Name: Video Imaging und Raum-Zeit-Karten zur Analyse Gastrointestinale Motilität bei Mäusen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-02-03T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 41 s
Description: Erfahren Sie Video-Imaging und räumlich-zeitliche Kartierung zur Analyse der neuronalen Regulation der Kolonmotilität bei Mäusen. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung des enterischen Nervensystems.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

JCB und ELH-Y wurden durch das US Department of Defense CDMRP Autism Research Program (AR11034) unterstützt. NHMRC (1047674) zu ELH-Y.The Mai Stewart Bursary-Universität von Melbourne Vertrauen Stipendium für MS finanziert. Wir danken Ali Taher, Fátima Ramalhosa und Gracia Seger für technische Beiträge.

Tier Handhabung und Genickbruch der Tiere vor allen Versuchen waren streng durchgeführt nach Protokollen, die von der Tierversuchskommission für die University of Melbourne (Ethik-ID: 1.212.494,7) genehmigt 1. Gewebeentnahme und Dissection <ol><li> Euthanize erwachsene Mäuse durch Genickbruch. Wenn möglich Anästhesie vermeiden Einflüsse auf die Darmfunktion über Rezeptoren auf neuronalen Populationen des Interesses zu verhindern. </li><li> Notieren Sie die Gesamtkörpergewicht des Tieres, pin den Körper (über die vier Pfoten, ausgesetzt Bauchseite zu Experimentator) fest mit einer Dissektion Bord mit Injektionsnadeln (Größe: 20 G). </li><li> Mit Pinzette und Schere; Einen Einschnitt durch die Haut der unteren Bauchmuskelschichten überlagern. Weiter die Zange und Schere zu verwenden, um die Bauchhöhle entlang der Mittellinie des Bauches bis zum Brustbein zu öffnen. </li><li> Um die Gewebeentwässerungs verhindern, gießen physiological Salzlösung (Krebs-Lösung: 118 NaCl, 4,6 KCl, 2,5 CaCl 2, 1.2 MgSO 4, 1 NaH 2 PO 4, 25 NaHCO 3, 11 D-Glucose in mM - bei RT mit Carbogen Gas geperlt, 95% O 2 und 5 CO 2% für mindestens 20 min) auf Bauch-Inhalte in regelmäßigen Abständen (zB alle 30-60 sec) während der Präparation Prozess. </li><li> Um den Dickdarm isolieren, während an den Blinddarm und Mastdarm befestigt, halten Sie den Blinddarm (angrenzend an das proximale Ende des Dickdarms) sanft Pinzette mit ca. 4-5 cm über dem Körper des Tieres, während das Gekröse Trimmen feinen Sezierung Schere. </li><li> Achten Sie darauf, nicht zu handhaben, strecken oder den Magen-Darm-Gewebe geschnitten, während die angrenzenden Mesenterium entfernen. </li><li> Überschüssiges Gewebe (dh, der Harnblase und Hoden). Mit groben Präparierschere, machen zwei vertikale Einschnitte (dh ungefähr 0,5 cm von der Mittellinie), um den Beckenknochen auf ea zu schneidench Seite des Dickdarms. </li><li> Verwenden einer feinen Schere das Rektum von angrenzenden Becken Gewebe zu trennen und zu trimmen Muskel aus dem Dickdarm umgibt. </li><li> Legen Sie das in voller Länge Doppelpunkt (von Blinddarm zu Rektum) in ein Becherglas mit physiologischer Kochsalzlösung (vorher mit Carbogen mit Sauerstoff angereichert) und weiter bei RT mit Sauerstoff anzureichern. Entfernen Sie den Blinddarm und Mastdarm mit feinen Dissektionsscheren und in Becherglas ersetzen. </li><li> Leere Stuhl Pellets / Darminhalt von Kolon-Präparate durch sanfte Überdruck in der mündlichen Ende Aufbringen einer 5 ml Spritze an einem 200 ul Pipettenspitze mit physiologischer Kochsalzlösung gefüllt. Um das Gewebe in der Zukunft zu orientieren, verwenden Sie ein Insekt Stift am meisten proximale Ende des Dickdarms zu kennzeichnen, in denen Rillen in der Schleimhaut sichtbar sind. <ol><li> Ändern Sie den Kunststoffpipettenspitze die 5-ml-Spritze durch Entfernen von etwa 1 cm von der breitesten / proximalen Ende zu passen mit einer Rasierklinge. Um die Fließgeschwindigkeit zu erhöhen, erweitern das distale / kleinere Ende von auf einem ang Schneidle (ca. 45 ° C) mit einer Rasierklinge. </li></ol></li><li> Fassen Sie den Doppelpunkt Gewebe sanft an seinem proximalen Ende mit Pinzette, legen Sie die Pipettenspitze in das Lumen des Dickdarms und bündig physiologischer Kochsalzlösung durch das Lumen. </li></ol> 2. Herstellung von Dickdarmgewebe und Versuchsaufbau für Video Imaging <ol><li> Flush physiologischer Kochsalzlösung durch alle Rohre zu einem Zweikammer Organbad befestigt einrichten (Abbildung 1 und Abbildung 3), mit einer Spritze an einem 200 ul Pipettenspitze. Dieser Schritt entfernt jeglichen Schmutz innerhalb der Rohrleitung, die den Fluss der Lösung blockieren könnte. Für Schläuche siehe technische Daten zum Materialtabelle. </li><li> Sicherstellen, dass die Kammern des Organbad kontinuierlich mit physiologischer Kochsalzlösung geperlt mit Carbogen (95% O 2 und 5% CO 2 Durchflussrate von 5 ml min -1) superfundiert werden. Mit einem Temperaturfühler in regelmäßigen Abständen, sicherzustellen, dass die temperature des Bades zwischen 33 ° C -37 ° C gehalten. </li><li> Füllen Sie das Zulaufreservoir über einen 3-Wegehahn mit dem Einlassrohr mit etwa 20-30 ml physiologischer Kochsalzlösung eine 50 ml Spritze. </li><li> Während des Experiments, halten den Druck in der Zulaufbehälter mit arubber Stopfen mit einem Glasrohr (5 mm Innendurchmesser) durch seine Mitte eingesetzt. Stellen Sie sicher, dass die obere Öffnung des Einlaufbehälter sicher verschlossen (mit der inneren Glasröhre unversiegelt bleibt). </li><li> Setzen Sie den Doppelpunkt (Länge 5-7 cm) in das Organbad Kammer, um sicherzustellen, dass sie vollständig in physiologische Kochsalzlösung eingetaucht ist. </li><li> Kanülieren jedes Ende des Kolon-Segment mit den beiden eingetauchten Einlass / Auslass-Rohre (Einlass / Auslass-Rohre unterschiedlichen Durchmessers kann je nach Größe des Gewebelumens zB geändert werden. Postnatal Gewebe, erwachsenen Mäusen und Meerschweinchen) in dem Bad unter Verwendung von Standard Baumwolle Nähgarn. Befestigen des proximalen Endes des Dickdarms zu dem Einlaßrohr und dasdistalen Ende des Dickdarms zu dem Auslassrohr (verbunden über ein 3-Wege-Hahn in eine vertikale Abflußrohr; 6 cm in der Höhe). Stellen Sie sicher, dass das Gewebe nicht überdehnt oder zu entspannt nach Kanülierung Interferenz mit zukünftigen Messungen und Analysen zu vermeiden. </li><li> Nehmen die Länge des Dickdarms durch den Abstand zwischen dem proximalen und distalen Kanülierungen Messen einer 15 cm Lineal. Dies ist wichtig für Änderungen in Kontraktion Länge Ausbreitungsgeschwindigkeit und Kontraktion Initiationspunkten zu interpretieren. </li><li> Achten Sie auf eine stabile Grundlinie Lumendruck (cm H 2 O) hergestellt wird, bevor das Experiment beginnt. luminalen Druck berechnen, indem der vertikale Abstand von dem Gewebe zu dem Meniskus der physiologischen Kochsalzlösung in das Glasrohr der Zulaufbehälter (oral) Messung und der vertikalen Abflußrohr (anal). </li><li> Pflegen Gewebezubereitungen mit einer konstanten intraluminale Druck (zB 1-2 cm H 2 O), indem sichergestellt wird, dass der Zufluss-Anschlagdichtung pressuRe konstant gehalten wird und dass keine Blockaden, die in der Einrichtung sind. </li><li> Lassen Sie den Doppelpunkt in physiologischer Kochsalzlösung ins Gleichgewicht für 30 Minuten vor dem Darmbewegungen aufzuzeichnen. Prüfen Sie, ob Verstopfungen in den Zu- bzw. Abgänge aus Rohren ergeben, und entfernen Sie sie von Druck durch den Zufluss Reservoir Anwendung oder durch Wieder Kanülierung der oralen und analen Enden des Dickdarms. </li></ol> 3. Bilderfassung und experimentelles Protokoll <ol><li> Nehmen Darmbewegungen als Video-Dateien mit einer Videokamera (30 Bilder / s, 640 x 840 Pixel), die 10 bis 15 cm über dem Organbad auf einem Standard-Labor Retorte stehen (Abbildung 1). </li><li> Öffnen Sie Virtual Dub (Video-Capture-Software) über das Symbol auf dem Desktop. Von der &quot;Datei&quot; Tab wählen &quot;Capture AVI &#39;das Kamerabild zu sehen. Auf der Registerkarte &#39;Audio&#39; abwählen &#39;ermöglichen Audio-Aufnahme &quot;den Ton abzuschalten. <ol><li> In der Video-Registerkarte &quot;Kompression&quot; und &quot;DivX6.9.2. Codec &amp; #39; Videodateien zu minimieren Nutzung des Speicherplatzes zu komprimieren. Diese Funktion wird bei der Installation der Kompressionssoftware &#39;DivX&#39; verfügbar sind. </li></ol></li><li> Sie manuell die Kameraposition so einstellen, dass die gesamte Kanüle versehen Kolonsegment (mit einer Kanüle versehen Regionen unmittelbar angrenzend an den vertikalen Kanten des Videobildes) über die Video-Capture-Software-Fenster zu sehen ist (siehe Abbildung 1). Um die Bildqualität und minimieren Reflexionen zu verbessern, fügen Sie eine Papier / Pappe Schild an der Kamera Unterstützung Fremdlicht auf das Organbad zu blockieren. Videoqualität optimieren, indem Sie die Helligkeit, Kontrast und Belichtungseinstellungen Einstellen der Kamera-Software-Schnittstelle. <ol><li> Vor der Aufnahme legen Sie eine bestimmte Dateinamen; im &quot;Datei&quot; Tab wählen &#39;Set-Capture-Datei&#39; und einen eindeutigen Namen für das Video festlegen. </li><li> Start der Videoaufnahme von &quot;Capture-Datei&quot; von der &quot;Capture &#39;Werkzeugleiste drücken. So stoppen recordinG Wählen Sie den &quot;Capture stoppen&quot; Taste oder die &quot;Esc&quot; -Taste auf der Tastatur. </li></ol></li><li> Ersetzen Sie die physiologische Kochsalzlösung in den Zulauf Reservoir mit frischem physiologischer Kochsalzlösung enthalten alle 30 Minuten. <ol><li> Nehmen Lumendruck (siehe 2.9) und einen Temperaturfühler verwenden, beachten Sie die Orgel Badetemperatur. Wiederholen Sie diese Schritte während des gesamten Versuchs (dh alle 30 Minuten), um sicherzustellen, dass diese Variablen konstant sind. </li></ol></li><li> Nehmen Kolon-Aktivität insgesamt 3 Stunden (einschließlich Medikamentenapplikation und Auswaschen Dauer). Zur Datensicherung, Datensatzdaten in 15 Minuten Videosegmente. Eine vollständige Experiment wird in der Regel von 12 x 15 Minuten Videoaufnahmen zusammengesetzt sein. <ol><li> Nehmen Aktivität für 1 Stunde unter Kontrollbedingungen (physiologische Kochsalzlösung). </li><li> Wenden Sie das Medikament (entweder strömt in der Badewanne oder in das Lumen über den Zulauf Reservoir verabreicht) für 30 Minuten bis 1 Stunde. Hinweis: Verschiedene Arten der Verabreichung können yELD unterschiedliche Auswirkungen 23. </li><li> Bewerben frischen physiologischer Kochsalzlösung in das Bad oder Lumen bei einer 1 Std Auswaschphase. </li></ol></li></ol> 4. Datenverarbeitung und Erzeugung von Raum-Zeit-Karten <ol><li> Prozess jede Videoaufzeichnung offline Inhouse-Software in Matlab geschrieben mit (R2012a, Version 7.4, auf Anfrage), um Raum-Zeit-Karten veranschaulicht Kolonmotilität zu erzeugen. <ol><li> Offene Analysesoftware über das Symbol auf dem Desktop. </li><li> Im Befehlsfenster, geben Sie &quot;Analyse2&quot;, um die Analyse Systemsteuerung zu öffnen. </li></ol></li><li> Nutzen Sie die Kantenerkennungsfunktion zu raumzeitlichen Karten generieren, indem &quot;Kantenerkennung für AVI-Dateien&quot; in der Systemsteuerung klicken. Diese Funktion wird die Analysesoftware ermöglichen der neu kodierte Videos in Audio Video Interleaved (AVI) Format zu lesen. </li><li> Führen Sie die folgenden Schritte nacheinander Raum-Zeit-Karten zu erzeugen, unter Verwendung eines adaptive Kantendetektionsalgorithmus. <ol><li> Offene aufgenommenen Videodateien durch die Registerkarte &quot;Dateien hinzufügen&quot; auswählen, legen Sie &quot;Open Video&quot; und die Position der Videodateien wählen. </li><li> Aus den Video-Dateien innerhalb der Analyse-Software enthalten sind, wählen Sie die Datei von Interesse. </li><li> Wählen Sie eine rechteckige Region von Interesse in dem Rahmen des Videos, beispielsweise die gesamte Länge des Dickdarms, von dem Punkt, an dem der Dickdarm oral an den analen Kanülierung einer Kanüle versehen ist. Sicherstellen, dass die proximalen und distalen Kanülierung Punkte an den vertikalen Grenzen der Region von Interesse benachbart sind. Kantenerkennung Linien (rot und grün) erscheint automatisch auf dem Echtzeitbild überlagert. </li><li> Sicherstellen, dass die Kantenerkennungsschwelle Leitungen mit dem Doppelpunkt unmittelbar benachbart sind sowohl an den oberen und unteren Grenzen des Colongewebe (dies kann für jeden Video optimiert werden durch Verändern Detektionsschwellenwerten auf der Steuertafel). Stellen Sie sicher, dass die Kantenerkennung lines sind entlang der Länge des Dickdarms Bild kontinuierlich durch den Kontrast anpassen und Helligkeit über das Bedienfeld. </li><li> Geben Sie den vollständigen Länge des Dickdarms (mm) in der Breite Dialogfeld (wie in Schritt aufgezeichnet 2.7). Wählen Sie dann &quot;Heatmap erzeugen&quot;. </li><li> In der Pop-up-Fenster, wählen Sie einen Speicherort für die Datei einen Dateinamen für die Raum-Zeit-Karte gespeichert werden und zu spezifizieren. </li><li> Wählen Sie den &quot;.su2 &#39;Format und wählen Sie&quot; In den Warteschlange &quot;. Hinweis: .su2 Format komprimiert die Daten auf eine kleinere Dateigröße und mehrere Video-Dateien können in der Warteschlange hinzugefügt werden. </li><li> Wählen Sie &quot;Start Erkennung&quot; auf raumzeitliche Karten erzeugen. </li></ol></li></ol> 5. Analyse der Raum-Zeit-Karten <ol><li> Nutzen Raum-Zeit-Karten-Parameter zu schätzen, wie Frequenz, Ausbreitungsgeschwindigkeit, Länge und Dauer der CMMCs, Darmdurchmesser und dem Punkt der Initiierung und Leitung von Kontraktionen. <ol><li> So starten Raum-Zeit-AnalyseKarten, Typ &#39;analyse2 &quot;im Befehlsfenster, wie im vorherigen Abschnitt beschrieben. Anstelle von &quot;Kantenerkennung&quot;, wählen Sie die &quot;Heat Kartenanalyse&quot; -Taste. </li><li> Offene Raumzeit-Map-Dateien (.su2 Dateien), indem Sie die &quot;Dateien hinzufügen&quot; Tab und die Position des zuvor erhaltenen .su2 Dateien angeben. </li><li> Sobald der Raum-Zeit-Karte auf dem Bildschirm sichtbar ist, geben Sie einen Farbbereich auf dem Bedienfeld gewährleistet, dass die Mindest auf 1 gesetzt ist. Man beachte, dass die maximale 5-10 gemäß der Kontraktionsfähigkeit des Gewebes reichen kann. </li><li> Wählen Sie &#39;Lock Farbpalette &quot;, um sicherzustellen, alle Karten aus einem einzigen Experiment werden unter den gleichen Bedingungen untersucht. </li><li> Stellen Sie sicher, dass der Zeitrahmen Einstellungen für alle Raum-Zeit-Karten von einem bestimmten Experiment konstant sind. </li></ol></li><li> Um CMMC Frequenz zu bestimmen, manuell Kontraktionen zählt, die mehr als 50% der Länge des Dickdarms durchlaufen. Diese Kontraktionen kann visualized als rot / orange Streifen (Standard HSV-Farbindex) auf dem Raum-Zeit-Karte (Abbildung 2 für ein Beispiel siehe). Andere Kontraktionen, die kürzer sind oder nicht ausbreiten kann auch identifiziert und quantifiziert werden. </li><li> Falls gewünscht, führen weitere Analyse mit einer höheren Auflösung von diesen Karten. Beispielsweise detaillierten Eigenschaften einschließlich der Geschwindigkeit und der Dauer jeder Kontraktion untersucht werden. <ol><li> Um die Geschwindigkeit und Dauer zu messen, wählen Sie die &quot;Anmerken Kontraktionswellen&quot; auf der Heatmap-Analyse Bedienfeld. </li><li> Als nächstes vergrößern durch Klicken auf die Taste &quot;Zoom&quot; auf jeden ZMMK in und den interessierenden Bereich auswählen. Dann wählen Sie die &quot;Manuelle kommentieren&quot;, um jeder Kontraktion zu annotieren mit Hilfe der Maus eine Linie von der die meisten Ausgangsposition bis zum Ende jeder Kontraktion zu ziehen. Dieses Verfahren verwendet werden können, um die scheinbare Ausbreitungsgeschwindigkeit und Dauer der Streckungen zu messen, die (zum Beispiel zu verbreiten scheinen, sehen einal Ende Karten in 2A, 2B). Hinweis: Die Daten für Geschwindigkeit und Dauer unter dem Ergebnisfenster angezeigt. Diese Werte können durch Auswahl des &quot;Exportdaten&quot; in eine Tabellenkalkulation von Interesse übertragen werden. Unerwünschte Kommentare können durch Klicken auf den &quot;Entfernen ausgewählten Anmerkungen&quot; Taste entfernt werden. </li></ol></li><li> Falls gewünscht, verwenden, um die x und y Koordinaten der Raum-Zeit-Karten (Zeit und Position entlang des Dickdarms, beziehungsweise) die Position der Einleitung kleinen Kontraktionen oder CMMCs zu bestimmen. </li><li> In ähnlicher Weise, um Intervalle zwischen den Kontraktionen zu bestimmen und nutzen die &quot;Beschriften&quot; Funktion, die Dauer zwischen den Wehen zu messen. Wie zuvor können diese Ergebnisse in eine Tabelle exportiert werden, indem die &quot;Exportdaten&quot; auswählen. </li><li> Um den Ruhe Darm Breite zu messen, wählen Sie die &quot;Take Querschnitt&quot; auf der Heatmap-Analyse-Panel. <ol><li> Wählen Sie &quot;Add9; zum zeitlichen Querschnitte Panel. Doppelklicken Sie an einer beliebigen Stelle innerhalb der Karte eine horizontale Linie auf dem Wärme Karte überlagert zu erzeugen. Gut Durchmesser Daten werden nun in einem neuen Fenster angezeigt. </li><li> Um gut Durchmesser messen, setzen Sie den Cursor auf einer Spitze und angrenzende Mulde durchschnittlich gut Breite für einen bestimmten experimentellen Bedingungen zu erhalten. Veränderungen im Darm Durchmesser zwischen experimentellen Bedingungen verglichen werden. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Powell, A. K., O'Brien, S. D., Fida, R., Bywater, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+integrity+is+essential+for+the+propagation+of+colonic+migrating+motor+complexes+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Neurogastroenterol+Motil%22%5BJournal%5D)">Neural integrity is essential for the propagation of colonic migrating motor complexes in the mouse.</a> Neurogastroenterol Motil. 14, 495-504 (2002).</li>
<li>Furness, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+enteric+nervous+system+and+neurogastroenterology%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Gastroenterol+Hepatol%22%5BJournal%5D)">The enteric nervous system and neurogastroenterology.</a> Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 9, 286-294 (2012).</li>
<li>Gwynne, R. M., Bornstein, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+underlying+nutrient-induced+segmentation+in+isolated+guinea+pig+small+intestine%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Gastrointest+Liver+Physiol%22%5BJournal%5D)">Mechanisms underlying nutrient-induced segmentation in isolated guinea pig small intestine.</a> Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 292, G1162-G1172 (2007).</li>
<li>Bush, T. G., Spencer, N. J., Watters, N., Sanders, K. M., Smith, T. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spontaneous+migrating+motor+complexes+occur+in+both+the+terminal+ileum+and+colon+of+the+C57BL%2F6+mouse+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Auton+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Spontaneous migrating motor complexes occur in both the terminal ileum and colon of the C57BL/6 mouse in vitro.</a> Auton Neurosci. 84, 162-168 (2000).</li>
<li>Fida, R., Lyster, D. J., Bywater, R. A., Taylor, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Colonic+migrating+motor+complexes+%28CMMCs%29+in+the+isolated+mouse+colon%5BTitle%5D)+AND+%22Neurogastroenterol+Motil%22%5BJournal%5D)">Colonic migrating motor complexes (CMMCs) in the isolated mouse colon.</a> Neurogastroenterol Motil. 9, 99-107 (1997).</li>
<li>Neal, K. B., Parry, L. J., Bornstein, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strain-specific+genetics%2C+anatomy+and+function+of+enteric+neural+serotonergic+pathways+in+inbred+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Strain-specific genetics, anatomy and function of enteric neural serotonergic pathways in inbred mice.</a> J Physiol. 587, 567-586 (2009).</li>
<li>Roberts, R. R., Murphy, J. F., Young, H. M., Bornstein, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+colonic+motility+in+the+neonatal+mouse-studies+using+spatiotemporal+maps%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Gastrointest+Liver+Physiol%22%5BJournal%5D)">Development of colonic motility in the neonatal mouse-studies using spatiotemporal maps.</a> Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 292, G930-G938 (2007).</li>
<li>Spencer, N. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Control+of+migrating+motor+activity+in+the+colon%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Control of migrating motor activity in the colon.</a> Curr Opin Pharmacol. 1, 604-610 (2001).</li>
<li>Spencer, N. J., Bywater, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enteric+nerve+stimulation+evokes+a+premature+colonic+migrating+motor+complex+in+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Neurogastroenterol+Motil%22%5BJournal%5D)">Enteric nerve stimulation evokes a premature colonic migrating motor complex in mouse.</a> Neurogastroenterol Motil. 14, 657-665 (2002).</li>
<li>Roberts, R. R., Bornstein, J. C., Bergner, A. J., Young, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disturbances+of+colonic+motility+in+mouse+models+of+Hirschsprung%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Gastrointest+Liver+Physiol%22%5BJournal%5D)">Disturbances of colonic motility in mouse models of Hirschsprung's disease.</a> Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 294, G996-G1008 (2008).</li>
<li>Tough, I. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endogenous+peptide+YY+and+neuropeptide+Y+inhibit+colonic+ion+transport%2C+contractility+and+transit+differentially+via+Y%281%29+and+Y%282%29+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Endogenous peptide YY and neuropeptide Y inhibit colonic ion transport, contractility and transit differentially via Y(1) and Y(2) receptors.</a> Br J Pharmacol. 164, 471-484 (2011).</li>
<li>Hennig, G. W., Costa, M., Chen, B. N., Brookes, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+analysis+of+peristalsis+in+the+guinea-pig+small+intestine+using+spatio-temporal+maps%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Quantitative analysis of peristalsis in the guinea-pig small intestine using spatio-temporal maps.</a> J Physiol. 517 (Pt 2), 575-590 (1999).</li>
<li>Hoffman, J. M., Brooks, E. M., Mawe, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gastrointestinal+Motility+Monitor+%28GIMM%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Gastrointestinal Motility Monitor (GIMM).</a> J Vis Exp. , (2010).</li>
<li>Smith, T. K., Gershon, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rebuttal+from+Terence+K.+Smith+and+Michael+D.+Gershon%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Rebuttal from Terence K. Smith and Michael D. Gershon.</a> J Physiol. 593, 3233(2015).</li>
<li>Spencer, N. J., Sia, T. C., Brookes, S. J., Costa, M., Keating, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CrossTalk+opposing+view%3A+5-HT+is+not+necessary+for+peristalsis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">CrossTalk opposing view: 5-HT is not necessary for peristalsis.</a> J Physiol. 593, 3229-3231 (2015).</li>
<li>Tabuchi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+neuroligin-3+mutation+implicated+in+autism+increases+inhibitory+synaptic+transmission+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">A neuroligin-3 mutation implicated in autism increases inhibitory synaptic transmission in mice.</a> Science. 318, 71-76 (2007).</li>
<li>Jamain, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mutations+of+the+X-linked+genes+encoding+neuroligins+NLGN3+and+NLGN4+are+associated+with+autism%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Genet%22%5BJournal%5D)">Mutations of the X-linked genes encoding neuroligins NLGN3 and NLGN4 are associated with autism.</a> Nat Genet. 34, 27-29 (2003).</li>
<li>Chaidez, V., Hansen, R. L., Hertz-Picciotto, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gastrointestinal+problems+in+children+with+autism%2C+developmental+delays+or+typical+development%5BTitle%5D)+AND+%22J+Autism+Dev+Disord%22%5BJournal%5D)">Gastrointestinal problems in children with autism, developmental delays or typical development.</a> J Autism Dev Disord. 44, 1117-1127 (2014).</li>
<li>Ibrahim, S. H., Voigt, R. G., Katusic, S. K., Weaver, A. L., Barbaresi, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Incidence+of+gastrointestinal+symptoms+in+children+with+autism%3A+a+population-based+study%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatrics%22%5BJournal%5D)">Incidence of gastrointestinal symptoms in children with autism: a population-based study.</a> Pediatrics. 124, 680-686 (2009).</li>
<li>Kohane, I. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+co-morbidity+burden+of+children+and+young+adults+with+autism+spectrum+disorders%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">The co-morbidity burden of children and young adults with autism spectrum disorders.</a> PloS One. 7, e33224(2012).</li>
<li>McElhanon, B. O., McCracken, C., Karpen, S., Sharp, W. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gastrointestinal+symptoms+in+autism+spectrum+disorder%3A+a+meta-analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatrics%22%5BJournal%5D)">Gastrointestinal symptoms in autism spectrum disorder: a meta-analysis.</a> Pediatrics. 133, 872-883 (2014).</li>
<li>Peters, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rigid-compulsive+behaviors+are+associated+with+mixed+bowel+symptoms+in+autism+spectrum+disorder%5BTitle%5D)+AND+%22J+Autism+Dev+Disord%22%5BJournal%5D)">Rigid-compulsive behaviors are associated with mixed bowel symptoms in autism spectrum disorder.</a> J Autism Dev Disord. 44, 1425-1432 (2014).</li>
<li>Ellis, M., Chambers, J. D., Gwynne, R. M., Bornstein, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serotonin+and+cholecystokinin+mediate+nutrient-induced+segmentation+in+guinea+pig+small+intestine%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Gastrointest+Liver+Physiol%22%5BJournal%5D)">Serotonin and cholecystokinin mediate nutrient-induced segmentation in guinea pig small intestine.</a> Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 304, G749-G761 (2013).</li>
<li>Parracho, H. M., Bingham, M. O., Gibson, G. R., McCartney, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differences+between+the+gut+microflora+of+children+with+autistic+spectrum+disorders+and+that+of+healthy+children%5BTitle%5D)+AND+%22J+Med+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Differences between the gut microflora of children with autistic spectrum disorders and that of healthy children.</a> J Med Microbiol. 54, 987-991 (2005).</li>
<li>Buie, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation%2C+diagnosis%2C+and+treatment+of+gastrointestinal+disorders+in+individuals+with+ASDs%3A+a+consensus+report%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatrics%22%5BJournal%5D)">Evaluation, diagnosis, and treatment of gastrointestinal disorders in individuals with ASDs: a consensus report.</a> Pediatrics. 125, Suppl 1. S1-S18 (2010).</li>
<li>Etherton, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autism-linked+neuroligin-3+R451C+mutation+differentially+alters+hippocampal+and+cortical+synaptic+function%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Autism-linked neuroligin-3 R451C mutation differentially alters hippocampal and cortical synaptic function.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 108, 13764-13769 (2011).</li>
<li>Etherton, M. R., Tabuchi, K., Sharma, M., Ko, J., Sudhof, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+autism-associated+point+mutation+in+the+neuroligin+cytoplasmic+tail+selectively+impairs+AMPA+receptor-mediated+synaptic+transmission+in+hippocampus%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">An autism-associated point mutation in the neuroligin cytoplasmic tail selectively impairs AMPA receptor-mediated synaptic transmission in hippocampus.</a> EMBO J. 30, 2908-2919 (2011).</li>
<li>Zhang, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+neurexin+and+neuroligin+in+the+enteric+nervous+system+and+their+down-regulated+expression+levels+in+Hirschsprung+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Biol+Rep%22%5BJournal%5D)">Expression of neurexin and neuroligin in the enteric nervous system and their down-regulated expression levels in Hirschsprung disease.</a> Mol Biol Rep. 40, 2969-2975 (2013).</li>
<li>Wang, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+and+significance+of+neuroligins+in+myenteric+cells+of+Cajal+in+Hirschsprung%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Expression and significance of neuroligins in myenteric cells of Cajal in Hirschsprung's disease.</a> PloS One. 8, e67205(2013).</li>
<li>Yang, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+down-regulation+of+neuroligin-2+and+the+correlative+clinical+significance+of+serum+GABA+over-expression+in+Hirschsprung%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Neurochem+Res%22%5BJournal%5D)">The down-regulation of neuroligin-2 and the correlative clinical significance of serum GABA over-expression in Hirschsprung's disease.</a> Neurochem Res. 39, 1451-1457 (2014).</li>
<li>Roberts, R. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+first+intestinal+motility+patterns+in+fetal+mice+are+not+mediated+by+neurons+or+interstitial+cells+of+Cajal%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">The first intestinal motility patterns in fetal mice are not mediated by neurons or interstitial cells of Cajal.</a> J Physiol. 588, 1153-1169 (2010).</li>
<li>Barnes, K. J., Spencer, N. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Can+colonic+migrating+motor+complexes+occur+in+mice+lacking+the+endothelin-3+gene%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Exp+Pharmacol+Physiol%22%5BJournal%5D)">Can colonic migrating motor complexes occur in mice lacking the endothelin-3 gene?</a> Clin Exp Pharmacol Physiol. 42, 485-495 (2015).</li>
<li>Chambers, J. D., Bornstein, J. C., Thomas, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiple+neural+oscillators+and+muscle+feedback+are+required+for+the+intestinal+fed+state+motor+program%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Multiple neural oscillators and muscle feedback are required for the intestinal fed state motor program.</a> PloS One. 6, e19597(2011).</li>
<li>Heredia, D. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Important+role+of+mucosal+serotonin+in+colonic+propulsion+and+peristaltic+reflexes%3A+in+vitro+analyses+in+mice+lacking+tryptophan+hydroxylase+1%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Important role of mucosal serotonin in colonic propulsion and peristaltic reflexes: in vitro analyses in mice lacking tryptophan hydroxylase 1.</a> J Physiol. 591, 5939-5957 (2013).</li>
<li>Chambers, J. D., Bornstein, J. C., Thomas, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insights+into+mechanisms+of+intestinal+segmentation+in+guinea+pigs%3A+a+combined+computational+modeling+and+in+vitro+study%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Gastrointest+Liver+Physiol%22%5BJournal%5D)">Insights into mechanisms of intestinal segmentation in guinea pigs: a combined computational modeling and in vitro study.</a> Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 295, G534-G541 (2008).</li>
<li>Huizinga, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+origin+of+segmentation+motor+activity+in+the+intestine%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">The origin of segmentation motor activity in the intestine.</a> Nat Commun. 5, 3326(2014).</li>
<li>Neild, T. O., Shen, K. Z., Surprenant, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vasodilatation+of+arterioles+by+acetylcholine+released+from+single+neurones+in+the+guinea-pig+submucosal+plexus%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Vasodilatation of arterioles by acetylcholine released from single neurones in the guinea-pig submucosal plexus.</a> J Physiol. 420, 247-265 (1990).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen

Mit diesem Video-Imaging-Technik, wurde ZMMK Frequenz als Hinweis auf Kolonmotilität gemessen in Wildtyp und NL3 R451C Mäusen, einem Mausmodell für Autismus-Spektrum-Störung 17. Unsere Ergebnisse zeigen eine Verringerung in der Anzahl der CMMCs in mutierten Mäusen NL3 R451C im Vergleich zu Wildtypmäusen in Gegenwart des 5HT-Rezeptorantagonist Tropisetron 3/4 darauf hindeutet, dass NL3 R451C Mäusen eine erhöhte Empfindlichkeit gegen Tropisetron aufweisen. Wir schlage...

Die enterische Nervensystem (ENS) ist die intrinsische neuronale Netzwerk des Gastrointestinaltraktes und moduliert verschiedene Funktionen wie Verdauung von Darminhalt, der Absorption von Nährstoffen und die Sekretion und Resorption von Flüssigkeit. Neuronen der ENS sind in den myentericus und submuköse Plexus entfernt. Der Plexus myentericus spielt eine wichtige Rolle gastrointestinale Motilität 1 während das submuköse Plexus bei der Regulierung ist bei der Steuerung der Sekretion 2,3 primär beteiligt. Der Plexus myentericus zwischen den Längs- und Ringmuskelschichten des Magen-Darm-Wand befindet. Die Kontraktionsaktivität der glatten Muskelschichten der Darmwand erleichtert die primären Funktionen des Magen-Darm-Trakt durch Mischen und Treibdarminhalt über die Länge des Darms 3. Obwohl die extrinsische Nervenversorgung an den Gastrointestinaltrakt vom CNS trägt zu Magen-Darm-Funktion in vivoIst das ENS Magen-Darm-Funktion der Regulierung unabhängig in der Lage. Diese einzigartige Eigenschaft ermöglicht die funktionelle Untersuchung von Darm neuronalen Schaltkreisen und ihren Beitrag zu Magen-Darm-Motilität ex vivo. Colon-Migration Motor-Komplexe (CMMCs) sind spontan, neurogene Ereignisse, die die vorherrschende Motor Muster in isolierten Maus-Doppelpunkt in Abwesenheit von fäkalen Pellets 9.4 eingehalten werden. CMMCs als rhythmische Kontraktionen definiert, die entlang einer horizontalen Distanz propagieren, die mindestens die Hälfte der Gesamtlänge des Dickdarms (dh vom Blinddarm zum Rektum) 10. Die Beziehung zwischen CMMCs und die Kontraktionsmuster, die fäkalen Pellets treiben wird noch eindeutig festgestellt werden, jedoch einige pharmakologische Unterschiede haben 11 berichtet. Dennoch ist die Fähigkeit des ENS unabhängig von dem CNS und die Existenz von neuralen-vermittelten Bewegungsmuster in der IS zu funktionierenolated Doppelpunkt ist ein idealer Testsystem Störungen der Motilität zu untersuchen, die aus Basis ENS Dysfunktion. Die Spontaneität von gastrointestinalen motorischen Mustern ermöglicht funktionelle Veränderungen in Reaktion auf pharmakologische Reize bewertet werden. Der Einsatz von Video-Imaging und Raum-Zeit-Mapping wurde zuerst 12 kleine Darmperistaltik bei Meerschweinchen quantitativ zu untersuchen entwickelt. Hier wird ein ex vivo-Verfahren wird beschrieben, dass die Studie von Maus Kolonmotilität Muster mit Videobildverarbeitung und Analyse dieser Aufnahmen ermöglicht hochauflösenden zu konstruieren (~ 100 &amp; mgr; m, 33 msec) Karten von Kolon-Durchmesser als Funktion der Position entlang des Dickdarms und der Zeit (Raum-Zeit-Karten). Mit In-House-Kantenerkennungssoftware (Analyse2; auf Anfrage), Daten aus voller Länge Vertrags Kolon-Segmente in Echtzeit verarbeitet werden für jedes Experiment Raum-Zeit-Karten zu erzeugen. In diesem Schritt, video (AVI-Dateien) sind SummaRized und konvertierte zum Raum-Zeit-Karten Analyse2 verwenden. Raum-Zeit-Karten (Abbildung 2) Kontraktilität im Laufe der Zeit zeigen und die Messung mehrerer Parameter einschließlich Ausbreitungsgeschwindigkeit, Größe, Länge und Dauer ermöglichen. Gut Durchmesser wird auch während der gesamten Dauer des Experiments als Maß für die Gesamt Kontraktilität des Gewebesegments aufgezeichnet. Dieses Verfahren kann angewendet werden, um Unterschiede in der Initiationspunkt der kontraktilen Komplexe zu identifizieren, die veränderte enterischen neuronalen Konnektivitäts hinweisen könnte. Ein ähnliches Video-Imaging-Protokoll entwickelt Pellet Vortrieb bei Meerschweinchen zu beurteilen hat 13 aber hier berichtet worden, wir die Anwendung des Ansatzes Videobild skizzieren zur Quantifizierung der spontanen Kolonmotilität (dh in Abwesenheit von Pellets). Wir bieten auch detaillierte Informationen in der Präparation und Vorbereitung von Magen-Darm-Gewebe für den Video-Imaging-Ansatz zu unterstützen. DiesProtokoll stellt Forscher mit einem zugänglichen und leicht repliziert Werkzeug für magensaftresistente neuronalen Kontrolle von Magen-Darm-Funktion in Tiermodellen von Krankheiten, einschließlich genetischer Mausmodelle zu analysieren. Die Videoabbildungstechnik ermöglicht die Analyse von Kolonmotilität in Reaktion auf verschiedene pharmakologische Mittel. Medikamente können über das Darmlumen oder das Organbad außerhalb des Kolon Zubereitung verabreicht werden. Verschiedene Regionen der Maus Gastrointestinaltrakt zeigen spezifische Motilität Muster wie Dünndarmsegmentierung und CMMCs im Dickdarm. Diese Technik wurde verwendet, um Stamm Unterschiede in Dünndarmfunktion identifizieren; differentielle Empfindlichkeit zu 5-HT 3 und 5-HT 4 -Antagonisten wurden im Jejunum von Balb / c und C57 / BL6-Mäusen durch die polymorphe Natur der TPH2 Gen exprimiert in den beiden Stämmen 6 beobachtet. Die Wirkung von 5-HT-Hemmung auf die Motilität bleibt conumstritten, da widersprüchliche Daten über die Bedeutung des endogenen 5-HT auf colonic Peristaltik und CMMCs 14,15 gemeldet. Veränderungen in der Motilität vor und während der Entwicklung postnatal 7, und die Wirkungen der Gen-Mutationen auf die gastrointestinale Motilität in Tiermodellen der Krankheit 10 kann auch durch die Verwendung von Videoabbildungssucht werden. Hier veranschaulichen wir die Verwendung des Verfahrens für eine Studie von Kolonmotilität im NL3 R451C Mausmodell von Autismus, die eine Missense-Mutation in dem Gen exprimiert NLGN3 Codieren des synaptischen Adhäsionsprotein Neuroligin-3 16. Diese Mutation wurde zum ersten Mal mit der Diagnose Autismus-Spektrum-Störung bei Patienten identifiziert (ASD) 17, die stark mit GI Dysfunktion 18-22 verbunden ist. Wir untersuchten, ob die NL3 R451C synaptischen Mutation neuronalen Ausgänge im ENS mit dem Video-Imaging-Technik betrifft. Wir präsentieren Daten CMMCs an der Basislinie und in Reaktion auf die serotonerge 5H CharakterisierungT 4.3-Rezeptor-Antagonisten Tropisetron im NL3 R451C Mausmodell für Autismus.

<table><tbody><tr><td>Reagenzien</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>NaCl (MW: 58,44)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S7653-250G</td><td></td></tr><tr><td>KCl (MW: 74,55)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9333-500G</td><td></td></tr><tr><td>NaH2PO4.2H2O (MW: 156,01)</td><td>Chem Supply</td><td>471-500G</td><td></td></tr><tr><td>MgSO4 .7H20 (MW: 246.48)</td><td>Chem Supply</td><td>MA048</td><td></td></tr><tr><td>CaCl2.2H2O (MW: 147.02)</td><td>Chem Supply</td><td>CA033</td><td></td></tr><tr><td>D-Glucose wasserfrei (MW: 180.16)</td><td>Chem Supply</td><td>GA018-500G</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO3 (MW: 84.01)</td><td>Chem Supply</td><td>GA018-500G</td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Unternehmen</td><td>Katalognummer</td><td>Kommentare</strong</td></tr><tr><td>>Materialien</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zweikammer-Orgelbad Maße: 14 cm x 8 cm x 3 cm</td><td>Maßanfertigung</td><td></td><td>Labor direkt kontaktieren&nbsp;</td></tr><tr><td>&nbsp; 732 MEHRZWECK-DICHTSTOFF KLAR</td><td>Dow Corning Australia Pty Ltd</td><td>1890573</td><td></td></tr><tr><td>SYLGARD 184 SILIKONELASTOMER-KIT&nbsp;</td><td>Dow Corning Australia Pty Ltd</td><td>1064291</td><td></td></tr><tr><td>STOPCOCK 3 WAY FEM-ML L/LOCK S</td><td>Terumo Medical Corporation</td><td>0912-2006</td><td></td></tr><tr><td>SPRITZEN mit Luer-Lock-Spitzen 50 ml, 20 ml, 10 ml</td><td>Terumo Medical Corporation</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>1,57 mm (ID) x 3,16 mm (OD) - Silastic Schlauch</td><td>Masterflex</td><td>508-008</td><td></td></tr><tr><td>1,02 mm (ID) x 2,16 mm (AD) - Silastic Schlauch</td><td>Masterflex</td><td>508-005</td><td></td></tr><tr><td>1,50 mm (ID) x 2,50 mm (AD) - Silastic Schlauch</td><td>Masterflex</td><td>508-007</td><td></td></tr><tr><td>1,60 mm (ID) - Platingehärteter Silikonschlauch</td><td>Masterflex</td><td>96410 - 14</td><td></td></tr><tr><td>4,40 mm (ID) - Platingehärteter Silikonschlauch</td><td>Masterflex</td><td>96410 - 15&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>3,10 mm (ID) - Platingehärteter Silikonschlauch</td><td>Masterflex</td><td>96410 -16</td><td></td></tr><tr><td>Graduierte Laborglasflaschen - 500 ml&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>Thermofisher Wissenschaftlich&nbsp;</td><td>100-400</td><td></td></tr><tr><td>CHEMISCHER GUMMISTOPFEN 57 x 65 mm&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>CHEMISCHER GUMMISTOPFEN 29 mm x 32 mm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Warmwasserbereiter (Thermoregler) &nbsp;</td><td>Ratek&nbsp;</td><td>TH7000&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Logitech Webcam</td><td>Logitech</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>Katalognummer</td><td><>Kommentare</strong</td></tr><tr><td>>Software</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Virtual Dub - 1.9</td><td>11 virtualdub.org</td><td></td><td></td></tr><tr><td>MATLAB R2012a&nbsp;</td><td>Graph Pad</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Logitech Webcam Software</td><td>Logitech</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

video imaging und raum-zeit-karten zur analyse gastrointestinale motilität bei mäusen

Video Imaging and Spatiotemporal Maps to Analyze Gastrointestinal Motility in Mice

Die enterische Nervensystem (ENS) spielt eine wichtige Rolle gastrointestinale (GI) Motilität bei der Regulierung und unabhängig von dem zentralen Nervensystem wirken kann. Änderungen in der ENS-Funktion sind eine Hauptursache für gastrointestinale Symptome und Krankheit und kann zur Anzeige zu gastrointestinalen Symptome bei neuropsychiatrischen Störungen, einschließlich Autismus beitragen. Es ist bekannt, dass isolierte Kolonabschnitten spontan, rhythmische Kontraktionen bekannt als Kolon-Migration Motor-Komplexe (CMMCs) erzeugen. Ein Verfahren, das enterische neuronale Regulation der CMMCs in Ex-vivo-Präparate von Maus Doppelpunkt zu analysieren beschrieben. Der Doppelpunkt wird aus dem Tier herausgeschnitten und gespült fäkale Inhalte zu entfernen, bevor in einem Organbad kanüliert werden. Die Daten werden über eine Videokamera über dem Organbad positioniert und konvertierte zum hochauflösenden Raum-Zeit-Karten über ein Inhouse-Software-Paket erworben. Mit dieser Technik Muster Grundlinie Kontraktions und pharmakologischen Wirkungen auf ENS Funktion in Doppelpunkt segments kann über 3-4 Stunden verglichen werden. Zusätzlich Ausbreitungslänge und der Geschwindigkeit der CMMCs kann sowie Änderungen in gut Durchmesser und Kontraktionsfrequenz aufgezeichnet werden. Diese Technik ist nützlich, um gastrointestinale Motilität Muster in transgenen Mausmodelle charakterisieren (und in anderen Spezies, einschließlich Ratten und Meerschweinchen). Auf diese Weise pharmakologisch in CMMCs induzierten Veränderungen sind in Wildtyp-Mäusen aufgezeichnet und im Neuroligin-3 R451C Mausmodell für Autismus. Darüber hinaus kann diese Technik auf andere Regionen des GI-Trakts einschließlich der Duodenum, Jejunum und Ileum und in verschiedenen Entwicklungsalter bei Mäusen angewendet werden.

Bis zu 90% der Patienten mit ASD eine Reihe von Magen-Darm-Erkrankungen auftreten, wie Durchfall und Verstopfung 18,24,25. Allerdings sind die Ursachen dieser Magen-Darm-Probleme nicht bekannt. Viele Patienten mit ASD identifizierten Mutationen sind im Zusammenhang mit der synaptischen Proteinen Änderungen und Störungen in der synaptischen Übertragung oder Funktion beiträgt. Eine solche Mutation in dem Gen, das für das Zelladhäsionsmolekül neuroligin-3 (NL3 R451C), wurde in be...

Dieser Artikel beschreibt eine Videobildgebungstechnik und hochauflösende raumzeitliche Kartierung, um Veränderungen in der neuronalen Regulation der Dickdarmmotilität bei erwachsenen Mäusen zu identifizieren. Subtile Auswirkungen auf die gastrointestinale Funktion (GI) können mit diesem Ansatz in isolierten Gewebepräparaten nachgewiesen werden, um unser Verständnis von GI-Erkrankungen zu verbessern.

Video Imaging und Raum-Zeit-Karten zur Analyse Gastrointestinale Motilität bei Mäusen

The enteric nervous system (ENS) plays an important role in regulating gastrointestinal (GI) motility and can function independently of the central ...

Das übergeordnete Ziel dieser Technik besteht darin, Veränderungen in der neuronalen Regulation der kolonischen Motilität bei Mäusen mittels Videobildgebung zu identifizieren. Diese Methode kann helfen, zentrale Fragen aus dem Bereich der enterischen Neurowissenschaften zu beantworten, beispielsweise, ob subtile genetische Mutationen in neuronalen Genen die kolonische Motilität beeinflussen. Der wesentliche Vorteil dieser Technik liegt darin, dass das Gewebe eine Zyste darstellt, die unabhängig von Einflüssen des zentralen Nervensystems ist, wodurch die Untersuchung der Beteiligung des enterischen Nervensystems an der Kontrolle der gastrointestinalen Motilität ermöglicht wird.Diese Technik lässt sich auf die Therapie neurodevelopmentaler Erkrankungen wie Autismus ausdehnen, da Genmutationen, die die synaptische Funktion im Gehirn verändern, möglicherweise auch die Darmmotilität beeinflussen. Beginnen Sie damit, mit Hilfe von anatomischen Pinzette und Schere einen Schnitt durch die Epidermis oberhalb der unteren Bauchmuskelschichten zu führen. Öffnen Sie die Bauchhöhle entlang der Mittellinie bis zum Brustbein.Befeuchten Sie das Gewebe mit physiologischer Kochsalzlösung und heben Sie mit der Pinzette vorsichtig den Blinddarm vier bis fünf Zentimeter über den Bauchraum an. Dann schneiden Sie mit feinen Dissektionscheren das Mesenterium ab, wobei darauf geachtet werden muss, das Magen-Darm-Gewebe nicht zu berühren, zu dehnen oder zu verletzen. Entfernen Sie die Harnblase, die Hoden und jegliches andere überschüssige Gewebe.Danach mit gro&szlig;en anatomischen Scheren zwei vertikale Einschnitte etwa 0,5 Zentimeter seitlich der Mittellinie in das Beckenbein auf jeder Seite des Kolons machen und mit der feinen Schere das Rektum vom angrenzenden Beckengewebe l&ouml;sen. Entfernen Sie das Mesenterium vom Kolon und sp&uuml;len Sie das gesamte Kolongewebe in einem Becher mit physiologischer Kochsalzl&ouml;sung ab. Um F&auml;kalpellets und andere Darminhalte zu entfernen, schneiden Sie zun&auml;chst etwa einen Zentimeter vom Ende einer 200-Mikroliter-Pipette ab und verbinden Sie die Pipette mit einer mit physiologischer Kochsalzl&ouml;sung gef&uuml;llten 5-Milliliter-Spritze.Danach, nachdem das Caecum und das Rektum entfernt wurden, wird eine Insektennadel am proximalen Ende des Kolons angebracht, wo die Streifungen in der Mukosa sichtbar sind, um das Gewebe zu orientieren. Nun wird das Gewebe am proximalen Ende vorsichtig gehalten, die Pipettenspitze in das Lumen eingeführt und das Salin über den Kolon in einen Abfallbehälter gespült. Anschließend wird mit derselben Spritze und derselben Pipettenspitze jeglicher Schmutz aus der an ein zweikammeriges Organbad angeschlossenen Tubing mit frischer physiologischer Salinlösung ausgespült.Stellen Sie das Organgefäß so ein, dass die Kammern kontinuierlich mit physiologischer Kochsalzlösung, die mit Carbogen durchbläst wird, überspült werden, und verwenden Sie eine Temperatursonde, um regelmäßig zu überprüfen, dass die Temperatur der Kochsalzlösung zwischen 33 und 37 Grad Celsius bleibt. Verwenden Sie einen Gummistöpsel, durch dessen Mitte ein Glasrohr mit einem Innendurchmesser von fünf Millimetern geführt ist, um den Druck im Zuflussreservoir aufrechtzuerhalten. Tauchen Sie anschließend ein fünf bis sieben Zentimeter langes Stück Colon vollständig in die Kammer des Organgefäßes ein und führen Sie mit Hilfe von Pinzette und handelsüblichem Baumwollnähgarn das proximale Ende des Colon mit dem Einlassrohr und das distale Ende des Colon mit dem Auslassrohr katheterisierend zusammen.Nach der Bestimmung der Ausgangsentfernung zwischen der proximalen und distalen Kanülierung des Kolons wird das Gewebe 30 Minuten lang in physiologischer Kochsalzlösung equilibriert. Um die Darmbewegungen aufzuzeichnen, während das Kolon sich akklimatisiert, positionieren Sie eine Videokamera 10 bis 15 Zentimeter über dem Organtrog auf einem standardmäßigen Laborstativ und richten Sie die geeignete Videoaufnahmesoftware ein. Sobald die Kamera bereit ist, nehmen Sie vier 15-minütige Videosegmente des Kolons unter Kontrollbedingungen auf.Anschließend wird die Substanz der Wahl für 30 bis 60 Minuten in das Organkreislaufsystem überströmt, wobei weitere vier 15-Minuten-Videosegmente aufgezeichnet werden. Abschließend ersetzt man die Behandlungslösung durch frische physiologische Kochsalzlösung und nimmt während der einstündigen Ausspülphase vier weitere 15-Minuten-Videosegmente auf. Anschließend können räumlich-zeitliche Karten des Kolons als Reaktion auf die verschiedenen Behandlungsphasen erstellt werden.Um zu beurteilen, ob synaptische Mutationen kolonale wandernde motorische Komplexe, oder CMMC, verändern, wenn das enterische Nervensystem pharmakologisch beeinflusst wird, wurden in diesem Experiment die 5-HT3- und 4-Rezeptorantagonisten Tropisetron dem Pufferbad der Kolonpräparation zugesetzt. In Gegenwart von Tropisetron zeigten NL3R451C-Mäuse eine Abnahme der CMMC-Frequenz im Vergleich zu ihren Wildtyp-Wurfgenossen. Obwohl unter kontrollierten Bedingungen keine signifikanten Unterschiede zwischen der Kontraktilität von Wildtyp und NL3R451C beobachtet wurden, reduzierte Tropisetron die CMMC-Frequenz sowohl bei Wildtyp- als auch bei NL3R451C-Mäusen signifikant.Außerdem hatte Tropisetron einen stärkeren Einfluss auf die Frequenz der CMMC bei NL3R451C-Mäusen im Vergleich zu Wildtyp-Tieren. Sobald die Technik beherrscht ist, kann sie bei korrekter Durchführung innerhalb von vier Stunden abgeschlossen werden. Achten Sie beim Anwenden dieser Technik darauf, dass das Organgefäß konstant temperiert wird, eine kontinuierliche Zufuhr von Carbogen gewährleistet ist und ein Überlaufen der physiologischen Kochsalzlösung durch ein Vakuum verhindert wird.Nach Durchführung dieses Verfahrens können andere Techniken wie die Immunzytochemie angewendet werden, um weitere Fragen zu beantworten, beispielsweise ob Veränderungen im Verhältnis der Neuronen oder in der Zellzahl bei Mäusen mit veränderter kolonaler Motilität vorliegen. Seit der Entwicklung dieser Methode war es möglich, eine Vielzahl von Studien zur Darmmotilität in Meerschweinchen und Kaninchen, Ratte und anderen Arten sowie insbesondere in diesem Fall in der Maus durchzuführen. Nach Anschauen dieses Videos sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man Veränderungen in der neuronalen Regulation der kolonaren Motilität mittels Videobildgebung identifizieren kann.

video-imaging-spatiotemporal-maps-to-analyze-gastrointestinal

Research

Forschung

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowissenschaften

Evaluation der Kolonmotilität beim Meerschweinchen distalen Kolon mit dem Magen-Darm-Motilität Monitor (Gimm) ist ein einfaches und leicht zu erlernen Ansatz quantitativ zu bewerten propulsiven Motilität im Magen-Darm-Trakt.

Gastrointestinale Motilität Monitor (Gimm)

Die interstitiellen Zellen von Cajal (ICC) sind die Schrittmacher-Zellen des Magen-Darm (GI-Trakt). Sie bilden komplexe Netzwerke zwischen glatten Muskelzellen und postganglionären Neuronen Fasern GI Kontraktilität zu regulieren. Hier präsentieren wir Immunfluoreszenzverfahren Querschnitts-und Ganzkörper-Mount-Visualisierung von Maus-ICC-Netzwerke.

Visualisierung der interstitiellen Zellen von Cajal (ICC) Netzwerk in Mäuse

Die in vivo Messung von Kontraktionen der glatten Muskulatur entlang des Magen-Darm-Trakts von Versuchstieren ist nach wie vor eine leistungsfähige, wenn auch wenig genutzte Technik. Flexible Dehnungsmessstreifen mit zwei Elementen sind nicht im Handel erhältlich und müssen hergestellt werden. Dieses Protokoll beschreibt die Konstruktion von zuverlässigen, kostengünstigen Dehnungsmessstreifen für die akute oder chronische Implantation bei Nagetieren.

Herstellung und Implantation von Miniatur-Zweielement Dehnungsmessstreifen für Mess<em&gt; In Vivo</em&gt; Magen-Darm-Kontraktionen in Nagetiere.

Durch die Verwendung von transgenen Reportermäusen und injizierbaren Fluoreszenzmarkierungen ermöglicht die konfokale Langzeitmikroskopie mit intravitaler Spinning-Disk die direkte Visualisierung des Verhaltens myeloischer Zellen in intestinalen Adenomen im ApcMin/+ Darmkrebsmodell.

Echtzeit-Imaging von myeloischen Zellen in Dynamics Apc Min / + Darmtumoren durch Spinning-Disk-konfokale Mikroskopie

Wir beschreiben Methoden zur longitudinalen Überwachung der Wirksamkeit von Therapeutika zur Behandlung von Dickdarmpathologien bei Mäusen mit einem starren Endoskop. Dieses Protokoll kann leicht für die Charakterisierung des therapeutischen Ansprechens eines einzelnen Tumors bei lebenden Mäusen und auch für die Überwachung eines möglichen Krankheitsrückfalls verwendet werden.

Nicht-invasive Beurteilung der Wirksamkeit neuer Therapeutika für Darmpathologien Verwenden der seriellen endoskopische Bildgebung von lebenden Mäusen

Kürzlich verfügbare Videoaufzeichnungs- und STmap-Techniken (spatiotemporal mapping) ermöglichen es, sowohl Fortpflanzungs- als auch Mischmuster der Darmmotilität zu visualisieren und zu quantifizieren. Das Ziel dieses Protokolls ist es, die Generierung und Analyse von STmaps mit Hilfe des GastroIntestinal Motility Monitoring (GIMM) Systems zu erklären.

Raum-Zeit-Mapping der Motilität in<em&gt; Ex Vivo</em&gt; Vorbereitung des Darms

Wir beschreiben eine Methode zur Visualisierung von GFP-markierten IELs mit intravitaler Bildgebung des murinen Dünndarms durch invertierte Konfokalmikroskopie der Spinnscheibe. Diese Technik ermöglicht die Verfolgung von lebenden Zellen innerhalb der Schleimhaut für bis zu 4 h und kann verwendet werden, um eine Vielzahl von darmen immun-epitheliale Wechselwirkungen zu untersuchen.

Intravitale Bildgebung von intraepitheliale Lymphozyten im murinen Dünndarm

Um zu untersuchen, wie der Dünndarm mit Partikeln unterschiedlicher Größe umgeht, haben wir eine etablierte in vivo-Methode zur Bestimmung des Dünndarmtransits modifiziert.

Untersuchung der Mechanosensorik von luminalen Partikeln im murinen Dünndarm

Dieses Protokoll beschreibt eine Immunfärbungsmethode für den ganzen Magen, die von der ursprünglich für den Mausdarm entwickelten "Swiss Roll"-Technik abgewandelt wurde.

Verbesserte räumliche Abbildung der Magenmuskelschichten der Maus mit einer modifizierten Swiss Roll-Technik

Ein Gentransfer-Methode in den Entwicklungsländern Gehirn der Maus ist mit einer einzigartigen chirurgischen Verfahren und spezielle Form der Elektroden beschrieben. Diese einzigartige Technik erlaubt die Transfektion von Plasmid-DNA zeitlich und räumlich, was viele Neurowissenschaftler in das Studium der Entwicklung des Gehirns wird die Beihilfe.

Maus in Utero Elektroporation: Kontrollierte Spatiotemporal Gene Transefection

Erfahren Sie Video-Imaging und räumlich-zeitliche Kartierung zur Analyse der neuronalen Regulation der Kolonmotilität bei Mäusen. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung des enterischen Nervensystems.

Video Imaging und Raum-Zeit-Karten zur Analyse Gastrointestinale Motilität bei Mäusen

Weitere Videos entdecken