Name: Clinicopathological Analyse von miRNA Expression in Mammakarzinomen von miRNA Verwendung In Situ Die Hybridisierung (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-07T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 1 s
Description: Erfahren Sie die miRNA-In-Situ-Hybridisierung zur Analyse von Mikro-RNA-Expression in Mammakarzinomgewebe. Diese Methode ermöglicht die präzise Lokalisierung von miRNAs und liefert Einblicke in ihre Rolle bei der Tumorsuppression.

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Diese Arbeit wurde durch den NIH-Zuschuss (5R01 CA178386-03) und den USC ASPIRE-1 Zuschuss an HC unterstützt. Wir danken Vrushab Gowda für seine Hilfe beim Manuskript.

Diese Studie wurde von der Institutional Review Board der Universität Chonnam Hwasun Hospital und University of South Carolina genehmigt. TMA-Proben zusammengesetzt von Brustkrebs und abgestimmt angrenzenden normalen Brustgewebe wurden durch die Biobank der Chonnam National University Hwasun Hospital, ein Mitglied des Korea Biobank-Netzwerk zur Verfügung gestellt. 1. Herstellung der Lösung <ol><li> Bereiten Sie 1 l DNase und RNase freies Wasser. Nehmen Sie alle chemischen Lösungen mit Diethylpyrocarbonat (DEPC) behandeltem Wasser. Behandlung 1 l Wasser mit 500 &amp; mgr; l DEPC und Inkubation für 3 Stunden bei Raumtemperatur. Autoklav, das Wasser zu inaktivieren DEPC. Achtung: DEPC nicht einatmen, da sie krebserregend bekannt ist. </li><li> Bereiten Sie 1x PBS aus 10x PBS DEPC behandeltes Wasser verwendet wird. </li><li> Bereiten Sie 20x SSC (lösen 175,3 g NaCl und 88,2 g Natriumcitrat in 800 ml Wasser, den pH-Wert auf 7,0 mit ein paar Tropfen 14 N HCl-Lösung und stellen Sie die Lautstärke auf 1 L mit water), 4% Paraformaldehyd, 95% Ethanol, 80% Ethanol DEPC behandeltes Wasser verwendet wird. </li><li> 8 ml Triethanolamin und 1,05 ml HCl in 590 ml DEPC-behandeltem Wasser und 1,5 ml Essigsäureanhydrid zur Acetylierung. </li><li> Vorbereitung 50 &amp; mgr; g / &amp; mgr; l Proteinase K in Puffer (50 mM Tris-HCl, pH 8,0, in DEPC-behandeltem Wasser). </li><li> Bereiten Hybridisierungspuffer, bestehend aus 500 &amp; mgr; l Formamid, 250 &amp; mgr; l 20x SSC, 100 &amp; mgr; l 50x Denhardt-Lösung, 12,5 &amp; mgr; l t-RNA, 2,5 &amp; mgr; l Heringssperma-DNA, 30 ul RVC, 0,02 g Blockierungsreagenz und 50 &amp; mgr; l DEPC-Wasser. Bereiten Sie frisch. </li></ol> 2. Brustgewebeschnitte <ol><li> Schneiden Sie 5 um Formalin-fixierten und in Paraffin eingebetteten Schnitten mit Mikrotom und wenden Sie den Abschnitt Schlitten zu laden 14. Hinweis: Die hier verwendeten Brustgewebe wurde zuvor aus dem Korea Biobank Netzwerk vorbereitet. </li></ol> 3. Gewebepräparation <ol><li> Entfernen Paraffin from das Gewebe durch Dias in Glasküvette 2x in frischem Xylol für jeweils 10 Minuten und Rehydrierung der Gewebeschnitt von 5 min Inkubationen in abnehmenden Konzentrationen von Ethanol (100%, 95% und 80%) in ddH 2 O getaucht Führen Sie diesen Schritt in einem Abzug. </li><li> Tauchen Sie das Gewebe in DEPC Wasser für 5 min behandelt. An dieser Stelle machen Grenzen um Gewebeschnitt mit hydrophoben Barriere Stift. </li><li> Befestigen Sie das Gewebe mit 4% PFA für 15 min durch eine Wäsche mit PBS. </li><li> Eintauchen des Gewebes in 0,3% Triton X-100 / PBS für 10 min durch eine Waschung mit PBS. </li><li> Inkubieren Probe mit 50 &amp; mgr; g / &amp; mgr; l Proteinase K-Lösung für 15 min bei 37 ° C. Dann Gewebeschnitte mit Triethanolamin und Essigsäureanhydrid für 5 min bei Raumtemperatur, gefolgt von einem Waschen mit PBS inkubiert. Kein PBS-Wasch zwischen Proteinase K-Behandlung und Triethanolamin / Essigsäureanhydrid-Behandlung erforderlich. </li></ol> 4. Die Hybridisierung <ol><li> Waschen Sie das Gewebe gründlich und incuBeize der Gewebeschnitt mit Hybridisierungspuffer für 2 bis 3 Stunden bei Raumtemperatur. Typischerweise 120 ul Hybridisierungspuffer ist genug, um den Gewebeschnitt zu bedecken. </li><li> Verdünnte 5&#39;-DIG markierten LNA-Sonde zur Endkonzentration von 03.00 in 120 &amp; mgr; l Hybridisierungslösung. Da die Stoffkonzentration für 5 min in der Regel ist 40 ng / ul, fügen Sie 3 ul Lager bis 120 &amp; mgr; l Hybridisierungspuffer und Inkubation Mischung bei 95 ° C. </li><li> Inkubieren Gewebeschnitt mit der Sonde über Nacht bei 54 ° C (Tm) in einer feuchten Kammer. Typischerweise beträgt 120 &amp; mgr; l genug einen Abschnitt abzudecken. Erstellen Sie Feuchtigkeit von zwei feuchten Papiertüchern. Die ideale Größe der Kammer ist 10 Zoll von 8 Zoll. </li><li> Hinweis: Tm kann für verschiedene miRNA unterschiedlich sein. 54 ° C ist die Rede für miR-489. </li></ol> 5. Die Stringenz Wash <ol><li> Waschen Sie das Gewebe mit 5 × SSC für 7 min (nach dem Hybridisierungsschritt sind freien Bedingungen RNase nicht mehr benötigt). </li><li> Waschen Sie den Gewebeschnitt Witzh 1x SSC für 7 min zweimal bei 57 ° C. </li><li> Waschen der Gewebeschnitt mit 0,2x SSC für 7 min bei 57 ° C. </li><li> Waschen der Gewebeschnitt mit 0,2x SSC für 7 min bei Raumtemperatur. </li><li> Inkubieren Gewebeschnitt in PBS für 10 min. </li></ol> 6. Sperrung <ol><li> Inkubieren Sie die Gewebeschnitt mit 1 Stunde in einer feuchten Kammer Puffer bei Raumtemperatur blockiert (um Puffer 2 ml FBS Blockierung hinzufügen, 10 ul Tween-20 und 3 ul BSA in 18 m von PBS. Speicherpuffer bei 4 blockiert ° C). </li></ol> 7. Primäre Antikörper-Inkubation und Entwicklung <ol><li> Verdünne 1: 300 Anti-DIG-AP-Antikörper in Blocking-Puffer und Inkubation über Nacht der Gewebeschnitt mit einem Antikörper bei 4 ° C. </li><li> Waschen Sie die Abschnitte mit Waschpuffer 3-mal für jeweils 5 min (Puffer-Development-Kit zur Verfügung gestellt). </li><li> Entwickeln Sie den Gewebeschnitt mit einem kommerziellen Kit für die alkalische Phosphatase, die CY-3 fluoreszierendem Licht erzeugt. </li> &lt;li&gt; Waschen Sie den Abschnitt mit Waschpuffer für 5 min. Abschnitt Stain mit 100 &amp; mgr; l von 2,5 ng / ul Hoechst-Farbstoff für 5 Minuten, gefolgt von einer 5 min Waschen mit Waschpuffer. </li><li> Montieren Sie den Abschnitt mit Montagepuffer nach dem Protokoll des Herstellers. Verwenden Sie 15 ul pro Gewebeschnitt und wischen Sie übermäßige Montagelösung mit Tuch abwischen. Siegel die Folie mit klarem Nagellack zu verhindern undicht. </li><li> Beachten Sie den Abschnitt fluoreszierendem Mikroskop mit 10fach-Objektiv so Gesamtvergrößerung ist 100X. </li></ol>

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<li>Li, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sequential+expression+of+miR-182+and+miR-503+cooperatively+targets+FBXW7%2C+contributing+to+the+malignant+transformation+of+colon+adenoma+to+adenocarcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Sequential expression of miR-182 and miR-503 cooperatively targets FBXW7, contributing to the malignant transformation of colon adenoma to adenocarcinoma.</a> J Pathol. 234, 488-501 (2014).</li>
</ol>

Es gibt nichts offenzulegen.

Das Ziel dieser Studie war es, die Höhe der miRNA - Expression in Brustkrebsgewebe mit miRNA in - situ - Hybridisierung zu bestimmen. Es ist zu beachten, dass in diesem Experiment sind alle Bedingungen für die Brustkrebsgewebe optimiert. Eine weitere Optimierung könnte für andere Gewebetypen erforderlich. Alle Lösungen müssen mit DEPC Wasser hergestellt werden und alle Behälter verwendet werden, sollten mit DEPC behandeltem Wasser und anschließend autoklaviert gespült werden. Selbst geringe RNase Konta...

Brustkrebs ist eine der häufigsten bösartigen Tumoren in der ganzen Welt die weibliche Bevölkerung zu beeinflussen. Mehr als 1,3 Millionen Fälle von Brustkrebs werden jedes Jahr weltweit 1,2 berichtet. Obwohl Tumorzellen traditionell als biologisch homogen und hochproliferative angesehen worden sind, hat sich gezeigt, dass Brustkrebs ist genetisch und klinisch heterogen. Der Widerstand gegen vorherrschende Krebsmedikamente ist ein Markenzeichen von fortgeschrittenem Brustkrebs, in der Mehrzahl der Patienten durch die Erleichterung der Tumorprogression und Metastasierung Abstand 3 auf die Mortalität führt. MicroRNAs (miRNAs) sind eine Klasse von kleinen RNA - Moleküle , etwa 22 Nukleotide lang , die die Genexpression regulieren , indem mRNA - Translation zu blockieren oder zu vermitteln mRNA - Abbau 4. Mehr als 2.000 verschiedene miRNAs sind bisher beim Menschen identifiziert worden, die für die menschliche Krankheiten 5 verbunden sind. Eine wachsende Reihe von Studien have gezeigt , dass miRNAs als Onkogene und Tumorsuppressoren wirken können und in Tumoren 6 häufig dysreguliert. miRNAs stark die gesamte Primär tumorigenesis auswirken , indem die wichtigsten Regulatoren des Zellzyklus zu steuern, Seneszenz, Apoptose und autophagy, zusammen mit denen der Tumorzellbeweglichkeit, Invasion und Metastasierung 7. Aberrant miRNA - Expression wurde auch mit klinischen Auswirkungen wie Stadium, Differenzierung, Prognose und das Ansprechen auf adjuvante Therapie 8 verbunden. Insbesondere erhöht miR-146 - Expression mit einer schlechten Prognose bei Patienten mit Lungenkrebs 9 korreliert. Eine andere Studie hat gezeigt , dass verloren Expression von miRNA-let7b maligne Phänotypen verbunden ist und folglich schlechte Überleben 6. die Typen von Zellen und Strukturen zu verstehen, dass miRNAs ist ein wichtiger Teil des Verständnisses der Mechanik, durch die Veränderungen in der miRNA-Expression beeinflussen Zelle ausdrücken undGewebe Phänotypen 10. gefunden bestimmte miRNAs in Stromazellen sezerniert werden, werden von Epithelzellen aufgenommen und gezielt auf ihre Ziele handeln. In die gleiche Richtung, miR-212 und miR-132 werden von Stroma und regeln die epithelial-Stroma - Interaktionen für duktale Auswuchs während Brustdrüse Entwicklung 11 erforderlich abgesondert. Das übergeordnete Ziel dieser Arbeit ist es, ein detailliertes Protokoll zu erklären miRNA - Expression in Brustkrebsgewebe durch miRNA in - situ - Hybridisierung zu detektieren. Wir haben alle Bedingungen optimiert, um die Ebenen der miRNA-489-Expression zu untersuchen bei Brustkrebs Patientenproben. Zu diesem Zweck verwendeten wir ein markiertes DIG-Nukleinsäure (LNA) -Sonde in unserem Experiment verriegelt. Einige seiner Nukleotide hatte eine LNA Modifikation, das heißt, eine Methylenbrücke der 2 &#39;Sauerstoffatom und 4&#39; Kohlenstoffatom der Ribose-Backbone verbindet, die das Nukleotid fixiert, so dass sie &quot;eingerastet&quot; bleibt nach der Hybridisierung. Als Ergebnis ist es viel schwierigerfür die hybridisierten Komplexes 12,13 zu denaturieren.

<table><tbody><tr><td>ELF-97</td><td>Lebenstechnik&nbsp;</td><td>E6604</td><td></td></tr><tr><td>50x Denhard't&nbsp;</td><td>Lebenstechnologie&nbsp;</td><td></td><td></td>750018</tr><tr><td>t-RNA</td><td>Roche</td><td>109541</td><td>Rekonstitution in DEPC-Wasser</td></tr><tr><td>Heringsspermien DNA</td><td>Promega&nbsp;</td><td>D1815</td><td></td></tr><tr><td>Roche Blockierung&nbsp;</td><td>Roche</td><td>11096176001</td><td></td></tr><tr><td>RVC</td><td>Fisher</td><td>50-812-650</td><td>Vor Gebrauch bei 16,1 RCF abdrehen und Überstand nehmen&nbsp;</td></tr><tr><td>miR-489 Sonde&nbsp;</td><td>Exiqon</td><td>38599-01</td><td></td></tr><tr><td>Nukleasefrei BSA</td><td>Roche&nbsp;</td><td></td><td></td>711454</tr><tr><td>Primärer Antikörper-Anti-DIG</td><td>Roche&nbsp;</td><td></td><td></td>11093274910</tr><tr><td>Diethylpyrocarbonat&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>1609478</td><td></td></tr></tbody></table>

clinicopathological analyse von mirna expression in mammakarzinomen von mirna verwendung<em&gt; in situ</em&gt; die hybridisierung

Clinicopathological Analysis of miRNA Expression in Breast Cancer Tissues by Using miRNA In Situ Hybridization

In diesem Artikel beschreiben wir ein detailliertes Protokoll für den miRNA-Nachweis in Brustkrebsgewebe unter Verwendung einer In-situ-Hybridisierung mit einer Digoxigenin-markierten LNA-Sonde (Locked Nucleic Acid). Die Sonde wurde mit Anti-DIG-Antikörpern gegen alkalische Phosphatase erkannt und später unter Verwendung eines alkalischen Phosphatasesubstrats entwickelt, das Fluoreszenzsignale erzeugt. Hier haben wir die miRNA-in-situ-Hybridisierungstechnik (MISH) verwendet, um die Expression von miR-489 in Geweben von Brustkrebspatientinnen zu analysieren. Mit dieser Technik kann die Lokalisation von miRNA von Interesse in einzelnen Gewebeproben nachgewiesen werden. Diese Technik kann verwendet werden, um die Expression der gewünschten miRNA im Tumorgewebe mit der im angrenzenden normalen Gewebe zu vergleichen und die spezifischen Strukturen zu identifizieren, die für die Expression dieser miRNA verantwortlich sind. Diese Technik kann sehr nützlich sein, um bestimmte klinische Fragen zu beantworten, wie z. B. die Rolle spezifischer miRNA bei der Entstehung von Krebs. Unsere Ergebnisse deuten darauf hin, dass Brustepithelzellen signifikant höhere Spiegel an miR-489 exprimieren als benachbarte Tumorzellen.

Menschliche Brustkrebsgewebe wurde verwendet, miRNA-489-Expression zu bestimmen. Brustdrüsenkanal und Epithelzellen wurden in zwei Patienten (1A und 1B) signifikant höher miRNA-489 Ebenen als benachbarte Tumorgewebe zu exprimieren gefunden. Dies zeigt deutlich, dass miRNA-489 Expression im Tumorgewebe verloren gegangen ist, Tumor unterdrückende Aktivität von miRNA-489 hindeutet. Weiter zu bestätigen diese Ergebnisse, Tumorgewebe und benachbarten normalen...

Hier präsentieren wir ein Protokoll zum Nachweis der miRNA-Expression in Brustkrebspatientinnenproben mittels miRNA-in-situ-Hybridisierung.

Clinicopathological Analyse von miRNA Expression in Mammakarzinomen von miRNA Verwendung<em&gt; In Situ</em&gt; Die Hybridisierung

In this article, we describe a detailed protocol for miRNA detection in breast cancer tissue using in situ hybridization with a digoxigenin-labelled LNA ...

Das übergeordnete Ziel dieser Mikro-RNA-In-situ-Hybridisierung besteht darin, die Lokalisation der gewünschten Mikro-RNA im Brustkrebsgewebe nachzuweisen. So kann die Methode wichtige Fragen im Bereich Brustkrebs beantworten, beispielsweise, ob die gewünschte Mikro-RNA als Onkogen oder Tumorsuppressor wirkt.Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass sie die nukleäre Lokalisation von Interesse in Brustkrebsgewebe nachweisen kann. Beginnen Sie die Gewebevorbereitung, indem Sie Paraffin von zuvor präparierten Schnitten des Brustgewebes entfernen. Tauchen Sie die Objektträger zwei Mal für jeweils zehn Minuten in frisches Xylol in einem Coplin-Behälter ein.Rehydrieren Sie den Gewebeschnitt durch Inkubationen in abnehmenden Konzentrationen von Ethanol in doppelt destilliertem Wasser, jeweils fünf Minuten lang. Tauchen Sie das Gewebe danach fünf Minuten lang in mit Diethylpyrocarbonat oder DEPC behandeltes Wasser ein. Während das Gewebe eingetaucht ist, ziehen Sie mit einem hydrophoben Markierstift Begrenzungen um den Gewebeschnitt herum. Nach der DEPC-Behandlung fixieren Sie das Gewebe 15 Minuten lang mit 4 % PFA. Anschließend waschen Sie das Gewebe mit PBS. Danach tauchen Sie das Gewebe zehn Minuten lang in 0,3 % Triton X-100 in PBS ein.Die Probe 15 Minuten bei 37 °C mit einer Proteinase-K-Lösung von 50 Mikrogramm pro Mikroliter inkubieren. Anschließend die Gewebeschnitte fünf Minuten bei Raumtemperatur mit Triethanolamin und Essigsäureanhydrid inkubieren. Danach eine PBS-Waschung durchführen.Spülen Sie das Gewebe gründlich aus. Inkubieren Sie den Gewebeschnitt anschließend zwei Stunden bei Raumtemperatur mit 120 Mikrolitern Hybridisierungspuffer. Verdünnen Sie danach die DIG-markierte NLA-Sonde am 5'-Ende auf eine Endkonzentration von 3 Pikomolar in 120 Mikrolitern Hybridisierungslösung.Danach drei Mikroliter einer 40 Nanogramm pro Mikroliter-Stammlösung zu 120 Mikrolitern Hybridisierungspuffer hinzufügen. Die Mischung anschließend bei 95 Grad Celsius fünf Minuten lang inkubieren. Den Gewebeschnitt in einen zehn mal acht Zoll großen Behälter geben und das Gewebe mit 120 Mikrolitern der Sonde bedecken, sodass es vollständig bedeckt ist.Befeuchten Sie zwei Papiertücher und bedecken Sie den Behälter, um eine Feuchtigkeitskammer zu erzeugen. Inkubieren Sie den Gewebeschnitt über Nacht bei 54 Grad Celsius. Nach der Hybridisierung waschen Sie das Gewebe sieben Minuten lang mit fünf X Salin-Natrium-Citrat-Puffer oder SSC bei 57 Grad Celsius.Als Nächstes waschen Sie den Gewebeschnitt zweimal mit 1 X SSC. Und waschen Sie den Gewebeschnitt mit 0,2 X SSC. Anschließend waschen Sie den Gewebeschnitt sieben Minuten lang bei Raumtemperatur mit 0,2 X SSC.Inkubieren Sie den Gewebeschnitt zehn Minuten lang in PBS. Inkubieren Sie den Gewebeschnitt eine Stunde lang bei Raumtemperatur in einer feuchten Kammer mit Blockierpuffer. Verdünnen Sie den Anti-DIG-AP-Antikörper im Verhältnis 1:300 in Blockierpuffer.Und inkubieren Sie den Gewebeschnitt mit dem Antikörper bei 4 Grad Celsius über Nacht. Am nächsten Tag waschen Sie die Schnitte dreimal mit Waschpuffer, jeweils fünf Minuten lang. Befolgen Sie die Anweisungen des ELF-97-Kommerziellen-Kits, um den Gewebeschnitt mit alkalischer Phosphatase zu entwickeln, die ein fluoreszierendes Licht der Größe drei erzeugt.Als Nächstes wird der Schnitt fünf Minuten lang mit Waschpuffer gewaschen. Der Schnitt wird mit 100 µL eines 2,5 Nanogramm pro µL-Hoechst-Farbstoffs fünf Minuten lang gefärbt. Anschließend erfolgt eine fünfminütige Wäsche mit Waschpuffer.Verwenden Sie 15 µL Montagepuffer pro Gewebeschnitt. Wischen Sie überschüssige Montagelösung mit einem Tuch ab. Versiegeln Sie dann den Objektträger mit klarem Nagellack, um ein Auslaufen zu verhindern.Beobachten Sie abschließend den Schnitt mit einem Fluoreszenzmikroskop bei einer Gesamtvergrößerung von 100 X. Menschliches Brustkrebsgewebe von zwei Patienten wurde verwendet, um die Expression von Micro-RNA 489 zu bestimmen. Drüsenkanal- und Epithelzellen zeigten signifikant höhere Micro-RNA-489-Spiegel im Vergleich zu angrenzendem Tumorgewebe. Nachdem Sie dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie die In-Situ-Hybridisierung für Micro-RNA unter Verwendung von Proben von Brustkrebspatienten durchgeführt wird.

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Quantitative Real Time Polymerase-Kettenreaktion (qPCR) ist eine schnelle und empfindliche Methode, um die Expression verschiedener microRNA (miRNA) Moleküle in Tumorproben zu untersuchen. Unter Verwendung dieses Verfahrens Expression von Hunderten von verschiedenen miRNA-Moleküle können verstärkt, quantifiziert werden, und analysiert die gleiche cDNA-Matrize.

MicroRNA-Detektion in Prostatatumoren durch quantitative real-time PCR (qPCR)

Dieser Artikel beschreibt ein in situ-Hybridisierungsprotokoll für die kolorimetrische Detektion der microRNA Expression in Formalin fixiert Nierenschnitten optimiert.

MicroRNA<em&gt; In situ</em&gt; Hybridisierung für Formalin fixiert Nierengewebe

Molekulare Signal sowohl durch Östrogen und microRNAs sind entscheidend bei Brustkrebs Entwicklung und Wachstum. Östrogen aktiviert die Östrogen-Rezeptoren, die Transkriptionsfaktoren sind. Viele Transkriptionsfaktoren die Expression von microRNAs regulieren und Östrogen-regulierten microRNAs kann mit verschiedenen Groß Techniken profiliert werden.

Profiling von Östrogen-regulierte MicroRNAs in Brustkrebszellen

Hier beschreiben wir ein vereinfachtes Protokoll für microRNA (miRNA)-Expressionsanalysen in archivierten klinischen Geweben mit Formalin-fixiertem, Paraffin-eingebettetem (FFPE) oder frisch gefrorenem Prostatakrebs (PCa) unter Verwendung von quantitativer Echtzeit-PCR (RT-PCR) und in situ Hybridisierung (ISH).

miRNA-Expressionsanalysen in Prostate Cancer Clinical Tissues

Nukleinsäure-Abbau im Archiv Gewebe, Tumor Heterogenität und einen Mangel an frischen gefrorene Gewebeproben kann negative Auswirkungen auf Krebs-Diagnose-Services in Pathologie Laboren weltweit. Dieses Manuskript beschreibt die Optimierung eines Panels von Biomarkern, die mit einen multiplex magnetischer Wulst-Assay, um Brustkrebs zu klassifizieren.

Optimierung eines Multiplex-RNA-basierten Ausdruck-Assays mit Brust-Krebs-Archivmaterial

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Retrospektive RNA Sequenzierung: Komplementäre DNA Bibliothek Vorbereitung Protokoll mit Formalin fixierten Paraffin-eingebetteten RNA-Proben

Mikro-RNAs (MiRNAs) sind kurz und stark homologe RNA-Sequenzen, dienen als Posttranskriptionale Regulatoren der Messenger-RNAs (mRNAs). Aktuelle MiRNA Nachweismethoden unterscheiden sich in der Sensitivität und Spezifität. Wir beschreiben eine Protokoll, die in Situ Hybridisierung und Immunostaining für die gleichzeitige Erkennung von MiRNA und Protein-Moleküle auf Maus Herz Gewebeschnitte verbindet.

Gewebespezifische MiRNA Expression Profiling in Maus Herz Abschnitte In Situ Hybridisierung

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Erkennung eines zirkulierenden MicroRNA Custom Panels bei Patienten mit metastasiertem kolorektalen Karzinom

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MicroRNA-Amplifikation und -Erkennung durch In-situ-Hybridisierung mit gesperrten Nukleinsäuren als neuartige Detektions- und Quantifizierungsmethode

Wir präsentieren ein Protokoll für die strukturelle und Analyse der Zusammensetzung der natürlichen oralen Biofilm aus kieferorthopädischen Apparaturen...

Oral Biofilm Analyse Palatal Expander durch Fluoreszenz in situ Hybridisierung und konfokale Laser Scanning Mikroskopie

Erfahren Sie die miRNA-In-Situ-Hybridisierung zur Analyse von Mikro-RNA-Expression in Mammakarzinomgewebe. Diese Methode ermöglicht die präzise Lokalisierung von miRNAs und liefert Einblicke in ihre Rolle bei der Tumorsuppression.

Clinicopathological Analyse von miRNA Expression in Mammakarzinomen von miRNA Verwendung

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