Name: Salinität abhängigen Toxizität Assay von Silbernanokolloide Verwendung von Medaka-Eier (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-03-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 29 s
Description: Lernen Sie einen Hochdurchsatz-Assay zur Bewertung salinitätsabhängiger Toxizität von Silbernanokolloiden an Medaka-Embryonen. Diese Methode ermöglicht ökotoxikologische Studien in Süß-, Brack- und Meerwasser.

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Wir danken Frau Kaori Shimizu und Herrn Masaki Takasu von der Graduate School of Life Sciences, Toyo University, für ihre technische Unterstützung. Dieses Projekt wurde durch Forschungsstipendien der Special Research Foundation und des Bio-Nano Electronics Research Centre der Toyo University (an SK) unterstützt; durch den Fonds zur Förderung der wissenschaftlichen Forschung der Gesellschaft für Förderung und gegenseitige Hilfe für Privatschulen Japans (an SK); durch den neuen Projektfonds für Risikobewertungen des Ministeriums für Wirtschaft, Handel und Industrie (an SK); durch einen Zuschuss für anspruchsvolle Explorationsforschung (Gewährung von 23651028 an SK); durch einen Zuschuss für die wissenschaftliche Forschung (B) und (C) (Gewährung von 23310026 und 26340030 an SK); und durch einen Zuschuss für ein strategisches Forschungsbasisprojekt für private Universitäten (Vergabe S1411016 an SK) des japanischen Ministeriums für Bildung, Kultur, Sport, Wissenschaft und Technologie.

Die japanischen Medaka in dieser Studie verwendet wurden, auf humane Weise in Übereinstimmung mit den Richtlinien des Instituts der Toyo University, unter Berücksichtigung für die Linderung von Not und Beschwerden behandelt. 1. Silbernanokolloide (SNCs) <ol><li> Bestellen Sie gereinigte SNCs (20 mg / L -1, 99,99% Reinheit, Partikel mittlerer Durchmesser etwa 28,4 ± 8,5 nm in destilliertem Wasser suspendiert). </li><li> Überprüfen Sie die Reinheit und Konzentration des Silbers durch induktiv gekoppelte Plasma - Massenspektrometrie (ICP-MS) analysiert gemäß Betriebsanleitung 8. Das Vorbehandlungsverfahren für ICP-MS-Analysen wird in Abschnitt 7 beschrieben. </li></ol> 2. Herstellung von SNC - Lösungen (Mischungen aus Silber Kolloid- und Ag +) mit unterschiedlichen Salinität <ol><li> Vorbereitung 60 × ERM , bestehend aus 60 g NaCl, 1,8 g KCl, 2,4 g CaCl 2 · 2H 2 O und 9,78 g MgSO 4 · 7H 2 O in 1 l ultrapure Wasser; den pH - Wert auf 7,0 mit 1,25% NaHCO 3 in Reinstwasser einzustellen. </li><li> Rühren Sie die ERM-Lösung bei 25 ° C über Nacht. </li><li> Mix SNCs mit verdünntem ERM. Bereiten Sie 40 ml jeder SNC-ERM Mischlösung. Die Endkonzentration beträgt 10 mg / L -1 SNCs in verschiedenen Konzentrationen von ERM (1x, 5x, 10x, 15x, 20x oder 30x). </li><li> Der pH - Wert des SNC-ERM gemischte Lösung auf 7,0 mit 0,625% NaHCO 3 in Reinstwasser. pH - Einstellung ist sehr wichtig , die SNC - Lösung bei der Vorbereitung, da Ag + Freisetzung von sauren Bedingungen erleichtert wird 9. </li><li> Verwenden Sie AgNO 3 als Referenzverbindung für SNCs. <ol><li> Mix AgNO 3 mit verdünnter ERM. Vorbereitung 40 ml AgNO 3 -ERM gemischte Lösung bei einer AgNO &amp; sub3 ; -Konzentration von 15,7 mg / L -1 (10 mg / L -1 Silber) in verschiedenen Konzentrationen von ERM (1x, 5x, 10x, 15x, 20x oder 30x) . Hinweis: Um die Silberkolloid Toxizität zu untersuchen, AgNO 3Lösung, die eine Quelle von löslichem Silber ist, wird als eine Referenzverbindung für SNCs verwendet, die eine Mischung aus Silberkolloide und lösliches Silber sind. </li></ol></li></ol> 3. Medaka Kultur und Ei Ernte <ol><li> Beziehen Sie die Medaka (O. latipes) (orange-rot - Stamm) (60 Männer und 60 Frauen). </li><li> Kultur Medaka als Gruppen (20 Männer und 20 Frauen als eine Gruppe) in ERM 1x in 3 L Tanks durch einen Medaka Flow-Through-Kultivierungssystem. <ol><li> Kultur unter den folgenden Bedingungen: pH-Bereich des Kulturmediums: 6,2 bis 6,5 Licht: Dunkel-Zyklus: 16: 8 Stunden Temperatur des Kulturmediums: 24 ± 0,5 ° C osmotischen Druck des Kulturmediums 257 mOsm </li></ol></li><li> Feed - Medaka auf Artemia salina Nauplien um 10:00 Uhr (einmal täglich) und Futtermittel einen künstlichen trockenen Fisch Diät um 09:00 Uhr, 11:00, 13:00, 15:00, und 17.00 Uhr (fünf Mal pro Tag). <ol><li> Erhalten A. salina Nauplien. </li> &lt;li&gt; Bereiten 5 L einer 3,0% igen Salzlösung in einem Kunststoffbecher. </li><li> In 30 g Artemia Eier in die Salzlösung in das Becherglas. </li><li> Inkubiere die Eier bei 25 ° C für 48 Stunden mit sprudelnden (4 l / min -1) eine Belüftungspumpe. </li><li> Nach 48 Stunden, die sprudelnden stoppen. </li><li> Lassen Sie die Lösung stehen für 5 bis 10 min die schraffierten A. zu trennen salina Nauplien (unterer Teil der Lösung) von den nicht geschlüpften Eier und Eierschalen (oberer Teil der Lösung). </li><li> Die obere Schicht der Lösung durch Dekantierung. </li><li> Filtern Sie den unteren Teil der Lösung durch ein Sieb mit Öffnungen von 283 &amp; mgr; m, und sammeln Sie die Nauplien, die mit Öffnungen von 198 &amp; mgr; m auf einem Netz passieren. </li><li> Führen Sie die Nauplien zu den Medaka innerhalb von 6 Stunden. </li></ol></li><li> Nachdem die weiblichen Medaka gelaicht haben, entfernen Sie die externe Ei Cluster sanft aus den Körpern der Frauen oder die Eier aus dem Boden des durch die Verwendung eines sm Fischbehälter sammelnalle netto (netto Größe 5 cm x 5 cm, Lochgröße 0,2 mm x 0,2 mm). </li><li> Spülen Sie das Ei-Cluster mit Leitungswasser für 5 Sekunden fließt. </li><li> Fügen Sie alle die gespülten Ei-Cluster zu 30x ERM-Lösung. </li><li> Entfernen Sie die Cluster aus der Lösung nach 1 min und legen Sie die Ei-Cluster zwischen trockenen Papierhandtüchern und Rolle vorsichtig. </li><li> Setzen Sie die Eier wieder in den 30x ERM. </li><li> Wählen Sie befruchtete Eier unter einem Binokular. </li><li> Platz ausgewählt 810 Eier in 1x ERM in Sechs-Well-Kunststoffplatten mit einer Pinzette. </li><li> Inkubiere die Eier bei 25 ± 0,1 ° C in einem Inkubator , bis Entwicklungsstadium 21 (Entwicklungsstadien der Medaka - Embryonen aus der Arbeit von Iwamatsu 10 definiert wurden.) </li><li> Suchen Sie sich bebrütete Eier in Entwicklungsstufe 21 unter einem Binokular. </li><li> Spülen Sie ausgewählte Eier mit 1x ERM. </li><li> Betreff der gespülten Eier Belichtungsexperimente (Abschnitt 4). </li></ol> 4. Prüfung der Toxizität von SNCs oder AgNO 3 </sub&gt; Bei verschiedenen ERM Salzhaltigkeiten <ol><li> Spülen Sie Medaka Eier (Stufe 21) dreimal mit Testlösung [SNCs (10 mg / L -1) oder AgNO 3 (15,7 mg / L -1 als 10 mg / L -1 Silber) bei jeder Konzentration von ERM (1x, 5x , 10x, 15x, 20x, 30x oder) bei pH 7]. Als Kontrollen verwenden Eier in 1 × bis 30 × ERM bei pH 7. </li><li> Liste 15 gespült Eier bis 5 ml jeder Testlösung in Sechs-Well-Kunststoffplatten. (Führen Sie die Belichtungsexperimente dreimal für SNC oder AgNO 3 Toxizität Testen jeder Testlösung verwendet wird .) </li><li> Wickeln Sie die Platten in Aluminiumfolie. </li><li> Inkubieren Sie die gewickelt Platten bei 25 ° C im Dunkeln bis zum Schlüpfen oder für 14 Tage. </li><li> Beachten Sie die exponierten Eier alle 24 Stunden für biologische Veränderungen und tote Eier (Abbildungen 1 und 2). </li><li> Tauschen Sie den Prüflösungen alle 24 Stunden. </li><li> Führen Sie Beobachtungen wie folgt. <ol><li> Am 6. Tag der Exposition, zählen die Herzfrequenz (je 15 sec) of Medaka - Embryonen unter einem Präpariermikroskop mit einer Stoppuhr (Abbildung 3a) verwendet wird . </li><li> Am 6. Tag der Exposition, messen die Augengröße (Durchmesser) von Medaka - Embryonen unter einem Binokular mit einem Mikrometer (Abbildung 3b) verwendet wird . </li><li> Auf dem Schlüpfen Tag, messen die volle Körperlängen von Larven unter einem Binokular mit einem Mikrometer (Abbildung 3c) verwendet wird . </li><li> Zählen Sie die Gesamtzahl der exponierten Eier , die über den 14 Tagen (Abbildung 3d) schlüpfen. </li></ol></li></ol> 5. Isolierung von löslichen Silber von SNC-Lösung und Silber-Analyse <ol><li> Isolieren lösliches Silber von jeder SNC-Lösung (eine Mischung aus Silberkolloide und löslichen Silber) durch Filtrieren durch einen 3 kDa-Membranfilter bei 14000 x g und 4 ° C für 10 min. Verwenden Sie ein 3 kDa Membranfilter löslichen Silber aus den SNCs zu isolieren, da der gemeldete mittleren Durchmesser von aggregierten SNCs in ERM 1x 67,8 nm 11 and der von Ag + ist 0,162 nm 12; die 3 kDa Membran schließt Teilchen mit Durchmessern von 2 nm oder mehr 13. </li><li> Messung der Silberkonzentration in 50 &amp; mgr; l filtrierten Lösung (= die löslichen Silberkonzentration) durch ICP-MS - Analyse (Abbildung 3e) nach der ICP-MS - Betriebshandbuch 8. Das Vorbehandlungsverfahren für die ICP-MS-Analysen wird in Abschnitt 7 beschrieben. </li></ol> 6. Messung der Silber Bioakkumulation in Medaka Embryonen <ol><li> Expose Medaka Eier (Stufe 21) zu SNCs oder AgNO 3 , wie in Abschnitt 4 beschrieben. </li><li> Am Tag 6 der Belichtungs Entfernen Chorion aus dem Ei (dh dechorion) durch in der Medaka Buch 14 beschrieben Medaka Schlüpfen Enzym gemäß dem Protokoll. </li><li> Messung der Silberkonzentration der dechorioned Eier durch ICP-MS - Analyse nach der ICP-MS - Betriebshandbuch 8 (3f). die VorbehandlungsVerfahren für die ICP-MS-Analysen wird in Abschnitt 7 beschrieben. </li></ol> 7. Messung der Silberkonzentration mittels ICP-MS-Analyse <ol><li> In Proben [50 ul Silberlösung (für die Validierung der Silberkonzentration; Teil 1); drei dechorionated Embryonen (Abschnitt 5); oder 50 &amp; mgr; l der gefilterten Lösung (Abschnitt 5)] in ein 50 ml Teflonbecher. </li><li> Werden 2,0 ml ultrareinem Salpetersäure zu dem 50 ml-Becherglas. </li><li> Das Gemisch wird auf einer Heizplatte bei 110 ° C, bis kurz bevor es austrocknet (ca. 3 h). </li><li> Aufzulösen vollständig die organische Substanz, fügen 2,0 ml ultrareinem Salpetersäure und 0,5 ml Wasserstoffperoxid in das Becherglas. </li><li> Das Gemisch wird wieder auf der heißen Platte bis kurz bevor es austrocknet (ca. 3 h). </li><li> Löse den Rückstand in 4 ml 1,0% ultrareine Salpetersäure-Lösung. </li><li> Transfer 4 ml der Lösung in ein Zentrifugenröhrchen. </li><li> Wiederholen 7,6-7,7 zweimal (insgesamt dreimal). Das Endvolumen beträgt 12,0ml. </li><li> Messen Sie die Silberkonzentration der Probe (gelöst in 1,0% Reinst - Salpetersäure) unter Verwendung von ICP-MS - Analyse nach der Betriebsanleitung 8. <ol><li> Verwenden Sie einen internen und einen externen Standardlösung (siehe Materialliste) , um die Silberkonzentration zu quantifizieren. Die internen und externen Standardlösung wird durch American Association for Laboratory Accreditation (A2LA) akkreditiert. Die Nachweisgrenzen von Silber waren 0,0018 ng / ml -1 (Lösung) und 0,016 ng mg-Gewicht -1 (Embryo Körper). </li></ol></li></ol>

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<li>Kataoka, C., Ariyoshi, T., Kawaguchi, H., Nagasaka, S., Kashiwada, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Salinity+increases+the+toxicity+of+silver+nanocolloids+to+Japanese+medaka+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Sci.%3A+Nano%22%5BJournal%5D)">Salinity increases the toxicity of silver nanocolloids to Japanese medaka embryos.</a> Environ. Sci.: Nano. 2, 94-103 (2014).</li>
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 [cited 2015] <a target="_blank" href="https://shigen.nig.ac.jp/medaka/medakabook/index.php?6.1%20preparation%20of%20hatching%20enzyme">https://shigen.nig.ac.jp/medaka/medakabook/index.php?6.1%20preparation%20of%20hatching%20enzyme</a> (2015).</li>
</ol>

Die Autoren erklären, dass sie keine konkurrierenden finanziellen Interessen haben.

Medaka ist ein Süßwasserfisch, die sehr tolerant gegenüber Meerwasser ist; es ist nicht bekannt , dass die ursprüngliche natürliche Lebensraum dieser Fisch Salzwasser vor der japanischen Küste 6 war. Daher haben Medakafisches Chloridzellen 7 gut entwickelt. Diese einzigartige Eigenschaft bietet Wissenschaftlern eine neue Möglichkeit, die Toxizität von Chemikalien in der Umwelt als eine Funktion der Salinität (Süßwasser Meerwasser) zu testen, indem nur eine einzige Art von Fisch verwendet wird. ...

1 Seit der Gründung der Organisation für wirtschaftliche Zusammenarbeit und Entwicklung (OECD) Prüfrichtlinien zur Prüfung von Chemikalien im Jahr 1979 wurden 38 Testrichtlinien wurden in Abschnitt 2 der Leitlinien, Auswirkungen auf biotische Systeme veröffentlicht. Alle von den Wasserorganismen wurden aus Süßwasserhabitaten getestet, nämlich Süßwasserpflanzen; Algen; wirbellose Tiere wie Daphnien und Chironomiden; und Fische wie Medaka, Zebrafisch und Regenbogenforelle. Im Vergleich zu Salzwasser-Umgebungen, Süßwasser-Umgebungen mehr direkt durch menschliche wirtschaftlichen und industriellen Tätigkeiten betroffen. Daher Süßwasser-Umgebungen wurden für den Test priorisiert, weil sie ein höheres Risiko von Verschmutzung sind. In den Küstengebieten, einschließlich der Mündungen, variieren Salinität zwischen Brackwasser und Meerwasser Bedingungen, und diese Bereiche werden oft durch industrielle Tätigkeit 2 belastet. Die Küstengebiete und ihre zugehörigen Feuchtgebiete werden durch h gekennzeichnetigh ökologische Artenvielfalt und Produktivität. Küstenökosysteme müssen daher durch chemische Verschmutzung geschützt werden. Allerdings gibt wurde in Brackwasser und Meerwasser Lebensräume ökotoxikologische Forschung beschränkt. Sakaizumi 3 untersucht die toxischen Wechselwirkungen zwischen Methylquecksilber und Salzgehalt in der japanischen Medaka Eier und festgestellt , dass der osmotische Druck der Testlösung eine Erhöhung der Toxizität des Methylquecksilber verbessert. . Sumitani et al 4 verwendet Medaka Eier die Toxizität von Deponiesickerwasser zu untersuchen; sie fanden heraus, dass der osmotische Äquivalenz von Sickerwasser auf die Eier der Schlüssel zu induzieren Anomalien während der Embryonalentwicklung war. Darüber hinaus Kashiwada 5 berichtet , dass Kunststoff - Nanopartikel (39,4 nm Durchmesser) leicht durch das Medaka - Ei Chorion unter Brack Bedingungen durch (15x Embryo Aufzuchtmedium (ERM)). Ein typischer kleiner Fisch - Modell, die japanischen Medaka (Oryzias latipes </em&gt;) hat in grundlegende Biologie und Ökotoxikologie 6 verwendet. Japanische Medaka kann unter den Bedingungen im Bereich von Süßwasser Meerwasser leben wegen ihrer hoch entwickelten Chloridzellen 7. Sie sind daher geeignet für die Prüfung in Bedingungen mit einem weiten Bereich von Salzkonzentrationen nützlich.

<table><tbody><tr><td>Silber Nanokolloide</td><td>Utopia Silber Ergänzungen</td><td></td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Nacalai Tesque, Inc.</td><td>31319-45</td><td>Für die Herstellung von ERM</td></tr><tr><td>KCl</td><td>Nacalai Tesque, Inc.</td><td>28513-85</td><td>Zur Herstellung von ERM</td></tr><tr><td>CaCl2&middot; 2H2O</td><td>Nacalai Tesque, Inc.</td><td>06730-15</td><td>Zur Herstellung von ERM</td></tr><tr><td>MgSO4&middot; 7H2O</td><td>Nacalai Tesque, Inc.</td><td>21002-85</td><td>Für die Herstellung von ERM</td></tr><tr><td>NaHCO3&nbsp;</td><td>Nacalai Tesque, Inc.</td><td>31212-25</td><td>Zur Herstellung von ERM</td></tr><tr><td>AgNO3</td><td>Nacalai Tesque, Inc.</td><td>31018-72</td><td></td></tr><tr><td>pH-Messgerät</td><td>HORIBA, Ltd.</td><td>F-51S</td><td></td></tr><tr><td>Balance</td><td>Mettler-Toledo International Inc.</td><td>MS204S</td><td></td></tr><tr><td>medaka (Oryzias latipes) orange-roter Stamm</td><td>Nationales Institut für Umweltstudien</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Medaka Durchfluss-Kultivierungssystem</td><td>Meito Suien Co.</td><td>MEITOsystem</td><td></td></tr><tr><td>Artemia salina nauplii Eier</td><td>Japan pet design Co. Ltd</td><td>4975677033759</td><td></td></tr><tr><td>Belüftungspumpe</td><td>Japan pet design Co. Ltd</td><td>geräuschlos w300</td><td></td></tr><tr><td>Otohime Larve &beta;-1</td><td>Marubeni Nissin Feed Co. Ltd</td><td>Otohime Larve &beta;-1</td><td>Künstliches</td></tr><tr><td>Trockenfischfutter Präpariermikroskop</td><td>Leica microsystems</td><td>M165FC</td><td></td></tr><tr><td>Mikrometer</td><td>Fujikogaku, Ltd.</td><td></td><td></td>10450023</tr><tr><td>Brutkasten</td><td>Nksystem</td><td>TG-180-5LB</td><td></td></tr><tr><td>Schüttler</td><td>ELMI Ltd.</td><td>Aizkraukles 21-136</td><td></td></tr><tr><td>6-Well-Kunststoffplatten</td><td>Greiner CELLSTAR</td><td>M8562-100EA</td><td></td></tr><tr><td>Alufolie</td><td>AS ONE Co.</td><td>6-713-02</td><td></td></tr><tr><td>Stoppuhr</td><td>DRETEC Co. Ltd.</td><td>SW-111YE</td><td></td></tr><tr><td>3 kDa Membranfilter</td><td>EMD Millipore Corporation</td><td>0,5 ml Zentrifugalfilter</td><td></td></tr><tr><td>50 ml Teflonbecher</td><td>AS ONE Co.</td><td></td><td></td>33431097</tr><tr><td>Custom Claritas Standard</td><td>SPEXertificate</td><td>ZSTC-538</td><td>Für internen Standard</td></tr><tr><td>Custom Claritas Standard</td><td>SPEXertificate</td><td>ZSTC-622</td><td>Für externen Standard</td></tr><tr><td>hochreine Salpetersäure</td><td>Kanto Chemical Co.</td><td>28163-5B</td><td></td></tr><tr><td>Wasserstoffperoxid&nbsp;</td><td>Kanto Chemical Co.</td><td>18084-1B</td><td>für Atomabsorptionsspektrometrie</td></tr><tr><td>ICP-MS</td><td>Thermo Scientific</td><td>Thermo Scientific X Series 2&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Herdplatte</td><td>Tiger Co.</td><td>SFB-A300</td><td></td></tr></tbody></table>

salinität abhängigen toxizität assay von silbernanokolloide verwendung von medaka-eier

Salinity-dependent Toxicity Assay of Silver Nanocolloids Using Medaka Eggs

Salinität ist ein wichtiges Merkmal der Gewässer. Für Wasserorganismen definiert sie die Lebensräume von Süßwasser, Brackwasser und Meerwasser. Tests der Toxizität von Chemikalien und Bewertungen ihrer ökologischen Risiken für Wasserorganismen sind in Süßwasser, aber die Toxizität von Chemikalien für Wasserorganismen ist abhängig von pH-Wert, Temperatur und Salzgehalt häufig durchgeführt. Es gibt keine Methode, jedoch zum Testen der Salinität Abhängigkeit von Toxizität für Wasserorganismen. Hier haben wir Medaka (Oryzias latipes) , weil sie an Süßwasser, Brackwasser angepasst werden kann, und Meerwasser. Verschiedene Konzentrationen von Embryo-Aufzuchtmedium (ERM) (1x, 5x, 10x, 15x, 20x und 30x) wurden eingesetzt, um die Toxizität von Silber nano-kolloidaler Teilchen (SNCs) zu testen, Eier (1x ERM und 30x WKM Medaka haben osmotischen Druck äquivalent In den Süß- und Meerwasser, beziehungsweise). In Sechs-Well - Kunststoffplatten 15 Medaka - Eier in dreifacher Ausfertigung wurden mit 10 mg / L zu SNCs ausgesetzt und# 8722; 1 in verschiedenen Konzentrationen von ERM bei pH 7 und 25 ° C im Dunkeln. Wir haben ein Binokular und einem Mikrometer auf dem Schlüpfen Tag (Abschnitt 4) Herzfrequenz pro 15 Sekunden und Augen Durchmesser am Tag 6 und voller Körperlänge der Larven zu messen. Die Embryonen wurden bis zum Schlüpfen oder Tag 14 beobachtet; zählten wir dann die Schlupfrate für 14 Tage jeden Tag (Abschnitt 4). Um Silber Akkumulation in Embryonen zu sehen, verwendeten wir induktiv Plasma-Massenspektrometrie gekoppelt mit zunehmender Salinität die Silberkonzentration von Testlösungen (Abschnitt 5) und dechorionated Embryonen (Abschnitt 6) .Die Toxizität der SNCs zu Medaka Embryonen offensichtlich erhöht zu messen. Dieses neue Verfahren ermöglicht es, die Toxizität von Chemikalien in verschiedenen Salzgehalten zu testen.

Die Wirkung der Salinität auf SNC Toxizität war sehr offensichtlich: die Induktion von Deformitäten oder Tod abhängig war Salinität (Abbildungen 1 und 2). Wir maßen phänotypische Biomarker (Herzfrequenz, Augengröße, voller Körperlänge und Schlupfrate) in SNC (10 mg / L -1) -exposed Embryonen. Diese phänotypischen Biomarker Salinität abhängige SNC Toxizität ergab. Die Herzfrequenz la...

Embryonale Stadien sind am anfälligsten für Xenobiotika. Obwohl die chemische Toxizität vom Salzgehalt abhängt, gibt es keine Methode, um die Abhängigkeit der Toxizität von Wasserorganismen vom Salzgehalt zu testen. Hier beschreiben wir eine neue Hochdurchsatzmethode zur Bestimmung der Salzgehaltsabhängigkeit der Toxizität an aquatischen Embryonen.

Salinität abhängigen Toxizität Assay von Silbernanokolloide Verwendung von Medaka-Eier

Salinity is an important characteristic of the aquatic environment. For aquatic organisms it defines the habitats of freshwater, brackish water, and ...

Das übergeordnete Ziel dieses Experiments besteht darin, die von der Salinität abhängige Toxizität von Chemikalien gegenüber aquatischen Organismen zu testen. Diese Methode kann dabei helfen, zentrale Fragen im Bereich der Ökotoxikologie zu beantworten, beispielsweise die Bewertung der Toxizität unter Süßwasser-, Brackwasser- und Meerwasserbedingungen. Der Hauptvorteil dieser Technik liegt darin, dass Medaka niemals zur Prüfung der Toxizität von Chemikalien bei unterschiedlichen Salinitäten herangezogen werden müssen.Außerdem erstrecken sich die Implikationen dieser Technik auf andere Therapien oder die Diagnose von Toxizitäten chemischer Substanzen. Die Herstellung kommerzieller silberner Nanokolloide in Lösung bei verschiedenen Salinitäten wird im textbasierten Protokoll behandelt. Ebenso die Zucht von Medaka und die Sammlung von Eiern.Beginnen Sie damit, sechs Sammlungen von Medaka-Eiern des Stadiums 21 dreimal in der Testlösung zu spülen. Verwenden Sie hierfür ERMs in einer unterschiedlichen Konzentration für jeden Satz Eier. Überführen Sie nun von jeder gespülten Sammlung 15 Eier in ein separates Loch mit Testlösung in einer sechswelligen Kunststoffplatte.Richten Sie dieses Experiment im Dreifachansatz ein und waschen Sie jede Gruppe separat. Wickeln Sie die Platten in Folie ein und inkubieren Sie sie bei 25 Grad Celsius im Dunkeln, bis die Eier schlüpfen oder für 14 Tage, je nachdem, welcher Zeitpunkt früher eintritt.Während der Inkubation die Eier täglich auf biologische Veränderungen sowie auf tote Eier untersuchen. Die Testlösung täglich wechseln, zusammen mit der Durchführung der Beobachtungen.Am sechsten Beobachtungstag zählen Sie die Herzfrequenz jedes Embryos über einen Zeitraum von 15 Sekunden. Ebenfalls am sechsten Tag messen Sie den Durchmesser der Augen jedes Embryos unter jeder experimentellen Bedingung mithilfe eines Messmikrometers. Sobald die Embryos zu Larven schlüpfen, messen Sie deren Gesamtkörperlänge mithilfe eines Messmikrometers.Notieren Sie außerdem über die 14 Tage hinweg die Gesamtanzahl der geschlüpften Eier. Um die Bioakkumulation von Silber zu messen, sammeln Sie am sechsten Tag die Chorionen der Eier mit der Standardmethode. Die entchorionierten Eier können genauso analysiert werden wie die SNC-Lösung, wie im folgenden Abschnitt beschrieben.Um das lösliche Silber aus jeder SNC-Lösung zu isolieren, filtrieren Sie zuerst das Gemisch aus Kolloiden und löslichem Silber mit einer Dreikilodalton-Membran ab. Anschließend zentrifugieren Sie den beladenen Filter 10 Minuten lang bei 14.000 G in einer gekühlten Zentrifuge.Aus 50 Mikrolitern des Filtrats die Silberkonzentration mittels ICP-MS-Analyse bestimmen. Die Aliquotte in ein 50-Milliliter-Teflon-Becherglas geben und zwei Milliliter ultrareine Salpetersäure zum Becherglas hinzufügen. Anschließend das Gemisch auf einem Heizgerät bei 110 Grad Celsius erhitzen.Lassen Sie die Lösung über einen Zeitraum von etwa drei Stunden fast vollständig eintrocknen. Sobald das Becherglas abgekühlt ist, lösen Sie die organischen Feststoffe vollständig auf. Geben Sie zwei Milliliter ultrareine Salpetersäure und 0,5 Milliliter Wasserstoffperoxid zum Becherglas hinzu.Erhitzen Sie die Mischung erneut, bis sie fast vollständig wieder eingedampft ist. Lösen Sie den verbleibenden Rückstand nun in vier Milliliter einprozentiger ultrareiner Salpetersäure, hergestellt in ultrareinem Wasser. Überführen Sie die Lösung in ein 15-Milliliter-Zentrifalenröhrchen.Wiederholen Sie den Vorgang des Auflösens der verbleibenden Feststoffe im Teflon-Becher noch zweimal und kühlen Sie die drei Sammlungen in einem einzigen Reagenzglas ab. Messen Sie nun die Silberkonzentration in der Probe mittels ICP-MS. Verwenden Sie das vom Hersteller empfohlene Protokoll zur Analyse der Proben.Verwenden Sie unbedingt interne und externe Standards. Der Einfluss der Salinität auf die SNC-Toxizität war leicht erkennbar. Die Induktion von Missbildungen oder der Tod war eindeutig abhängig von der Salinität.Es wurden verschiedene physiologische Messungen durchgeführt. Die Herzfrequenzen blieben unverändert, bis die Salinität 30 X ERM erreichte. Die Körperlänge war bei Salinitäten von 15 und 30 X ERM signifikant kürzer.Der Augendurchmesser nahm ebenfalls ab, was mit der Körperlänge übereinstimmt. Die Schlüpfung war bei 15 X ERM unwahrscheinlicher und trat nur bei zwei Prozent der Eier bei 30 X ERM auf. Unter den experimentellen Lösungen bildeten sich wasserlösliche Metallkomplexe umso leichter, je höher die Salzkonzentration war.Die Untersuchung der Metallkomplexe in den Embryonen nach sechs Tagen zeigte, dass ihre Konzentration in den Embryonen anstieg, während die Konzentration in der Lösung zunahm. Bei der Durchführung dieses Verfahrens ist es wichtig, daran zu denken, den pH-Wert der Testbedingungen anzupassen, da die Freisetzung von Silberionen unter sauren Bedingungen begünstigt wird.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Developmental Biology

Entwicklungsbiologie

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