Name: Mikroblasen Herstellung von Konkav-Porosität PDMS Beads (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-12-15T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 52 s
Description: Erfahren Sie die Herstellung mikroporöser PDMS-Perlen mit konkaven Morphologien für Materialwissenschaften. Diese Methode nutzt Elektrolytkonzentrationen zur Morphologieanpassung und liefert Materialien mit hohem Oberflächen-Volumen-Verhältnis.

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Diese Arbeit wurde von Western Kentucky University Ogden College of Science and Engineering, einschließlich der internen Unterstützung aus dem Department Chemie und von der Office of Research (RCAP 13-8032) unterstützt. Die Unterstützung von Dr. John Andersland an der WKU Microscopy Facility (REM-Aufnahmen) und Associate Professor Yan Cao der WKU Institut für Verbrennungs Science and Engineering (BET-Analyse) ist von zentraler Bedeutung für die Durchführung dieser Arbeiten.

1. Herstellung der Emulsion <ol><li> Emulsion Inhalt <ol><li> Masse eine geeignete Menge an Salz zu 10 ml einer 0,03-M-Lösung herzustellen. Platin (IV) -chlorid Maß 0,101 g, für Zink (II) chlorid (ZnCl 2) Maßnahme 0,032 g, und Natriumchlorid (NaCl) Maßnahme 0,018 g. </li><li> In einzelnen Reagenzgläser, lösen jedes Salz in 10 ml VE-Wasser. Zur späteren Verwendung beiseite gesetzt. </li><li> Verwenden Sie ein 20-ml, verschließbaren Glasgefäß für die Inhalte im Rahmen dieses Verfahrens. Tarieren ein Gleichgewicht mit dem Glasfläschchen. </li><li> Wiegen Vinyl-terminierten Polydimethylsiloxans durch langsames Eingießen sie über einen Rührstab und in das Glasgefäß auf der Waage ruht auf Null gestellt. Man wiegt 1,02 g (entspricht 1.080 ml). HINWEIS: Die hohe Viskosität dieses Polymers macht Pipettieren unpraktisch. </li><li> Pipette 1,02 ml n-Heptan zu dem Fläschchen. 2 Tropfen nicht-ionisches Tensid (Sorbitanmonooleat) in das Fläschchen. Pipette 0,3 ml Salzlösung und 0,45 ml DI-Wasser in das Fläschchen. </li><li> Dichten Sie das Glasfläschchen durch Verschrauben Sie den Deckel fest zu. Kräftig schütteln für 60 Sekunden, um die Emulsion vor Beginn der Ultraschallbehandlung einzuleiten. </li></ol></li><li> Bau von Wasser-Ultraschallbad Vorrichtung <ol><li> Füllen Beschallungsgerät mit Wasser bis auf die minimale Füllhöhe. In 250 ml Leitungswasser zu einer 400-ml-Becherglas. Füllen Sie den 400-ml-Becherglas mit Eis, so dass der Wasserstand ist nur am Rand. </li><li> Dieses Becherglas im Inneren des wasser Ultraschallbad. Überprüfen Sie das Fill-Linie auf dem Ultraschallgerät, Einstellung, wenn nötig. Platzieren Sie einen Ring zu stehen direkt am Wasser Ultraschallbad. </li><li> Verwendung von zwei Ringständer Klammern einsetzen, positionieren, so daß ein Arm ausgefahren und senkrecht zum Ring stehen und eine weitere in Richtung der Wasserbad ausgefahren, so dass es nach unten in den Becher mit Eiswasser gefüllt zeigt. Befestigen weiterer Schelle mit dem Ring stehen, der mit einem Thermometer, die in der 400-ml-Becherglas so daß die Temperatur während der Beschallung zu überwachen. </li></ol></li><li> Emulsification Ordnung <ol><li> Platzieren der Emulsion enthaltenden Ampulle, so daß er vollständig in den 400-ml-Becher durch Befestigung in die Klemme nach unten in den Becher vorsteht getaucht. </li><li> Stellen Sie sicher, dass die Glasfläschchen mit dem PDMS-Mischung wird die Wand des Becherglases nicht berühren, um Wärme durch Reibung zu eliminieren. </li><li> Schalten Sie das Ultraschallgerät und setzen Beschallungszeit für 7 min. Weil der Emulsion ist sehr wärmeempfindlich, sicherzustellen, dass die Temperatur im Inneren des Bechers liegt zwischen 0 und 5 ° C das Beschallen. Beginnen Beschallung, sobald die Temperatur im Inneren des Bechers, ist wünschenswert. </li><li> Nach 7 min von Beschallung, entfernen Sie das Röhrchen und schütteln / Strudel für 1 min, hält die Spitze des Fläschchens, um alle Klumpen, die in der Emulsion zu bilden könnten, zu beseitigen. </li><li> Entsorgen Sie den Inhalt des Bechers. Refill mit 250 ml Wasser und Eis hinzufügen, um die Füllung innerhalb von 1 cm die Oberseite des Bechers. </li><li> Legen Sie das Fläschchen wieder in der Klemme. Tauchen Sie es unter dem Eis Wasser zu Resume Beschallung während 7 min. </li><li> Wiederholen Sie die Schritte 1.3.3, für insgesamt acht, 7-min Beschallung Perioden 1.3.6, oder bis die Beschallung erscheint homogen zu sein und keine Klumpen vorhanden sind. Lagern bei RT. ANMERKUNG: Das Emulgieren sollte für mehrere Tage stabil zu sein, sondern kann durch Beschallung, wie oben in 7-Minuten-Intervallen gewonnen werden, bis sie homogen erscheint. Lagern bei RT. </li></ol></li></ol> 2. Die Vernetzung <ol><li> Setup für die Zugabe von Triethoxysilan / Tensid-Lösung <ol><li> Pipette 5,4 ml Triethoxysilan in ein Reagenzglas. Platzieren in einem Reagenzglasgestell unter der Haube zur späteren Verwendung. </li><li> Füllen Sie einen 400-ml-Becherglas mit Eiswasser und legen Sie sie unter der Haube. Neben der 400-ml-Becher Ort ein Ring mit einer Klammer befestigt zu stehen, verlängert sich direkt über der Öffnung des Bechers. Dies wird das Eisbad für die Zugabe von Triethoxysilan zu sein. </li><li> Legen Sie eine heiße Platte auf der anderen Seite des Rings stehen. Füllen Sie einen 800-ml-Becherglas mit etwa 700 mlLeitungswasser. Legen Sie sie auf der heißen Platte. </li><li> Drehen auf der Heizplatte und Aufrechterhaltung einer Temperatur von 75 bis 85 ° C in der 800-ml-Becherglas. Befestigen Sie eine Klemme mit einem Thermometer in den Ring Ständer, so dass die Temperatur des Wassers in der 800-ml-Becher kann überwacht werden. </li><li> Erzeugen der Tensidlösung durch Auflösen von 0,5 g Natriumdodecylsulfat und 375 ml Wasser (4,62 mM). Etwa 10 ml des oberflächenaktiven Lösung auf eine saubere, leere Reagenzglas. </li><li> Befestigen Sie eine weitere Klemme an den Ring unter der Haube mit dem Tensid Reagenzglasständer befestigt, so dass seine Flüssigkeitspegel unterhalb der Oberfläche des Wassers in der 800-ml-Becherglas. Lassen Sie 10 Minuten zum Temperaturausgleich. </li><li> Befeuchten Sie ein Stück Filterpapier und legen Sie es in der Spitze eines kleinen Trichter. Setzen Sie den Stiel des Trichters in einem 250-ml-Erlenmeyerkolben und der Kolben setzen unter der Haube. </li></ol></li><li> Zugabe von Triethoxysilan <ol><li> Legen Sie die Emulsion Fläschchen in der Klemme über die Eis-Wasser-Schnabeler im Inneren der Kapuze. Positionierung des PDMS-Mischung in der Klemme, so daß die Kolbeninhalt unterhalb der Oberfläche des Wassers. Die Zugabe von Triethoxysilan bewirkt eine exotherme Reaktion, so dass die Emulsion muß, um seine Struktur beizubehalten kalt gehalten werden. </li><li> Entfernen Sie den Deckel von der Glasfläschchen in den gasförmigen Aufbau zu vermeiden. </li><li> Gießen Sie langsam das Teströhrchen, das Triethoxysilan in das Glasfläschchen in einem kontinuierlichen Strom über einen Zeitraum von etwa 10 s (etwa 0,5 ml / sec). Vorsicht: Die Zugabe von Triethoxysilan initiiert eine exotherme Reaktion und die Freisetzung von ätzenden Chlorwasserstoff (HCl) -Gas. Das Fläschchen wird sehr heiß und ein giftiges Gas wird aus der Mischung zu entwickeln. Nicht rühren den Inhalt während der Zugabe des Triethoxysilan. </li><li> Nach der Zugabe von Triethoxysilan komplett vorsichtig rühren Sie den Inhalt mit einem Glas Rührstab beim Tragen eines Wärmeschutzhandschuh. Warten Sie 2 Minuten oder bis die Gashaltestellen weiterentwickelt aus dem Fläschchen. </li><li> Folldurch Vernetzung gibt es keine Phasentrennung in der Probe sichtbar. Wenn Klumpen vorhanden sind, versiegeln Sie die Durchstechflasche und schütteln Sie konsequent für 20 Sekunden, während Sie das Fläschchen mit dem Deckel. </li></ol></li><li> Bead Produktions <ol><li> Verwenden Sie ein sauberes, Glas Pasteur-Pipette, um das vernetzte Emulsion aus dem Glasfläschchen zu ziehen. Hinzufügen der vernetzten Emulsion tropfenweise zu der Tensidlösung in das Teströhrchen nehmen so wenig Zeit wie möglich in zwischen den Tropfen (der zwischen 75 und 85 ° C gehalten werden sollte). </li><li> 30 Sekunden bis 1 Minute nach der Zugabe der Emulsion wird die Tensidlösung langsam beginnen, Gas entwickeln, während sich Feststoffe im Inneren der Teströhrchen zu bilden. </li><li> Während das Tragen Wärmeschutzhandschuhe tragen, nehmen Sie das Reagenzglas aus der Klemme und gießen Sie den gesamten Inhalt in die Filtervorrichtung unter der Haube. Filter für 5 min. Entfernen Sie das Filterpapier aus dem Filter. </li><li> Übertragen Sie die filtrierten Feststoffe auf ein Uhrglas und separater Perlen für O / N Trocknung unter der hood. Reinigung der Perlen können unbestimmte Zeit verschoben werden. Shop getrockneten Kügelchen bei RT in einem verschlossenen Glasgefäß, bis sie benötigt, und sauber unmittelbar vor der Verwendung. </li></ol></li><li> Bead Reinigung <ol><li> Erstellen Sie eine andere Filtervorrichtung unter der Haube und legen Sie die getrockneten Kugeln im Inneren des Trichters auf dem Filterpapier. </li><li> Verwenden Sie einen Kunststoff-Spritzflasche mit DI-Wasser gefüllt, um die Perlen vorsichtig spülen, bewegen sie um etwas, um sicherzustellen, dass alle die Perlen gespült werden. </li><li> Lassen Sie die Perlen trocknen 1 h, indem sie auf einem Uhrglas unter der Haube. Verwenden Sie eine Waschflasche mit Hexan gefüllt, um die Kügelchen mit der gleichen Methode zum Spülen mit Wasser spülen. </li><li> Legen Sie die Perlen auf einem Uhrglas. Legen Sie das Uhrglas und die Perlen unter der Haube, um zu trocknen. </li><li> Nachdem die Kügelchen vollständig trocken sind, legen Sie sie in einer kleinen verschließbaren Glasgefäß und lagern bei RT für die zukünftige Verwendung. </li></ol></li><li> Montage der Korne für SEM und SEM-Analyse-Einstellungen <ol><li> Legen Sie einen Streifen von double seitigen Kohlen leitende Band an der Spitze des Stutzens, auf dem die Perlen angebracht werden. Mit einer Schere, schneiden Sie auf der Stummel, keine Band hängt über die Kanten zu gewährleisten. </li><li> Legen Sie ein Stück Filterpapier unter dem Stummel auf einer ebenen Fläche. Entfernen der Deckschicht vom Band, so daß die Klebeunterseite freiliegt. </li><li> Vorsichtig gießen Sie die Perlen auf der Stummel. Einige Perlen werden auf das Band zu bleiben, aber die meisten werden auf dem Filterpapier abprallen und Land. Gießen Sie diese zurück in die Flasche, wenn sie blieben auf dem Filterpapier. Wiederholen Sie gegebenenfalls Waschen keine Kügelchen (nach 2.4.2 bis 2.4.5), die kontaminiert werden. </li><li> Um sicherzustellen, dass die Perlen auf der Stummel sicher, verwenden Sie eine Ballonspritze und leicht zu blasen sehr eng mit dem Stummeloberfläche. Gießen Sie mehr Perlen über den Stub, wenn nur wenige auf das Band geklebt. Stellen Sie sicher, dass alle Perlen sind, bevor Sie den Stummel in den SEM-Kammer und Evakuieren sicher. </li><li> Sobald die Proben ordnungsgemäß montiert sind sie nun bereit, SEM anal unterziehenlyse 15. Sammle Bilder in LOW VAC-Modus bei 15 keV, die Auflösung der Oberflächenmerkmale der Wulst zu optimieren. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Pedraza, E., Brady, A. C., Fraker, C. A., Stabler, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis+of+macroporous+poly%28dimethylsiloxane%29+scaffolds+for+tissue+engineering+applications%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomater.+Sci.%2C+Polym.+Ed%22%5BJournal%5D)">Synthesis of macroporous poly(dimethylsiloxane) scaffolds for tissue engineering applications.</a> J. Biomater. Sci., Polym. Ed. 24 (9), 1041-1056 (2013).</li>
<li>Ratner, B. D., Bryant, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biomaterials%3A+Where+we+have+been+and+where+we+are+going%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Biomed.+Eng%22%5BJournal%5D)">Biomaterials: Where we have been and where we are going.</a> Annu. Rev. Biomed. Eng. 6, 41-75 (2004).</li>
<li>Bélanger, M. C., Marois, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hemocompatibility%2C+biocompatibility%2C+inflammatory+and+in+vivo+studies+of+primary+reference+materials+low-density+polyethylene+and+polydimethylsiloxane%3A+A+review%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Mater%22%5BJournal%5D)">Hemocompatibility, biocompatibility, inflammatory and in vivo studies of primary reference materials low-density polyethylene and polydimethylsiloxane: A review.</a> J. Biomed. Mater. 58 (5), 467-477 (2001).</li>
<li>Kobayashi, T., Saitoh, H., Fujii, N., Hoshino, Y., Takanashi, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Porous+membrane+of+polydimethylsiloxane+by+hydrosilylation+cure%3A+characteristics+of+membranes+having+pores+formed+by+hydrogen+foams%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Polym.+Sci%22%5BJournal%5D)">Porous membrane of polydimethylsiloxane by hydrosilylation cure: characteristics of membranes having pores formed by hydrogen foams.</a> J. Appl. Polym. Sci. 50 (6), 971-979 (1993).</li>
<li>Yager, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+diagnostic+technologies+for+global+public+health%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Microfluidic diagnostic technologies for global public health.</a> Nature. 442 (7101), 412-418 (2006).</li>
<li>Yu, P., Lu, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PDMS+used+in+microfluidic+devices%3A+principles%2C+devices+and+technologies%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Mater.+Sci.+Res%22%5BJournal%5D)">PDMS used in microfluidic devices: principles, devices and technologies.</a> Adv. Mater. Sci. Res. 11, 443-450 (2011).</li>
<li>Zhou, J., Khodakov, D. A., Ellis, A. V., Voelcker, N. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surface+modification+for+PDMS-based+microfluidic+devices%5BTitle%5D)+AND+%22Electrophoresis%22%5BJournal%5D)">Surface modification for PDMS-based microfluidic devices.</a> Electrophoresis. 33 (1), 89-104 (2012).</li>
<li>Spietelun, A., Pilarczyk, M., Kloskowski, A., Namieśnik, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polyethylene+glycol-coated+solid-phase+microextraction+fibres+for+the+extraction+of+polar+analytes%E2%80%94A+review%5BTitle%5D)+AND+%22Talanta%22%5BJournal%5D)">Polyethylene glycol-coated solid-phase microextraction fibres for the extraction of polar analytes—A review.</a> Talanta. 87, 1-7 (2011).</li>
<li>Vas, G., Vékey, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Solid-phase+microextraction%3A+a+powerful+sample+preparation+tool+prior+to+mass+spectrometric+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mass+Spectrom%22%5BJournal%5D)">Solid-phase microextraction: a powerful sample preparation tool prior to mass spectrometric analysis.</a> J. Mass Spectrom. 39 (3), 233-254 (2004).</li>
<li>Odziemkowski, M., Koziel, J. A., Irish, D. E., Pawliszyn, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sampling+and+Raman+confocal+microspectroscopic+analysis+of+airborne+particulate+matter+using+poly%28dimethylsiloxane%29+solid+phase+microextraction+fibers%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Sampling and Raman confocal microspectroscopic analysis of airborne particulate matter using poly(dimethylsiloxane) solid phase microextraction fibers.</a> Anal. Chem. 73 (13), 3131-3139 (2001).</li>
<li>Grosse, M. T., Lamotte, M., Birot, M., Deleuze, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+microcellular+polysiloxane+monoliths%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Polym.+Sci.%2C+Part+A%3A+Polym.+Chem%22%5BJournal%5D)">Preparation of microcellular polysiloxane monoliths.</a> J. Polym. Sci., Part A: Polym. Chem. 46 (1), 21-32 (2007).</li>
<li>Sun, W., Yan, X., Zhu, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis%2C+porous+structure%2C+and+underwater+acoustic+properties+of+macroporous+cross-linked+copolymer+beads%5BTitle%5D)+AND+%22Colloid+Polym.+Sci%22%5BJournal%5D)">Synthesis, porous structure, and underwater acoustic properties of macroporous cross-linked copolymer beads.</a> Colloid Polym. Sci. 290 (1), 73-80 (2012).</li>
<li>Dufaud, O., Favre, E., Sadtler, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Porous+elastomeric+beads+from+crosslinked+emulsions%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Polym.+Sci%22%5BJournal%5D)">Porous elastomeric beads from crosslinked emulsions.</a> J. Appl. Polym. Sci. 83 (5), 967-971 (2002).</li>
<li>Farmer, B. C., Mason, M., Nee, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Concave+porosity+non-polar+beads+by+a+modified+microbubble+fabrication%5BTitle%5D)+AND+%22Mater.+Lett%22%5BJournal%5D)">Concave porosity non-polar beads by a modified microbubble fabrication.</a> Mater. Lett. 98, 105-107 (2013).</li>
<li>Flegler, S. L., Heckman, J. W., Klomparens, K. J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFlegler%2C+SL+%22Scanning+and+Transmission+Electron+Microscopy%3A+An+Introduction%22">Scanning and Transmission Electron Microscopy: An Introduction</a>. , Oxford University Press. 151-155 (1995).</li>
<li>Brunauer, S., Emmett, P. H., Teller, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adsorption+of+Gases+in+Multimolecular+Layers%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Chem.+Soc%22%5BJournal%5D)">Adsorption of Gases in Multimolecular Layers.</a> J. Am. Chem. Soc. 60 (2), 309-319 (1938).</li>
<li>Sing, K. S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+porous+materials%3A+past%2C+present+and+future%5BTitle%5D)+AND+%22Colloids+Surf.+A%22%5BJournal%5D)">Characterization of porous materials: past, present and future.</a> Colloids Surf. A. 241 (1), 3-7 (2004).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Die unter Verwendung dieses Protokolls (und durch Einstellung der Elektrolyt-Konzentration und Identität) hergestellten Kügelchen grundlegend von denen mit einer niedrigen Ionenstärke Emulsion hergestellte, wie durch den Vergleich der 1A zu den anderen SEM-Bilder in 1 zu sehen. Unsere anfänglichen Bericht verwendet PtCl 4 mit der Absicht, die Polymerisation Vernetzung weiter zu katalysieren, in der wässrig-aliphatische-Schnittstelle 14. In diesem Bericht wurden die...

Polydimethylsiloxan (PDMS) ist eine der am weitesten verbreiteten Silikonverbindungen. Seine Biokompatibilität hat zu einer breiten Anwendung in Implantat- und anderen biomedizintechnischen Strukturen geführt1,2. Es wird unter Verwendung einer Organosilylverbindung (wie Triethoxysilan) trivial zu elastischen Strukturen vernetzt, ein einfaches und zuverlässiges Verfahren, das es für Gießpolymeranwendungen nützlich gemacht hat, bei denen eine gewisse Flexibilität erforderlich ist3. Einmal vernetzt, ist PDMS weitgehend inert, insbesondere unter biologischen Bedingungen, und ist daher für eine Vielzahl von Lebensmittel- und medizinischen Anwendungen nützlich4,5. Einfaches Gießen, chemische Inertheit und Hydrophobie haben es zu einer natürlichen Wahl für mikrofluidische Geräte gemacht6,7. Seine Affinität zu halogenfreien, unpolaren organischen Verbindungen hat es zu einer beliebten stationären Phase in der Trennchemie8-10 gemacht. 
Kürzlich wurden Mikroblasenfabrikationen verwendet, um poröse Kügelchen für die Verwendung als Katalysatorstruktursubstrate oder in chemischen Trennungen zu erzeugen11,12. In beiden Anwendungen weisen die idealen Materialien ein maximiertes Oberfläche-zu-Volumen-Verhältnis (SAV) auf, um die beste Effizienz zu erzielen. Bei einem Herstellungsprozess für Mikrobläschen wird die Mikrostrukturierung von Materialien typischerweise durch Isolierung des Polymers in aliphatischen "Mikrobläschen" durch Emulgieren in einer wässrigen kontinuierlichen Phase erreicht. Der erste Bericht über mikroporöse PDMS-Kügelchen erzeugte diese durch mechanische Emulgierung von zwei Phasen (aliphatisch und wässrig)13. Die PDMS-Stammflüssigkeit (und ihr Vernetzungsmittel) wird in die aliphatische Phase gelöst, die in mikroskopisch kleine Kügelchen strukturiert wird, indem sie in der (kontinuierlichen) wässrigen Phase zur Kavitation gezwungen wird. Die Emulgierung wird durch die Zugabe eines nichtionischen Tensids stabilisiert. Wenn die Emulsion tropfenweise in ein erhitztes Bad gegeben wird, bilden sich feste Kügelchen durch Agglomeration der Mikrobläschen zu Clustern winziger Kügelchen aus vernetztem PDMS. Unser Ziel in diesem Protokoll ist es, dieses Verfahren zu modifizieren, um Kügelchen mit einer umgekehrten Porosität zu entwickeln, um das SAV-Verhältnis des Materials zu verbessern.
Wie bereits berichtet, kann die Kontrolle der Kügelchen bis zu einem gewissen Grad durch die aliphatisch:wässrigen Verhältnisse in der Emulsion gesteuert werden. In jüngster Zeit haben wir jedoch berichtet, dass die Zugabe von Platin(IV)-chlorid (PtCl4) die Porosität umkehrt: Es bilden sich Materialien, in denen das PDMS mit konkaven Poren durchsetzt ist14. Dies deutet darauf hin, dass die wässrige Schicht innerhalb der aliphatischen Schicht kavitiert, obwohl sie ähnliche aliphatische:wässrige Verhältnisse aufweist wie in der Originalarbeit13. Der Hauptvorteil unserer Methode besteht darin, dass diese konkave Porosität auf natürliche Weise zu einem erhöhten SAV-Verhältnis und damit zu einer verbesserten Effizienz für Anwendungen in der analytischen Chemie führen sollte. Während wir weiterhin die spezifischen Wirkungen der Zugabe der Platinverbindung untersuchen, zeigen wir hier, dass der gleiche Effekt mit jeder wässrig löslichen ionischen Verbindung erzielt werden kann, wenn auch vielleicht in reduziertem Ausmaß. Da sich unsere Techniken auch in einigen wichtigen Aspekten von dem unterscheiden, was bisher berichtet wurde, stellen wir unsere Protokolle hier als Video vor, um andere zu ermutigen, unsere Methoden zu erweitern. Vor allem verwenden wir einen herkömmlichen Badsonicator, wie er zur Reinigung von Glaswaren oder anderen Geräten verwendet wird, anstelle des (wesentlich teureren) Sondensonicators, der häufig bei der Herstellung von Mikroblasen verwendet wird. Dieser angepasste Ansatz für das Verfahren zur Herstellung von Mikroblasen könnte möglicherweise auch auf die Produktion großer Mengen von Schüttgütern ausgeweitet werden, wodurch poröse Platten oder Platten entstehen, die Anwendungen für biomedizinische Geräte, die Luft- und Raumfahrt- und Automobilindustrie oder Substrate für die chemische Katalyse haben könnten. Anwender, die mikrostrukturierte Materialien mit hohem SAV-Verhältnis unter Verwendung anderer ähnlicher Polymere für solche Analysen erzeugen möchten, können feststellen, dass unsere Protokolle auf jedes Polymer erweitert werden können, für das die Mikroblasenemulsionstechnik angewendet werden kann.

<table><tbody><tr><td>Poly(dimethylsiloxan), vinylterminiertes</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>68083-19-2</td><td></td></tr><tr><td>n-Heptan</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>142-82-5</td><td>Entzündliches</td></tr><tr><td>Triethoxysilan</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>998-30-1</td><td>Entzündliches, akut toxisches</td></tr><tr><td>Sorbitanmonoleat (Span-80)</td><td>Fluker</td><td>1338-43-8</td><td></td></tr><tr><td>Platin(IV)-chlorid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>13454-96-1</td><td>Akut giftiges</td></tr><tr><td>Zink(II)-chlorid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7646-85-7</td><td></td></tr><tr><td>Natriumchlorid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7647-14-5</td><td></td></tr><tr><td>2,8 L Wasserbad-Ultraschallgerät</td><td>VWR</td><td>97043-964</td><td></td></tr></tbody></table>

mikroblasen herstellung von konkav-porosität pdms beads

Microbubble Fabrication of Concave-porosity PDMS Beads

Die Herstellung von Mikroblasen (unter Verwendung einer feinen Emulsion) bietet eine Möglichkeit, das Verhältnis von Oberfläche zu Volumen (SAV) von Polymermaterialien zu erhöhen, was besonders nützlich für Trennanwendungen ist. Poröse Polydimethylsiloxan (PDMS)-Kügelchen können durch Wärmehärten einer solchen Emulsion hergestellt werden, wodurch die Grenzfläche zwischen der wässrigen und der aliphatischen Phase die Morphologie des Polymers formen kann. Bei den hier beschriebenen Verfahren werden sowohl das Polymer als auch der Vernetzer (Triethoxysilan) gemeinsam in einem Kaltbad-Beschallungsgerät beschallt. Nach einer Phase der Vernetzung werden Emulsionen tropfenweise zu einer heißen Tensidlösung gegeben, wodurch sich die wässrige Phase der Emulsion trennen und poröse Polymerkügelchen bilden können. Wir zeigen, dass diese Methode abgestimmt und das SAV-Verhältnis optimiert werden kann, indem der Elektrolytgehalt der wässrigen Phase in der Emulsion eingestellt wird. Die auf diese Weise hergestellten Kügelchen werden mit Rasterelektronenmikroskopie abgebildet und repräsentative SAV-Verhältnisse mittels Brunauer-Emmett-Teller (BET)-Analyse bestimmt. Es wird eine beträchtliche Variabilität bei der Elektrolytidentität beobachtet, aber der allgemeine Trend ist konsistent: Es gibt ein Maximum an SAV, das bei einer bestimmten Konzentration erreicht wird, wonach die Porosität deutlich abnimmt.

Repräsentative SEM-Bilder von Kügelchen, die aus Emulsionen mit unterschiedlichen Elektrolytbedingungen sind in Abbildung 1 dargestellt. 1A zeigt eine Wulst ähnlich denen von Dufaud erhalten, et al. 13, die unter Verwendung unserer Verfahren, ohne die Zugabe von irgendeinem Elektrolyten. Kügelchen in 1B-D gezeigt ist, was zu unterschiedlichen Morphologien für jedes Metallion. Für alle gezeigten Bilder wurden 300 ul von 0,03 M-Elektrolytlösungen anstelle von 300 ul de...

Verfahren zur Erzeugung von mikrostrukturierten konkaven Polydimethylsiloxan-Kügelchen werden vorgestellt. Besonders hervorgehoben werden die Auswirkungen der Elektrolytkonzentration und -identität innerhalb der wässrigen Phase.

Mikroblasen Herstellung von Konkav-Porosität PDMS Beads

Microbubble fabrication (by use of a fine emulsion) provides a means of increasing the surface-area-to-volume (SAV) ratio of polymer materials, which is ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, millimetergroße mikroporöse Polymerperlen mit konkaver Morphologie herzustellen. Dieses Verfahren dient der Herstellung polymere Materialien mit hohem Oberfläche-zu-Volumen-Verhältnis. Diese Materialien könnten entweder in der Trennwissenschaft oder als Substrate für neue Energienmaterialien eingesetzt werden.Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass wir Salzkonzentrationen in der wässrigen Phase unserer Emulsion verwenden, um die Morphologie der Partikel einzustellen. Im Allgemeinen haben Personen, die neu in dieser Methode sind, Schwierigkeiten, da die Aufrechterhaltung der Temperatur während der Beschallung äußerst wichtig ist. Um zu beginnen, wiegen Sie eine geeignete Menge Salz ab, um 10 Milliliter einer 0,03-molaren Lösung herzustellen, und geben Sie 1,02 Gramm vinylterminiertes Polymethyl-SUBOXAN oder PDMS langsam über einen Rührstab in ein 20-Milliliter-Glasküvettenfläschchen mit Verschlusskappe. Auf einer tarierbaren Waage ruhen lassen, dann 1,02 Milliliter N-Heptan in das Gefäß pipettieren. Zwei Tropfen nichtionischen Tensid zum Gefäß hinzufügen, gefolgt von 0,3 Milliliter Salzlösung und 0,45 Milliliter entionisiertem Wasser. Nach dem Verschließen des Glasgefäßes durch festes Zudrehen des Deckels 60 Sekunden lang kräftig schütteln, um die Emulsion einzuleiten, bevor die Beschallung beginnt.Um eine Wasserbad-Ator-Vorrichtung herzustellen, füllen Sie die Ator mit Wasser bis zur Mindestfülllinie. Geben Sie 250 Milliliter Leitungswasser in einen 400-Milliliter-Becher. Füllen Sie den 400-Milliliter-Becher mit Eis, sodass der Wasserstand gerade am Rand liegt.Stellen Sie diesen Becher in das Wasserbad-Ultraschallgerät. Überprüfen Sie die Füllstandslinie am Ultraschallgerät und stellen Sie sie bei Bedarf ein. Dann setzen Sie einen Ring ein.Stellen Sie sich direkt neben das Ultraschallbad. Verwenden Sie zwei Stativklemmen. Positionieren Sie diese so, dass ein Arm senkrecht zum Stativ herausragt, während der andere Arm in Richtung des Ultraschallbads zeigt und nach unten in das mit Eiswasser gefüllte Becherglas weist.Befestigen Sie eine weitere Klammer an den Ringen. Stellen Sie ein Thermometer in den 400-Milliliter-Becher, sodass die Temperatur während des gesamten Vorgangs überwacht werden kann. Um die Emulgierungsprozedur durchzuführen, stellen Sie das Gefäß mit der Emulsion so in die Klammer, dass es vollständig in den 400-Milliliter-Becher eingetaucht ist und nach unten in den Becher hineinragt.Die Temperaturregelung der Emulsion vor der Vernetzung ist der wichtigste Schritt. Wenn Klumpen in der Lösung vorhanden sind, ist die Lösung vor der Vernetzung nicht homogen, was die Emulsion beschädigt und verhindert, dass sich Feststoffe bilden. Schalten Sie die Sonifikation ein und stellen Sie die Sonifikationszeit auf sieben Minuten ein.Da die Emulsion sehr wärmeempfindlich ist, stellen Sie sicher, dass die Temperatur im Becher während der gesamten Ultraschallbehandlung zwischen null und fünf Grad Celsius liegt. Beginnen Sie die Ultraschallbehandlung, sobald die Temperatur im Becher im gewünschten Bereich liegt. Nach sieben Minuten Ultraschallbehandlung nehmen Sie das Gefäß heraus und schütteln oder schwenken es vorsichtig eine Minute lang, wobei Sie die Oberseite des Gefäßes halten, um eventuell entstandene Klumpen in der Emulsion zu beseitigen.Entsorgen Sie den Inhalt des Bechers und füllen Sie ihn anschließend erneut mit 250 Millilitern Wasser, fügen Sie Eis hinzu, bis der Becher bis auf einen Zentimeter unter den Rand gefüllt ist. Wiederholen Sie die Beschallungsschritte insgesamt achtmal für jeweils sieben Minuten oder bis die Beschallung homogen erscheint und keine Klumpen mehr vorhanden sind. Lagern Sie die Emulsion bei Raumtemperatur.Pipettieren Sie 5,4 Milliliter Trixi Silene in ein Reagenzglas und stellen Sie das Reagenzglas zur späteren Verwendung unter der Abzugshaube in ein Reagenzglasgestell. Stellen Sie ein Stativ mit einer angebrachten Klammer so auf, dass sie sich direkt über der Öffnung eines mit Eiswasser gefüllten 400-Milliliter-Bechers befindet. Dies dient als Eiskühlbad für die Zugabe von Tri Oxy.Füllen Sie dann einen 800-Milliliter-Becher mit etwa 700 Milliliter Leitungswasser und stellen Sie ihn auf eine Heizplatte auf der anderen Seite des Stativs. Befestigen Sie eine Klammer mit einem Thermometer am Stativ, sodass die Temperatur des Wassers im 800-Milliliter-Becher überwacht werden kann. Halten Sie eine Temperatur von 75 bis 85 Grad Celsius im 800-Milliliter-Becher aufrecht.Stellen Sie die Tensidlösung her, indem Sie 0,5 Gramm Natriumesal-Sulfat in 375 Milliliter Wasser auflösen. Geben Sie etwa 10 Milliliter der Tensidlösung in ein sauberes, leeres Reagenzglas. Befestigen Sie eine weitere Klammer an dem Stativ, an der das Reagenzglas mit der Tensidlösung so befestigt ist, dass der Flüssigkeitsspiegel unterhalb der Wasseroberfläche im 800-Milliliter-Becherglas liegt.10 Minuten für die thermische Äquilibration einplanen. Stellen Sie das Emulsionsfläschchen in die Klammer über das Becherglas mit Eiswasser innerhalb des Abzugs. Positionieren Sie die PDMS-Mischung in der Klammer, sodass sich der Inhalt des Fläschchens unterhalb der Wasseroberfläche befindet.Die Zugabe von Trixi Silene löst eine exotherme Reaktion aus, daher muss die Emulsion kalt gehalten werden, um ihre Struktur beizubehalten; gießen Sie langsam das Reagenzglas mit Trixi Silene in das Glasfläschchen in einem kontinuierlichen Strom. Innerhalb von etwa 10 Sekunden initiiert die Zugabe von Trixi Silene eine exotherme Reaktion und die Freisetzung ätzender Chlorwasserstoffgas. Rühren Sie den Inhalt während der Zugabe von Trixi nicht um. Nach vollständiger Zugabe von Trixi rühren Sie den Inhalt vorsichtig mit einem Glasrührstab unter Verwendung eines hitzebeständigen Handschuhs um. Warten Sie zwei Minuten oder bis keine Gase mehr aus dem Gefäß nach der Vernetzung entweichen. In der Probe ist keine Phasentrennung sichtbar. Falls Klumpen vorhanden sind, verschließen Sie das Gefäß und schütteln Sie es 20 Sekunden lang kräftig, wobei Sie das Gefäß am Deckel festhalten.Beim Pipettieren der Emulsion ist es äußerst wichtig, dass die Emulsion als Tropfen auf die Tensidlösung trifft. Andernfalls bildet sich keine Kugel gleichmäßig aus. Daher ist es wichtig, die Emulsion schnell zu pipettieren.Auf diese Weise gerinnt die Emulsion nicht innerhalb der Pipette. Verwenden Sie einen sauberen Glaspest, um die vernetzte Emulsion aus dem Glasfläschchen aufzuziehen. Geben Sie die vernetzte Emulsion tropfenweise zur Tensidlösung in das Reagenzglas.Unter Verwendung von hitzebeständigen Handschuhen die Reagenzgläser so schnell wie möglich zwischen den Tropfen entnehmen, aus der Klammer nehmen und den gesamten Inhalt unter dem Abzug in die Filtrationsapparatur gießen. Nach einer Fünf-Minuten-Filtration das Filterpapier vom Filter entfernen. Die filtrierten Feststoffe auf ein Uhrglas überführen und die Perlen zur Übernacht-Trocknung unter dem Abzug separieren.Um die Kügelchen zu reinigen, gießen Sie sie in eine saubere Filtervorrichtung und spülen Sie sie mit einer Plastikwaschflasche, die mit entionisiertem Wasser gefüllt ist, unter leichtem Bewegen, damit alle Kügelchen gespült werden. Lassen Sie die Kügelchen eine Stunde lang auf einer Uhrglasunterlage unter der Haube trocknen. Spülen Sie die Kügelchen mit einer Waschflasche, die mit Hexan gefüllt ist, nach der gleichen Methode wie zuvor mit Wasser.Nachdem die Kügelchen vollständig trocken sind, geben Sie sie in ein kleines, verschließbares Glasfläschchen und lagern Sie sie bei Raumtemperatur. Für zukünftige Verwendung. Bringen Sie einen Streifen doppelseitigen, kohleleitfähigen Klebebands auf dem Probenträger an, auf den die Kügelchen montiert werden; schneiden Sie mit einer Schere den Überstand des Bandes am Rand des Trägers ab, um sicherzustellen, dass kein Klebeband über die Kanten hinausragt; legen Sie ein Stück Filterpapier unter den Träger auf eine ebene Fläche.Entfernen Sie die oberste Schicht des Klebebands, sodass die klebrige Unterseite freiliegt. Gießen Sie die Perlen vorsichtig über den Probenträger. Einige Perlen haften am Klebeband, doch die meisten springen ab und landen auf dem Filterpapier; sammeln Sie diese zusammen mit den Perlen, die auf dem Filterpapier verblieben sind, wieder in das Gefäß.Wiederholen Sie gegebenenfalls das Waschen, um kontaminierte Kügelchen zu reinigen, und stellen Sie sicher, dass die Kügelchen sicher auf dem Träger sitzen. Benutzen Sie eine Pipettierspritze und blasen Sie vorsichtig sehr dicht an der Oberfläche. Geben Sie weitere Kügelchen über den Träger, falls nur wenige an dem Klebeband haften blieben.Stellen Sie sicher, dass alle Perlen fest sitzen, bevor der Stummel in die REM-Kammer eingebracht und evakuiert wird. Sobald die Proben ordnungsgemäß montiert wurden, können sie nun der Analyse mittels Rasterelektronenmikroskopie gemäß dem im Text beschriebenen repräsentativen SEM-Protokoll unterzogen werden. Hier sind Bilder von Perlen, die aus Emulsionen unter verschiedenen Elektrolytbedingungen hervorgehen.Perlen, die ohne Zugabe eines Elektrolyten zur wässrigen Schicht hergestellt wurden, zeichnen sich durch ausschließlich konvexe Porosität aus. Die anderen Perlen, deren Oberflächen dargestellt sind, wurden durch Zugabe eines Elektrolyten erzeugt, was zu unterschiedlichen Morphologien für jedes Metallion führte. Die mit Platinchlorid, Zinkchlorid und Natriumchlorid hergestellten Perlen weisen unterschiedliche Morphologien auf, einschließlich einer erheblichen Anzahl konkaver Poren infolge von Mikroblasenbildung, wie im eingekreisten Bereich angezeigt. Bildgebungen von Rüben mit höherer Auflösung, die ohne Elektrolyt und mit Zinkchlorid hergestellt wurden, werden ohne Zugabe von Elektrolyt gezeigt. Kugelförmige Unterstrukturen sind im Allgemeinen größer und dichter gepackt als bei Zugabe von Zinkchlorid, was maßgeblich zu einer Erhöhung des Verhältnisses von Oberfläche zu Volumen beiträgt. Die Brunauer-Emmett-Teller-Analyse der Perlen ergab, dass das Verhältnis von Oberfläche zu Volumen bei Perlen, die unter Verwendung von Zinkchlorid hergestellt wurden, über 30-mal so hoch war wie bei Perlen ohne Elektrolyt, was eine drastische Erhöhung der für Oberflächenwechselwirkungen verfügbaren Fläche bedeutet. Sobald die Technik beherrscht ist, kann sie bei korrekter Durchführung in etwa 90 Minuten durchgeführt werden, wie in diesem Video dargestellt.Ich hoffe, Sie haben nun ein gutes Verständnis dafür entwickelt, wie man polymere Kügelchen mit einem hohen Oberflächen-zu-Volumen-Verhältnis herstellt, indem man eine geringe Menge Salz in die wässrige Phase Ihrer Emulsion einbringt. Während des Durchführens dieses Verfahrens ist es äußerst wichtig, dass die Emulsion während der gesamten Ultraschallbehandlung, insbesondere vor der Vernetzung, bei niedriger Temperatur gehalten wird. Nach den in diesem Video beschriebenen Verfahrensschritten dürfen in der Emulsion keinerlei Klumpen vorhanden sein.Sie können auch andere Techniken wie die BET-Analyse verwenden, um die tatsächliche quantitative Oberfläche zu Volumen Ihrer Kügelchen zu bestimmen. Vergessen Sie nicht, dass die Arbeit mit Tri Oxy Silene gefährlich sein kann, und ergreifen Sie Vorsichtsmaßnahmen, wie beispielsweise das Halten des Sichtscheibenfensters des Abzugs fast vollständig geschlossen, sobald Tri Oxy Silene der primären Emulsion zugegeben wird, seit der Entwicklung dieser Methode. Diese Technik hat Forschern auf den Gebieten der analytischen Chemie und der Materialwissenschaft die Möglichkeit gegeben, Trennmaterialien für Anwendungen wie die Chromatographie sowie Substrate für neue Energietechnologien herzustellen.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Chemistry

Chemie

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Erstellen von Unter 50 Nm nanofluidische Junctions in PDMS mikrofluidischen Chip über Selbstorganisation von kolloidalen Teilchen

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