Name: Long-Term Katheterisierung der Darmlymphe Trunk und Sammlung von Lymphe in Neonatal Pigs (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-03-05T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 25 s
Description: Lernen Sie die Katheterisierung des Darmlymphstamms bei neugeborenen Schweinen für die Lipidstoffwechselforschung. Diese chirurgische Methode ermöglicht die Sammlung großer Lymphmengen zur Untersuchung von Stoffwechselmechanismen.

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Die Arbeit wurde teilweise durch die Finanzierung der Alberta Livestock and Meat Agency und den Natural Science and Research Council Discovery Grant an S. D. Proctor unterstützt.

Alle Verfahren an Versuchstieren in beschrieben sowohl die Video- und Manuskripts wurden von der Institutional Animal Care und Use Committee genehmigt und anschließend die von der Canadian Council of Animal Care Richtlinien. 1. Chirurgische Anästhesie und OP-Vorbereitung der Neugeborenen-Schweine <ol><li> In einem separaten Vorraum, premedicate 25 kg Schweine in der Nähe der Basis des Halses mit einer intramuskulären Beruhigungsmittel-Anästhetika Cocktail mit: Azaperon (0,3 mg / kg), Ketamin-Hydrochlorid (10 mg / kg), Dexmedetomidin (15 ug / kg). Hinweis: In Buprenorphin (0,005 bis 0,02 mg / kg) in der Pre-Anästhetika Cocktail für eine verbesserte intraoperative Schmerzkontrolle. </li><li> Anesthetize die Schweine mit inhalativen Isofluran Inhalationsgas (4-5% Isofluran in 500 ml-1000 ml / min O 2) eine Gesichtsmaske. Visualisieren Sie die Stimmbänder ein veterinär laryngeal Umfang mit (17-25 cm langen, geraden Klinge) und gelten topische 10% Lidocain Spay zum StimmSchnüre. Lassen Sie den Lidocain-Spray die Stimmbänder 30-60 sec vor der Intubation zu kontaktieren die Möglichkeit der Stimmbandkrampf und Obstruktion der Atemwege zu reduzieren. </li><li> Intubate die Schweine durch einen Endotrachealtubus mit Manschette vorbei (5,0-7,0 mm Innendurchmesser (ID)) zwischen den Stimmbändern und Aufrechterhaltung der Narkose mit Isofluran - Gas (0,5-2,0% Isofluran bei 1.000-2.000 ml / min O 2) mit einem geschlossenen Schaltung Rückatmungsnarkosesystem in der gesamten Operation. Beurteilen Sie das Niveau der Anästhesie durch Kiefer Ton, und beide Pedal und der Augenlidreflexantworten. Abgelaufene Narkosegas wird ausgespült und außerhalb des Operationssaals entlüftet. </li><li> Reinigen der Außenfläche des Ohres mit 2,0% Chlorhexidin chirurgischen Scheuerlösung durch eine 70% Isopropylalkohol gespült. Mit einem 20 G intravenösen Katheter, katheterisieren eine Ohrvene intravenöse Flüssigkeiten zu liefern (Ringer-Laktat-Lösung; 5-10 ml / kg / h) während der Operation. Sicherung ein Pulsoximeter an die Schleimhautoberfläche der Zunge mit medische Bandherzfrequenz und die Sättigung des peripheren Blutsauerstoffsättigung (SpO 2) zu überwachen. </li><li> Setzen Sie den narkotisierten Schwein in einer dorsalen liegenden Position und rasieren die ventrale Abdomen ab Mitte der Thorax kaudal ventral des Schambeins. Reinigen Sie diesen Bereich mit zwei 2,0% Chlorhexidin OP-Bekleidungen und steriles Wasser wäscht abwechseln. </li><li> Übertragen Sie die narkotisierten Schwein auf den OP-Bereich und wenden Sie die letzte chirurgische scheuern von 70% Isopropylalkohol spülen, trocknen lassen und dann drapieren das Tier. </li><li> Legen Sie eine rektale Temperatursonde ca. 2-4 cm in das Rektum Körpertemperatur zu überwachen. Legen Sie die Schweine auf einem Wasserkreislauf Heizkissen auf normale Körpertemperatur (38-40 ° C) während eines chirurgischen Verfahrens aufrechtzuerhalten. </li><li> Drapieren Sie das Schwein mit vier Handtücher drapiert in einer darüber liegenden Quadranten Muster um den Bauch gelegt. Legen Sie die erste drapieren über xiphisternum, die zweite drapieren entlang lateralen Seite des Bauches etwa 5 cm lateral der Bauchmittellinie. Platzieren des dritten Abdecktuch über das Ileum crest des Beckens und der vierten Abdecktuch, wie der zweite Abdecktuch (obwohl auf der gegenüberliegenden Seite) entlang der lateralen Seite des Abdomens angeordnet ist, etwa 5 cm an der Bauchmittellinie lateral. </li><li> Platzieren Sie einen großen Tisch drapieren, mit einem Schlitz-Öffnung für den Zugang zu der Operationsstelle, über die zugrunde liegenden Handtuch drapiert und decken das Schwein und das gesamte OP-Tisch. Der letzte Vorhang ist ein Einweg-Steri-Drape über den großen Tisch drapieren gelegt. </li></ol> 2. Bauchchirurgie und Katheterisierung der intestinalen lymphatischen Trunk <ol><li> Machen Sie eine 20 cm Hautschnitt mit einem Skalpell die zugrunde liegenden Bauchmuskeln zu belichten. Inzision der Bauchmuskelschichten mit monopolar Elektrokoagulation (20 Watt Einstellung), um das Peritoneum parietale zu belichten. Öffnen Sie ein 20 cm lineares Segment Peritoneum parietale mit Metzenbaum Schere, um die Bauchorgane und Lymphgefäße zuzugreifen. </li><li&gt; Stellen Sie einen Retraktor an der Schädel Aspekt der chirurgischen Einschnitt in die Bauchhöhle für die Dauer der Operation offen zu halten. </li><li> Benetzen alle Gewebe mit warmem (37 ° C) sterile Kochsalzlösung für das gesamte chirurgische Verfahren. Heben Sie vorsichtig ein großes Segment des Darms einschließlich des Dickdarms, Blinddarm, Ileum und Jejunum aus der Bauchhöhle und exteriorisieren es an der linken Flanke des Schweins den Oberbauch, Leber und Lymphgefäße zuzugreifen. Sichern Sie den exteriorisiert Darm in Position mit zusätzlichen Handtuch drapiert eine Schlinge zu bilden, vorsichtig den Darm zu unterstützen. </li><li> Suchen Sie das Lymphgefäßsystem, legt es etwa 4 cm kranial-medial des rechten Nierenvene, 6 cm kaudal-medial- ventralen der Kava ​​- Vorarbeiter und unterhalb des viszeralen Aspekt der rechten Leberlappen in der Nähe der Bauchspeicheldrüse 22,36,37. Identifizieren Sie die Lymphgefäße als durchscheinend Struktur nebeneinander auf der rechten ventralen Segment der Pfortader 36,37. </li><li> Trennen Sie das lymphatische vessel aus den umliegenden Faszie durch sanft das beiliegende Gewebe mit Q-Tip Applikatoren Hänselei weg. Sobald die seitlichen Aspekte des Schiffes aus dem umgebenden Gewebe getrennt sind, erstellen Sie einen &quot;Tunnel&quot; Öffnung unterhalb des Behälters mit feinen stumpfen Pinzette gekippt. </li><li> Pass drei 2-0 Seidenfäden unterhalb der Lymphgefäße mit einer feinen Pinzette. Ligieren der kaudalste Naht zuerst zu verschließen, aufzuweiten und das Gefäß mit Lymphe füllen. verlassen gezielt die Enden dieses Fadens relativ lange (4 cm), um den Katheter an dem Lymphgefäß zu sichern. Platzieren beiden anderen Fäden 1,0 cm voneinander getrennt und sind ungefähr 1,0-1,5 cm kranial der gesicherten caudal Naht. Lassen Sie diese zwei Nähte mit einem &quot;einzigen lose Ligatur tie&quot; für eine schnellere Sicherung des Katheters in das Gefäß zu ermöglichen. Hinweis: Das Segment des Lymphgefäß die sich zwischen der am weitesten kaudal Ligieren Naht und Mittelnaht (der beiden Schädelnähte) die Stelle zur Katheterisierung ist. In Bezug suture Material kann 2-0 Polyglactin Naht für 2-0 Seidenfäden ersetzen, falls erforderlich. </li><li> Schneiden Sie ein kleines Loch in das Gefäß mit Iris Schere und das Gefäß mit feinen stumpfen Pinzette aufzuweiten. Legen Sie ca. 1,0-1,5 cm spezieller Katheterschlauch (4,06 Außendurchmesser (OD) X 2,31 mm ID) mit einem abgeschrägten Ende in das Gefäß und binden die beiden Schädelnähte, den Katheter an Ort und Stelle zu sichern. Verwenden Sie die langen Fadenenden der Schwanz Naht um den Katheter in das Gefäß zu sichern. </li><li> Waschen Sie die exteriorisiert Darm mit reichlich warmen Kochsalzlösung und vorsichtig in die Bauchhöhle zurückkehren korrekte anatomische Positionierung des Darms zu gewährleisten. </li><li> Exteriorize den Katheter an der linken Mitte Flanke (5-10 cm ventral von der Hungergrube). Machen Sie einen Hautschnitt mit einem Skalpell und passieren einen Trokar aus der Bauchhöhle an der Hautoberfläche eine Öffnung für den Exteriorisation des Katheters zu schaffen. Verwenden Sie eine große Kelly Zange den Katheter aus der Bauch cav zu exteriorisierenkeit durch den Trokar Öffnung. </li><li> Schließen Sie das Peritoneum parietale mit einem einfachen fortlaufenden Naht Muster von 2-0 Polyglactin Naht mit einem runden (verjüngte) Nadel. Schließen Sie die Bauchmuskelschichten mit einem einfachen Knopfnaht Muster mit einer 2-0 Polyglactin Naht auf einer runden Nadel. </li><li> Schließen Sie die Haut in einem subkutikuläre Muster mit 2-0 Polyglactin Naht auf einem Schneide Nadel. Sichern Sie den exteriorisierten Katheter an der Haut mit einer Tabaksbeutelnaht Muster und einer 2-0 Nylonnaht auf einem Schneide Nadel. </li><li> Legen Sie eine spezielle Jacke auf dem Schwein, während immer noch betäubt seine Platzierung zu erleichtern und zur Verringerung der Belastung des Schweins während der Genesung. </li></ol> 3. Post-chirurgische Wiederherstellung und Lymph-Sammlung <ol><li> Etwa 10 Minuten vor der Beendigung der Inhalationsanästhesie, verabreichen bupenorphine (0,1 mg / kg) intramuskulär sofort nach der Operation Analgesie zu liefern. Weiterhin bupenorphine (0,1 mg / kg) alle 12 h für 24-48 Stunden zu haltenpostoperative Analgesie. </li><li> Überwachen Sie die Schweine, die für postoperative Komplikationen alle 8-12 Stunden für einen Zeitraum von 7 Tagen. </li><li> Sammeln Sie die Lymphe in 500 ml-Polypropylen-Waschflaschen, beschichtet mit Ethylendiamintetraessigsäure (EDTA), und mit Antibiotika ergänzt; Penicillin (6.000 IE), Streptomycin (6 mg) und Amphotericin B (3 mg) alle 12 Stunden für einen Zeitraum von 7 Tagen. </li></ol> 4. Quantifizierung von Lipoprotein ApoB48, Triglyceride, Cholesterin und Gesamtprotein aus Lymph Gesammelte <ol><li> Zentrifugieren Sie die Lymphe Probe bei 1800 × g für 5 Minuten bei 4 ° C. Sammeln Sie den Überstand und es für die Quantifizierung von Triglycerid, Cholesterin und Gesamtprotein. </li><li> Teilen Sie den Überstand in drei Proben: eine unverdünnte Probe, eine Probe 1:20 verdünnt destilliertem Wasser und eine letzte Probe 1: 100 verdünnt mit destilliertem Wasser. </li><li> Verwenden Sie den unverdünnten Überstand Cholesterinspiegel zu messen, mit einem im Handel erhältlichen Kits. </li><li> Verwenden Sie den 01.20 und 01.100 verdünnten Proben jeweils Triglycerid- und Gesamtproteinspiegel mit einem handelsüblichen Kit und dem Bicinchoninsäure-Gesamtprotein-Assay zu messen. </li></ol> 5. Quantifizierung von Lipoprotein ApoB48, Collected von Lymph 38 <ol><li> Bestimmen Sie die Konzentration von Lipoprotein ApoB48 mit einer angepassten Immun Western Blotting Verfahren 38. Separate Gesamt Lymphe mit 3-8% Tris-Acetat- Natriumdodecylsulfat-Polyacrylamid-Gelelektrophorese (SDS-PAGE). </li><li> Übertragung der aufgetrennten Proteine ​​auf eine Polyvinylidenfluorid-Membran (0,45 um) und inkubieren sie mit einem polyklonalen Ziegen-Antikörper gegen ApoB (1: 4000), dann binden sie mit einem anti-Ziege sekundärem Antikörper. </li><li> Quantifizieren der Lipoprotein ApoB48 mit Chemilumineszenz einen linearen densitometrische Vergleich mit gereinigtem Nagetier ApoB48 Protein-Standard. </li></ol>

<ol><li>Lindsay, F. E. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+cisterna+chyli+as+a+source+of+lymph+samples+in+the+cat+and+dog%5BTitle%5D)+AND+%22Res.+Vet.+Sci%22%5BJournal%5D)">The cisterna chyli as a source of lymph samples in the cat and dog.</a> Res. Vet. Sci. 17, 256-258 (1974).</li>
<li>Kohan, A. B., Howles, P. N., Tso, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+studying+rodent+intestinal+lipoprotein+production+and+metabolism%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Protoc.+Mouse+Biol%22%5BJournal%5D)">Methods for studying rodent intestinal lipoprotein production and metabolism.</a> Curr. Protoc. Mouse Biol. 2, 219-230 (2012).</li>
<li>Wang, X. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+uptake+and+lymphatic+absorption+of+beta-carotene+in+ferrets%3A+a+model+for+human+beta-carotene+metabolism%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Intestinal uptake and lymphatic absorption of beta-carotene in ferrets: a model for human beta-carotene metabolism.</a> Am. J. Physiol. 263 (4 Pt 1), G480-G486 (1992).</li>
<li>Hein, W. R., Barber, T., Cole, S. A., Morrison, L., Pernthaner, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+collection+and+characterization+of+afferent+lymph+from+the+ovine+small+intestine%5BTitle%5D)+AND+%22J.Immunol.+Methods%22%5BJournal%5D)">Long-term collection and characterization of afferent lymph from the ovine small intestine.</a> J.Immunol. Methods. 293 (1-2), 153-168 (2004).</li>
<li>Hartmann, P. E., Lascelles, A. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+flow+and+lipid+composition+of+thoracic+duct+lymph+in+the+grazing+cow%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">The flow and lipid composition of thoracic duct lymph in the grazing cow.</a> J. Physiol. 184 (1), 193-202 (1966).</li>
<li>Redgrave, T. G., Dunne, K. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chylomicron+formation+and+composition+in+unanaesthetised+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Atherosclerosis%22%5BJournal%5D)">Chylomicron formation and composition in unanaesthetised rabbits.</a> Atherosclerosis. 22 (3), 389-400 (1975).</li>
<li>Binns, R. M., Hall, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+paucity+of+lymphocytes+in+the+lymph+of+unanaesthetised+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+J.+Exp.+Pathol%22%5BJournal%5D)">The paucity of lymphocytes in the lymph of unanaesthetised pigs.</a> Br. J. Exp. Pathol. 47 (3), 275-280 (1966).</li>
<li>Ohlsson, L., Kohan, A. B., Tso, P., Ahren, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GLP-1+released+to+the+mesenteric+lymph+duct+in+mice%3A+Effects+of+glucose+and+fat%5BTitle%5D)+AND+%22Regul.+Pept%22%5BJournal%5D)">GLP-1 released to the mesenteric lymph duct in mice: Effects of glucose and fat.</a> Regul. Pept. 189, 40-45 (2014).</li>
<li>Ho, H. T., Kim, D. N., Lee, K. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+apolipoprotein+B-48+synthesis+and+lymphatic+cholesterol+transport+are+lower+in+swine+fed+high+fat%2C+high+cholesterol+diet+with+soy+protein+than+with+casein%5BTitle%5D)+AND+%22Atherosclerosis%22%5BJournal%5D)">Intestinal apolipoprotein B-48 synthesis and lymphatic cholesterol transport are lower in swine fed high fat, high cholesterol diet with soy protein than with casein.</a> Atherosclerosis. 77 (1), 15-23 (1989).</li>
<li>Arnold, M., Dai, Y., Tso, P., Langhans, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Meal-contingent+intestinal+lymph+sampling+from+awake%2C+unrestrained+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Integr.+Comp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Meal-contingent intestinal lymph sampling from awake, unrestrained rats.</a> Am. J. Physiol. Integr. Comp. Physiol. 302 (12), R1365-R1371 (2012).</li>
<li>Nguyen, T. M., Sawyer, J. K., Kelley, K. L., Davis, M. A., Kent, C. R., Rudel, L. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ACAT2+and+ABCG5%2FG8+are+both+required+for+efficient+cholesterol+absorption+in+mice%3A+evidence+from+thoracic+lymph+duct+cannulation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Lipid+Res%22%5BJournal%5D)">ACAT2 and ABCG5/G8 are both required for efficient cholesterol absorption in mice: evidence from thoracic lymph duct cannulation.</a> J. Lipid Res. 53 (8), 1598-1609 (2012).</li>
<li>Sato, M., Kawata, Y., Erami, K., Ikeda, I., Imaizumi, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((LXR+agonist+increases+the+lymph+HDL+transport+in+rats+by+promoting+reciprocally+intestinal+ABCA1+and+apo+A-I+mRNA+levels%5BTitle%5D)+AND+%22Lipids%22%5BJournal%5D)">LXR agonist increases the lymph HDL transport in rats by promoting reciprocally intestinal ABCA1 and apo A-I mRNA levels.</a> Lipids. 43 (2), 125-131 (2008).</li>
<li>Boyd, M., Risovic, V., Jull, P., Choo, E., Wasan, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+stepwise+surgical+procedure+to+investigate+the+lymphatic+transport+of+lipid-based+oral+drug+formulations%3A+Cannulation+of+the+mesenteric+and+thoracic+lymph+ducts+within+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pharmacol.+Toxicol.+Methods%22%5BJournal%5D)">A stepwise surgical procedure to investigate the lymphatic transport of lipid-based oral drug formulations: Cannulation of the mesenteric and thoracic lymph ducts within the rat.</a> J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 49 (2), 115-120 (2004).</li>
<li>Sugawara, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+absorption+of+dietary+maize+glucosylceramide+in+lymphatic+duct+cannulated+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Lipid+Res%22%5BJournal%5D)">Intestinal absorption of dietary maize glucosylceramide in lymphatic duct cannulated rats.</a> J. Lipid Res. 51 (7), 1761-1769 (2010).</li>
<li>Shackleford, D. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contribution+of+lymphatically+transported+testosterone+undecanoate+to+the+systemic+exposure+of+testosterone+after+oral+administration+of+two+andriol+formulations+in+conscious+lymph+duct-cannulated+dogs%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pharmacol.+Exp.+Ther%22%5BJournal%5D)">Contribution of lymphatically transported testosterone undecanoate to the systemic exposure of testosterone after oral administration of two andriol formulations in conscious lymph duct-cannulated dogs.</a> J. Pharmacol. Exp. Ther. 306 (3), 925-933 (2003).</li>
<li>Lespine, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contribution+of+lymphatic+transport+to+the+systemic+exposure+of+orally+administered+moxidectin+in+conscious+lymph+duct-cannulated+dogs%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Pharm.+Sci%22%5BJournal%5D)">Contribution of lymphatic transport to the systemic exposure of orally administered moxidectin in conscious lymph duct-cannulated dogs.</a> Eur. J. Pharm. Sci. 27 (1), 37-43 (2006).</li>
<li>Carr, J., Carr, I., Dreher, B., Betts, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lymphatic+metastasis%3A+invasion+of+lymphatic+vessels+and+efflux+of+tumour+cells+in+the+afferent+popliteal+lymph+as+seen+in+the+Walker+rat+carcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pathol%22%5BJournal%5D)">Lymphatic metastasis: invasion of lymphatic vessels and efflux of tumour cells in the afferent popliteal lymph as seen in the Walker rat carcinoma.</a> J. Pathol. 132 (4), 287-305 (1980).</li>
<li>Bennell, M. A., Husband, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Route+of+lymphocyte+migration+in+pigs.+I.+Lymphocyte+circulation+in+gut-associated+lymphoid+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Immunology%22%5BJournal%5D)">Route of lymphocyte migration in pigs. I. Lymphocyte circulation in gut-associated lymphoid tissue.</a> Immunology. 42 (3), 469-474 (1981).</li>
<li>Knight, J. S., Baird, D. B., Hein, W. R., Pernthaner, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+gastrointestinal+nematode+Trichostrongylus+colubriformis+down-regulates+immune+gene+expression+in+migratory+cells+in+afferent+lymph%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Immunol%22%5BJournal%5D)">The gastrointestinal nematode Trichostrongylus colubriformis down-regulates immune gene expression in migratory cells in afferent lymph.</a> BMC Immunol. 11, 51(2010).</li>
<li>Milling, S. W., Jenkins, C., MacPherson, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collection+of+lymph-borne+dendritic+cells+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Collection of lymph-borne dendritic cells in the rat.</a> Nat. Protoc. 1 (5), 2263-2270 (2006).</li>
<li>Pernthaner, A., Cole, S. A., Gatehouse, T., Hein, W. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phenotypic+diversity+of+antigen-presenting+cells+in+ovine-afferent+intestinal+lymph%5BTitle%5D)+AND+%22Arch.+Med.+Res%22%5BJournal%5D)">Phenotypic diversity of antigen-presenting cells in ovine-afferent intestinal lymph.</a> Arch. Med. Res. 33 (4), 405-412 (2002).</li>
<li>Thielke, K. H., Pabst, R., Rothkotter, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantification+of+proliferating+lymphocyte+subsets+appearing+in+the+intestinal+lymph+and+the+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Exp.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Quantification of proliferating lymphocyte subsets appearing in the intestinal lymph and the blood.</a> Clin. Exp. Immunol. 117 (2), 277-284 (1999).</li>
<li>Mayrhofer, G., Fisher, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((IgA-containing+plasma+cells+in+the+lamina+propria+of+the+gut%3A+failure+of+a+thoracic+duct+fistula+to+deplete+the+numbers+in+rat+small+intestine%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">IgA-containing plasma cells in the lamina propria of the gut: failure of a thoracic duct fistula to deplete the numbers in rat small intestine.</a> Eur. J. Immunol. 9 (1), 85-91 (1979).</li>
<li>Beh, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+origin+of+IgA-containing+cells+in+intestinal+lymph+of+sheep%5BTitle%5D)+AND+%22Aust.+J.+Exp.+Biol.+Med.+Sci%22%5BJournal%5D)">The origin of IgA-containing cells in intestinal lymph of sheep.</a> Aust. J. Exp. Biol. Med. Sci. 55 (3), 263-274 (1977).</li>
<li>Bennell, M. A., Husband, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Route+of+lymphocyte+migration+in+pigs.+II.+Migration+to+the+intestinal+lamina+propria+of+antigen-specific+cells+generated+in+response+to+intestinal+immunization+in+the+pig%5BTitle%5D)+AND+%22Immunology%22%5BJournal%5D)">Route of lymphocyte migration in pigs. II. Migration to the intestinal lamina propria of antigen-specific cells generated in response to intestinal immunization in the pig.</a> Immunology. 42 (3), 475-479 (1981).</li>
<li>Rothkotter, H. J., Huber, T., Barman, N. N., Pabst, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lymphoid+cells+in+afferent+and+efferent+intestinal+lymph%3A+lymphocyte+subpopulations+and+cell+migration%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Exp.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Lymphoid cells in afferent and efferent intestinal lymph: lymphocyte subpopulations and cell migration.</a> Clin. Exp. Immunol. 92 (2), 317-322 (1993).</li>
<li>Vilahur, G., Padro, T., Badimon, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atherosclerosis+and+thrombosis%3A+insights+from+large+animal+models%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Atherosclerosis and thrombosis: insights from large animal models.</a> J. Biomed. Biotechnol. 1, (2011).</li>
<li>Getz, G. S., Reardon, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+atherosclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Arterioscler.+Thromb.+Vasc.+Biol%22%5BJournal%5D)">Animal models of atherosclerosis.</a> Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 32 (5), 1104-1115 (2012).</li>
<li>Skold, B. H., Getty, R., Ramsey, F. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spontaneous+atherosclerosis+in+the+arterial+system+of+aging+swine%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Vet.+Res%22%5BJournal%5D)">Spontaneous atherosclerosis in the arterial system of aging swine.</a> Am. J. Vet. Res. 27 (116), 257-273 (1966).</li>
<li>Reiser, R., Sorrels, M. F., Williams, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+high+levels+of+dietary+fats+and+cholesterol+on+atherosclerosis+and+lipid+distribution+in+swine%5BTitle%5D)+AND+%22Circ.+Res%22%5BJournal%5D)">Influence of high levels of dietary fats and cholesterol on atherosclerosis and lipid distribution in swine.</a> Circ. Res. 7, 833-846 (1959).</li>
<li>Casani, L., Sanchez-Gomez, S., Vilahur, G., Badimon, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pravastatin+reduces+thrombogenicity+by+mechanisms+beyond+plasma+cholesterol+lowering%5BTitle%5D)+AND+%22Thromb.+Haemost%22%5BJournal%5D)">Pravastatin reduces thrombogenicity by mechanisms beyond plasma cholesterol lowering.</a> Thromb. Haemost. 94 (5), 1035-1041 (2005).</li>
<li>Romosos, D. R., McGilliard, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+thoracic+and+intestinal+lymph+duct+shunts+in+calves%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Dairy+Sci%22%5BJournal%5D)">Preparation of thoracic and intestinal lymph duct shunts in calves.</a> J. Dairy Sci. 53 (9), 1275-1278 (1970).</li>
<li>Shannon, A. D., Lascelles, A. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+intestinal+and+hepatic+contributions+to+the+flow+and+composition+of+thoracic+duct+lymph+in+young+milk-fed+calves%5BTitle%5D)+AND+%22Q.J.+Exp.+Physiol.+Cogn.+Med.+Sci%22%5BJournal%5D)">The intestinal and hepatic contributions to the flow and composition of thoracic duct lymph in young milk-fed calves.</a> Q.J. Exp. Physiol. Cogn. Med. Sci. 5 (2), 194-205 (1968).</li>
<li>Aliev, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+lymph+of+ruminants.+I.+Operative+techniques+for+collecting+intestinal+lymph+from+ruminants%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Vet.Hung%22%5BJournal%5D)">Intestinal lymph of ruminants. I. Operative techniques for collecting intestinal lymph from ruminants.</a> Acta Vet.Hung. 38 (1-2), 105-120 (1990).</li>
<li>Butterfield, A. B., Lumb, W. V., Litwak, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surgical+preparation+of+miniature+swine+for+atherosclerosis+research%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Vet.+Res%22%5BJournal%5D)">Surgical preparation of miniature swine for atherosclerosis research.</a> Am. J. Vet. Res. 37 (12), 1519-1523 (1976).</li>
<li>Saar, L. I., Getty, R. Lymphatic system. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSaar%2C+LI+%22Sisson+and+Grossman%27s%3A+The+anatomy+of+domestic+animals%22">Sisson and Grossman's: The anatomy of domestic animals</a>. 2, W. B. Saunders Company. Philadelphia PA. 1343-1358 (1975).</li>
<li>Zanchet, D. J., de Souza Montero, E. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pig+liver+sectorization+and+segmentation+and+virtual+reality+depiction%5BTitle%5D)+AND+%22Acta.+Cirurgica.+Basilera%22%5BJournal%5D)">Pig liver sectorization and segmentation and virtual reality depiction.</a> Acta. Cirurgica. Basilera. 17 (6), 382-387 (2002).</li>
<li>Vine, D. F., Takechi, R., Russell, J. C., Proctor, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impaired+postprandial+apolipoprotein-B48+metabolism+in+the+obese%2C+insulin-resistant+JCR%3ALA-cp+rat%3A+increased+atherogenicity+for+the+metabolic+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Atherosclerosis%22%5BJournal%5D)">Impaired postprandial apolipoprotein-B48 metabolism in the obese, insulin-resistant JCR:LA-cp rat: increased atherogenicity for the metabolic syndrome.</a> Atherosclerosis. 190 (2), 282-290 (2007).</li>
<li>Li, W. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biomechanical+properties+of+ascending+aorta+and+pulmonary+trunk+in+pigs+and+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Xenotransplantation%22%5BJournal%5D)">Biomechanical properties of ascending aorta and pulmonary trunk in pigs and humans.</a> Xenotransplantation. 15 (6), 384-389 (2008).</li>
<li>Arkill, K. P., Moger, J., Winlove, C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+structure+and+mechanical+properties+of+collecting+lymphatic+vessels%3A+an+investigation+using+multimodal+nonlinear+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Anat%22%5BJournal%5D)">The structure and mechanical properties of collecting lymphatic vessels: an investigation using multimodal nonlinear microscopy.</a> J. Anat. 216 (5), 547-555 (2010).</li>
<li>Uwiera, R. R. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasmid+DNA+induces+increased+lymphocyte+trafficking%3A+a+specific+role+for+CpG+motifs%5BTitle%5D)+AND+%22Cell.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Plasmid DNA induces increased lymphocyte trafficking: a specific role for CpG motifs.</a> Cell. Immunol. 214 (2), 155-164 (2001).</li>
<li>Black, D. D., Davidson, N. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+apolipoprotein+synthesis+and+secretion+in+the+suckling+pig%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Lipid+Res%22%5BJournal%5D)">Intestinal apolipoprotein synthesis and secretion in the suckling pig.</a> J. Lipid Res. 30 (2), 207-218 (1989).</li>
<li>Heider, J. G., Pickens, C. E., Lawrence, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+acyl+CoA%3Acholesterol+acyltransferase+in+cholesterol+absorption+and+its+inhibition+by+57-118+in+the+rabbit%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Lipid+Res%22%5BJournal%5D)">Role of acyl CoA:cholesterol acyltransferase in cholesterol absorption and its inhibition by 57-118 in the rabbit.</a> J. Lipid Res. 24, 1127-1134 (1983).</li>
<li>Noh, S. K., Koo, S. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Milk+sphingomyelin+is+more+effective+than+egg+sphingomyelin+in+inhibiting+intestinal+absorption+of+cholesterol+and+fat+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Nutr%22%5BJournal%5D)">Milk sphingomyelin is more effective than egg sphingomyelin in inhibiting intestinal absorption of cholesterol and fat in rats.</a> J. Nutr. 134, 2611-2616 (2004).</li>
<li>Brunham, L. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+ABCA1+directly+contributes+to+HDL+biogenesis+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Intestinal ABCA1 directly contributes to HDL biogenesis in vivo.</a> J. Clin. Invest. 116 (4), 1052-1062 (2006).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Darmlymphe Sammeln ist eine ausgezeichnete Methode Mechanismen der Lipid beteiligt zu untersuchen , 8-12 und 13-15 Droge Stoffwechsel, Krebsmetastasen 16,17, Zellhandel und Immunfunktion 18-26, in verschiedenen experimentellen Tiermodellen. Tatsächlich hat die Fähigkeit , große Mengen zu ernten entweder peripher (zuführenden) und Zentral (abführenden und großen Kofferraum Gefäße) Lymphe über einen längeren Zeitraum war besonders wichtig für zeitliche Veränderungen zu verstehen...

Das lymphatische System ist ein wenig erforschten Gebiet der Physiologie. Präklinische Modelle von Lymph - Katheterisierung treten bei verschiedenen Tierarten 1-8 und werden von der pharmazeutischen Industrie und Forschungseinrichtungen verwendet , um Mechanismen der Lipid beteiligt untersuchen 8-12 und Arzneimittelmetabolismus 13-15, Krebsmetastasen 16 mit experimentellen Behandlung 17 und Immunfunktion 18 -26. Diese Studie untersucht die Verwendung von Darmlymphe Stamm Katheterisierung in einem Hausschwein Modellkomponenten von Lipoproteinstoffwechsel zu messen. Lipoprotein-Metabolismus in der Produktion und Sekretion von Chylomikronen, sowie Änderungen in assoziierten Lipiden und Gesamtprotein beteiligt. Dies sind wichtige Überlegungen gibt es große Unterschiede in den Lipidstoffwechsel zwischen häufig verwendeten Tiermodellen und Menschen und als solche Schweinemodelle unter Verwendung von Darmlymphe sammeln konnten vergleichbare Informationen zur Verfügung stellen für die Untersuchung Lipid michwechsel in Menschen 27-31. Einen Schädelschulteransatz (dh Ductus Katheterisierung) 5, einen seitlichen oberen Flanke Ansatz 32-34 und einen ventralen Mittellinie oder para Ansatz 22,35: Mehrere chirurgische Techniken , um die Darmlymphe in großen Tierarten zu sammeln verwendet. Dieses Video beschreibt ausführlich den chirurgischen Eingriff bei Schweinen einen ventralen Mittellinie chirurgischen Ansatz für die Katheterisierung der Darmlymphe-Trunk. Sorgfältige chirurgische Technik ermöglicht diese Methode der lymphatischen Katheterisierung große Mengen von Lymphe und seiner Bestandteile über längere Zeiträume zu sammeln. Diese Technik eröffnet eine Vielzahl von Anwendungen auf vielen Disziplinen verschiedene physiologische Funktionen untersuchen. Mögliche Anwendungen umfassen, sind aber nicht beschränkt auf, den ganzen Körper Lipoprotein und den Fettstoffwechsel, Immunüberwachung, Tumorentstehung und Metastasierung, Darmfunktion und die Entw begrenztent und Progression von Darmentzündungserkrankungen.

<table><tbody><tr><td>Miller Laryngoskop Klinge</td><td>Welch Allyn</td><td>68044</td><td>182 mm Länge</td></tr><tr><td>Surgivet Berater: Vitalparametermonitor</td><td>Surgivet</td><td>V9203</td><td></td></tr><tr><td>Rektaler Temperaturfühler</td><td>Surgivet</td><td>V3417</td><td></td></tr><tr><td>Monopolarer Elektrochirurgie-Generator</td><td>Valley Lab</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Metzenbaum Schere</td><td>Fine Science</td><td>14518-18</td><td></td></tr><tr><td>Tuffier-Retraktor</td><td>Stevens</td><td>162-11-676</td><td></td></tr><tr><td>Moskito-Zange</td><td>Stevens</td><td>162-7-10</td><td></td></tr><tr><td>Kelly-Pinzette-gebogen (14cm)</td><td>Stevens</td><td>162-7-38</td><td></td></tr><tr><td>Allis Gewebezange</td><td>Stevens</td><td>162-7-38</td><td></td></tr><tr><td>Pinzette Verbandöse (10.2cm)</td><td>Stevens</td><td>162-18-780</td><td></td></tr><tr><td>Zange Verband-Adison (12.1cm)</td><td>Stevens</td><td>162-17-2510</td><td></td></tr><tr><td>Nadeltreiber</td><td>Stevens</td><td>162-V98-42</td><td></td></tr><tr><td>Irisschere</td><td>Fine science</td><td>14058-11</td><td></td></tr><tr><td>Umwälzwasserpumpe</td><td>Jorvet</td><td>J-783X</td><td></td></tr><tr><td>Maxitherm-Vinyldecke</td><td>Jorvet</td><td>J-784C</td><td></td></tr><tr><td>Q-Tip-Applikatoren</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-037-960</td><td></td></tr><tr><td>Katheterisierung&nbsp; Rohre (4,06 OD x 2,31 ID)</td><td>Braintree Scientific Inc.</td><td>MRE-160</td><td>Mikro-Renethan-Implantationsschlauch</td></tr><tr><td>2-0 Seidennaht</td><td>Ethicon</td><td>LA556</td><td></td></tr><tr><td>2-0 Polyglactin</td><td>Naht Ethicon</td><td>J443H</td><td>2-0 Vicryl</td></tr><tr><td>Großtierjacke</td><td>Lomir Biomedical Inc.</td><td>SSJ2YC</td><td></td></tr><tr><td>Polypropylen-Waschflaschen</td><td>Fisher Scientific</td><td>03-409-22C</td><td>500 ml</td></tr><tr><td>Penicillin-Streptomycin</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D4333</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Sigma Aldrich</td><td>60-00-4</td><td></td></tr><tr><td>Amphotericin B</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A2411</td><td></td></tr><tr><td>Azaperon</td><td>Elanco Animal Health</td><td></td><td>Stresnil</td></tr><tr><td>Dexmedetomidinhydrochlorid</td><td>Zoetis</td><td>6295</td><td>Dexdomitor</td></tr><tr><td>Isofluran</td><td>Abbott Tier&nbsp; Gesundheit</td><td>05260-5</td><td>IsoFlo</td></tr><tr><td>Ketaminhydrochlorid</td><td>Zoetis</td><td>2626</td><td>Ketaset</td></tr><tr><td>Bupenorphin Hydrochlorid</td><td>Champion Alstoe Tiergesundheit</td><td></td><td>DIN:02347510</td></tr><tr><td>6 mm Endotrachealtubus</td><td>Jorvet</td><td>J-165d</td><td></td></tr><tr><td>10% Lidocain Spray</td><td>AstraZeneca</td><td></td><td>DIN:02003767</td></tr><tr><td>4 % Chlorhexidin OP-Peeling</td><td>Partnar Animal Health</td><td>PCH-011</td><td>Verdünnt: 2,0 % ige Lösung</td></tr><tr><td>3M Chirurgisches Tuch</td><td>3M Health Care</td><td>1040</td><td></td></tr><tr><td>SDS-Seitengel</td><td>Invitrogen</td><td>EA0375BOX</td><td>3-8 % Trisacetat</td></tr><tr><td>Polyvinylidenfluorid-Membran</td><td>Millipore</td><td>IPVH00010</td><td>0,45 &mu; m Porengröße</td></tr><tr><td>ApoB Antikörper&nbsp;</td><td>EMD Millipore</td><td>AB742</td><td>1:4000 Verdünnung</td></tr><tr><td>Esel Anti-Ziegen IgG-HRP</td><td>Santa Cruz Biotechnologie</td><td>Sc-2304</td><td></td></tr><tr><td>ECL Prime Western Blotting Reagenz</td><td>GE Healthcare LifeSciences</td><td>RPN2232&nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Triglycerid-Kit</td><td>Wako Pure Chemicals</td><td>998-40391/994-40491</td><td></td></tr><tr><td>Gesamtcholesterin-Kit</td><td>Wako Pure Chemicals</td><td>439-17501</td><td></td></tr><tr><td>Gesamtprotein</td><td>&nbsp; Durchbohren&nbsp;</td><td>23225</td><td>Bicinchoninsäure-Assay</td></tr></tbody></table>

long-term katheterisierung der darmlymphe trunk und sammlung von lymphe in neonatal pigs

Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs

Die Katheterisierung des intestinalen Lymphstamms bei neugeborenen Schweinen ist eine Technik, die die langfristige Entnahme großer Mengen an intestinaler (zentraler) efferenter Lymphe ermöglicht. Wichtig ist, dass die Entnahme von zentraler Lymphe aus dem Darm es den Forschern ermöglicht, sowohl die Mechanismen und Lipidkonstitutionen zu untersuchen, die mit dem Fettstoffwechsel, Darmentzündungen und Krebsmetastasen verbunden sind, als auch Zellen, die an der Immunfunktion und Immunüberwachung beteiligt sind. Ein ventraler Mittellinien-Operationsansatz ermöglicht eine hervorragende chirurgische Exposition des kranialen Abdomens und einen relativ einfachen Zugang zum intestinalen Lymphstammgefäß, das in der Nähe der Bauchspeicheldrüse und dem rechten ventralen Segment der Pfortader unterhalb des viszeralen Aspekts des rechten Leberlappens liegt. Das Gefäß wird sorgfältig präpariert und von der umgebenden Faszie gelöst und dann mit Nähten erweitert, um das Einführen und anschließende Befestigen des Katheters in das Gefäß zu ermöglichen. Der Katheter wird exteriorisiert und über einen Zeitraum von 7 Tagen wird etwa 1 l/24 h Lymphe entnommen. Während diese Technik die Entnahme großer Mengen zentraler Lymphe über einen längeren Zeitraum ermöglicht, hängt der Erfolg von einer sorgfältigen chirurgischen Dissektion, der Handhabung des Gewebes und der genauen Beachtung der richtigen Operationstechnik ab. Dies ist besonders wichtig bei Operationen bei Jungtieren, da die Lymphgefäße leicht reißen können, was möglicherweise zu chirurgischen und experimentellen Misserfolgen führen kann. Das Video zeigt eine hervorragende Operationstechnik zur Entnahme von Darmlymphe.

<html> Lymphatische Katheterisierung der intestinalen lymphatischen Stamm der Neugeborenen-Schweine ermöglicht Sammlung von etwa 1 l / 24 h zentrale Lymphe über einen Zeitraum von 7 Tagen. Die Lymphe in diesen Experimenten gesammelt enthaltenen Komponenten des Fettstoffwechsels, nämlich Gesamt Lymphe Protein, Lipoprotein ApoB48, Triglyceride, Gesamtprotein und Cholesterin. Tabelle 1 Highlights repräsentative Mengen dieser Lipidkomponenten aus gepoolten Lymphe Proben von drei Schweinen. Be...

Wir stellen ein chirurgisches Verfahren zur Katheterisierung des Darmlymphstamms bei neugeborenen Schweinen vor, um große Mengen an Fettstoffwechselkomponenten aus efferenter Lymphe zu gewinnen.

Long-Term Katheterisierung der Darmlymphe Trunk und Sammlung von Lymphe in Neonatal Pigs

Catheterization of the intestinal lymph trunk in neonatal pigs is a technique allowing for the long-term collection of large quantities of intestinal ...

Die Lymphkatheterisierung ist eine wichtige Technik, die verwendet wird, um Mechanismen bei der Lipid- und Arzneimittelmetabolisierung, der Krebsmetastasierung und der Immunfunktion zu untersuchen, und das Sammeln großer Mengen von Lymphflüssigkeit aus verschiedenen Tiermodellen ermöglicht es Forschern, diese Prozesse zu analysieren. Das Video demonstriert detailliert den chirurgischen Eingriff zur Katheterisierung des intestinalen Lymphstamms bei neugeborenen Schweinen mittels eines ventralen medianen Zugangs. Alle Verfahren wurden von dem Ausschuss für institutionelle Tierversuche und Tierschutz der University of Alberta genehmigt.Um auf das Lymphgefäss zuzugreifen, wurde die Bauchhöhle geöffnet. Mit Hilfe der Elektrokauterisierung im Schneidmodus wurde die Muskelschicht geöffnet. Ein Retraktor wurde platziert, um die Bauchdecke während des gesamten Eingriffs geöffnet zu halten.Wichtige Bauchorgane werden identifiziert, um die Lokalisation des Lymphgefäßes zu erleichtern. Zur besseren Zugänglichkeit werden die Lymphgefäße des Dünndarms und des Kolons zur linken Körperseite herausgeführt. Das Lymphgefäß wird anhand der Identifizierung der Leber und des rechten ventralen Abschnitts

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Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Wir beschreiben eine neuartige OP-Methode zur Katheterisierung "Darmschlingen" im Ileum von Schafen. Sobald Tiere haben sich von der Operation erholt haben und gelöscht Antibiotika und Analgetika können mehrere Behandlungen direkt in Schlaufen über den Katheter hinterlegt.

Katheterisierung der Darmschlingen bei Wiederkäuern

Dieses Video zeigt eine Technik zur Kanülierung des mesenterialen Lymphgangs bei Ratten. Diese Methode ermöglicht den direkten Zugriff auf das gesamte Volumen der in der Lymphflüssigkeit vorhandenen Bestandteile.

Kanülierung des mesenterialen Lymphgangs in einem Rattenmodell zur Entnahme von Lymphflüssigkeit

Hier beschreiben wir eine Technik zur Kanülierung des mesenterialen Lymphgangs bei Ratten, die die Quantifizierung des Lipid- und Wirkstofftransports über das Lymphsystem nach der intestinalen Verabreichung ermöglicht. Die Technik kann angepasst werden, um die mesenteriale Lymphkonzentration und/oder den Transport von Flüssigkeit, Immunzellen, Peptiden, Proteinen und lipophilen Molekülen zu beurteilen.

Die Mesenteriallymphknoten Duct Cannulated Rattenmodell: Anwendung auf die Bewertung der Darm Lymphatische Drug Transport

Hier beschreiben wir eine präzise Methode zum Sammeln von Thoraxkanallymphozyten und zur Beobachtung der Migration von darm-tropischen Lymphozyten in Ratten-Peyer-Pflastern für 3 Stunden mit Zeitrafferfotografie. Diese Technik kann klären, wie die Dynamik von Lymphozyten unter entzündlichen Bedingungen beeinflusst wird.

Mikroskopische Beobachtung der Lymphozytendynamik in Rat Peyers Patches

Das vorliegende Protokoll beschreibt ein detailliertes chirurgisches Protokoll zur Isolierung von fließender Darmlymphe als Reaktion auf intraduodenale Nährstoffinfusionen bei Mäusen. Dies ermöglicht die physiologische Bestimmung der gesamten intestinalen Lipidabsorption und der Chylomikronsynthese und -sekretion als Reaktion auf verschiedene experimentelle Nährstoffe.

Die Isolierung von fließender mesenterialer Lymphe in Mäusen zur Quantifizierung der in vivo Kinetik der diätetischen Lipidabsorption und Chylomikron-Sekretion

Es wird ein zuverlässiger und reproduzierbarer Ansatz für das Einführen und Halten eines getunnelten Hickman-Katheters für den langfristigen Gefäßzugang bei Schweinen beschrieben. Das Legen eines zentralen Venenkatheters ermöglicht eine bequeme tägliche Entnahme von Vollblut von wachen Tieren und die intravenöse Verabreichung von Medikamenten und Flüssigkeiten.

Verwendung des Hickman-Katheters für den langfristigen Gefäßzugang in einem präklinischen Schweinemodell

Dieses Protokoll beschreibt die Entwicklung eines neonatalen Ferkelmodells für akute Lungenverletzungen, das frühe pathogene Ereignisse in der Frühgeborenenlunge modelliert, einschließlich einer unzureichenden Tensidmenge, Hyperoxie, Hochdruckbeatmung und Entzündung, um das Verständnis der molekularen Auslöser der bronchopulmonalen Dysplasie zu erleichtern und die therapeutische Translation zu verbessern.

Entwicklung eines Modells für akute Lungenverletzungen bei Neonatalen Ferkeln, das die frühe Umgebung der Lunge von Frühgeborenen nachbildet

Dieses experimentelle Protokoll demonstriert ein tiefes zervikales Lymphkanal-Rattenmodell, das eine direkte und quantitative Beurteilung des lymphatischen Abflusses aus dem Kopfbereich ermöglicht. Das Modell erleichtert eine detaillierte Analyse von aus dem zentralen Nervensystem (ZNS) abgeleiteten gelösten Stoffen, Immunzellpopulationen sowie der Verteilung und Clearance von ZNS-gezielten Therapeutika.

Zervikales Lymphkanal-Rattenmodell zur Bestimmung des lymphatischen Transports vom Kopf und Gehirn

Dieses experimentelle Protokoll beschreibt ein hepatisches Lymphkanal-Rattenmodell, das eine direkte und quantitative Beurteilung des lebhaften lymphatischen und vaskulären Abflusses ermöglicht. Das Modell ermöglicht die gleichzeitige Probenahme von hepatischer Lymphe und systemischem Blut, um den Lebertransport, den Stoffwechsel und die Immunsignalübertragung zu untersuchen und so Studien zur Pharmakokinetik und der leberspezifischen Biologie zu unterstützen.

Ein umfassendes Rattenmodell zur Bewertung von Lebertransportwegen durch gleichzeitige lymphatische und blutgefäßige Probenahme

Fluoreszenz-Bildgebung ist eine viel versprechende innovative Modalität für die Bild-Chirurgie in der chirurgischen Onkologie. In diesem Video, das wir beschreiben die technischen Verfahren zur Detektion der Sentinel-Lymphknoten mittels Fluoreszenz-Bildgebung als in gynäkologischen oncologicy präsentiert. Eine multispektrale Fluoreszenz-Kamera-System, zusammen mit dem fluoreszierenden Indocyaningrün, angewendet wird.

Multispectral Real-time Fluoreszenz-Imaging für die intraoperative Detektion des Sentinel Lymph Node in Gynäkologische Onkologie

Lernen Sie die Katheterisierung des Darmlymphstamms bei neugeborenen Schweinen für die Lipidstoffwechselforschung. Diese chirurgische Methode ermöglicht die Sammlung großer Lymphmengen zur Untersuchung von Stoffwechselmechanismen.

Long-Term Katheterisierung der Darmlymphe Trunk und Sammlung von Lymphe in Neonatal Pigs

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