Name: Porphyromonas gingivalis als Modellorganismus für die Beurteilung der Interaktion von anaeroben Bakterien mit Wirtszellen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-12-17T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 16 s
Description: Erfahren Sie Methoden zur Untersuchung der Interaktion von anaeroben Bakterien mit Wirtszellen am Modellorganismus Porphyromonas gingivalis. Diese Protokolle ermöglichen die Visualisierung bakterieller Invasion und Überlebensmechanismen in vivo.

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Wir möchten uns bei Dr. Hiroshi Miyazaki, Dr. Scott Henderson, Dr. Todd Kitten, Dr. Justin Hutcherson, Dr. Catherine Jauregui und Collin R. Berry bedanken. Diese Arbeit wurde durch NIH-NIDCR-Zuschüsse R01DE016124, R01DE018039 und R01DE023304 an J.P. Lewis unterstützt.
Die Mikroskopie wurde an der VCU Department of Anatomy and Neurobiology Microscopy Facility durchgeführt und teilweise mit Mitteln aus dem NIH-NINDS Center Core Grant (5P30NS047463) unterstützt.

Die folgenden Protokolle werden Methoden für die Kultivierung und Untersuchung der Invasion durch die anaerobe Arten, P. beschreiben gingivalis; jedoch können diese Protokolle für eine Reihe von anaeroben Pathogene verwendet werden. Obwohl HUVECs verwendet werden, kann dieses Protokoll für andere eukaryontische Zellen sowohl immune und nicht-immune verwendet werden. 1. anaeroben Kammer Betrieb und Wartung Hinweis: P. gingivalis ist eine anaerobe empfindlich auf ein normales Niveau von Sauerstoff in der Luft auftreten. Eine kontrollierte anaerobe Umgebung ist für die Kultivierung von P. gingivalis. <ol><li> Hier aufrechtzuerhalten eine gemischte anaerobe Gas (80% N 2, 10% H 2, 10% CO 2) in einem Vinyl anaeroben Kammer (1A) bezeichneten künstlichen Atmosphäre. Verwenden Sie eine Luftschleuse (1B) für die Übertragung von Artikeln aus der Laborumgebung zu der anaeroben Kammer. Die Luftschleuse betreibt manuell, twEis Spülung mit N2-Gas vor der Einführung des gemischten anaeroben Gas. </li><li> Verwenden Sie einen Schwefelwasserstoff-Entfernungssäule (1C) für wartungsfreie Entfernung der unerwünschten Schwefelwasserstoff. Legen Sie einen Luftentfeuchter in der Kammer, um H 2 O durch den Katalysator zu entfernen und Aerosole, die die Ausbreitung der Kontamination zu erleichtern vermeiden. Anmerkung: Schwefelwasserstoff ist ein natürliches Stoffwechselnebenprodukt vieler anaeroben Bakterien und ihre Akkumulation Bakterien toxisch und kann in einer Beschädigung des elektronischen Folge und eine Verringerung der Lebensdauer des Katalysators. </li><li> Verwenden Sie ein Fan-Box auf der Kammeratmosphäre durch eine Palladium-Katalysator, der Sauerstoff in Gegenwart von Wasserstoff (Abbildung 1D) entfernt zu zirkulieren. Hinweis: Ein Rezirkulieren Atmosphären (HEPA) Filter entfernt Verunreinigungen aus der Luft mit einer Grße von 0,22 um oder mehr. </li><li> Kultur anaeroben Bakterien in einem Inkubator bei 37ºC, die in der anaeroben befindetKammer. Verwenden Sie Standard-aseptischer Techniken beim Arbeiten im Inneren des anaeroben Kammer. </li></ol><img alt="Abbildung 1" src="/files/ftp_upload/53408/53408fig1.jpg" /> Abbildung 1. Anaerobe vinyl Kammer und seiner Komponenten. (A) einem Vinyl anaeroben Kammer vollständig vom Luftsauerstoff abgedichtet stellt Arbeitsplatz für zwei Personen zu einem Zeitpunkt (32 in x 78 in). Es enthält einen Brutschrank bei 37 ° C (hinten Mitte) eingestellt. (B) eine Luftschleuse für den Transfer von Artikeln aus der Laborumgebung zu der anaeroben Kammer eingesetzt. Pictured ist eine automatische Luftschleuse durch eine Steuerung, die so programmiert, dass das Vakuum und Säuberungsverfahren erforderlich, um eine anaerobe Umgebung zu erstellen automatisch durchführen kann betrieben. (C) Eine Entfernung von Schwefelwasserstoff Column bietet wartungsfreien Hochleistungs Entfernung unerwünschter Schwefelwasserstoff. (D) Zwei Katalysator-Fan-Boxen sindwährend des anaeroben Kammer angeordnet, um die Zirkulation der Raumatmosphäre durch Palladium-Katalysator, der in Gegenwart von Wasserstoff, Sauerstoff entfernt. Die anaeroben Kammer wird gemäß den Anweisungen des Herstellers eingestellt. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53408/53408fig1large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> 2. Herstellung von anaeroben Bakterien Hinweis: P. gingivalis aerotolerant und kann unter aeroben Bedingungen gelagert werden, aber es wird nicht in Gegenwart von Sauerstoff wachsen auf einem höheren Niveau als 6% 17,18. Einer anaeroben Kammer ist notwendig für die ordnungsgemäße Pflege der P. gingivalis und anderen anaeroben Spezies (Abbildung 1). Richtiges Training und Ausbildung auf anaeroben Kammer Gebrauch ist, bevor Sie mit microanaerobes 19 erforderlich. <ol><li> Gleichgewicht kommen alle flüssigen Medien und Platten, um anaerobe conditIonen für mindestens 12 h vor dem Experiment um den restlichen Sauerstoff zu entfernen. </li><li> Bringen P. gingivalis von -80 ° C Gefrierschrank bis anaeroben Kammer, noch auftauen. </li><li> Streak P. gingivalis auf Trypticase-Soja Blutagarplatten (TSA II mit 5% Schafblut). Wickeln Sie Platten in Parafilm und lagern bei 37 ° C in einer anaeroben Inkubator für 4-7 Tage. </li><li> Impfen P. gingivalis in 3 ml Hirn-Herz-Infusion (BHI) -Brühe, ergänzt mit Hämin und Menadion einem angereicherten nicht-selektiven flüssigen Medien für die Isolierung und Kultur von anaeroben und anspruchsvoller Mikroorganismen, mit sterilen Schleifen. Hinweis: Für die langfristige Lagerung, Mischung Bakterienkulturen in BHI mit Glycerin oder DMSO (10-20% Endkonzentration) und in einen -80 ° C Gefrierschrank vorbereitet. </li><li> Bereiten Sie eine Starterkultur von P. gingivalis, indem Sie eine 1:10 Verdünnung und damit Bakterien bis Mitte der log-Phase wachsen. </li></ol> Anmerkung: Die optische Dichte des bacterial Suspension wird bestimmt, und die Bakterienkonzentration für jeden Stamm untersucht werden eingestellt. Für P. gingivalis eine Suspension bei einer OD 660 von 0,7 entspricht der mittleren log-Phase und ~ 7 x 10 8 Zellen / ml. In dem Protokoll beschriebene Wachstumsbedingungen vorstehend spezifisch für P. gingivalis und eventuell auf andere Bakterienstämme angepasst werden. 3. Endothelzellkultur Hinweis: Der Kauf gepoolt primäre HUVECs und Kultur in Basalmedium, enthaltend vaskulären endothelialen Wachstumsfaktoren (VEGF) bei 37 ° C in 5% CO 2 nach Herstelleranweisungen. <ol><li> Samen HUVECs in T-75-Flaschen mit 2,5 × 10 5 Zellen / Kolben in 15 ml VEGF Medien. Hinweis: Überprüfen Sie die Lebensfähigkeit über ein 1: 1-Verdünnung mit 4,0% Trypanblau. Zellen, die mit einem geschwächten Membran Trypanblau behalten, werden gesunde Zellen mit intakten Membranen weiß erscheinen, wenn sie unter einem binokularen Lichtmikroskop. CounT 100-Zellen, zu gewährleisten, dass über 80% der Zellen lebensfähig sind 20. </li><li> Ersetzen Medien alle 2 Tage mit vorgewärmter Frisch VEGF Medien, bis die Zellen zu erreichen ~ 80% Konfluenz. </li><li> Waschen Sie die Zellen einmal mit vorgewärmten PBS. Befreien Zellen von der T75-Flasche durch Inkubation mit 2 ml Trypsin-EDTA (0,25%) für 5 Minuten, gefolgt von 2 ml Trypsin-Neutralisationslösung. </li><li> Sammeln suspendiert HUVECs in einem 50 ml konischen Röhrchen. Waschen Sie keine zusätzlichen Zellen aus T-75-Kolben mit PBS und Transfer in 50 ml konischen Röhrchen. </li><li> Zentrifuge Zellen bei 200 g für 10 min. </li><li> Überstand entfernen, auszusetzen Zellpellet in 10 ml vorgewärmten VEGF Medien. </li><li> Bestimmen Sie, Zellkonzentration mit einer Zählkammer oder ähnliche Zellzählung Gerät. </li><li> Berechnen Menge an Zellsuspension, um entweder auf 6-Well-Platte (400.000 / well) oder 12-Well-Platte mit Deckgläsern hinzufügen (50.000 / Well). HUVECs werden bereit für Experimente am nächsten Tag. </li></ol> 4. Überlebensassay Invasion / Interaction(Überzug) Anmerkung: Bei der Durchführung dieses Tests, bereiten zwei Platten mit 6 Vertiefungen von Endothelzellen auf 400.000 Zellen / Well. Eine Platte wird verwendet, um Bakterien, die an und von Wirtszellen internalisiert zu beurteilen. Die andere Platte wird für intrazelluläre Bakterien ausmachen. Die 6-Lochplatte ermöglicht Triplikaten von zwei Proben in einem Experiment durchgeführt werden. Für einen Überblick über dieses Protokoll finden Sie in der Überlebensassay Flussdiagramm (Abbildung 2) zu entnehmen. <ol><li> Bereiten anaerobe Bakterien, wie oben beschrieben (siehe Abschnitt 1), bis sie Mitte der log-Wachstums (OD 660 von 0,5 bis 0,7) zu erreichen. </li><li> Zentrifuge Bakterien bei 5.000 × g für 10 min. Hinweis: Wenn Zentrifuge außerhalb anaeroben Kammer führen Bakterienproben in einem dicht verschlossenen 15 ml-Tube, wickeln Sie die Kappe mit Parafilm zu Sauerstoff Auslaufen zu verhindern. </li><li> Zeigen pelletiert P. gingivalis zurück in der Kammer, Überstand verwerfen. Erneut mit PBS waschen, Pellet-Bakterien vor Resuspendieren in VEGF michdia. Vorbereitung Suspensionen für alle Bakterienstämme bei einer OD 660 von 0,7, die bis zur mittleren log-Phase (~ 7 x 10 8 Zellen / ml) entspricht, getestet werden. Die Bakterien sind nun bereit für die Infektion. </li><li> Transfer 6-Well-Platten, die HUVECs von Gewebekultur-Inkubator in anaeroben Kammer. Entfernen Sie das Medium und dreimal mit anaeroben PBS. 2 ml der anaeroben VEGF Medien in jede Vertiefung und legen die Platten bei 37 ° C in der anaeroben Inkubator für 20 Minuten, um die Temperatur für eine Infektion zu äquilibrieren. Hinweis: Platte Bakterien auf Blutagarplatten, diejenigen für die Infektion verwendet, sicherzustellen, sind homogen und nicht nach Infektion kontaminiert. </li><li> Infizieren Wirtszellen mit Bakterien bei einer Multiplizität der Infektion (MOI Bakterien: Host) von 100: 1. Anmerkung: HUVEC-Zellzahl durch Ausführen einer Trypanblau-Ausschlusstests an einem einzigen Bohrloch vor der Infektion bestimmt. Bakterienzellzahl wird über die optische Dichte bestimmt (beispielsweise von 0,5 OD = 5 x 10 8 Zellen / ml). Bacterial Konzentration auf richtige MOI basierend auf HUVECs Konzentration 21 eingestellt. </li><li> Legen Sie 6-Well-Platten mit infizierten HUVECs in anaeroben Inkubator und lassen Bakterien mit Wirtszellen für 30 Minuten zu interagieren. </li><li> Vorbereitung Saponin in BHI (1,0% w / v) in der anaeroben Kammer und filtriert durch einen 0,2 um Filter. </li><li> Überleben beider befestigt und verinnerlicht Bakterien. <ol><li> Platten entfernen aus dem Inkubator, absaugen Medien, waschen dreimal mit anaeroben PBS und 2 ml gefiltert 1,0% Saponin (hergestellt wie in Schritt 4.8 beschrieben). Inkubieren Sie für 15 Minuten, um Host-Zell-Lyse zu ermöglichen. </li><li> Kratzen Boden jeder Vertiefung mit Zellschaber. Sammeln Sie die Zellmischung aus jeder Vertiefung und eine 1: 1-Verdünnung in BHI. </li><li> Fahren Sie mit seriellen Verdünnungen der Probe zu machen. Je nach Bakterienart und Konzentration, passen Verdünnungsreihen. Beginnen Sie mit 1: 100 oder 1: 1000 Verdünnungen. </li><li> Platte 200 ul gewünschte Verdünnung auf Blutagarplatten. Wrap ter Platten in Parafilm und in der anaeroben Inkubator bei 37 ° C. </li><li> Nach sieben Tagen Inkubation bei 37 ° C, entfernen Sie die Platten und zählen koloniebildenden Einheiten (KBE) mit der Lichtbox manuell zählen Kolonien. Hinweis: KBE aufgezählt werden. Für größere Mengen an CFUs können Bilder aufgenommen werden, und Computersoftware kann verwendet werden, um die Zählung von CFUs erleichtern. </li></ol></li><li> Survival of verinnerlicht Bakterien. <ol><li> Platten entfernen aus dem Inkubator. Dreimal Waschen mit anaeroben PBS und 2 ml VEGF Medien, ergänzt mit Antibiotikum (300 ug / ml Gentamicin und 400 ug / ml von Metronidazol). </li><li> Inkubation für 1 Std. Achten Sie darauf, die Antibiotika zu testen, so dass sie zu 100% effektiv bei der die gewünschte Bakterienstamm zu töten und stellen Sie sicher, dass sie Wirtszellen 22,23 nicht durchdringen. </li><li> Absaugen Medien, 2 ml gefiltertes 1,0% Saponin. Inkubieren Sie für 15 Minuten, um Host-Zell-Lyse zu ermöglichen. </li><li> Kratzen Sie unten auf jeder well mit Zellschaber. Sammeln Sie die Zellmischung aus jeder Vertiefung und stellen Sie 1: 1-Verdünnung in BHI. </li><li> Bereiten Sie Verdünnungen der Probe (1: 100, 1: 1.000). </li><li> Platte 200 ul gewünschte Verdünnung auf Blutagarplatten. Wickeln Sie Platten in Parafilm und in anaeroben Inkubator. </li><li> Nach sieben Tagen Inkubation bei 37 ° C Platten zu entfernen und zu zählen KBE. </li></ol></li></ol><img alt="Figur 2" src="/files/ftp_upload/53408/53408fig2.jpg" /> Abbildung 2. Schematische Darstellung eines Protokolls für das Überleben von anaeroben Bakterien mit eukaryotischen Zellen verwendet. Beide Assays für insgesamt bakterielle Überleben und das Überleben von verinnerlicht Bakterien können zur gleichen Zeit durchgeführt werden. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53408/53408fig2large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> 5. Internalisierung von Bakterien in Wirts Cells (Fluoreszenz-Mikroskopie) Hinweis: P. gingivalis ist mit 2 &#39;bezeichnet, 7&#39;-Bis- (2-Carboxyethyl) -5- (und-6) -Carboxyfluorescein, Acetoxymethyl ester (BCECF-AM). BCECF-AM ist ein nicht-fluoreszierendes membranpermeablen Farbstoff; ihre Umwandlung in Fluorescein BCECF über die Wirkung der intrazellulären Esterasen kann angeben Zellviabilität. P. gingivalis mit BCECF-AM-Farbstoff markiert und dann verwendet, um eukaryontische Zellen zu infizieren. Nach der Infektion werden die Zellen fixiert und mit DAPI und TRITC-Phalloidin markiert. Die DAPI-Färbung verwendet, um die eukaryotische Zellkern Fleck wird auch beschriften bakteriellen Zellkern, der eine Gegenmaßnahme, um nicht lebensfähige Bakterien, die nicht können metabolisch spalten BCECF-AM zu identifizieren bietet. Wirtszellen werden mit TRITC-Phalloidin rotem Aktin Farbstoff markiert. <ol><li> Autoklaven Deckgläser. Aseptisch Deck zu 12-Well-Platten hinzuzufügen vor der Aussaat Endothelzellen bei 5 × 10 4 Zellen / Vertiefung. (Vorbereitet Tag vor Versuch) </li><li&gt; Haben Endothelzellen auf 18 mm (# 1.5 Dicke) kreisförmige Deckgläser hergestellt in Platten mit 12 Vertiefungen wie oben beschrieben. </li><li> Bereiten anaeroben Bakterien bis zur mittleren logarithmischen Phase gezüchtet (OD 660 = 0,5-0,7), wie in Kapitel 1 beschrieben. </li><li> Wasch Bakterien 2x mit anaerober PBS durch Zentrifugation bei 5.000 × g und Suspensions Pellet in PBS bei 5-7 x 10 8 Zellen / ml. </li><li> Werden 20 ul 0,2 mM BCECF-AM bis 2 ml Bakteriensuspension (5-7 x 10 8 Zellen / ml) zu einer Endkonzentration von BCECF-AM von 2 uM. </li><li> Inkubieren bei 37 ° C für 30 Minuten im Dunkeln. </li><li> Übertragungsplatten mit Endothelzellen auf 18 mm (# 1.5 Dicke) kreisförmigen Deckgläser von Gewebekultur-Inkubator ausgesät in den anaeroben Kammer. Mit PBS und Austausch mit anaeroben VEGF Medien waschen. Hinweis: Überprüfen Sie, ob HUVECs werden unter einem Lichtmikroskop gesund. HUVECs sollte ~ 80% konfluent waren, sollten vergleichbare Morphologie für die Hersteller sein. </li><li> Centrifuge markierten Bakterien an5.000 × g für 10 min, um restliche BCECF-AM Farbstoff zu entfernen. Suspend in 2 ml anaeroben VEGF Medien. </li><li> Infizieren Wirtszellen mit markierten Bakterien bei einer MOI von 100: 1 (Bakterien: Host). </li><li> Inkubieren in anaeroben Kammer bei 37 ° C für 30 min. </li><li> Nach der Infektion Wasch Zellen mit PBS dreimal und in frisch hergestellten 4,0% Para fix für 10 min. Hinweis: Nach der Fixierung von Zellen, kann Experiment außerhalb der anaeroben Kammer durchgeführt werden. </li><li> Waschdeckgläser mit PBS dreimal. </li><li> 1 ml 0,2% Triton X-100 für 10 min. </li><li> Waschdeckgläser mit PBS dreimal. </li><li> Dann werden 50 ul des TRITC-Phalloidin (50 ug / ml) auf Deckgläsern für 45 min. </li><li> Wash Deckgläser dreimal, von der 12-Well-Platte und setzen Sie auf einem Objektträger mit Soft-Set Eindeckmedium enthält DAPI. Dichten Sie die Seiten mit Nagellack. Hinweis: Die Objektträger können für ein paar Monate im Dunkeln gelagert werden. Vermeiden Sie Belichtung zur Photobleaching zu verhindern. </li><li> Blick gleitetmit einem konfokalen Mikroskop. <ol><li> Hier verwenden Sie ein 34-Kanal spektrale System (32-Kanal-Array-Detektor und zwei Seiten PMT-Detektoren, sowie eine Durchlichtdetektor) um eine AxioObserver (invertiert) konfiguriert, stehen mit einem motorisierten XY-Tisch. Das System verfügt über fünf Laser: blau-Diode (405 nm), mit mehreren Leitungen Argon (458, 488, 514 nm), grüne Diode (561 nm), roten HeNe (633 nm) und einem 440 nm gepulsten Laser. Anlegen eines Fluorescence Lifetime Imaging-System mit 2-Hybrid GaAsP Detektoren (für FRET-FLIM). </li><li> Detektieren die Fluoreszenz von DAPI und TRITC in einem Kanal unter Verwendung eines Dual-Band-Filter mit Anregungswellenlängen von 340-380 nm und 540-560 nm und einem Emissionsfilter von 435 bis 485 nm und von 570 bis 590 nm. Detektieren die Fluoreszenz von BCECF-AM unter Verwendung eines Filters mit Anregungswellenlänge von 440 bis 500 nm und einem Emissionsfilter von 510 bis 590 nm. Hinweis: Steuerungen für BCECF-AM sollte auf jedem Bakterienstamm durchgeführt werden untersucht, um die ordnungsgemäße Kennzeichnung der lebensfähigen Bakterien zu gewährleisten. Zuerst überprüfen, dass nonviable Bakterien sind DAPI-positive und BCECF-negativ. Zweitens, sicherzustellen, dass lebende Bakterien können BCECF-AM in Fluorescein BCECF verstoffwechseln. Variable Konzentrationen der Bakterien oder BCECF-AM Farbstoff eventuell auf optimaler Kennzeichnung geprüft werden. </li></ol></li></ol>

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Autoren haben nichts offenzulegen.

Alle oben genannten Verfahren können verwendet werden, um spezifische Assays, um die Wechselwirkung von anaeroben Bakterien mit eukaryotischen Zellen beurteilen zu entwerfen. Jedoch gibt es einige Überlegungen, die Versuche erfolgreich durchzuführen. Zuerst gibt es die Mikrobenstämme in einer Studie verwendet werden. Es ist von entscheidender Bedeutung bei dem Vergleich von zwei Stämmen sowohl mit dem Überlebens-Assay sowie durch Mikroskopie-Analyse, daß sie sich in einer ähnlichen Wachstums...

Anaerobe Bakterien besiedeln fast alle Oberflächen des menschlichen Körpers. Obwohl überwiegend in der Flora des Darm und Urogenitaltrakts, wo Sauerstoffkonzentrationen sind niedrig, es gibt sie auch in hohen Konzentrationen auf der Haut, Mund, Nase und Rachen 1. Anaerobe Bakterien sind eine häufige Ursache von endogenen Infektionen und werden häufig von erkrankten Stellen isoliert. Jedoch aufgrund ihrer Natur anspruchsvolle Anaerobier können schwierig zu isolieren und Kultur. Studien mit anaeroben Bakterien sind unter eingeschränkten Bedingungen durchgeführt werden. Moderne anaeroben Kulturtechniken es den Forschern ermöglichen, um die anaerobe Einstellungen erforderlich, um viele anaerobe Laborstämmen oder klinischen Isolaten 2,3 studieren zu imitieren. Pathogenen anaeroben Bakterien haben eine dynamische Beziehung und Co-Evolution mit den Wirtszellen in dem sie wohnen entwickelt. Esten Anaerobier sind anfällig für das Töten von der Immunantwort des Wirts vor Erreichen infectischiedenen Ebenen. Allerdings haben einige pathogene Bakterien Mechanismen zu entkommen oder untergraben die Wirtsimmunantwort entwickelt. Sie erreichen dieses Ziel durch Mechanismen wie Umgehung der Immunerkennung, Neutralisation von Immunmediatoren, Veränderung der zellvermittelten Immunität, Invasion von Wirtszellen und Veränderung der Immunsignal 4. Porphyromonas gingivalis, eine Gram-negative anaerobe sowohl mündlich als auch in Verbindung gebracht extraoralen Erkrankungen, ist ein Beispiel eines hoch angepasst bakterielles Pathogen Lage verursacht pathogenen Veränderungen im Aufnahme 5-7. Taschen der Biofilm Plaque in tiefen Spalten zwischen den Zähnen und Zahnfleischschleimhautgewebe gebildeten anaeroben Bakterien, die von Luftsauerstoff 8 geschützten Hafen abgegrenzt. Diese Zahnfleischtaschen dienen als Nische für verschiedene anaerobe Erreger wie P. gingivalis 9. P. gingivalis ist eine Keystone-Erreger, der in der Lage ist, umgestaltening die mündliche mikrobiellen Gemeinschaft in einer Weise, die Entwicklung und Progression von Parodontalerkrankungen 10 zu fördern. Es erzeugt eine große Anzahl von Virulenzfaktoren, die aktiv sind gegen ein breites Spektrum von Wirtsproteinen und stellt Mechanismen für die Umgehung der Wirtsabwehr 11. Es ist auch in der Lage eindringenden Epithelzellen, Endothelzellen, Fibroblasten und Parodontalligament Zellen in vitro und in vivo-12-14 15. Durch die effiziente Invasion von Wirtszellen, P. gingivalis kann Wirtsimmunität zu entkommen. Effektive Invasion von Wirtszellen ermöglicht nicht nur das Bakterium, um Wirtsabwehr zu entkommen, sondern dient auch als Reservoir für künftige Re-Infektion als auch verändert die Wirtszelle. Untersuchungen der molekularen Mechanismen der Adhäsion und Internalisierung des Bakteriums durch Wirtszellen beteiligt sind, erforderlich ist. Forschung in mehreren Laboratorien wird auf das Verständnis der molekularen Vorgänge bei der Internalisierung von P. assoziiert konzentriert gingivalis durch die Wirtszellensowie die verwendet werden, um zu unterdrücken und zu entführen, die Immunantwort und zu überleben, die feindlichen Abwehrmechanismen Mechanismen. Es gibt viele Tests, die die Identifizierung und Charakterisierung von Krankheitserregern, die in der Lage ist eindringenden Wirtszellen sind. In vitro-Studien mit anaerobe Pathogene Jedoch stellen viele experimentelle Probleme für die Forscher vor allem, weil es schwierig ist, Untersuchungen mit sperrigen Instrumente in Abwesenheit von Sauerstoff zu bauen. Dies wird durch die Tatsache, dass eukaryotische Zellen benötigen Sauerstoff, zu wachsen und müssen somit separat in Gewebekultur-Inkubatoren hergestellt werden verstärkt. Ein Weg, um solche Hindernisse zu vermeiden, wäre es, die Untersuchungen unter atmosphärischem Sauerstoff durchzuführen, aber das würde das Wachstum von anaeroben Bakterien unmöglich machen. Ein weiteres Verfahren wäre die durch Wärme abgetöteten Bakterien zu verwenden, um zu infizieren und zu studieren Host-Zell-Interaktionen. Zwischen Hitze abgetöteten und lebensfähigen Bakterien, die die Relevanz der Wirt-Pathogen interacti verringern bestehen jedoch Unterschiedeam 16. Es ist von zentraler Bedeutung für lebensfähige Bakterien mit unveränderter Expression Interaktion mit Wirtszellen zu studieren; Daher sind Verfahren zur Züchtung von P. gingivalis in einer anaeroben Umgebung gegeben. Auch sind zwei einfache kosteneffektive Protokolle zur Bewertung der Fähigkeit von P. zeigten gingivalis durch menschliche Nabelvenen-Endothelzellen (HUVECs) internalisiert werden. Das erste Protokoll basiert auf dem beliebten Antibiotikum-Schutz-Assay basiert. Obwohl der Test ist einfach, sind Überlegungen bei der Verwendung von anaeroben Mikroorganismen gegeben. Das zweite Protokoll erfordert die Verwendung eines fluoreszierenden Scanning-Mikroskop zur Visualisierung Interaktion und verinnerlicht P. gingivalis. Jeder Test hat seine Grenzen und Vorteile, die diskutiert werden, den Forscher eine Gliederung für die Untersuchung der Invasivität von anaeroben Bakterien bereitzustellen. Obwohl die aktuelle Manuskript studiert P. gingivalis und HUVECs können diese Protokolle für viele andere anaerobe Bakterien ebenso verwendet werdenwie für andere Arten von Wirtszellen.

<table><tbody><tr><td>Anaerobe Vinylkammer-Typ B</td><td>Coy Laborprodukte</td><td></td><td>Modell 2000 Inkubator&nbsp;</td></tr><tr><td>TSA II Trypticase Soja-Agar mit 5 % Schafsblut</td><td>BBL</td><td>221261</td><td></td></tr><tr><td>menschlichen Nabelvenen-Endothelzellen 10-Spender-Pool</td><td>LifeLine Technology</td><td>FC-0044</td><td></td></tr><tr><td>VascuLife VEGF Medium Komplettset</td><td>LifeLine Technology</td><td>LL-0003</td><td></td></tr><tr><td>TrypKit</td><td>LifeLine</td><td>LL-0013</td><td></td></tr><tr><td>Saponin</td><td>Riedel-de Haen</td><td>16109</td><td></td></tr><tr><td>Gentamicinsulfat Salz</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G-1264</td><td></td></tr><tr><td>Metronidazol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M-3761</td><td></td></tr><tr><td>BCECF-AM</td><td>LifeTechnologies</td><td>B1150</td><td></td></tr><tr><td>TRITC Phalloidin&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P1951</td><td></td></tr><tr><td>18 mm Runddeckgläser</td><td>Elektronenmikroskopie Sciences</td><td>72222-01</td><td></td></tr><tr><td>VectaShield Eindeckmedium mit DAPI</td><td>Vector Laboratories</td><td>H-1200</td><td></td></tr></tbody></table>

porphyromonas gingivalis als modellorganismus für die beurteilung der interaktion von anaeroben bakterien mit wirtszellen

Porphyromonas gingivalis as a Model Organism for Assessing Interaction of Anaerobic Bacteria with Host Cells

Anaerobe Bakterien weit zahlenmäßig überlegen Aerobier in vielen menschlichen Nischen wie dem Darm, Mund und Vagina. Darüber hinaus sind anaerobe Infektionen häufig und oft indigener Herkunft. Die Fähigkeit einiger anaerobe Erreger an menschliche Zellen einzudringen gibt ihnen adaptive Maßnahmen zur angeborenen Immunität zu entfliehen sowie Wirtszelle Verhalten zu modulieren. Jedoch sicherzustellen, dass die anaeroben Bakterien sind im experimentellen Untersuchung der Ereignisse kann Herausforderungen mit sich bringen zu Hause sind. Porphyromonas gingivalis, ein Gram-negative anaerobe, ist in der Lage eine Vielzahl von eindringenden eukaryotischen Nicht-Fresszellen. Dieser Artikel beschreibt, wie man erfolgreich Kultur und Beurteilung der Fähigkeit von P. gingivalis die menschliche Nabelvenen-Endothelzellen (HUVECs) einzudringen. Zwei Protokolle wurden entwickelt: ein, um Bakterien, die erfolgreich eindringen kann und zu überleben, in dem Wirt, und der andere, um Bakterien Interaktion mit Wirtszellen sichtbar zu messen. Diese Techniken erfordern die Verwendung eines anaeRobic Kammer P. liefern gingivalis mit einer anaeroben Umgebung für ein optimales Wachstum. Das erste Protokoll ist auf der antibiotischen Schutz-Assay, die weitgehend verwendet wird, um die Invasion von Wirtszellen, die durch Bakterien Studie. Jedoch ist die Antibiotikum-Schutzassay beschränkt; nur intrazelluläre Bakterien, die nach Behandlung mit Antibiotika und Host-Zell-Lyse kultivierbar sind, werden gemessen. Um alle Bakterien, die Interaktion mit Wirtszellen, sowohl lebenden und toten beurteilen wir ein Protokoll, das Fluoreszenz-Mikroskopie verwendet, um Wirt-Pathogen-Interaktion untersuchen entwickelt. Bakterien fluoreszent mit 2 &#39;bezeichnet, 7&#39;-Bis- (2-Carboxyethyl) -5- (und-6) -carboxyfluorescein-acetoxymethylester (BCECF-AM) und verwendet, um eukaryotische Zellen unter anaeroben Bedingungen zu infizieren. Folgende Fixierung mit Paraformaldehyd und Permeabilisierung mit 0,2% Triton X-100, werden Wirtszellen mit TRITC-Phalloidin und DAPI markiert, um den Zellkern und Cytoskelett beschriften sind. Mehrere images zu verschiedenen Schwerpunkten (Z-Stack) getroffen werden für zeitlich-räumliche Visualisierung von Bakterien erhalten. Verfahren in dieser Studie verwendet wird, kann auf jede kultivierbare anaerobe und jegliche eukaryotische Zelltyp angewendet werden.

Protokolle oben umrissen wurden bei der Untersuchung Wirt-Pathogen-Interaktion zwischen P. verwendet gingivalis und Endothelzellen. P. gingivalis W83 und P. gingivalis V3150, welches eine Deletion des PG0228 wurden in der Studie verwendet. Das PG0228 vorhergesagt wird, ein Protein, das die Pegel der RNA und Proteinen verändern können, was sich letztlich auf eine Wechselwirkung von P. kodieren gingivalis mit Wirtszellen. Um die Wirkung der PG0228 auf P. unter...

Dieser Artikel stellt zwei Protokolle vor: eines, um anaerobe Bakterien zu messen, die erfolgreich in den Wirt eindringen und darin überleben können, und das andere, um anaerobe Bakterien zu visualisieren, die mit Wirtszellen interagieren. Diese Studie kann auf jede kultivierbare anaerobe und jeden eukaryotischen Zelltyp angewendet werden.

Porphyromonas gingivalis als Modellorganismus für die Beurteilung der Interaktion von anaeroben Bakterien mit Wirtszellen

Anaerobic bacteria far outnumber aerobes in many human niches such as the gut, mouth, and vagina. Furthermore, anaerobic infections are common and ...

Das übergeordnete Ziel dieses Videos ist es, Protokolle zur Untersuchung der Interaktion von anaeroben Bakterien mit Wirtszellen zu demonstrieren. Die Bedingungen, die zur Kultivierung von Wirtszellen verwendet werden, sind für anaerobe Bakterien toxisch, und umgekehrt. Dies stellt eine Herausforderung bei der Untersuchung ihrer Wechselwirkungen dar, und es müssen Bedingungen geschaffen werden, die für beide optimal sind, damit sie während des Untersuchungszeitraums metabolisch aktiv bleiben.Solche Bedingungen spiegeln das Szenario der Wirt-Pathogen-Interaktion, das in vivo vorzufinden ist, genauer wider. Die hier vorgestellte Methode trägt dazu bei, Fragen zu den Mechanismen zu beantworten, die an dem Überleben von Mikroben sowie an der Bindung und Internalisierung anaerober Bakterienzellen während einer Infektion beteiligt sind. Im Allgemeinen werden Personen, die mit dieser Methode neu sind, Schwierigkeiten haben, da die Arbeit mit anaeroben Bakterien Kenntnisse über eine Anaerobenkammer und gute septische Techniken erfordert.Die visuelle Demonstration dieser Methode ist entscheidend, da die Schritte, die die Verwendung einer anaeroben Kammer beinhalten, schwer zu erlernen sind. Außerdem ist Vorsicht geboten, wenn mit anaeroben Kammern für die Kultur und Experimente mit Porphyromonas gingivalis gearbeitet wird. Eine Vinyl-anaerobe Kammer wird mit einer künstlichen Atmosphäre, die 80 % Stickstoff, 10 % Wasserstoff und 10 % Kohlendioxid enthält, betrieben. Stellen Sie 30 Blutagar-Platten, 500 Milliliter PBS und 30 Milliliter vaskulären endothelialen Wachstumsfaktor oder VEGF-Medium in die anaerobe Kammer.24 Stunden im Voraus, um die Reagenzien anzusetzen, säen Sie vier mal 10 hoch 5 humane Nabelvenenendothelzellen oder VE pro Vertiefung in Sechswellplatten in VEGF-Medium aus und lassen Sie diese über Nacht im Zellkulturgehäuse zur Anheftung. Bereiten Sie Porro-gingis-Kulturen in Brain-Heart-Infusion- oder BHI-Medium wie im begleitenden Text beschrieben vor und lassen Sie die Kulturen die logarithmische Wachstumsphase erreichen, während die optische Dichte der Kultur bei 660 Nanometern zwischen 0,5 und 0,7 liegt. Überführen Sie die Bakterien in ein 15-Milliliter-Röhrchen und wickeln Sie ein Stück Parafilm um den Verschluss, um eine aerobe Versiegelung zu verhindern.Anschließend die Bakterien in der anaeroben Kammer bei 5.000 × g für 10 Minuten zentrifugieren. Die pelletierten Bakterien mit anaerobem PBS waschen und erneut bei 5.000 × g für 10 Minuten abzentrifugieren. Reese hat die Bakterien in VEGF-Medium, um die HU X mit poröser Übertragung zu infizieren.Die sechs-Well-Platten aus dem Inkubator in die anaerobe Kammer bringen, das Medium aus den Test-Well entfernen und dreimal mit anaerobem PBS waschen. Bestimmen Sie die Zellzahl aus einem repräsentativen Well mittels Trypanblau-Ausschluss-Assay. Anschließend zwei Milliliter anaerobes VEGF-Medium pro Well hinzufügen und die Platten 20 Minuten bei 37 Grad Celsius im anaeroben Inkubator platzieren, um eine Gleichgewichtseinstellung zu erreichen. Bestimmen Sie die optische Dichte der Bakterien und resuspendieren Sie diese.Suspendieren Sie sie in einem ausreichenden Volumen an VEGF-Medium, um die Zellen mit einer Multiplizität der Infektion von 100 Bakterien pro Zelle zu infizieren. Geben Sie die bakterielle Suspension zu den Zellen und inkubieren Sie 30 Minuten bei 37 Grad Celsius zur Infektion und Zelllyse im anaeroben Schrank. Bereiten Sie eine 1 % (Gewicht pro Volumen) Saponin-Lösung in BHI-Medium vor und filtrieren Sie diese durch einen 0,2-Mikron-Filter, um bakterielle Wechselwirkungen mit Wirtszellen zu untersuchen.Entfernen Sie die sechswellige Platte aus dem Inkubator und saugen Sie das Infektionsmedium ab. Waschen Sie dreimal mit anaerobem PBS. Geben Sie dann zwei Milliliter Saponin-Lösung in jede Vertiefung und inkubieren Sie 15 Minuten lang, um die Zelllyse zu ermöglichen.Als Nächstes lösen Sie die Zellen vom Boden der Vertiefung ab und verdünnen das Zelllysat im Verhältnis 1:1 mit BHI-Medium. Führen Sie anschließend serielle Verdünnungen beginnend mit 1:100 durch und geben Sie 200 Mikroliter einer geeigneten Verdünnung auf Blutagarplatten. Wickeln Sie die Platten mit Perfil ein und inkubieren Sie sie sieben Tage lang in einem anaeroben Inkubator bei 37 Grad Celsius, um die Koloniebildung zu ermöglichen.Danach mithilfe einer Leuchtkasten die koloniebildenden Einheiten oder CFUs auf jeder Platte nach Infektion der HU-E-Zellen zählen. Die Zellen dreimal mit anaerobem PBS waschen. Als Nächstes zwei Milliliter VEGF-Medium, ergänzt mit vorab optimierten Konzentrationen von Antibiotika, zu den HU-E-Zellen hinzufügen.Inkubieren Sie die Zellen eine Stunde lang, saugen Sie das Medium ab und geben Sie zwei Milliliter einer 1%igen Saponin-Lösung in BHI pro Vertiefung zu, inkubieren Sie 15 Minuten lang. Danach kratzen Sie die lysierten Zellen ab und sammeln das Lysat in einem Zentrifugenröhrchen. Verdünnen Sie das Lysat im Verhältnis 1:1 mit BHI-Medium und stellen Sie anschließend serielle Verdünnungen beginnend bei 1:100 her.Tragen Sie 200 Mikroliter der geeigneten Konzentrationen auf Blut-Agar-Platten auf. Lassen Sie die Bakterien sieben Tage lang in einer anaeroben Kammer wachsen und zählen Sie anschließend die Kolonien.Die beschriebene Ausstrichmethode berücksichtigt nur die lebenden Bakterien, die mit den Zellen interagieren. Um diesen Nachteil zu überwinden, verwenden wir die Mikroskopie, bei der sowohl lebende als auch tote Bakterien, die mit der Zelle assoziiert sind, sichtbar gemacht werden können, um internalisierte Bakterien zu visualisieren. Übertragen Sie zunächst aseptisch den Autoklaven.Die Glasdeckgläser in jedem Loch einer 12-Loch-Platte, fünf mal 10 hoch vier hve pro Loch auf dem Deckglas, und 24 Stunden inkubieren, um Bakterien zu markieren, anschließend zentrifugieren, mittlere logarithmische Phase der Bakterien erreichen, das Pellet mit anaerobem PBS resuspendieren, erneut zentrifugieren und den Waschschritt wiederholen. Geben Sie 20 Mikroliter einer 0,2-Millimolar-Lösung von B-C-E-C-F-A-M zu zwei Milliliter anaerobem PBS, das fünf bis sieben mal 10 hoch acht enthält.Bakterien pro Milliliter werden bei 37 Grad Celsius 30 Minuten im Dunkeln inkubiert. Der verwendete fluoreszierende Farbstoff kann die meisten anaeroben Bakterien anfärben, sodass keine weiteren Reagenzien wie ein spezifischer Antikörper erforderlich sind. Zentrifugieren Sie die bakterielle Suspension bei 5.000 × g für 10 Minuten, um das nicht gebundene Markierungsreagenz zu entfernen, und resuspendieren Sie die Bakterien in VEGF-Medium.Infizieren Sie dann die UIC-Zellen im Verhältnis von 100 Bakterien pro Zelle und inkubieren Sie 30 Minuten bei 37 Grad Celsius. Nach der Inkubation entfernen Sie das Infektionsmedium und waschen die Zellen dreimal mit PBS. Geben Sie dann 4 % Parafomaldehyd hinzu und inkubieren Sie 10 Minuten bei Raumtemperatur.Um die Zellen in der anaeroben Kammer zu fixieren, entfernen Sie die fixierten Zellen aus der Kammer und waschen Sie die Deckgläser dreimal mit PBS. Inkubieren Sie die Deckgläser in einem Milliliter 0,2 % Triton X-100 für 10 Minuten, um die Zellen zu permeabilisieren. Waschen Sie danach die Deckgläser dreimal mit PBS. Geben Sie 50 Mikroliter einer Lösung mit 50 Mikrogramm pro Milliliter TRITC-Phalloidin auf jedes Deckglas und inkubieren Sie 45 Minuten bei Raumtemperatur, um das zelluläre oligomere Aktin anzufärben.Nach der Inkubation die Deckglas mit PBS dreimal waschen. Das Deckglas mit der Oberseite nach unten auf einen Objektträger mit einem weichen Montagemedium, das ein Mikrogramm pro Milliliter Dappy zur Kernfärbung enthält, aufsetzen. Danach den Rand des Deckglases mit Nagellack versiegeln und die Interaktion des anaeroben Bakteriums unter konfokaler Mikroskopie beobachten.Porige Gingiva mit Uve wird in diesen Ergebnissen gezeigt. Durch serielle Verdünnung der Zellen ergab der Lysat, der an Zellen angeheftete oder internalisierte Bakterien enthielt, um den Faktor 100 eine auszählbare Anzahl von KBE auf Blutagarplatten. Sieben Tage nach der Inkubation wird hier der Vergleich der KBE-Ausbeute auf Agarplatten zwischen der Infektion mit dem Wildtyp Porus vallis W 83 und der Infektion mit dem Deletionsmutanten V 315 gezeigt.Die Mutation beeinträchtigt die Fähigkeit des Bakteriums, eine Infektion zu verursachen. Die hier gezeigte VE ist eine grafische Darstellung der aus infizierten Zellen gewonnenen bakteriellen Kolonien. Bei der Bewertung der Interaktion wurden im Vergleich zum Wildtyp-Stamm weniger mutierte Bakterien aus den infizierten Zellen gewonnen.Die Ergebnisse nach dem Abtöten der extrazellulären Bakterien durch Antibiotikabehandlung sind in den rechten Spalten dargestellt. Auch hier war der Mutantenstamm ineffizient beim Eindringen in lebende Uve-Zellen. Bakterien werden nach Markierung mit BCE CFAM beobachtet.Zusätzliche Färbungen der Aktinfilamente und des zellulären Kerns sind in roter bzw. blauer Fluoreszenz sichtbar. Wenn man einmal Erfahrung mit diesen Techniken gesammelt hat, kann jede innerhalb von sechs Stunden durchgeführt werden, sofern sie ordnungsgemäß ausgeführt wird. Bei Durchführung dieses Verfahrens ist es wichtig, die Bakterien unter anaeroben Bedingungen zu halten und sämtliche Medien sowie Hilfsmittel bis zu 24 Stunden lang in der anaeroben Kammer zu äquilibrieren, bevor mit der Experimentierung begonnen wird.Es sollte nicht vergessen werden, dass die Arbeit mit anaeroben Erregern äußerst gefährlich sein kann, und Vorsichtsmaßnahmen wie das Tragen von Handschuhen, das Händewaschen sowie die Anwendung aseptischer Techniken sollten stets beachtet werden, wenn dieses Verfahren durchgeführt wird. Diese Methode kann daher Einblicke in prädentale Erreger ermöglichen. Sie kann außerdem auf andere Systeme angewandt werden, wie beispielsweise Aspirationspneumonie, intraabdominelle Infektionen, gynäkologische Infektionen und zahlreiche weitere anaerobe Infektionen an verschiedenen Stellen des menschlichen Körpers.Die Auswirkungen dieser Technik erstrecken sich auf unsere Arzneimitteltherapie gegen verschiedene anaerobe Krankheitserreger, da hemmende Maßnahmen einfach dem Protokoll hinzugefügt und die Internalisierung direkt nach der Behandlung gemessen werden können. Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man anaerobe Bakterien kultiviert und ihre Fähigkeit zur Interaktion mit Wirtszellen beurteilt.

porphyromonas-gingivalis-as-model-organism-for-assessing-interaction

Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie und Infektion

Quelle: Calatayud Arroyo, M., et al. Bewertung der Lebensfähigkeit eines synthetischen bakteriellen Konsortiums an der in-vitro-Darm-Wirt-Mikroben-Schnittstelle. J. Vis. Exp. (2018).Dieses Video demonstriert ein in-vitro-Darm-Host-Mikroben-Modell zur Untersuchung der bakteriellen Lebensfähigkeit. Eine Kokultur von Caco-2- und HT29-MTX-Zellen wird mit Bakterien inkubiert, die unter simulierten Verdauungsbedingungen vorbehandelt wurden. Die Integrität der Epithelbarriere wird mit...

In-vitro-Darmmodell zur Bewertung bakterieller Adhäsion und Internalisierung

Source: Calatayud Arroyo, M., et al. Assessing the Viability of a Synthetic Bacterial Consortium on the In Vitro Gut Host-microbe Interface. J. Vis. Exp. (2018)The video demonstrates a method to evaluate the viability of anaerobic oral bacteria using fluorescent dyes and flow cytometry. It begins with culturing bacteria in oxygen-free broth, followed by resuspending a single colony from a blood agar plate. After incubation and dilution, the culture is stained with membrane-permeable and...

Fluorescence-Based Viability Assessment of Oral Anaerobic Bacteria

Source: Alshehri, M. et. al., Organotypic Tissue Model Systems for Investigating Host-Pathogen Interactions In Vitro. J. Vis. Exp. (2025)This video demonstrates a co-culture model using multi-species oral biofilms and human oral epithelium. It highlights epithelial immune activation and enables the downstream analysis of host-pathogen interaction.

A Transwell Tissue Model for Studying Interactions Between Human Oral Biofilms and Epithelium

Dieses Video demonstriert eine Technik zur Beurteilung der Fähigkeit von Porphyromonas gingivalis, einem anaeroben pathogenen Bakterium, an menschlichen Nabelvenendothelzellen (HUVECs) zu haften und in diese einzudringen. Nach der Infektion der Wirtszellen mit den Bakterien werden die Wirtszellen lysiert, um sowohl anhaftende als auch internalisierte Bakterien freizusetzen. Wenn das Lysat in einem geeigneten Medium plattiert wird, deutet das Vorhandensein von Kolonien auf erfolgreiche...

Ein bakterieller Infektionsassay zur Untersuchung anaerober Bakterien-Wirtszell-Interaktionen

In diesem Video demonstrieren wir ein Verfahren zur Visualisierung von internalisiertem Porphyromonas gingivalis, einem anaeroben pathogenen Bakterium, in menschlichen Endothelzellen mittels konfokaler Mikroskopie. Die Bakterien werden mit einem Fluoreszenzfarbstoff gefärbt, während das Aktin-Zytoskelett der Wirtsendothelzelle mit einem anderen Fluoreszenzfarbstoff markiert wird. Die internalisierten Porphyromonas gingivalis in den Endothelzellen werden mit Hilfe der Konfokalmikroskopie...

Visualisierung von internalisierten anaeroben Bakterien in Wirtsendothelzellen

In diesem Video demonstrieren wir einen Assay zur Beurteilung des Überlebens von Porphyromonas gingivalis in menschlichen Endothelzellen. Das Maß für das Überleben und Wachstum von internalisiertem Porphyromonas gingivalis wird anhand der Anzahl der Kolonien auf der Blutagarplatte bewertet.

Beurteilung von internalisiertem Porphyromonas gingivalis in Endothelzellen des Wirts

Tiermodellen erwiesen haben wertvolle Werkzeuge bei der Definition von Wirt und Pathogen-spezifische Mechanismen, die zur Entstehung der chronischen Entzündung beitragen. Hier beschreiben wir ein Mausmodell der oralen Infektion mit dem menschlichen Erreger Porphyromonas gingivalis und Detail Methoden, um das Fortschreiten der Entzündung an lokalen und systemischen Websites zu beurteilen.

Einem Mausmodell für Pathogen-induzierten chronischen Entzündung an lokalen und systemischen Seiten

Darm-Host-Mikroben-Interaktionen wurden bewertet, mit einem neuartigen Ansatz kombiniert eine synthetische mündliche Gemeinschaft, in-vitro- Magen-Darm-Verdauung und ein Modell der Dünndarm Epithel. Wir präsentieren Ihnen eine Methode, die auszuwertende ZELLINVASION von Krankheitserregern und Multi-Spezies-Biofilmen oder sogar probiotischen Formulierungen Überlebensfähigkeit getestet angepasst werden kann.

Beurteilung der Lebensfähigkeit eines synthetischen bakterielle Konsortiums auf der In-vitro- Darm Host-Mikrobe Oberfläche

Das vorliegende Protokoll beschreibt die Anwendung organotypischer Gewebemodelle zur Untersuchung von Wirt-Erreger-Interaktionen in vitro. Konkret verwendet das beschriebene Modellsystem ein mehrschichtiges orales Epithel, das Mikroorganismen ausgesetzt ist, die mit Biofilmen (Zahnbelag) im Zusammenhang mit Mundgesundheit versus -erkrankung assoziiert sind.

Organotypische Gewebemodellsysteme zur Untersuchung von Wirt-Erreger-Interaktionen in vitro

Wir beschreiben ein Protokoll zu den wichtigsten Aufgaben der Host Signalmoleküle in lytische Replikation eines Modells Herpesvirus, gamma Herpesvirus 68 (γHV68) zu identifizieren. Mit Hilfe genetisch veränderter Mauslinien und embryonale Fibroblasten zur γHV68 lytische Replikation, erlaubt das Protokoll sowohl phänotypische Charakterisierung und molekulare Vernehmung von Virus-Wirt-Interaktionen in lytischen Replikation.

Sezieren Host-Virus-Interaktion in Lytic Replikation von einem Modell Herpesvirus

Erfahren Sie Methoden zur Untersuchung der Interaktion von anaeroben Bakterien mit Wirtszellen am Modellorganismus Porphyromonas gingivalis. Diese Protokolle ermöglichen die Visualisierung bakterieller Invasion und Überlebensmechanismen in vivo.

Porphyromonas gingivalis als Modellorganismus für die Beurteilung der Interaktion von anaeroben Bakterien mit Wirtszellen

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