Name: Methode der Untersuchung Palatal Fusion mit statischen Organ Culture (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-09-19T14:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 58 s
Description: Lernen Sie die Methode der statischen Organkultur zur Untersuchung der Gaumenfusion bei Mausembryonen. Diese Technik ermöglicht die Bewertung von Arzneimittelwirkungen auf die Entwicklung des Gaumens.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Die Autoren haben keine Danksagungen.

Alle beschriebenen Verfahren muss in Übereinstimmung mit den Richtlinien und Vorschriften für den Einsatz von Wirbeltieren, einschließlich der vorherigen Genehmigung durch die lokalen Institutional Animal Care und Verwenden Ausschuss durchgeführt werden. 1. Herstellung von Dissecting Instrumente und Kultur Medien <ol><li> Vorwäsche alle Instrumente in Präparation mit 3% Wasserstoffperoxid und dann Autoklavieren bei 121 ° C für 20 Minuten verwendet werden. Filter BGJb Medien mit einer Antibiotika und Antimykotika-Lösung unter Verwendung eines 0,22 um Porengroße Filter mit Vakuumsauger in einer Haube. </li></ol> 2. Herstellung der Kultur Ausrüstung <ol><li> Schneiden Sie Polycarbonat-Membranfilter, die den Gaumenorgane in kleine Dreiecke unterstützen wird, Spray mit 70% Alkohol und lassen Sie sie trocknen. Bereiten Sie Mitte-Well Organ Culture Dish (60x15 mm), indem Sie einen sauberen und sterilisiert gleichseitigen dreieckigen Drahtgitter (20 mm) über den Organkulturplatte. Dann füllen Sie das auch mit 1 ml BGAK Medienkulturmedien. ANMERKUNG: Das Medium sollte ausreichen, um die Höhe des Gitters ohne Eintauchen der Gaumen erreichen. Platzieren des Membranfilters, glänzenden Seite nach unten, auf die Oberseite des Gitters (3-4 Membranen pro Raster) .Depending auf das Experiment, kann die Behandlung (Proteine, Antikörper oder Inhibitoren) für die Medien hinzugefügt werden </li></ol> 3. Mouse Embryo Gewinnung und Vorbereitung für die Kultur <ol><li> Zu Wildtyp-Maus-Embryonen erhalten, verwenden zeitlich 13,5 schwangere CD-1-Maus genetischen Hintergrund Belastung. Reinigen Sie das Sezierung Bereich mit 70% Ethanol. Hinweis: andere Mäusestämme verwendet werden. Wir bevorzugen CD-1-Mäusen wegen der größeren Wurfnummer. </li><li> Euthanize schwangeren Mäusen bei E13.5 dpc (Tage nach dem Koitus) mit 5% Isofluran durch Genickbruch folgte zum Tode mit zugelassenen Protokolle zu versichern. </li><li> Spray 70% Ethanol auf der ventralen Bauchoberfläche zu vermeiden, dass die Bauchhaarstock zu den Instrumenten. Öffnen Sie dann die Bauchhöhle ventralmit einem scharf stumpfen Betriebs Schere und Mikro-Pinzette die Gebärmutter zu lokalisieren. Mit den Zangen, heben Sie die gesamte Gebärmutter und trennen sie vom Körper durch Schneiden an der Gebärmutterkörper und an den Spitzen der Uterushörner mit Licht Betriebs Schere. </li><li> Legen Sie die Gebärmutter auf einem sauberen Papiertuch über Eis (Nach dem Protokoll Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren). Decken Sie die Gebärmutter mit einem anderen sauberen Papiertuch, um eine Kontamination zu verhindern. Sterilisieren der Instrumente mit 70% Ethanol Spray vor der weiteren Verwendung. Der Uterus und die Embryonen in das Labor auf Eis transportiert. </li><li> In einem offenen Laminarströmungshaube, sorgfältig machen eine kleine Öffnung im Dottersack mit spitz stumpf Betriebs Schere und Mikro-Pinzette. Stellen Sie die Öffnung breiter und dann drücken Sie sie vorsichtig, um den Embryo aus dem Dottersack exteriorisieren. </li><li> Transfer der Embryonen sofort auf eine Petri-Schale mit kalter Phosphat-gepufferter Saline 1X (PBS), pH 7,4. Um die richtige Bühne, ex versichern,Amin der Embryo unter einem Binokular für den Körper, Kopfgröße und Leben Morphologie. HINWEIS: Embryonen, die nicht im richtigen Entwicklungsstadium befinden, nicht für das Experiment verwendet. </li></ol><img alt="Figur 2" src="/files/ftp_upload/53063/53063fig2.jpg" /> Abbildung 2 Gliedmaßen Morphologie. Die Vorder- und Hinterschenkel auf den Grad der Gurtband Einbuchtung zwischen den Ziffern geprüft. Bei E13.5 sind alle stelligen Verdichtungen prominent, mit der Gurt und distale Einkerbungen zwischen den Ziffern erscheinen sehr deutlich. Die Hinter Ziffern hinten von einem halben Tag 12 Obere Reihe:. Vorderbein, untere Reihe: Hintergliedmaße. 4. Am Gaumen Dissection <ol><li> Setzen Sie einen Embryo zu einem Zeitpunkt, in einer Petrischale mit PBS unter dem Binokular. Mit Hilfe von kleinen Präparierscheren und Pinzette trennen den Kopf vom Körper der Embryonen. </li><li> Sorgfältig halten Sie die Maus Schädels über Augenhöhe mit einer Pinzette (Vermeidungdie Oberkieferfortsatz) machen zwei Einschnitte auf beiden Seiten der Lippenlinie. Dann entfernen Sie den Unterkiefer und Zunge. Isolieren Sie die Oberkieferfortsatz Region, indem ein Schnitt in Augenhöhe und entfernen Sie das Gehirn, Augen, Nasenscheidewand und der angrenzenden Gewebe. </li></ol><img alt="Figur 3" src="/files/ftp_upload/53063/53063fig3.jpg" /> Abbildung 3. Am Gaumen Gewebe von 13,5 Embryonen, wenn die Gaumen Regalen erhöht hatte gesammelt, aber nicht Kontakt hergestellt. Die Gaumen Regale wurden in Organkultur auf einem Filter an der Luftmedienschnittstelle 72 h im statischen Modell gelegt. (A) Niveau Dissektion auf E13.5 Embryos. (B) Blaue Sterne abzugrenzen Bereichen, um das Gewebe mit einer Pinzette bei der Präparation zu halten. (C) Blick seziert Gaumen Regalen auf einem Trapezfiltermembran platziert. (D) Seitenansicht der Kulturschale nach der Platzierung der seziert Gaumen und Zugabe von Kulturmedien. <ol start="3"><li> Legen Sie die Gaumen oralen Seite nach oben und entfernen Sie die Nasenscheidewand und das Gewebe um ihn herum, halten die primäre Gaumen befestigt zu orientieren sie von vorne nach hinten zu helfen. Mit einem Löffel Spachtel und sehr sorgfältig übertragen Sie die Gaumen Regalen (Nasenseite nach unten) auf die vorbereiteten Filter auf die Netze in den Kulturschalen. HINWEIS: Stellen Sie die Lautstärke von Medien, um eine ordnungsgemäße Luft-Media-Schnittstelle zu ermöglichen. </li><li> Unter dem Stereomikroskop, sezieren die primäre Gaumen und mit Hilfe einer Pinzette, um die Gaumen Regalen nahe beieinander zu platzieren. Die Gaumen Regale werden nicht schmelzen, wenn sie nicht in Kontakt gebracht. Schneiden Sie die dreieckigen Membranfilter, wo der vordere Teil des Gaumens befindet. Die Trapezform wird bei der Lokalisierung der vordere Teil des Gaumens zu unterstützen. </li><li> Kultur Gaumen Regale einzeln oder mit zwei oder drei in der gleichen Organkulturschale mit BGJb Kulturmedien. </li></ol> 5. Die Kultivierung Maus Palatal Regale <ol><li> Inkubieren Sie die tissues bei 37 ° C in einer befeuchteten Gasgemisch (5% CO 2 und 95% Luft) für 72 Stunden, und ändern Sie das Medium alle 24 Stunden. </li></ol> 6. Am Gaumen Verarbeitung für die histologische Analyse <ol><li> Befestigen Sie die Gaumen nach 72 Stunden in Kultur mit 4% Formaldehyd / phosphatgepufferter Kochsalzlösung O / N bei 4 ° &#160; Dann wurden vorsichtig mit einer Transferpipette waschen das Gewebe in der Kulturschale mit PBS. Wickeln Sie die Gaumen in einem Stück Laborwischtücher und in Einbettkassetten. HINWEIS: Wrapping den Gaumen in Laborwischtücher zu verhindern den Verlust während des Entwässerungsprozesses. </li><li> Dehydratisierung des Gewebes folgenden 70%, 80% und bis zu 100% Ethanol wäscht für 1 h, gefolgt von der regulären Paraffineinbettung Verfahren. Zum Einbetten, platzieren Sie den vorderen Teil des Gaumens mit Blick auf das Tablett. </li><li> Schneiden Sie Serien 6 um Abschnitte in der koronale Orientierung von vorne nach hinten. Eine komplette Abschnitt Gaumen 350-450 Abschnit ergebenons. Färben die Schnitte mit Hämatoxylin und Eosin (H &amp; E). 10 Note jedes 20. Abschnitt Verwendung der zuvor beschriebenen Mittlere Fusion Score (MFS) Skala (Tabelle 1). 8 </li></ol>

<ol><li>Nawshad, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Palatal+seam+disintegration+to+die+or+not+to+die+that+is+no+longer+the+question%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+dynamics+an+official+publication+of+the+American+Association+of+Anatomists%22%5BJournal%5D)">Palatal seam disintegration to die or not to die that is no longer the question.</a> Developmental dynamics an official publication of the American Association of Anatomists. 237, 2643-2656 (2008).</li>
<li>Strong, E. B., Buckmiller, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Management+of+the+cleft+palate%5BTitle%5D)+AND+%22Facial+plastic+surgery+clinics+of+North+America%22%5BJournal%5D)">Management of the cleft palate.</a> Facial plastic surgery clinics of North America. 9, 15-25 (2001).</li>
<li>Witt, P. D., Marsh, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advances+in+assessing+outcome+of+surgical+repair+of+cleft+lip+and+cleft+palate%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+reconstructive+surgery%22%5BJournal%5D)">Advances in assessing outcome of surgical repair of cleft lip and cleft palate.</a> Plastic and reconstructive surgery. 100, 1907-1917 (1997).</li>
<li>4miloro, principles of oral and maxillofafcial surgery. 209, 231-249 (1984).</li>
<li>Mima, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+the+epithelial+adhesion+molecule+CEACAM1+is+important+for+palate+formation%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">Regulation of the epithelial adhesion molecule CEACAM1 is important for palate formation.</a> PloS one. 8, e61653(2013).</li>
<li>Carette, M. J., Ferguson, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+fate+of+medial+edge+epithelial+cells+during+palatal+fusion+in+vitro+an+analysis+by+DiI+labelling+and+confocal+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Development+%28Cambridge%2C+England%29%22%5BJournal%5D)">The fate of medial edge epithelial cells during palatal fusion in vitro an analysis by DiI labelling and confocal microscopy.</a> Development (Cambridge, England). 114, 379-388 (1992).</li>
<li>Ferguson, M. W., Honig, L. S., Slavkin, H. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differentiation+of+cultured+palatal+shelves+from+alligator+chick+and+mouse+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22The+Anatomical+record%22%5BJournal%5D)">Differentiation of cultured palatal shelves from alligator chick and mouse embryos.</a> The Anatomical record. 209, 231-249 (1984).</li>
<li>San Miguel, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ephrin+reverse+signaling+controls+palate+fusion+via+a+PI3+kinase+dependent+mechanism%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+dynamics+an+official+publication+of+the+American+Association+of+Anatomists%22%5BJournal%5D)">Ephrin reverse signaling controls palate fusion via a PI3 kinase dependent mechanism.</a> Developmental dynamics an official publication of the American Association of Anatomists. 240, 357-364 (2011).</li>
<li>Kang, P., Svoboda, K. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PI+3+kinase+activity+is+required+for+epithelial+mesenchymal+transformation+during+palate+fusion%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+dynamics+an+official+publication+of+the+American+Association+of+Anatomists%22%5BJournal%5D)">PI 3 kinase activity is required for epithelial mesenchymal transformation during palate fusion.</a> Developmental dynamics an official publication of the American Association of Anatomists. 225, 316-322 (2002).</li>
<li>RD, L. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aRD%2C+L+%22Histopathologic+Technic+and+Practical+Histochemistry%22">Histopathologic Technic and Practical Histochemistry</a>. , 3rd edn, McGraw Hill Book Co. New York. (1965).</li>
<li>Kaufman, M. H. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKaufman%2C+MH+%22The+Atlas+of+Mouse+Development%22">The Atlas of Mouse Development</a>. , Elsevier. (1992).</li>
<li>Taher, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+gene+expression+analysis+of+murine+limb+development%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">Global gene expression analysis of murine limb development.</a> PloS one. 6, e28358(2011).</li>
</ol>

Den Autoren stehen keine konkurrierenden finanziellen Interessen gegenüber.

Das Protokoll in diesem Artikel stellt ein Verfahren zum Präparieren Gaumen Regalen von Embryonen im embryonalen Tag 13,5. Palatinalen Regalen aus Mausembryonen wurden in einem Serum-freien Kulturmedien in einer Atmosphäre von 95% O 2 5% CO 2 bei 37 ° C. Erfolgreiche palatinalen Dissektion ist kritisch abhängig von mehreren Faktoren in jedem Schritt während des Verfahrens aus dem embryonalen Zeit der Mäuse euthanasiert zu der Beendigung der Kultur. Einer der wichtigsten Faktoren für Gaumenfusion is...

Gesichtsspalten sind die vorherrschenden kraniofaziale Missbildungen. Auch bei Berücksichtigung aller möglichen kraniofazialen Defekten, dies sind die zweithäufigste Geburt Anomalien bei Neugeborenen 2. Gaumenspalten bei ungefähr 1 in jeden 700 Geburten in den Vereinigten Staaten (US) jedes Jahr auftreten, ist die Inzidenz von Gaumenspalte gleich 475 Kinder mit Gaumenspalten pro Monat oder 15 Kinder mit Spalten pro Tag 3 geboren. Etwa 1% der Kinder geboren auf der ganzen Welt jedes Jahr weisen irgendeine Form von kraniofazialen Dysmorphien. Klüften des Gaumens und der Lippen brauchen einen sehr teuren und komplizierten Verfahren mit lebenslangen Folgen für die Patienten, die diese Anomalie haben. Die geschätzten Kosten für jeden Patienten mit oralen Spalt beträgt ca. 100.000 $ 4. Die Behandlung eines Patienten mit Lippen- und Gaumenspalte erfordert ein Team von Ärzten einschließlich Schädelchirurgen, HNO-Ärzte, Genetiker, Anästhesisten,Logopäden, Ernährungswissenschaftler, Kieferorthopäden, Zahntechniker, Psychologen, Neurochirurgen und Augenärzten. In palatogenesis, stellt sich die sekundären Gaumen gepaart Auswüchse, die ursprünglich vertikal wachsen und unterziehen Gaumenregal Höhe über den Zungenrücken. Nach der Erhebung, wachsen die paarigen Gaumen Regalen in Richtung der Mittellinie (bei E14.5 -E15 bei Mäusen und Woche 9 bei Menschen). Der mediale Rand Epithel (MEE), die die Lagerspitze deckt haftet Bildung der Mittellinie epithelialen Naht. Dies wird durch epitheliale zu mesenchymale Transition und / oder Apoptose gefolgt, um mesenchymale Fluss zu ermöglichen. Haftung der gegenüberliegenden MEE ist ein wesentliches Ereignis, dessen Veränderung bewirkt, Gaumenspalte. Allerdings untersucht nur wenige Studien, die Anfangshaftung der Gaumen Regalen 5. Die harten Gaumen Formen durch Differenzierung von mesenchymalen Zellen in Osteoblasten. Die abnorme Entwicklung des Gaumens können Schlüssel zu erzeugent Gaumen mit oder ohne Beteiligung der Lippe. Gaumen Organkulturtechniken hatte weithin für viele Labors in den letzten 30 Jahren 6,7 verwendet. In diesem Protokoll beschreiben wir im Detail ein Verfahren zur Gaumen Dissektion und statischer Organkultur. Der Vorteil eines bewegungsOrganKultur ist, dass es Gaumen Regalen zu verschmelzen. Diese Technik war erfolgreich in unserem Labor für viele Fusion und Signalisierung Experimenten 8,9 verwendet. Aber der Schutzumfang der Technik ist beträchtlich und kann verwendet werden, wann immer statische Organkultursystem erforderlich ist, einschließlich der Bewertung der Reaktionen auf exogene chemische Mittel sein, die Auswirkungen regulatorischer Wachstumsfaktoren in verschiedenen Bahnen und bestimmten Proteinen. <img alt="Abbildung 1" src="/files/ftp_upload/53063/53063fig1.jpg" /> Abbildung 1. Maus Palatogenesis. Entwicklungsstadien der Mäuse Gaumen. (BF) Scanning elecTRON Mikroskopische Aufnahmen (SEM) der Sekundär Gaumen an repräsentativen Entwicklungszeiten. Rote Pfeile: zeigen den Anfangsteil der Gaumen Adhäsion und Fusion. Gelbe Pfeile: Punkt, um den Raum zwischen den primären und sekundären Gaumen, die nach der Fusion verschwinden (nachgedruckt von Kaufman 11 mit Genehmigung von PLoS ONE).

<table><tbody><tr><td>BGJb</td><td>Invitrogen</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Penicillin/Streptomycin</td><td>Lonza Inc.</td><td>17-602E</td><td>100X</td></tr><tr><td>Petrischalen</td><td>VWR</td><td>25384-088</td><td>100 x15 mm</td></tr><tr><td>Mittelschacht-Organkulturschale</td><td>Falcon&nbsp;</td><td>#353037</td><td>60 x15 mm</td></tr><tr><td>Dreieckiges Drahtgitter</td><td>Sonderanfertigung aus Edelstahldrahtgeflecht, um gut in die Organkulturschale zu passen. &nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Polycarbonat-Filter</td><td>GE& Wasser- und Prozesstechnologien</td><td>K04BP04700</td><td>Schwarz 0,4 Mikron, 47 mm</td></tr><tr><td>Stereomikroskop</td><td>ZEISS&nbsp; Stemi SR</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kulturhaube</td><td>NUAIRE Laminar Flow</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mikrodisparierzange</td><td>Dumont Medical</td><td></td><td>#5</td></tr><tr><td>Mikrodisparierschere</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>INS14003-G</td><td>Vannas Schere, gerade, 8 cm lang, 0,1 mm Spitzen, 5 mm Klingen, in Deutschland hergestellte</td></tr><tr><td>Mikrodisparierschere</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>INS500086</td><td>Vannas Schere, gerade, 8,5 cm lang, 0,025 mm x 0,015 mm Spitzen, 7 mm Klingen</td></tr><tr><td>Mikrodisparierschere</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>INS14127-G</td><td>Federschere gebogen gebogen, 10,5 cm lang, 8 mm Klingen, in Deutschland hergestellt</td></tr><tr><td>Chirurgische Currete (Löffelspatel)</td><td>Hu-friedy</td><td></td><td>CM 2/4</td></tr><tr><td>Protektor Laborhaube</td><td>Labconco</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Inkubator</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td>Farma</td></tr><tr><td>Series11 Wasserjacke</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>CO2 Inkubator</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>PBS&nbsp;</td><td>GIBCO</td><td>10010-023&nbsp;</td><td>1-mal</td></tr><tr><td>Faseroptische Lichtquelle</td><td>Faser-Licht&nbsp; Dolan-Jenner</td><td>PL-750</td><td></td></tr><tr><td>Einbettkassette&nbsp;</td><td>Statlab</td><td>EC301</td><td></td></tr><tr><td>Kim Tücher</td><td>VWR</td><td>470173-504</td><td></td></tr></tbody></table>

methode der untersuchung palatal fusion mit statischen organ culture

Method of Studying Palatal Fusion using Static Organ Culture

Lippen- und Gaumenspalte gehören zu den am häufigsten von allen Geburtsfehler. Die sekundären Gaumen Formen aus mesenchymalen Regale mit Epithel bedeckt, die die Mittellinie epithelialen Naht haftet (MES). Die Theorien besagen, dass MES-Zellen folgen eine epitheliale zu mesenchymale Transition (EMT), Apoptose und Migration, so dass ein fusioniertes Gaumen 1. Vollständigen Zerfall der MES ist die letzte wesentliche Phase der Gaumenzusammenfluss mit umliegenden mesenchymalen Zellen. Wir stellen ein Verfahren zum Gaumen Organkultur. Die in vitro-Protokoll entwickelt, ermöglicht die Erforschung der biologischen und molekularen Prozesse bei der Fusion. Die Anwendungen dieser Technik sind zahlreich, darunter Auswertung der Antworten auf exogene chemische Mittel, die Auswirkungen der regulatorischen und Wachstumsfaktoren und spezifische Proteine. Palatinalen Organkultur hat eine Reihe von Vorteilen, einschließlich Manipulation in unterschiedlichen Stadien der Entwicklung, die nicht mit in vivo-Studien ist möglich.

Die Technik kann auf verschiedene Arten von experiments.The folgende Studie angewendet werden sollte die teratogene Wirkung von Nikotin in vitro an palatinalen Fusion zu testen. Zwei Mäusestämme wurden für dieses Experiment verwendet wurde CD1 und C57.Palatal Gewebes mit 0,06 und 6 mM Konzentrationen von Nikotin Hemisulfat behandelt. Es wurde beobachtet, dass palatalen Fusions Muster und Zeitpunkt wurden in den zwei unterschiedlichen Stämmen unterschiedlich. In CD1-Mäusen, Gaumen Regalen aus der Kontrollgruppe ...

Studium der Gaumen Entwicklung werden durch das Auftreten von Gaumenspalte, einem Geburtsfehler, die eine enorme gesundheitliche Belastung auferlegt und hinterlassen bleibende Entstellung motiviert. Wir zeigen hier eine Technik zur Kultur palatinalen Regalen, die verwendet werden können, um verschiedene Signalwege in palatinalen Entwicklung und Fusion studieren.

Methode der Untersuchung Palatal Fusion mit statischen Organ Culture

Cleft lip and palate are among the most common of all birth defects. The secondary palate forms from mesenchymal shelves covered with epithelium that ...

Das allgemeine Ziel dieses Verfahrens besteht darin, eine Methode zur Dissektion des Gaumens und zur statischen Organkultur zu beschreiben. Dies wird erreicht, indem zunächst die Maus-Embryonen gesammelt werden. Im zweiten Schritt wird das Unterkiefer entfernt und der Gaumen dissekiert.Im letzten Schritt werden die Gaumensegel in einer statischen Organkultur angelegt. Letztendlich können die Wirkungen spezifischer Substanzen von Interesse auf die Gaumensynthese bewertet werden, indem die durchschnittliche Fusionswertung der Kultur ermittelt wird. Diese Methode kann helfen, zentrale Fragen zur Gaumentwicklung zu beantworten, beispielsweise, welche Faktoren während des Fusionsprozesses beteiligt sind.Obwohl diese Methode Einblicke in die Gaumenschlussfusion bei säugetierlichen Mäusen ermöglichen kann, ist sie auch auf andere Modellorganismen wie Hühnergaumen anwendbar. Meine Doktoranden Maria Serrano und Israel Ibrahim werden diese Methode zur Gewinnung von Maus-Embryonen demonstrieren.Reinigen Sie zunächst die ventrale Bauchfläche einer 13,5 Tage post coitum schwangeren Maus mit 70 % Ethanol. Öffnen Sie dann mit scharfen, stumpfen Operationschere und mikrochirurgischer Pinzette die Bauchhöhle. Heben Sie anschließend den gesamten Uterus an und schneiden Sie mit leichter Operationschere am Uteruskörper und an den Spitzen der Uterushörner, um den Uterus aus der Körperhöhle zu lösen, wobei Sie mit Ethanol sterilisierte scharfe, stumpfe Operationschere und mikrochirurgische Pinzette verwenden.Erstellen Sie vorsichtig eine erste kleine Öffnung im Dottersack. Erweitern Sie dann die Öffnung und drücken Sie behutsam auf das Dottersackgewebe, um die Embryonen nach außen zu stülpen. Überführen Sie die Embryonen anschließend unverzüglich in eine Petrischale, die kalte PBS enthält. Um die Gaumen einzeln zu präparieren, übertragen Sie die Embryonen unter einem Stereomikroskop in eine neue Petrischale mit frischer PBS. Nachdem der Kopf des ersten Embryos entfernt wurde, mit der Pinzette vorsichtig den Maus-Schädel oberhalb der Augen erfassen und beidseits entlang der Lippenlinie zwei Einschnitte vornehmen. Das Unterkieferbein und die Zunge entfernen. Um danach die Region des maxillären Fortsatzes zu isolieren, einen Schnitt auf Augenhöhe durchführen und Gehirn, Augen, Nasenscheidewand und angrenzendes Gewebe entfernen.Platzieren Sie die Gaumenbögen mit der Nasalseite nach oben und entfernen Sie das Nasenseptum und das umgebende Gewebe, wobei das primäre Gaumen beibehalten wird, um die Orientierung beizubehalten. Übertragen Sie anschließend die Gaumenbögen mit der Nasalseite nach unten mithilfe einer Löffelspatel vorsichtig auf einen vorbereiteten Filter, der auf einem Gitter in einer Kulturschale mit Medium liegt. Stellen Sie das Mediumsvolumen so ein, dass eine geeignete Luft-Medium-Grenzfläche entsteht.Danach unter dem Stereomikroskop die dreieckige Membran schneiden, an der sich der vordere Teil des Gaumens befindet. Das Gewebe im vorderen Bereich orientieren und mit einer Pinzette die Gaumenbögen nahe zueinander platzieren. Schließlich bis zu drei Präparate in derselben Organkultur-Schale kultivieren, wobei BGJB-Kulturmedium bei 37 Grad Celsius und 5 % Kohlendioxid über einen Zeitraum von 72 Stunden verwendet wird; das Medium dabei alle 24 Stunden wechseln.In diesem Experiment wurde die teratogene Wirkung von Nikotin auf die Gaumenschlussfusion in vitro anhand von zwei verschiedenen Mäusestämmen untersucht, wobei die Gaumen von CD1-Mäusen isoliert wurden. Die kontrollbehandelten Gaumenschrägen setzten die Fusion zeitabhängig fort, während die mit Nikotin behandelten Gaumen eine verzögerte Fusion zeigten, insbesondere bei einer Nikotinkonzentration von sechs Millimolar in den Gaumen von C57-Mäusen. Die Gaumenschrägen in der Kontrollgruppe fusionierten ebenfalls innerhalb von 48 Stunden zeitabhängig, jedoch wiesen die Gaumenschrägen dieser Mäuse, die lediglich mit 0,6 Millimolar Nikotin behandelt wurden, eine beeinträchtigte Fusion im Vergleich zu den Gaumenschrägen der Kontrolltiere auf, was auf ein höheres Maß an Empfindlichkeit der C57-Mäuse gegenüber den Wirkungen der Nikotinbehandlung im Vergleich zu den CD1-Tieren hindeutet.Während der Durchführung dieser Methode ist es sehr wichtig, das Gewebe vorsichtig zu handhaben. Nach dem Anschauen dieses Videos sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie eine statische Organkultur durchgeführt wird.

method-of-studying-palatal-fusion-using-static-organ-culture

Research

Forschung

JoVE Journal

Developmental Biology

Entwicklungsbiologie

Dieses Verfahren beschreibt eine Methode zur Isolierung und Kultivierung der murinen Corti-Organ mit oder ohne die Spirale Limbus und Spiralganglions Neuronen. Wir zeigen auch ein Verfahren zur Expression eines exogenen Reporter-Gen in das Corti-Organ Explantat durch Elektroporation.

Primäre Kultur und Plasmid Elektroporation der Murine Corti-Organ.

Wir präsentieren ein Protokoll für die strukturelle und Analyse der Zusammensetzung der natürlichen oralen Biofilm aus kieferorthopädischen Apparaturen...

Oral Biofilm Analyse Palatal Expander durch Fluoreszenz in situ Hybridisierung und konfokale Laser Scanning Mikroskopie

Wir wollten eine reproduzierbare Protokoll für die Isolierung und die Pflege langfristiger Kulturen von humanen pilzförmigen Papillen Geschmack Zellen zu entwickeln. Zellen aus menschlichen fungiformen Papillen durch Biopsie gewonnen wurden erfolgreich in der Kultur mehr als acht Durchgängen (12 Monate) aufrecht erhalten, ohne Verlust der Lebensfähigkeit.

Isolierung und Kultivierung humaner Zellen pilzförmige Papillen Geschmack

Hier präsentieren wir ein Protokoll zur Kultivierung von Rachenbögen, um die Biologie von Herz- und Muskelvorläuferzellen und ihrer Mikroumgebung zu untersuchen.

Ex-vivo-Kultur von Schlundbögen auf Herz und Muskelvorläuferzellen und ihre Nische Studieren

Hier präsentieren wir ein Protokoll für die Live-Bildgebung der Maus-Sekundär-Gaumen-Fusion mit konfokaler Mikroskopie. Dieses Protokoll kann in Kombination mit einer Vielzahl von fluoreszierenden Reporter-Maus-Linien und mit Pfad-Inhibitoren für mechanistische Einsicht verwendet werden. Dieses Protokoll kann für die Live-Bildgebung in anderen Entwicklungssystemen angepasst werden.

Live Imaging der Maus Sekundärer Gaumen Fusion

Dreidimensionale organotypischen Kulturen der murinen Utricle und Cochlea in optisch klar Kollagen ich bewahren angeborene Gewebe Morphologie Gele ermöglichen für mechanische Stimulation durch Anpassung der Matrix Steifigkeit und Virus-vermittelten gen Lieferung zu ermöglichen.

Dreidimensionale organotypischen Kulturen der vestibulären und akustische Sinnesorgane

Diese Arbeit beschreibt Methoden zur Gewebevorbereitung, Färbung und Analyse von ganzen Fungiform-, Zirkumvallat- und Gaumengeschmacksknospen, die konsistent ganze und intakte Geschmacksknospen (einschließlich der Nervenfasern, die sie innervieren) ergeben und die Beziehungen zwischen Strukturen innerhalb der Geschmacksknospen und der umgebenden Papille aufrechterhalten.

Färbung, Visualisierung und Analyse von Fungiform-, Circumvallate- und Gaumengeschmacksknospen

Wir präsentieren ein Protokoll für die Isolierung und Kultur von primären embryonalen palatalen mesenchymalen Zellen der Maus für die Zeitraffer-Bildgebung von zweidimensionalen (2D) Wachstums- und Wundreparaturassays. Wir stellen auch die Methodik für die Analyse der Zeitraffer-Bildgebungsdaten zur Verfügung, um die Zellstrombildung und die Richtungsmotilität zu bestimmen.

Isolierung und Zeitraffer-Bildgebung von primären embryonalen palatalen Mesenchymzellen der Maus zur Analyse kollektiver Bewegungsattribute

Das vorliegende Protokoll beschreibt die Isolierung und Kultur von oralen Keratinozyten aus dem erwachsenen Mausgaumen. Eine Bewertungsmethode unter Verwendung von Immunfärbung wird ebenfalls berichtet.

Isolierung und Kultur von primären oralen Keratinozyten aus dem erwachsenen Mausgaumen

Hier wird ein detailliertes Protokoll vorgestellt, um ein in vitro Organoidmodell aus menschlichen Nasenepithelzellen zu beschreiben. Das Protokoll bietet Optionen für Messungen, die Standardlaborgeräte erfordern, mit zusätzlichen Möglichkeiten für spezielle Geräte und Software.

Kultur und Bildgebung von humanen nasalen Epithelorganoiden

Lernen Sie die Methode der statischen Organkultur zur Untersuchung der Gaumenfusion bei Mausembryonen. Diese Technik ermöglicht die Bewertung von Arzneimittelwirkungen auf die Entwicklung des Gaumens.

Methode der Untersuchung Palatal Fusion mit statischen Organ Culture

Weitere Videos entdecken