Name: Bewertung der perigenital Sensitivität und Prostatic Mastzellaktivierung in einem Mausmodell der Neonatal Maternal Separation (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-08-13T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 49 s
Description: Erfahren Sie, wie früher Lebensstress die perigenitale Sensitivität und Mastzellaktivierung in der Prostata von C57BL/6-Mäusen beeinflusst. Diese Methode nutzt neonatale mütterliche Trennung und Von-Frey-Tests.

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Die Autoren danken Janelle Ryals, Rachel Supple und Frank Wang für ihre technische Unterstützung. Diese Arbeit wurde unterstützt durch die NIH-Zuschüsse R03 DK080182 (JAC), R01 DK099611 (JAC), R01 DK103872 (JAC), das Center of Biomedical Research Excellence (COBRE) Stipendium P20 GM104936 (JAC), Start-up-Fonds und die Kernunterstützung durch den Kansas Institutional Development Award (IDeA) P20 GM103418, die Kernunterstützung durch das Kansas IDDRC P30 HD002528 und das Madison and Lila Self Fellowship Program (ANP).

Alle in diesem Protokoll beschriebenen Experimente entsprechen den NIH-Richtlinien im Einklang mit den von der University of Kansas Medical Center Institutional Animal Care und Verwenden Committee festgelegten Richtlinien. 1. Neugeborene von Müttern Separation (NMS) <ol><li> Überwachen Sie schwanger Dämme täglich Wurf Geburten. Hinweis: Der Tag der Wurf ist geboren wird als P0. </li><li> Auf P1, entfernen Sie die Staumauer aus dem Käfig und in einen sauberen Sekundärbehälter. </li><li> Reiben Sie eine Handvoll Betten zwischen clean-behandschuhten Händen, um Geruch des eigenen Käfig zu halten. </li><li> In einer Tiefe von 1-2 cm von der Heimkäfig Betten in einem sauberen, entsprechend gekennzeichneten 2 L Becherglas. In etwa der Hälfte der zusätzliche Bereicherung Einstreu, die im Käfig vorhanden ist, zB nestlet, Knitterpapier, um das Becherglas. </li><li> Sanft legen alle Welpen aus einer einzigen Wurf, einzeln, im selben Becher. </li><li> Sofort platzierendas Becherglas in einem Brutschrank bei 33 ° C und 50% Luftfeuchtigkeit für 180 min gehalten. </li><li> Entfernen Sie die Staumauer aus dem Sekundärbehälter und zurück sie in den Käfig. Bringen Sie den Käfig auf seine entsprechende Position innerhalb des Gehäuses Vivarium. </li><li> Wiederholen Sie diesen Vorgang für jeden Wurf unterziehen NMS, mit sauberen Handschuhen und sekundären Behälter für jeden Wurf / Damm. </li><li> Am Ende des 180 min Trennperiode geben die Würfe in ihre Heimatkäfige in der gleichen Reihenfolge wie sie entfernt wurden. </li><li> Rufen Sie den Käfig des ersten Wurf, die früher in den Tag getrennt wurde. Entfernen Sie die Staumauer aus dem Käfig und in einen sauberen Sekundärbehälter. </li><li> Nehmen Sie das erste Becherglas aus dem Inkubator und reiben Sie eine Handvoll Betten zwischen sauberen Handschuhen, um Geruch des eigenen Käfig zu halten, während der Handhabung der Welpen. </li><li> Sanft bewegen die Welpen einzeln aus dem Becherglas auf den Käfig. </li><li> Senden Sie alle Anreicherungs- und Bettwäsche in den Becher, um die verbleibendendie Heimat Käfig. </li><li> Bringen Sie den Damm von der Sekundärbehälter an den Käfig und lege sie in ihre entsprechenden Gehäuse Ort innerhalb des Vivarium. </li><li> Mit Wasser spült das Becherglas und wieder in den Inkubator. Verwenden Sie die gleiche Becher für jeden Wurf der gesamten Trennverfahren. </li><li> Wiederholen Sie diesen Vorgang für jeden Wurf unterziehen NMS in der gleichen Reihenfolge, wie sie in den Inkubator gestellt wurden. </li><li> Wiederholen Sie diesen Vorgang für jede ganze Wurf unterzieht NMS jeden Tag durch P21. </li><li> Entwöhnen NMS und naiv Welpen auf P22, indem Wurf des gleichen Geschlechts zusammen in saubere Käfige komplett mit Nahrung und Wasser. Naive Welpen geboren werden sollte und unter den gleichen Bedingungen wie NMS Mäusen untergebracht, aber keine zusätzliche Handhabung außerhalb der normalen Tierhaltung Aufgaben zu unterziehen. </li></ol> 2. perigenital Mechanische Empfindlichkeit <ol><li> von Frey Geräte-Setup <ol><li> Bringen Sie die Maus, um den Testraum und lassen Sie sie für 30 akklimatisierenmin, während übrigen in ihre Käfige. </li><li> Bereiten Sie den Testbereich, indem eine absorbierende Unterlage unter einer erhöhten Drahtgitter-Top-Tisch (79 cm x 28 cm), die genügend Platz bietet, damit der Prüfer von der Unterseite ohne erschreckte die Mäuse, ca. 55 cm in der Höhe zu nähern. </li><li> Platzieren Sie bis zu 12 Mäuse, individuell, nach klaren, perforierte Kunststoffkammern (11 cm x 5 cm x 3,5 cm) auf der Oberseite des Drahtgittertisch. Legen Sie einen schweren Gegenstände auf der Kammern an Mäuse an der Flucht zu verhindern. </li><li> Akklimatisieren der Mäuse für weitere 30 min auf dem Bildschirm vor Wegziehschwelle Beurteilung. </li></ol></li><li> Perigenital Mechanische Empfindlichkeit Beurteilung <ol><li> Führen Sie die up-down-Methode mit einem Standard-Satz von abgestuften von Frey-Monofilamenten 43. Verwenden Sie die folgenden Monofilamente: 1,65 g, 2,36 g, 2,83 g, 3,22 g, 3,61 g, 4,08 g, 4,31 g und 4,74 g. <ol><li> Halten Sie die Basis des 3,22 g Monofile und setzen den eingefahrenen monoFilament. Hinweis: Einige Modelle können nicht über eine zurückgezogene Monofilament. </li><li> Situate die Sonde, so daß das Monofilament vertikal ausgerichtet und, wenn die Maus-Meldung, unbeweglich, und sein Körpergewicht gleichmäßig auf die Hinterpfoten verteilt es auf der linken oder rechten Seite der Hodensack, die Vermeidung der Mittellinie, bis eine leichte Biegung im Filament beobachtet. </li><li> Halten Sie das Monofilament in Platz für 10 Sekunden oder bis das Tier zeigt eine positive Reaktion. Anmerkung: Eine positive Reaktion wird als einen flotten Ruck oder Sprung in Reaktion auf Monofil Anwendung oder Lecken oder Beißen Verhalten gegenüber dem Monofilament gerichtet werden. Wenn die Maus bewegt während der 10 sec Monofilament-Anwendung ohne Anzeige diese Verhaltensweisen, muss das Monofilament nach einem Mindest 1 min langen Ruhezeit erneut getestet werden. Wenn eine Maus weder bewegt noch weist bei allen oben genannten Verhaltensweisen während der 10 sec Monofilament Anwendung, wird es als eine negative Antwort. </li><html><li> Notieren Sie sich die Antwort, entweder negativ oder positiv, in einem Labor Notebook oder Laptop und wiederholen Sie diesen Vorgang auf alle verbleibenden Mäuse mit dem 3,22 g Monofilament. </li><li> Testen Sie alle Mäuse wieder mit dem nächsten geeigneten Monofilament. Hinweis: Wenn die Maus zeigte eine negative Reaktion auf die 3,22 g-Monofilament, gelten die 3,61 g-Monofilament in der gleichen Weise, und notieren Sie die Antwort. Wenn die Maus zeigte eine positive Reaktion auf die 3,22 g-Monofilament, gelten die 2,83 g-Monofilament und notieren Sie die Antwort. </li></ol></li><li> Weiter Testen jeder Maus mit der nächsten größeren oder kleineren Monofilament gegebenenfalls für weitere 4 Anwendungen, nachdem die erste positive Reaktion beobachtet wird. </li><li> Rückgabe Mäuse Käfige. </li><li> Verwenden Sie den Wert des letzten von Frey Monofilament in der Versuchsreihe angelegt in log-Einheiten, um eine 50% ige g Rücknahmeschwelle zu berechnen, wie in Chaplan et al. 43 beschrieben. </li></ol></li></ol>title &quot;&gt; 3. Aufgesäuerte Toluidinblau Mast Zellfärbung <ol><li> Gewebeverarbeitung <ol><li> Sezieren Prostatagewebe 44 von Mäusen, die intrakardial mit eiskaltem 4% Paraformaldehyd 45 wurde durchströmt haben. Postfix das Gewebe in 4% Paraformaldehyd 1 h lang bei RT und dann in 30% Saccharose cryoprotect in 1x PBS bei 4 ° CO / N. </li><li> Bereiten Sie eine kleine (30 ml) Bad Heptan und auf Trockeneis. </li><li> Spülen Sie das Prostatagewebe in 1x PBS und trocken mit einer leichte wischen. </li><li> Legen Sie die Prostatagewebe in die kalte Heptan, bis es gefroren ist. </li><li> Unmittelbar Das tiefgefrorene Prostatagewebe in einem cryomold enthält Montage Medien und auf Trockeneis eingefroren, bis. </li><li> Speicher cryomolds bei -20 ° C. </li><li> Quer schneiden das Prostatagewebe in 7 um dicken Gefrierschnitten unter Verwendung eines Kryostaten. </li><li> Platzieren 8-12 nicht-seriellen Kryoschnitten, die die Länge des Gewebes erstrecken, auf positiv geladenen Objektträgern. </li><li> Speicher abgeschlossen Träger bei -20 ° C bis zur Weiterverarbeitung. </li></ol></li><li> Vorbereiten Aufgesäuerte Toluidinblau <ol><li> 1 g Toluidinblau O in 100 ml 70% Ethanol und vortexen, bis in der Lösung, um eine 1% ige Stammlösung herzustellen. Die Stammlösung kann bei Raumtemperatur bis zu drei Wochen gelagert werden. </li><li> 1 g NaCl in 100 ml Wasser in einem Becher auf einer Rührplatte platziert. </li><li> Den pH-Wert der NaCl-Lösung unter Verwendung von 12 M HCl bis zu einem pH-Bereich von 0,5 bis 1,0 erreicht wird. </li><li> Bereiten Sie die 0,25% Toluidinblau Arbeitslösung durch die Kombination von 8 ml der Toluidinblau-Stammlösung und 32 ml der 1% NaCl-Lösung. Pipette auf und ab, um insgesamt Einbeziehung der Toluidinblau-Stammlösung zu gewährleisten und mischen mit einem Vortex. Die Arbeitslösung muss frisch hergestellt und nach der Verwendung entsorgt werden. </li></ol></li><li> Färbung Prostate Kryoschnitte <ol><li> Entfernen Sie die Folien aus dem Gefrierschrank verarbeitet werden und lassen auf RT für ca. 30 m ins Gleichgewichtin. </li><li> Die Gewebeschnitte durch einzelnes Eintauchen der Objektträger für ca. 1 sec in ein 50 ml konisches Röhrchen ein ausreichendes Volumen an 1x PBS, das zu gewährleisten, dass die Objektträger angebrachten Gewebeschnitte werden vollständig überflutet waschen. Lassen Sie Folien trocken auf einem Papiertuch Luft. </li><li> Die Objektträger in eine Glas Küvette enthält genug 0,25% Toluidinblau-Lösung arbeiten, um sicherzustellen, dass die Objektträger angebrachten Gewebeschnitten wird vollständig untergetaucht werden und Inkubation für 10 bis 15 min, während auf einem Wippschüttler bei 15 Umdrehungen pro Minute eingestellt. </li><li> Dip Slides in 1x PBS für ca. 1 sec zum Auswaschen überschüssigen Toluidinblau. </li><li> Die Objektträger in einem Objektträger-Box oder Zahnstange in der Weise, dass die Objektträger auf ihren Seiten, um für die Entwässerung zu ermöglichen. </li><li> Trocknet die Folien in einem Ofen bei 37 ° C für mindestens 2 Stunden oder O / N bei RT. </li><li> Entwässern gleitet schnell mit Alkohol, so dass die Objektträger vollständig trocknen zwischen Alkohol Belichtungen. Dry gleitet durch Entwässern auf einem Papiertuch einnd Wisch Rücken und Kanten mit einem leichte wischen. <ol><li> Tauchen Sie die Objektträger in 95% EtOH für ca. 1 sec und lassen Sie sie vollständig trocknen. Wiederholen Sie diesen Vorgang 1 - 10 Mal, bis Gewebe trocknet mehr blau als lila. </li><li> Tauchen Sie die Objektträger in 100% EtOH für ca. 1 sec und lassen Sie sie vollständig trocknen. Wiederholen Sie diesen Vorgang 1 - 10 Mal, bis Gewebe ist dunkel bis mittelblau, aber nicht lila. </li></ol></li><li> Befestigen Sie den Fleck durch Inkubation der Objektträger in 100% Xylol für 3 min. Trocknen lassen. </li><li> Deckglas der Objektträger mit Glycerin, PBS oder Xylol-basierten Festeinbau Medien. Überschüssiges Medien und lagern bei RT. </li></ol></li><li> Quantifizierung Mastzellen <ol><li> Visualisieren Sie die Toluidinblau-gefärbten Gewebeschnitte bei 20-facher Vergrößerung unter Verwendung von Lichtmikroskopie (Abbildung 2). </li><li> Zählen Sie die Anzahl der Mastzellen im visualisiert Gebiets und zu differenzieren zwischen Nicht degranulierten und degranulierten Mastzellen. 40X magnificatIonen kann notwendig sein, um die Granulierung Status in einigen Mastzellen zu bestätigen. Hinweis: Nicht degranulierten Mastzellen zeigen dichte Metachromasie ohne oder schwache Kern Umriss und / oder ohne Granulat Extrusion um die Zelle. Degranulierten Mastzellen weisen weniger intensiv Metachromasie und haben eine offensichtlich klare Gliederung des Kerns und / oder freien Körnchen im Zytoplasma und außerhalb der Zelle Grenze. </li><li> Weiterhin die Gesamtzahl der nicht-degranulierten und degranulierten Mastzellen in der Gesamtheit der aktuellen Gewebeabschnitt zu beurteilen. Wiederholen Sie diesen Vorgang für mindestens 7 weitere separate Abschnitte, über die Länge jedes Gewebe. </li><li> Berechnen des Prozentsatzes der degranulierten (DG) zum Gesamtmastzellen für jedes Gewebe / Maus nach der folgenden Gleichung: (DG Mastzellen / Total Mastzellen) x 100. </li></ol></li></ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Dieses Protokoll sieht Vorgehen beim Einsatz von Stress beim Neugeborenen ist, in Form von NMS, um Symptomatik bezeichnend für CP / CPPS in erwachsenen männlichen Mäusen zu induzieren. Als Erwachsene, zeigen die NMS-Mäusen signifikant perigenital mechanischer Allodynie, sowie Hinweise auf Mastzelldegranulation in Prostatagewebe. Die Verwendung von NMS ist ein neuer Ansatz zur Entwicklung eines präklinischen Modell der CP / CPPS, dass sie repliziert die frühen Leben Stress, die häufig von Patienten mit chronischen Schmer...

Chronische Schmerzen im Beckenbereich ist an sich nicht eine Krankheit, sondern ein Begriff, mit dem anhaltenden spontanen und / oder evozierte Schmerzen von Patienten mit Reizdarmsyndrom (IBS) diagnostiziert erlebt, interstitielle Zystitis / schmerzhafte Blasen-Syndrom (IC / PBS), vulvodynia verbunden sind, oder chronische Prostatitis / chronischem Schmerzsyndrom des Beckens (CP / CPPS). Diese Syndrome werden oft komorbid und teilen viele Eigenschaften, daß sie keine assoziierten Pathologie oder identifiziert zugrunde liegende Ätiologie, obwohl Dysfunktion im Immunsystem, das zentrale Nervensystem und peripheren Nervensystem wurde gezeigt, dass für den Unterhalt und das Fortschreiten dieser Erkrankungen beitragen 1 -3. Patienten mit chronischen Unterbauchschmerzen sind eher mit Symptomen präsentieren zusätzliche, nicht-Beckenbezogene Funktionsschmerzstörungen und affektiven Störungen, einschließlich Angstzustände, Depressionen, Panikattacken 4-6, die mit einer veränderten Funktion des Hypothalamus in Verbindung gebracht wurde Hypophyseadrenalen (HPA) Achse 7-10. Die Exposition gegenüber den ersten Lebens Stress oder Trauma ist ein signifikanter Risikofaktor für die Entwicklung von HPA Anomalien und die damit verbundenen chronischen Schmerzsyndromen 10,11 und als solche, berichten über einen erheblichen Teil der Patienten mit funktionellen Beckenschmerzerkrankungen mit erfahrenen negativen Kindheitsereignisse wie Missbrauch oder Vernachlässigung 12-14. Nagetiermodellen der Neugeborenen von Müttern Trennung (NMS), die das Entfernen der Jungtiere von ihren Damm für einen bestimmten Zeitraum während der Entwöhnung Zeitraum beinhaltet, haben in den vergangenen zwei Jahrzehnten eingesetzt, um die Ergebnisse der frühen Leben Stress zu studieren. Im Allgemeinen NMS wurde gezeigt, dass HPA-Achse Aktivierung und die daraus resultierende Angst-ähnliche Verhaltensweisen zu erhöhen, indem die Genexpression direkt betreffen im Hypothalamus sowie stören nachgeschaltete Regelung von limbischen Strukturen 15-18. Störung der ordnungsgemäßen Funktionsweise HPA-Achse hat sich gezeigt, zu mehr kolorektalen 19-22 beitragen </sup&gt; Und vaginale 16 Empfindlichkeit von Nagetier NMS Modelle angezeigt, aber trotz intensiver Charakterisierung der Langzeitwirkung der postnatalen Blasenentzündung 23-25, die Auswirkungen der frühen Leben Stress weitgehend unerforscht in der urogenitalen Organe weg. Daher wird die folgende Studie beschreiben die NMS bei Mäusen durchgeführt und später auszuwerten perigenital mechanische Empfindlichkeit und Mastzellinfiltrate / Aktivierung in der Prostata, um die Verwendung von männlichen Mäusen NMS als präklinischen Modell CP / CPPS- validieren. Aller diagnostizierten chronischen Unterbauchschmerzen Erkrankungen ist CP / CPPS vielleicht die am wenigsten gut erkannt und gekennzeichnet Syndrom, trotz einer Lebenszeitprävalenz von etwa 14% 26 und $ 4400 (geschätzte jährliche Patientenkosten doppelt so hoch wie Rückenschmerzen oder rheumatoider Arthritis 27). Patienten mit CP / CPPS Bericht Schmerzen in den Damm, des Mastdarms, der Prostata, Penis, Hoden, und / oder Bauch 28, erleben Sie eine hallogher Maß an psychischer Stress als Kontrollpatienten 29, und üblicherweise mit Symptomen oder Gegenwart mit komorbiden chronischen Unterbauchschmerzen oder affektiven Störungen 5,29-31 diagnostiziert. Wiederkehrende Infektion, undichte Epithel, neurogene Entzündung und Autoimmunität alle als potentielle Ursachen der CP / CPPS- 2,32,33 sowie Aktivierung von Mastzellen-Degranulation und 34 wurde vermutet. Ausgedrückt Prostatasekret von Männern mit CP / CPPS hatte 34 Mastzelltryptase und Nervenwachstumsfaktor (NGF) Ebenen erhöht und eine spätere Studie bestätigt, dass Tryptase und Carboxypeptidase A (CPA3), einem Marker der Mastzellaktivierung, wurden auch in der erhöhten Urin von CP / CPPS Patienten 35. Die mögliche Rolle für die Mastzellen bei der Entstehung und Aufrechterhaltung des CP / CPPS ist ein wichtiger Schwerpunkt der Tierforschung auf diesem Syndrom bisher. Die am häufigsten verwendeten Tiermodell verwendet werden, um zu studieren CP / CPPS ist eine experimentelle autoimmune Prostatitis (EAP) Modell gendurch subkutane Injektion von Prostata-Antigen in komplettem Freundschen Adjuvans, das auf verschiedene Grade von Prostataentzündung je nach Tierart und Stamm 34,36-39 ergibt erated. Mastzellinfiltration und Aktivierung / Degranulation wurde gezeigt, dass nach der Induktion von EAP 34,35,40 erhöhen. Transgene Mäuse mangelhaft in Mastzellen entweder 34 oder Tryptase Rezeptor PAR2 35 nicht entwickeln Prostata Taktik Empfindlichkeit folgenden EAP, im Gegensatz zu Wildtyp-Mäusen EAP. Während dieser präklinischen Modell gibt viele der Eigenschaften des menschlichen CP / CPPS, ist die Induktion Protokoll nicht indikativ für den menschlichen Zustand, die eine vielfältige Ätiologie hat und oft keinen direkten Entzündungen, Infektionen oder Verletzungen der Prostata nicht einzubeziehen. Der Einfluss der frühen Leben Stress auf die Entwicklung von CP / CPPS bei den Menschen wurde nicht untersucht weitgehend gegangen; aber eine Studie von Hu et al. 41, gezeigt, dass michn, die eine Geschichte der Kindheit körperliche, emotionale gemeldet, und / oder sexuellem Missbrauch wurden wesentlich häufiger zu Symptomen, die CP / CPPS erleben. Darüber hinaus zeigten sie, dass sowohl Schmerzen und Harnwege Werte wurden bei Patienten mit einer Vorgeschichte von physischen und emotionalen Missbrauch erhöht. Wir haben zuvor gezeigt, dass die gleichen NMS Paradigma bei weiblichen C57BL / 6-Mäusen produziert vaginalen Überempfindlichkeit und abnormale Genexpression sowohl in die Vagina und Blase andeutend dysfunktionalen HPA-Achse Ausgang 16. Dieser Nachweis kombiniert mit der hohen Prävalenz von CP / CPPS Patienten mit anderen Begleiterkrankungen 42, einschließlich IC / PBS und affektive Störungen, die mehr klar gezeigt worden, um mit den ersten Lebensstressexposition 12-14 verbunden werden können, liefert die Begründung für die Verwendung einer NMS Modell CP / CPPS bei Mäusen zu untersuchen.

<table><tbody><tr><td>Trächtige C57BL/6 weibliche Mäuse&nbsp;</td><td>Charles River</td><td>027</td><td>Schwangere Hündinnen mit oder ohne Zeitplan sollten täglich auf eine Hausgeburt überwacht werden.</td></tr><tr><td>2 L Glasbecher</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>CLS10002L</td><td>Jeder NMS-Wurf wird während des 21-tägigen Trennungszeitraums im selben Becherglas aufbewahrt.</td></tr><tr><td>VWR Zwangsluft-Inkubator, Basic</td><td>VWR International</td><td>414005-124</td><td>Der Inkubator sollte bei 33° gehalten werden; C und 50% Luftfeuchtigkeit.</td></tr><tr><td>Sensorischer Bewerter des Berührungstests, 20er-Set (Semmes-Weinstein Von Frey Aesthesiometer zur Beurteilung der Berührung)</td><td>Stoelting</td><td>58011</td><td>Die folgenden Monofilamente sollten für die Beurteilung der perigenitalen Empfindlichkeit verwendet werden: 1,65 g, 2,36 g, 2,83 g, 3,22 g, 3,61 g, 4,08 g, 4,31 g und 4,74 g.</td></tr><tr><td>Tiergehege (12 Mäuse, 6 Ratten)</td><td>IITC</td><td>435</td><td>Achten Sie darauf, einen schweren Gegenstand auf das einzelne Acryl-Tiergehege zu legen, um ein Entkommen von Mäusen zu verhindern.</td></tr><tr><td>Netzständer für Mäuse und Ratten (12 Mäuse, 6 Ratten)</td><td>IITC</td><td>410</td><td>Stellen Sie den Ständer auf eine stabile Tischplatte für bequemen Zugang.</td></tr><tr><td>Phosphatgepufferte Kochsalzlösung</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P5493</td><td>Verdünnen Sie das 10-fache PBS-Material auf 1 x PBS.</td></tr><tr><td>Paraformaldehyd</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P6148</td><td>Eine 4%ige Paraformaldehydlösung wird benötigt, um Mäuse und Postfixgewebe zur Vorbereitung der Mastzellfärbung intrakardial zu perfundieren.</td></tr><tr><td>Saccharose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S5016</td><td>Kryoprotect fixiertes Gewebe in 30%iger Saccharoselösung bei 4°; C über Nacht.</td></tr><tr><td>Heptan</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>246654</td><td>Heptan auf Trockeneis kühlen, um das Gewebe einzufrieren.</td></tr><tr><td>Standard-Kryoform&nbsp;</td><td>VWR International</td><td>4557</td><td>Zur Unterstützung des Einfrierens von Prostatagewebe vor dem Kryostatenschnitt</td></tr><tr><td>Tissue-Tek OCT Compound</td><td>Sakura</td><td>4583</td><td>12 x 125 ml</td></tr><tr><td>VWR Superfrost Plus Micro Slide</td><td>VWR International</td><td>48311-703</td><td>75 x 25 x 1 mm</td></tr><tr><td>Toluidine Blue O</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>198161</td><td>von der Biological Stain Commission zertifiziert. Geeignet für die Verwendung als metachromatischer Farbstoff für Mastzellen.</td></tr><tr><td>Ethanol, absolut (200 Proof)</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP2818-4</td><td>Molecular Biology Grade, Fisher Bioreagenzien; 95 % und 100 % Lösungen werden benötigt, um gefärbte Kryoschnitte vor der Visualisierung von Mastzellen zu dehydrieren.</td></tr><tr><td>Natriumchlorid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S9888</td><td>Angesäuerte NaCl-Lösung sollte vor dem Färben von Kryosektionen frisch gemacht werden.</td></tr><tr><td>GeneMate Sterile 50 ml Zentrifugenröhrchen&nbsp;</td><td>BioExpress</td><td>C-3394</td><td>Einwegröhrchen zum Mischen von Toulidinblau-Elementen oder zum Eintauchen von Objektträgern in 1xPBS.</td></tr><tr><td>Coplin Färbeschale für 10 Objektträger, mit geschliffener Glasabdeckung</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-815</td><td>Hält bis zu 10 Standard-3 x 1 Zoll. (75 x 25 mm) lässt sich Rücken an Rücken verschieben. Verwenden Sie separate Schalen für Toluidinblau-Arbeitslösung, 95 % EtOH, 100 % EtOH und Xylol.</td></tr><tr><td>Xylole (histologisch)</td><td>Fisher Scientific</td><td>X3P</td><td>Nach der Dehydrierung wird das Gewebe mit Xylol gereinigt.</td></tr><tr><td>Objektträgerboxen, 100 Plätze</td><td>VWR International</td><td>82003</td><td>Boxen können für die Lagerung und den Transport von Objektträgern verwendet werden.</td></tr><tr><td>Fisherbrand Objektträgerbox</td><td>für Mikroskope Fisher Scientific</td><td>22-363-400</td><td>Diese Objektträgerboxen sind in der Regel klein genug, um in einen Kryostaten zu passen.</td></tr><tr><td>Glycerol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G5516</td><td>Glycerin ist ein traditionelles Einbettmedium.</td></tr><tr><td>Eindeckmedium, Richard-Allan Scientific</td><td>VWR International</td><td>4111</td><td>Eindeckmittel verbindet das Deckglas fest mit dem Objektträger.</td></tr><tr><td>Micro Cover Gläser, rechteckig, Nr. 1</td><td>VWR International</td><td>48393-106</td><td>Zum Schutz der Probe wird ein Deckglas über das dehydrierte und gereinigte Gewebe gelegt.</td></tr><tr><td>Lichtmikroskop</td><td>Nikon</td><td></td><td>Das fortschrittliche automatisierte Forschungsmikroskop Eclipse 90i, das in unserem Labor verwendet wird, wurde nicht mehr hergestellt und durch Eclipse Ni-E ersetzt.&nbsp; &nbsp;</td></tr></tbody></table>

bewertung der perigenital sensitivität und prostatic mastzellaktivierung in einem mausmodell der neonatal maternal separation

Assessment of Perigenital Sensitivity and Prostatic Mast Cell Activation in a Mouse Model of Neonatal Maternal Separation

Chronische Prostatitis / chronischem Schmerzsyndrom des Beckens (CP / CPPS) hat eine Lebenszeitprävalenz von 14% und ist die häufigste urologische Diagnose bei Männern im Alter von 50, aber es ist die am wenigsten verstanden und untersucht chronischen Unterbauchschmerzen Störung. Ein wesentlicher Teil der Patienten mit chronischen Unterbauchschmerzen Bericht mit frühen Leben Stress oder Missbrauch, die deutlich die Funktion und Regulation der Hypothalamus-Hypophysen-Nebennieren (HPA) Achse beeinflussen können erlebt. Mastzellaktivierung, die gezeigt wurde, dass in Urin erhöht und exprimiert Prostatasekreten von CP / CPPS- Patienten wird teilweise durch nachgeschaltete Aktivierung der HPA-Achse reguliert wird. Neugeborene von Müttern Trennung (NMS) ist seit mehr als zwei Jahrzehnten eingesetzt, um die Ergebnisse der frühen Leben Stress in Nagetiermodellen zu studieren, einschließlich Änderungen der HPA-Achse und viszeralen Empfindlichkeit. Hier bieten wir Ihnen ein detailliertes Protokoll für die Verwendung von NMS als präklinischen Modell der CP / CPPS in männlichen C57BL / 6 Mäusen. Wir beschreiben die Methodikzur Durchführung von NMS, die Beurteilung perigenital mechanischer Allodynie und histologischem Nachweis einer Mastzellaktivierung. Wir bieten auch Hinweise darauf, dass Anfang psychischer Stress kann langfristige Auswirkungen auf die männlichen Urogenitalsystems bei Mäusen haben.

Mäuse, die NMS unterzogen wurden, zeigten Verhaltenshinweise anzeigt CP / CPPS. Wenn es mit einer abgestuften Reihe von Frey-Monofilamenten, 8 Wochen alten NMS Mäusen getestet (n = 4) dargestellt perigenital mechanischer Allodynie im Vergleich zu naiven Pendants (n = 5, 2). Dies wird als eine signifikante Reduktion (p &lt;0,01; Student-t-Test) belegt in der mechanischen Rücknahmeschwelle, die eine positive Verhaltensreaktion ausgelöst, als rege Ruck oder Sprung in Reaktion auf Monofil Anwendung...

Wir messen perigenital mechanische Empfindlichkeit und Mastzellaktivierung in der Prostata von männlichen C57BL / 6-Mäuse, die eine frühe Leben Stress Paradigma erfuhr - Neugeborenen von Müttern Trennung, um einen präklinischen Modell der chronischen Prostatitis / chronischem Schmerzsyndrom des Beckens zu induzieren.

Bewertung der perigenital Sensitivität und Prostatic Mastzellaktivierung in einem Mausmodell der Neonatal Maternal Separation

Chronic prostatitis/chronic pelvic pain syndrome (CP/CPPS) has a lifetime prevalence of 14% and is the most common urological diagnosis for men under the ...

Das übergeordnete Ziel des folgenden Experiments besteht darin, die Auswirkungen von Stress in der frühen Lebensphase auf das urogenitale System zu bestimmen, indem die mechanische Empfindlichkeit der perigenitalen Region und die Aktivierung von Mastzellen innerhalb der Prostata bei männlichen C57BL/6-Mäusen gemessen werden, die einer neonatalen mütterlichen Trennung unterzogen wurden. Dies wird erreicht, indem zunächst eine neonatale mütterliche Trennung an Würfen von C57BL/6-Mauswelpen durchgeführt wird, um über 20 aufeinanderfolgende Tage hinweg Stress in der frühen Lebensphase auszulösen. Der zweite Schritt besteht darin, die mechanische Empfindlichkeit der perigenitalen Region durch Anlegen einer Reihe von Von-Frey-Monofilamenten auf die perigenitale Region zu messen.Anschließend wird eine angefärbte Toluidinblau-Färbung an Gefrierschnittpräparaten der Mausprostata durchgeführt, um die Mastzellaktivierung zu quantifizieren. Die Ergebnisse zeigen, dass eine neonatale mütterliche Trennung die mechanische Empfindlichkeit im perigenitalen Bereich sowie die Mastzellaktivierung in der Prostata erhöht, basierend auf unseren verhaltensbezogenen und histologischen Analysen.Der Hauptvor

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Hier stellen wir ein prägnantes Protokoll zur Erstellung eines Frühgeborenen-Rattenmodells vor, das die Forschung zur frühen postnatalen Schmerzbehandlung erleichtert. Bei der Methode wird drei Tage vor der erwarteten Geburt ein Kaiserschnitt durchgeführt, Frühgeborene von Ratten mittels Hysterektomie extrahiert und mit den biologischen Nachkommen einer Leihmutter integriert.

Ein Frühgeborenen-Rattenmodell für Schmerzstudien

Frühgeburten (Entbindung &lt; 37. Woche) sind ein dringendes globales Gesundheitsproblem mit suboptimalen Präventions- und Behandlungsmöglichkeiten. Wir stellen ein Mausmodell der aufsteigenden vaginalen bakteriellen Infektion induzierten Frühgeburt vor und skizzieren, wie die daraus resultierende neonatale Morbidität und Mortalität analysiert werden kann.

Modellierung von aufsteigenden vaginalen Infektionen, Frühgeburten und neonataler Morbidität bei Mäusen

Dieses Protokoll beschreibt ein Tiermodell, um zu untersuchen, wie sich Widrigkeiten im frühen Leben, hervorgerufen durch eine verarmte Umwelt und unvorhersehbare mütterliche Fürsorge in der frühen postnatalen Phase, auf die Gehirnentwicklung und das zukünftige Risiko psychischer Störungen auswirken.

Begrenztes Einstreuen und Nisten als Modell für Widrigkeiten im frühen Leben bei Mäusen

Der Artikel bietet ein umfassendes Protokoll zur Erstellung eines mütterlichen Immunaktivierungsmodells (MIA), das die Auswirkungen früher Schwangerschafts-Entzündungen auf die Neuroentwicklung untersucht, einschließlich wichtiger Kennzahlen zur Gewährleistung von Zuverlässigkeit und Reproduzierbarkeit.

Erzeugung des frühgestationalen mütterlichen Immunaktivierungsmodells zur Beurteilung pränataler Entzündungen auf die Neuroentwicklung

Erfahren Sie, wie früher Lebensstress die perigenitale Sensitivität und Mastzellaktivierung in der Prostata von C57BL/6-Mäusen beeinflusst. Diese Methode nutzt neonatale mütterliche Trennung und Von-Frey-Tests.

Bewertung der perigenital Sensitivität und Prostatic Mastzellaktivierung in einem Mausmodell der Neonatal Maternal Separation

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