unterschiedlichen Konzentrationen und es ihnen ermöglicht, zu äquilibrieren, was lange Laufzeiten und hohe Menge an Probenvolumina erfordert. Dann werden die Proben in der Regel durch optische Methoden wie diffusive Grenzverkehr (DIT), die hochauflösende solcher Tensidzusammensetzungen 12,13 Angebote analysiert. Ähnlich wie bei der Methode, die wir verwendet haben, verwendet das DIT-Methode polarisiertes Licht für Bild in verschiedenen Phasengrenzen.

<table><tbody><tr><td>AccuBead</td><td>Bioneer Inc.</td><td>TS-1010-1</td><td>Magnetische Kügelchen</td></tr><tr><td>C12E5 Tensid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>76437</td><td></td></tr><tr><td>Thermo Scientific Nalgene 890</td><td>Fisher Scientific</td><td>14176178</td><td></td></tr><tr><td>Würfelmagnet</td><td>Apex-Magnete</td><td>M1CU</td><td></td></tr><tr><td>Polarisationsfilm</td><td>Edmund Optics</td><td>38-493</td><td></td></tr><tr><td>Teflon AF</td><td>Dupont</td><td>400s1-100-1</td><td>Fluorpolymerlösung</td></tr><tr><td>Keyacid Red Farbstoff</td><td>Keystone</td><td>601-001-49</td><td>Fluoreszierender Farbstoff</td></tr><tr><td>Luer-Lock</td><td>Cole-Parmer</td><td>T-45502-12</td><td>Weiblicher</td></tr><tr><td>Luer-Lock</td><td>Cole-Parmer</td><td>T-45502-56</td><td>Männliche</td></tr><tr><td>Spritze</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-823-435</td><td>3 ml</td></tr><tr><td>Spritzenpumpe</td><td>Stoelting</td><td>53130</td><td></td></tr><tr><td>Stereomikroskop</td><td>Nikon</td><td>SMZ-2T</td><td></td></tr><tr><td>Inverses Mikroskop</td><td>Nikon</td><td>Eclipse Ti-U</td><td>Der verwendete Filterwürfel hatte einen Anregungswellenlängenbereich von 540-580 nm und einen dichroitischen Spiegel bei 585 nm, der eine Photoemission im Bereich von 593-668 nm ermöglichte.</td></tr><tr><td>Balance</td><td>Denver Instruments&nbsp;</td><td>PI-225D</td><td></td></tr><tr><td>Kamera Motic</td><td></td><td>5000</td><td></td></tr></tbody></table>

phasendiagramm charakterisierung mit magnetic beads als flüssige träger

Phase Diagram Characterization Using Magnetic Beads as Liquid Carriers

Magnetischen Kügelchen, die mit ~ mittlere Durchmesser 1,9 um wurden verwendet, um Mikroliter-Volumina von Flüssigkeiten zwischen angrenzenden Flüssigkeitssegmente mit einem Rohr für den Zweck der Untersuchung Phasenänderung dieser Flüssigkeitssegmente zu transportieren. Die magnetischen Perlen wurden von außen gesteuert unter Verwendung eines Magneten, so dass für die Kugeln, um die Luftklappe zwischen den benachbarten Flüssigkeitssegmente überbrücken. Eine hydrophobe Beschichtung wurde auf die Innenfläche des Rohres aufgebracht, um die Trennung zwischen den beiden Flüssigkeitssegmente zu verbessern. Das angelegte Magnetfeld gebildeten Cluster ein Aggregat von magnetischen Kügelchen, die Erfassung einer bestimmten Flüssigkeitsmenge in dem Cluster, die als Übertrag Volumen bezeichnet wird. Ein Fluoreszenzfarbstoff wurde in einem Flüssigkeitssegment gegeben, gefolgt von einer Reihe von Flüssigkeitsübertragungen, die dann verändert die Fluoreszenzintensität in den benachbarten Flüssigkeitssegment. Auf der Grundlage der numerischen Analyse der gemessenen Fluoreszenzintensität Wechsel hat sich die Übertragsvolumen pro Masse von magnetischen Kügelchen gefunden worden,auf ~ 2-3 &amp; mgr; l / mg ist. Diese kleine Menge an Flüssigkeit für die Verwendung von vergleichsweise kleinen Flüssigkeitssegmente von ein paar hundert Mikroliter erlaubt, die Verbesserung der Durchführbarkeit der Vorrichtung für ein Labor-in-Rohr-Ansatz. Diese Technik des Aufbringens kleine Zusammensetzungsänderung in einem Flüssigkeitsvolumen wurde für die Analyse der binären Phasendiagramm zwischen Wasser und dem Tensid C12E5 (Pentaethylenglycol Monododecylether), was zu schnelleren Analysen mit kleineren Probenvolumina als herkömmliche Verfahren aufgetragen.

Unter Verwendung des Lab-in-Rohr-Ansatz für den Transport von ul-Volumen Flüssigkeitsmengen mit Magnetkügelchen zusammen mit MATLAB für die numerische Analyse, das durchschnittliche Liquiditätsübertrag Bände, als eine Funktion der magnetischen Kügelchen Masse, gefunden wurden (Abbildung 2). Höhere Masse von magnetischen Beads bietet eine höhere Übertragsvolumen in der Höhe von 2-3 &amp; mgr; l / mg. Der Versuchsaufbau (Abbildung 1) wurde verwendet, um Phasenwechsel innerhalb des H<...

Hier präsentieren wir ein Protokoll zur Untersuchung von Mehrkomponenten-Phasendiagrammen unter Verwendung von extern gesteuerten magnetischen Kügelchen als Flüssigkeitsträger in einem Lab-in-Tube-Ansatz. Dieser Ansatz kann bei Anwendungen hilfreich sein, die versuchen, weitere Informationen über den Phasenwechsel in komplexen Flüssigkeitssystemen zu sammeln.

Phasendiagramm Charakterisierung mit Magnetic Beads als flüssige Träger

Magnetic beads with ~1.9 &#181;m average diameter were used to transport microliter volumes of liquids between contiguous liquid segments with a tube for ...

Das übergeordnete Ziel des folgenden Experiments besteht darin, das Übertragungsvolumen zwischen benachbarten Flüssigkeitssegmenten innerhalb eines Lab- und Schlauchsystems unter Verwendung magnetischer Partikel zu analysieren. Dies wird erreicht, indem das Gerät aus hydrophobem Schlauchmaterial hergestellt und mittels einer Spritzenpumpe so betrieben wird, dass mehrere durch eine Luftblase getrennte Flüssigkeitssegmente entstehen, wobei in eine der Flüssigkeiten sowohl magnetische Partikel als auch ein fluoreszierender Farbstoff eingearbeitet werden. Im zweiten Schritt wird nach jeder Übertragung der magnetischen Partikel mittels eines externen Magneten die Fluoreszenzintensität der benachbarten Flüssigkeitssegmente mit einem Mikroskop gemessen.Als Nächstes erfolgt eine numerische Analyse dieser Fluoreszenzintensitätsmessungen, um das Übertragungsvolumen der magnetischen Partikel zu berechnen. Die Ergebnisse zeigen, dass die Analyse des Phasenwechsels in einem Mehrkomponentensystem, das aus zwei Flüssigkeiten besteht, machbar ist, basierend auf der Fähigkeit, magnetische Partikel als Methode zur Übertragung von Mikroliter-Mengen zwischen benachbarten Reservoiren zu nutzen. Wie ich hoffe, werden Sie heute sehen, dass wir mit einer sehr spannenden und einfachen Technik arbeiten, bei der magnetische Partikel zur Flüssigkeitsübertragung innerhalb einer einfachen Röhre verwendet werden, im Gegensatz zu komplexeren herkömmlichen mikrofluidischen Schaltkreisen.Und wir haben es zunächst zur Untersuchung der Wechselwirkungen zwischen kompatiblen Flüssigkeiten angewandt und erweitern dies nun auf andere Anwendungen, darunter die diagnostische Analyse von Vollblut, die Trennung von Proteinen von roten Blutkörperchen, die Harnanalyse, Immunassays und so weiter. Der Hauptvorteil dieser Technik gegenüber anderen bestehenden Methoden, wie der Verwendung von mikrofluidischen Kanälen, liegt in ihrer Einfachheit und kostengünstigen Herstellung. Sie bietet eine hohe Nutzervariabilität zwischen verschiedenen Experimenttypen und liefert konsistente Ergebnisse.Obwohl diese Methode Einblicke in Anwendungen ermöglichen kann, die die Bewegung minimaler, spitzförmiger Volumina erfordern, ist sie auch auf andere Systeme wie die Blutseparation, die gezielte Wirkstoffabgabe und Kontrastmittel anwendbar. Um das Rohr vorzubereiten, schneiden Sie zunächst Schläuche in 15 cm lange Abschnitte, hängen Sie die Schlauchabschnitte mithilfe von Klebeband vertikal auf und legen Sie ein Papiertuch unter die Schläuche, um überschüssige Fluorpolymerlösung aufzufangen. Geben Sie mit einer Pipette 100 µL der Fluorpolymerlösung in die obere Öffnung jedes Schlauchabschnitts ein, sodass sie mit dem gesamten Umfang der inneren Wand in Kontakt kommt.Lassen Sie die Schlauchsegmente eine Stunde lang hängen, um überschüssige Mengen an Fluorpolymerlösung zu entfernen. Anschließend bringen Sie die Schlauchsegmente eine Stunde lang in einen Ofen bei 100 Grad Celsius, um die Fluorpolymerbeschichtungsschicht zu härten. Bereiten Sie danach die verdünnte magnetische Bead-Lösung vor, indem Sie ein 20-Milliliter-Probenfläschchen auf eine Mikrowaage stellen und die Waage auf Null stellen.Schütteln Sie den Behälter mit der magnetischen Beads-Lösung und entnehmen Sie anschließend 0,6 Milliliter mit einer Mikropipette. Geben Sie die abgemessene Lösung in das Probengefäß auf der Waage und pipettieren Sie 0,4 Milliliter destilliertes Wasser in das Probengefäß. Bereiten Sie außerdem den fluoreszierenden Farbstoff vor, indem Sie 0,02 Gewichtsprozent Farbstoff in deionisiertem Wasser auflösen und die Lösung eine Minute lang verwirbeln.Um die Schlauchvorrichtung vorzubereiten, setzen Sie einen weiblichen Luer-Lock-Verbinder auf ein Ende des Schlauchs. Stecken Sie den Schlauch in eine Luer-Lock-Spritze mit einem Volumen von drei Milliliter und einer Einteilung von 0,1 Milliliter. Stellen Sie die Spritze in die Spritzenpumpe und stellen Sie die Fördergeschwindigkeit auf zwei Milliliter pro Stunde ein.Vortexen Sie den Behälter mit einer magnetischen Beads-Lösung, bevor Sie mithilfe einer Spritzenpumpe 20 Mikroliter in das Röhrchen einfüllen. Nachdem das Einfüllen der Flüssigkeit in die Testkammer abgeschlossen ist, ziehen Sie sechs Mikroliter Luft in das Röhrchen. Dieses Luftvolumen bildet später ein Ventil zwischen den beiden Flüssigkeitssegmenten.Nach Abschluss der Luftsprung-Einbringung beginnen Sie mit dem Zurückziehen von 180 Mikrolitern Flüssigkeit mit fluoreszierendem Farbstoff. Bringen Sie einen zweiten weiblichen Luer-Lock-Verbinder an dem anderen Ende des Schlauchs an und nehmen Sie die Schlauchvorrichtung von der Spritze ab. Anschließend setzen Sie Luer-Lock-Kappen an beide Enden der Vorrichtung auf.Nehmen Sie die anfängliche Fluoreszenzintensitätsmessung der Testkammer und des Reservoirs mit dem umgekehrten Mikroskop vor. Platzieren Sie das Gerät über der Oberseite des Kubusmagneten, sodass sich die magnetischen Perlen alle in einem Bereich der Testkammer ansammeln. Überführen Sie die Perlen in das Reservoir, indem Sie das Gerät über die Oberseite des Magneten bewegen.Wenn der Magnetperlen-Cluster durch den Luftspalt in das Reservoir überführt wurde, bewegen Sie das Gerät über die Oberseite des Magneten und drehen es, um die im Cluster eingeschlossene Flüssigkeit freizusetzen, bis die Homogenisierung des Reservoirs abgeschlossen ist. Danach platzieren Sie das Gerät so über den Magneten, dass sich alle Magnetperlen im Reservoir in einem Bereich ansammeln. Überführen Sie den Magnetperlen-Cluster anschließend zurück in die Testkammer.Sobald sich der Cluster in der Testkammer befindet, bewegen Sie das Gerät über den Magneten und drehen es, um die magnetischen Kügelchen zu verwirbeln. Setzen Sie die eingeschlossene fluoreszierende Flüssigkeit frei, bis die Homogenisierung der Testkammer abgeschlossen ist. Nehmen Sie Messungen der Fluoreszenzintensität sowohl der Testkammer als auch des Reservoirs mit dem umgekehrten Mikroskop vor.Wiederholen Sie diese Schritte, bis beide Flüssigkeitssegmente ähnliche Fluoreszenzintensitäten erreichen. Um die Schlauchvorrichtung vorzubereiten, setzen Sie eine weibliche Luer-Lock-Verschlusskappe auf ein Ende des Schlauchs und führen Sie den Schlauch in eine Luer-Lock-Spritze ein. Anschließend stellen Sie die Spritze in die Spritzenpumpe und stellen die Fördergeschwindigkeit auf zwei Milliliter pro Stunde ein.Geben Sie mithilfe einer Spritzenpumpe 20 Mikroliter einer im Verhältnis eins zu eins aus magnetischen Partikeln in Wasser und C 12 E fünf bestehenden Mischlösung in das Röhrchen. Sobald die Flüssigkeitszufuhr in die Testkammer abgeschlossen ist, ziehen Sie nach dem Einbringen einer Luftspalte sechs Mikroliter Luft in das Röhrchen. Beginnen Sie anschließend mit dem Zurückziehen von 180 Mikrolitern reinem C 12 E fünf-Tensid, um die Optik einzurichten.Zunächst bewegen Sie die Spritzenpumpe mit der Schlauchvorrichtung so, dass die Testkammer mit den magnetischen Partikeln im Fokus des Stereomikroskops liegt. Dabei werden gekreuzte Polarisatoren verwendet. Um den Kontrast zwischen der ausgefallenen festen Phase und der flüssigen Phase zu verbessern, platzieren Sie ein Polarisationsfolienblatt auf einer LED-Lichtquelle. Schieben Sie die LED-Lichtquelle unter den an der Spritzenpumpe befestigten Schlauch.Befestigen Sie eine weitere Polarisationsfolie mit Klebeband an der Linse des Stereomikroskops und stellen Sie sicher, dass die beiden Polarisationsfolien um 90 Grad zueinander versetzt sind. Platzieren Sie den Kubikmagneten neben der Testkammer, während der Magnet auf einem Stativ befestigt ist. Sobald sich die magnetischen Kügelchen zu einem Cluster zusammenlagern, beginnen Sie damit, Flüssigkeiten mit einer Zuführungsrate von zwei Millilitern pro Stunde in die Röhre zu pumpen, sodass der Cluster magnetischer Kügelchen aus der Testkammer über die Luftspalte hinweg in die Tensid-Reservoirkammer bewegt wird.Wenn sich der Magnetperlen-Cluster in der Mitte der Reservoirkammer befindet, stoppen Sie das Pumpen an der Spritzenpumpe. Bewegen Sie den Kubikmagneten von dem Rohr weg, damit sich die Magnetperlen trennen und die Diffusionszeit der in dem Magnetperlen-Cluster eingeschlossenen Flüssigkeit verkürzt wird. Sobald die Diffusion und der Phasenwechsel der Flüssigkeit abgeschlossen sind, bringen Sie den Magneten wieder an seinen ursprünglichen Platz neben dem Reservoir, sodass sich die Magnetperlen erneut zu einem Cluster zusammenlagern.Entnehmen Sie mithilfe der Spritzenpumpe die Flüssigkeiten, sodass der Magnetperlen-Cluster aus dem Tensidreservoir über die Luftspalte hinweg zurück in die Testkammer überführt wird. Sobald der Magnetperlen-Cluster die Mitte der Testkammer erreicht hat, stoppen Sie die Spritzenpumpe und entfernen den Kubikmagneten vom Rohr. Nachdem Diffusion und Phasenwechsel der Flüssigkeit abgeschlossen sind, platzieren Sie den Magneten erneut an seiner ursprünglichen Position neben dem Reservoir, damit sich die Magnetperlen erneut zu einem Cluster zusammenlagern.Wiederholen Sie diese Schritte, bis im Testkammer eine Phasenänderung angezeigt wird. Gezeigt ist hier ein Bild der magnetischen Perlen, Wasser und des nichtionischen Tensids C 12 E fünf innerhalb der hydrophoben Schläuche. Während des anfänglichen Transfers der magnetischen Perlen werden diese mithilfe eines externen Würfelmagneten fixiert.Während die Flüssigkeiten hier nach links gepumpt werden, verlassen die Kügelchen die Testkammer und treten in das C 12 E fünf ein. Sobald die magnetischen Kügelchen eintreten, beginnt das Tensidwasser, sich von der Struktur der magnetischen Kügelchen wegzudiffundieren. Nachdem sich die magnetischen Kügelchen fünf Sekunden lang in der Tensidkammer befunden haben, ist zum Zeitpunkt von zehn Sekunden nur eine geringe Phasenänderung zu beobachten.Die magnetischen Kügelchen sind vollständig von dem Tensid umhüllt. Der Phasenwechsel setzt sich bis zur 92. Marke bei vier Minuten fort. Der Phasenwechsel nimmt nach neun Minuten zu.Die horizontale Phasenänderung beginnt abzunehmen, während die Struktur vertikal wächst. Während die Phasenänderung nach 17 Minuten deutlich an Größe abgenommen hat, bleibt nach 25 Minuten nur noch eine geringe Menge der Phasenänderung sichtbar. Hier ist der Anfangszustand einer Wasser-C-12-V-fünf-Testkammer mit magnetischen Kügelchen im Gerät, bevor das Tensid übertragen wurde.Nach sechs Hin-und-her-Übertragungen trat ein Phasenwechsel auf. Umgekehrt wurde bei fehlenden magnetischen Partikeln im Gerät kein Phasenwechsel beobachtet, was beweist, dass die beobachteten Ergebnisse auf einer Mitführung magnetischer Partikel und nicht der Flüssigkeit beruhen. Anhaften an den inneren Wänden der Schläuche beim Durchführen dieses Verfahrens.Es ist wichtig, ausreichend Zeit für den Diffusionsprozess einzuplanen, wenn Flüssigkeiten zwischen benachbarten Reservoiren gemäß diesem Verfahren übertragen werden. Weitere Optionen, wie beispielsweise die Verwendung eines Elektromagneten, können in unser System integriert werden, um zusätzliche Fragestellungen zu untersuchen, etwa wie der Teilungsprozess beschleunigt und die manuelle Handhabung minimiert werden kann. Um dies in einen Kontext zu stellen: Diese äußerst einfache Technik, die im Wesentlichen aus einem Kunststoffrohr, magnetischen Partikeln und einem externen Magneten besteht, wurde bereits zur Trennung unterschiedlicher Flüssigkeiten und zur Erforschung ihres Phasendiagramm-Raums angewandt.Jedoch wird sich die Vielseitigkeit und Einfachheit der Technik bei vielen weiteren Anwendungen auszahlen, vor allem im Bereich der diagnostischen Analyse verschiedener Flüssigkeiten. Durch den Einsatz magnetischer Kugeln zum Transport kleiner Volumina – entweder direkt oder über eine Funktionalisierung der magnetischen Partikel – können wir die Bestandteile der flüssigen Probe analysieren. Und dies hat Anwendungen in zahlreichen Bereichen.Beispielsweise die Trennung und Analyse von Proteinen aus roten Blutkörperchen in Vollblut, in ähnlicher Weise in Urin und vielen anderen Flüssigkeiten, die auf diese Weise mithilfe einer einfachen Technik analysiert werden können, ohne den mit der herkömmlichen Herstellung mikrofluidischer Geräte verbundenen Aufwand und Kosten.

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Forschung

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Engineering

Ingenieurwesen

In diesem Artikel wird eine einfache, quantitative, flüssigen Phase Affinität Capture-Assay vorgestellt. Es ist eine zuverlässige Technik auf der Wechselwirkung zwischen magnetischen Kügelchen und markierten Proteine ​​(zB Nanokörper) einerseits und der Affinität zwischen dem markierten Protein und einem zweiten, markierten Proteins (zB Poliovirus) auf der anderen Seite.

Eine flüssige Phase Affinity Capture Assay Verwendung von magnetischen Kügelchen, um Protein-Protein Interaktion Studie: Das Poliovirus-Nanobody Beispiel

Ein Scanner zum Abbilden magnetischen Teilchen in planar Proben wurde unter Verwendung des planaren Frequenzmisch magnetischen Detektionstechnik entwickelt. Das magnetische Intermodulationsprodukt Antwort von der nichtlinearen hysteresefreie Magnetisierung der Teilchen wird bei einer Zweifrequenzanregung aufgezeichnet. Es kann verwendet werden 2D-Bilder von dünnen biologischen Proben zu nehmen.

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Fertigung-Verfahren für stark magnetisch reagieren Lanthanoid-Ionen chelatisierenden Polymolecular Baugruppen werden vorgestellt. Die magnetische Antwort richtet sich nach der Montage Größe, die durch Extrusion durch Nanopore Membranen zugeschnitten ist. Die Assemblys magnetische Alignability und temperaturbedingte strukturelle Veränderungen werden durch Doppelbrechung Messungen, eine kostenlose Technik, NMR- und kleinen Winkel Neutronenstreuung überwacht.

Fertigung-Verfahren und Doppelbrechung Messungen für die Gestaltung von magnetisch reagieren Lanthanoid-Ionen chelatisierenden Phospholipid-Baugruppen

Dieses Protokoll beschreibt die Synthese von magnetischen Partikeln und Bewertung ihrer DNA-bindende Eigenschaften über dynamische und elektrophoretische Lichtstreuung. Diese Methode konzentriert sich auf die Überwachung von Änderungen der Partikelgröße, ihre Polydispersität und Zeta-Potential der Partikeloberfläche die spielen wichtige Rolle bei der Bindung von Materialien wie DNA.

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Hier präsentieren wir Ihnen ein Protokoll zur ex-Situ und in Situ Untersuchungen von strukturellen Umwandlungen im metallischen Gläsern zu beschreiben. Wir Beschäftigten Atom-basierten Analysemethoden die Hyperfein Wechselwirkungen zu überprüfen. Wir zeigen die Anwendbarkeit der Mössbauer-Spektrometrie und nukleare Vorwärtsstreuung von Synchrotronstrahlung während Temperatur-gesteuerte Experimente.

Methoden der Ex-Situ und In Situ Untersuchungen zu strukturellen Veränderungen: der Fall der Kristallisation von metallischen Gläsern

In diesem Bericht stellen wir ein Protokoll zur Prüfung durch die Anwendung der Magnetfelder in Flüssigkristallen direkte magnetoelectric Effekte, d. h., Induktion von ferroelektrische Polarisation. Dieses Protokoll bietet einen einzigartigen Ansatz, unterstützt durch die Weichheit von Flüssigkristallen, Raumtemperatur Magnetoelectrics zu erreichen.

Messung der magnetisch gestimmten ferroelektrische Polarisation in Flüssigkristallen

Wir berichten über eine hydrothermale Ein-Topf-Synthese von Manganferritclustern (MFCs), die eine unabhängige Kontrolle über materialdimension und -zusammensetzung bietet. Die magnetische Trennung ermöglicht eine schnelle Reinigung, während die Oberflächenfunktionalisierung mit sulfonierten Polymeren sicherstellt, dass die Materialien in biologisch relevantem Medium nicht aggregieren. Die daraus resultierenden Produkte sind für biomedizinische Anwendungen gut positioniert.

Stabile wässrige Suspensionen von Manganferritclustern mit abstimmbarer nanoskaliger Dimension und Zusammensetzung

Ex-situ-Magnetfelduntersuchungen können direkt Bulk- und lokale Informationen über eine magnetische Elektrode liefern, um ihren Ladungsspeichermechanismus Schritt für Schritt aufzudecken. In dieser Arbeit werden Elektronenspinresonanz (ESR) und magnetische Suszeptibilität demonstriert, um die Bewertung paramagnetischer Spezies und ihrer Konzentration in einem redoxaktiven metallorganischen Gerüst (MOF) zu überwachen.

Magnetometrische Charakterisierung von Zwischenprodukten in der Festkörperelektrochemie redoxaktiver metallorganischer Gerüstverbindungen

Wir berichten über einen hybriden Ensemble- und Einzelmolekül-Assay zur direkten Abbildung und Quantifizierung der Bewegung von fluoreszenzmarkierten, vollständig rekonstituierten Cdc45/Mcm2-7/GINS (CMG) Helikase auf linearen DNA-Molekülen, die in einer optischen Falle an Ort und Stelle gehalten werden.

Hybrid-Ensemble und Einzelmolekül-Assay zur Abbildung der Bewegung von vollständig rekonstituiertem CMG

Hier präsentieren wir Protokolle für NMR-Methoden, REstricted DIFfusion von INvisible-Species (REDIFINE) und CONdensate DEtectioN mittels SEmi-solid Magnetization Transfer (CONDENSE-MT), die eine labelfreie, quantitative Charakterisierung biomolekularer Kondensate unter biphasischen Bedingungen ermöglichen, wodurch molekulare Partitionierung, Austauschdynamik, Kondensathydration und Tröpfchenstruktur ohne Sedimentation oder Markierung offenbart werden.

Verwendung von Lösungs-NMR zur Charakterisierung biomolekularer Kondensate unter biphasischen Bedingungen

Lernen Sie die Charakterisierung von Phasendiagrammen mit magnetischen Mikropartikeln als flüssige Träger in einem Lab-in-Tube-System. Diese Methode ermöglicht die präzise Analyse von Phasenübergängen in komplexen Mehrkomponentensystemen.

Phasendiagramm Charakterisierung mit Magnetic Beads als flüssige Träger

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