Name: Intratracheale Verabreichung von Haemophilus influenzae In Mausmodelle zur Untersuchung Atemwegsentzündung (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-03-02T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 56 s
Description: Erfahren Sie die intratracheale Verabreichung von Haemophilus influenzae in Mäusen zur Untersuchung von Atemwegsentzündungen. Diese effiziente Methode ermöglicht die direkte Analyse immunologischer Reaktionen im unteren Respirationstrakt.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Wir danken Dr. Carson Harrod für die kritische Lektüre des Manuskripts. Wir danken auch Herrn Minghui Zeng und Dr. Mahesh Kathania und Dr. Prashant Khare für ihre Beiträge. Diese Arbeit wurde durch Zuschüsse der American Cancer Society (Research Scholar Grant, 122713-RSG-12-260-01-LIB) und des Sammons Cancer Center (Pilot Project Grant) an K. Venuprasad unterstützt.

Alle Experimente wurden in Übereinstimmung mit den Richtlinien der Institutional Animal Care und Use Committee (IACUC) von Baylor Research Institute durchgeführt. 1. Anzucht nicht typisierbaren Haemophilus influenzae (NTHi) und Vorbereiten des Inokulums <ol><li> Platte NTHi auf einem Schokolade - Agar - Platte und halten die Platte den Kopf in einem befeuchteten CO 2 Inkubator über Nacht bei 37 ° C und 5% CO 2. Am folgenden Tag Kultur der Bakterien in Gehirn-Herz-Infusionsbrühe. Dann fügen Sie 1 ml der Brühe in eine sterile 1,5 ml-Tube. </li><li> Zentrifuge bei 4.000 xg für 5 min bei Raumtemperatur. Dann wird der Überstand verworfen und erneut zu suspendieren, das Pellet in 1 ml sterile 1x PBS. Wiederholen Sie einmal diesen Schritt. </li><li> Transfer von 100 &amp; mgr; l der resuspendierten Lösung in 900 ul 1x PBS und Messen der Extinktion der verdünnten Kultur bei 600 nm Wellenlänge in einem Spektrophotometer. </li><li> Bestimmen Sie die Lebensfähigkeit und die Kolonie bildende Einheits (CFUs) des Inokulums durch Züchten 01.10 Reihenverdünnungen auf Schokolade - Agarplatten und über Nacht bei 37 ° C und 5% CO 2 inkubiert. </li><li> Bezogen auf die Lebensfähigkeit und die CFUs aus dem vorherigen Schritt bestimmt wird , das Inokulum auf eine Endkonzentration von 20 x 10 6 CFU / ml einzustellen. </li></ol> 2. intratracheale (it) Einträufeln <ol><li> Injizieren Sie die Maus intraperitoneal (ip) mit 0,1 ml / 10 g Körpergewicht der Maus mit einer 150 mg / ml Ketamin + 20 mg / ml Xylazin Lösung. Das Verfahren sollte mit einer Lichtquelle in der Haube getan werden, um das Tier warm zu halten. </li><li> Drücken Sie den Zehenzwischenraum der Maus, um zu überprüfen, dass die Maus ausreichend betäubt. </li><li> Platzieren Sie die Maus auf dem Rücken. Shave den ventralen Bereich des Halses und desinfizieren mit Chlorhexidin und 70% Ethylalkohol. </li><li> Heben Sie die Haut des oberen ventralen Teil des Halses unter Verwendung von Rattenzahnzange. Machen Sie einen kleinen Schnitt (0,5-1,0 cm) über dem Thymus mit einem Skalpellund sorgfältig den Muskel sezieren, um die Luftröhre aus. <ol><li> Unter Verwendung einer 1-ml-Spritze mit einer 27 G-Nadel, die Injektion sollte langsam 0,05 ml Luft, gefolgt von 0,05 ml NTHi erhalten von Abschnitt 1 oder Salzlösung als Kontrolle, gefolgt von einem weiteren 0,05 ml Luft. Halten Sie Tier vertikal für ca. 1 min. </li></ol></li><li> Schließen Sie den Schnitt mit chirurgischen Klebstoff. Halten Sie die Maus seitlich liegend und warm für ca. 10 min. </li></ol> 3. BALF Sammlung <ol><li> Opfere die Maus durch Genickbruch 24 Stunden nach der Infektion. </li><li> Öffnen Sie die Bauchhöhle der Maus mit anatomischen Schere und schneiden Sie die Bauchaorta zu bluten. Setzen Sie das ventrale Teil der Lunge. </li><li> Setzen Sie die Luftröhre und intubieren es mit einem 20-Gauge-Katheter. Instill 0,8 ml BALF Puffer (1x PBS, 0,1% Dextrose, 10 U / ml Heparin) und die Spülung durch leichtes Ansaugen sammeln. Wiederholen Sie diesen Vorgang dreimal. </li><li> Zählen der Gesamtzahl der Zellen in 100 &amp; mgr; l BALF Suspension unter Verwendung eines hemocytoMeter unter 10-facher Vergrößerung mit Trypan-Blau-Färbung. </li><li> Bereiten Sie Folien für modifizierte Giemsa. Aliquot 100 ul BALF in die entsprechenden Vertiefungen der Cytospin und Zentrifuge bei 500 xg für 5 min. Trocknen der Objektträger für 10 min und färben die Zellen modifiziert Giemsa-Färbung unter Verwendung von nach Protokollen des Herstellers. </li><li> Verwenden , um die verbleibenden Zellen für eine nachfolgende Analyse, wie beispielsweise Fluoreszenz - aktivierte Zellsortierung (FACS), die konfokale Mikroskopie, die Genexpression und die Western - Blot - 11-13. </li></ol> 4. Histopathologie Vorbereitung <ol><li> Für histopathologische Analyse, infizieren Mäuse mit NTHi wie in Schritt 2.4 beschrieben. Nach 24 Stunden der Infektion opfern, um die Tiere durch Genickbruch. Schneiden Sie die Brusthöhle mit anatomischen Schere öffnen die Lunge und die Luftröhre freizulegen, wie bereits erwähnt. Dann legen Sie die 20-Gauge-Katheter in die Trachea. </li><li> Füllen Sie die Lunge mit 2% warme Agarose-Lösung in 4% Formalin präpariert. Sobald derLungen sind voll aufgeblasen, statt Eis auf der Oberseite der Lunge die Agarose-Lösung zu verfestigen. </li><li> Dann entfernen Sie vorsichtig die Brust Stecker und steckte es in eine 50 ml-Lösung von 4% Formalin in 1x PBS, bis sie für Hämatoxylin und Eosin (H &amp; E) Abschnitte verarbeitet wird. </li></ol> 5. FACS Zellen in der BALF Anfärben <ol><li> Stellen 1 x 10 5 Zellen von der BALF Fluid in einer 96-Well - V-Boden Mikrotiterplatte. </li><li> Wasche die Zellen mit 300 ul kaltem PBS 1x und Schleudern bei 4.000 × g für 3 min bei 4 ° C. </li><li> Stain die Zellen mit Zellfarblösung in 100 ul 1x PBS (1: 1000 Verdünnung) und halten bei Raumtemperatur für 15 min. </li><li> Wasche die Zellen mit 300 ul kaltem PBS 1x bei 4.000 × g für 3 min bei 4 ° C. </li><li> Halten Zellen in 100 &amp; mgr; l FACS-Waschpuffer [Waschpuffer (1x PBS, 2% FBS, 1 mM EDTA, 0,1% Natriumazid], das 1: 100 verdünnt Fc-Block-für 15 min bei 4 ° C. </li><li> Centrifuge Zellen bei 4.000 × g für 3 min und entsorgen supernatant. </li><li> Stain Zellen mit 100 &amp; mgr; l Oberflächenfärbung Cocktail (1: 100 Verdünnung) in FACS-Waschpuffer für 30 min bei 4 ° C. </li><li> Waschen Zellen dreimal mit 300 &amp; mgr; l FACS-Waschpuffer bei 4.000 × g für 3 min bei 4 ° C. </li><li> Fix-Zellen in 100 &amp; mgr; l von 4% Paraformaldehyd für 15 min bei Raumtemperatur. </li><li> Wasche die Zellen zweimal mit 300 ul 1x PBS bei 400 × g für 3 min bei 4 ° C und resuspendieren in 300 &amp; mgr; l FACS-Waschpuffer. </li><li> Machen Sie einfarbige Färbung Kontrollen unter Verwendung von Durchflusszytometrie Perlen. <ol><li> Geben Sie einen Tropfen Perlen in den 96-Well-V-Boden-Mikrotiterplatte und waschen mit 200 ul 1x PBS. </li><li> 1 &amp; mgr; l-Färbung Antikörper auf 100 ul 1x PBS und Perlen und Inkubation für 5 min bei Raumtemperatur. </li><li> Waschen Sie Perlen zweimal mit 300 ul 1x PBS. </li></ol></li><li> Analysieren Sie einzelne gebeiztem Kontrollen und Zellen mittels Durchflusszytometrie 14. </li></ol> 6. Homogenisieren von Lungengewebe RNA zu isolieren <ol><li> Nach der Infektion über Nacht ein kleines Stück Lunge (20-40 mg) und halten Sie sie in RNA-stabilisierende Reagenz bei 4 ° C zu sammeln. Dann speichern Sie es bei -80 ° C bis zum nächsten Schritt. </li><li> Waschen Sie die Lungengewebe in kaltem 1x PBS loswerden der RNA-Stabilisierung Reagenz zu erhalten. </li><li> Platzieren das Gewebe in einem 1,5 ml Zentrifugenröhrchen, das Lyse-Puffer (1 ml Lyse-Puffer + 10 &amp; mgr; l β-Mercaptoethanol). </li><li> Hacken Sie das Gewebe in kleine Stücke spitzen Schere und homogenisieren für 20-40 sec ein schnurloses Motor Pellet zerstoßen. </li><li> Halten Sie das Lysat auf Eis für 5 min und fahren Sie mit Schritt 7.1. </li></ol> 7. RNA-Isolierung aus der Lunge <ol><li> Zentrifugieren Sie das Lysat bei 18.000 × g für 3 min. Entfernen Sie den Überstand durch Pipettieren und vorsichtig Transfer in ein neues 1,5-ml-Röhrchen. </li><li> 1 Volumen von 70% Ethanol zu dem Lysat. Mischen Sie sofort durch Pipettieren und warten 2-4 min. </li><li> Übertragen Sie bis zu 700 &amp; mgr; l Lysat auf eine Spin-Säule platziertin einem 2 ml Sammelröhrchen. </li><li> Zentrifuge bei 9.600 × g für 15 Sekunden und den Durchlauf verwerfen. </li><li> In 350 ul strengen Waschpuffer und Zentrifuge bei 9.600 × g für 15 Sekunden. Verwerfen Sie den Durchfluss durch. </li><li> In 80 ul DNase I direkt auf die Spinsäule Membran und halten Sie sie für 15 Minuten bei Raumtemperatur. </li><li> In 350 ul strengen Waschpuffer auf die Spin-Säule und Zentrifuge bei 9.600 × g für 15 Sekunden. Verwerfen Sie den Durchfluss durch. </li><li> In 500 ul RNA Waschpuffer und Zentrifuge bei 9.600 × g für 15 Sekunden. Verwerfen Sie den Durchfluss durch. </li><li> In 500 ul RNA Waschpuffer und Schleudern bei 9.600 × g für 2 min. Verwerfen Sie den Durchfluss durch. </li><li> Legen Sie die Spin-Säule in ein neues 2 ml Sammelröhrchen und Zentrifuge bei 9.600 × g für 1 min. Verwerfen Sie den Durchfluss durch. </li><li> Hinzufügen 30-50 &amp; mgr; l RNase-freiem Wasser direkt auf die spin-Säule zentrifugieren bei 9.600 × g für 1 min. Store RNA bei -80 ° C. </li><li> Führen RNA-Seq - Analyse 14. </li></ol>

<ol><li>Medzhitov, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Origin+and+physiological+roles+of+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Origin and physiological roles of inflammation.</a> Nature. 454, 428-435 (2008).</li>
<li>Grivennikov, S. I., Greten, F. R., Karin, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunity%2C+inflammation%2C+and+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Immunity, inflammation, and cancer.</a> Cell. 140, 883-899 (2010).</li>
<li>Barnes, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunology+of+asthma+and+chronic+obstructive+pulmonary+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Immunology of asthma and chronic obstructive pulmonary disease.</a> Nat Rev Immunol. 8, 183-192 (2008).</li>
<li>Sethi, S., Murphy, T. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Infection+in+the+pathogenesis+and+course+of+chronic+obstructive+pulmonary+disease%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Infection in the pathogenesis and course of chronic obstructive pulmonary disease.</a> N Engl J Med. 359, 2355-2365 (2008).</li>
<li>King, P. T., Sharma, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Lung+Immune+Response+to+Nontypeable+Haemophilus+influenzae+%28Lung+Immunity+to+NTHi%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol+Res%22%5BJournal%5D)">The Lung Immune Response to Nontypeable Haemophilus influenzae (Lung Immunity to NTHi).</a> J Immunol Res. 2015, 706376(2015).</li>
<li>Kapur, N., Grimwood, K., Masters, I. B., Morris, P. S., Chang, A. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lower+airway+microbiology+and+cellularity+in+children+with+newly+diagnosed+non-CF+bronchiectasis%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatr+Pulmonol%22%5BJournal%5D)">Lower airway microbiology and cellularity in children with newly diagnosed non-CF bronchiectasis.</a> Pediatr Pulmonol. 47, 300-307 (2012).</li>
<li>King, P. T., Holdsworth, S. R., Freezer, N. J., Villanueva, E., Holmes, P. W. Microbiologic follow-up study in adult bronchiectasis. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKing%2C+PT+%22Respir+Med%22">Respir Med</a>. 101, 1633-1638 (2007).</li>
<li>Shuto, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activation+of+NF-kappa+B+by+nontypeable+Hemophilus+influenzae+is+mediated+by+toll-like+receptor+2-TAK1-dependent+NIK-IKK+alpha+%2Fbeta-I+kappa+B+alpha+and+MKK3%2F6-p38+MAP+kinase+signaling+pathways+in+epithelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Activation of NF-kappa B by nontypeable Hemophilus influenzae is mediated by toll-like receptor 2-TAK1-dependent NIK-IKK alpha /beta-I kappa B alpha and MKK3/6-p38 MAP kinase signaling pathways in epithelial cells.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 98, 8774-8779 (2001).</li>
<li>Moghaddam, S. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Haemophilus+influenzae+lysate+induces+aspects+of+the+chronic+obstructive+pulmonary+disease+phenotype%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Respir+Cell+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Haemophilus influenzae lysate induces aspects of the chronic obstructive pulmonary disease phenotype.</a> Am J Respir Cell Mol Biol. 38, 629-638 (2008).</li>
<li>Rajagopalan, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intranasal+exposure+to+bacterial+superantigens+induces+airway+inflammation+in+HLA+class+II+transgenic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Infect+Immun%22%5BJournal%5D)">Intranasal exposure to bacterial superantigens induces airway inflammation in HLA class II transgenic mice.</a> Infect Immun. 74, 1284-1296 (2006).</li>
<li>Ganesan, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Elastase%2FLPS-exposed+mice+exhibit+impaired+innate+immune+responses+to+bacterial+challenge%3A+role+of+scavenger+receptor+A%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Elastase/LPS-exposed mice exhibit impaired innate immune responses to bacterial challenge: role of scavenger receptor A.</a> Am J Pathol. 180, 61-72 (2012).</li>
<li>Hogner, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Macrophage-expressed+IFN-beta+contributes+to+apoptotic+alveolar+epithelial+cell+injury+in+severe+influenza+virus+pneumonia%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathog%22%5BJournal%5D)">Macrophage-expressed IFN-beta contributes to apoptotic alveolar epithelial cell injury in severe influenza virus pneumonia.</a> PLoS Pathog. 9, e1003188(2013).</li>
<li>Karisola, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Invariant+Natural+Killer+T+Cells+Play+a+Role+in+Chemotaxis%2C+Complement+Activation+and+Mucus+Production+in+a+Mouse+Model+of+Airway+Hyperreactivity+and+Inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">Invariant Natural Killer T Cells Play a Role in Chemotaxis, Complement Activation and Mucus Production in a Mouse Model of Airway Hyperreactivity and Inflammation.</a> PloS one. 10, e0129446(2015).</li>
<li>Theivanthiran, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+E3+ubiquitin+ligase+Itch+inhibits+p38alpha+signaling+and+skin+inflammation+through+the+ubiquitylation+of+Tab1%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Signal%22%5BJournal%5D)">The E3 ubiquitin ligase Itch inhibits p38alpha signaling and skin inflammation through the ubiquitylation of Tab1.</a> Sci Signal. 8, 22(2015).</li>
<li>Venuprasad, K., Zeng, M., Baughan, S. L., Massoumi, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multifaceted+role+of+the+ubiquitin+ligase+Itch+in+immune+regulation%5BTitle%5D)+AND+%22Immunol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Multifaceted role of the ubiquitin ligase Itch in immune regulation.</a> Immunol Cell Biol. , (2015).</li>
<li>Decramer, M., Janssens, W., Miravitlles, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+obstructive+pulmonary+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Chronic obstructive pulmonary disease.</a> Lancet. 379, 1341-1351 (2012).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Hier beschreiben wir eine einzigartige und minimal-invasive Verfahren, um die Lungen von Mäusen, die mit einer bakteriellen Lungen Pathogen zu beimpfen. Wir zeigen, dass dieses Verfahren verwendet werden kann, um die Funktion der verschiedenen Gene zu untersuchen, die in Mäusen unter Verwendung von Genen von Entzündungssignalwege defizient sind. Dieses Verfahren kann auch die Entzündungsreaktionen gegen virale und fungale Infektionen der Lunge zu untersuchen verwendet werden. Die Vorteile dieses Verfahrens gegenüber and...

Die Entzündung ist eine grundlegende Immunabwehrmechanismus gegen infektiöse Erreger. Es fördert die Erreger Beseitigung und Reparatur von beschädigtem Gewebe. Es erleichtert auch die Erholung zu einem normalen , gesunden Zustand 1. Jedoch führt dysregulated Entzündung oft zu chronischen entzündlichen Erkrankungen 2. Entzündung der Atemwege ist ein erster Auslöser für verschiedene Lungenerkrankungen wie chronische obstruktive Lungenerkrankung (COPD), Asthma und Lungenfibrose 3. Die nicht-typisierbaren (nicht eingekapselten) Haemophilus influenzae (NTHi) mit chronischen oberen und unteren Lungenentzündungserkrankungen 4,5 verbunden. Es ist die dominante Spezies aus den unteren Atemwege von Kindern und Erwachsenen mit chronisch - obstruktiver Lungenerkrankung 4,6,7 isoliert. Die Entzündungsantwort nach der NTHi-Infektion wird durch die Hochregulation von proinflammatorischen Zytokinen (wie TNF und IL-1β) gekennzeichnet, und es wird vermittelt by Mitogen - aktivierte Proteinkinase (MAPK) und nuclear factor-kappaB (NF-kappaB) über Toll-like Rezeptoren (TLR) 8. Mausmodelle sind sehr nützliche Werkzeuge zur Analyse der zugrundeliegenden Pathologie der Lungenentzündungskrankheit aufgrund der Verfügbarkeit der verschiedenen Gen-defizienten Linien. Live / attenuierten Bakterien und bakterielle Produkte zu inokulieren, einschließlich intranasale Instillation und aerosolized Inhalations 9,10 mehrere Verfahren verwendet worden. Hier zeigen wir, intratracheale Instillation. Obwohl weniger häufig verwendet wird, ist dieser Ansatz effizienter und hoch reproduzierbare wegen der direkten Abgabe des Inokulums auf den unteren Atemwege.

<table><tbody><tr><td>Schokoladen-Agar-Platte</td><td>Fisher Scientific</td><td>CAS50-99-7</td><td></td></tr><tr><td>Dextrose wasserfrei</td><td>Themo Scientific</td><td>R01300</td><td></td></tr><tr><td>Heparin</td><td>Hospira,Inc</td><td>RL-3010</td><td></td></tr><tr><td>Geschickte Schnelllösung</td><td>Sigma</td><td>GS500-500ML</td><td></td></tr><tr><td>Spritzennadel 20/26G&nbsp;</td><td>BD(</td><td>REF305115/175)</td><td></td></tr><tr><td>Iml-Spritze</td><td>BD</td><td>REF 309602</td><td></td></tr><tr><td>Katheter 20GA</td><td>BD</td><td>REF</td><td></td></tr> 381433 <tr><td>Präparierschere, gerade, 10 cm lang</td><td>kentscientific</td><td>INS600393</td><td></td></tr><tr><td>Irispinzette, gezahnt, 10 cm lang</td><td>kentscientific</td><td>INS650915</td><td></td></tr><tr><td>Pinzette #5 Edelstahl, 11 cm lang</td><td>kentscientific</td><td></td><td></td>INS600095</tr><tr><td>10% Formalin</td><td>Fisher Scientific</td><td>CAS 67-56-1</td><td></td></tr><tr><td>Agarose</td><td>peqlab</td><td>35-1020</td><td></td></tr><tr><td>5ml Polystyrol Rundbodenröhrchen</td><td>BD</td><td>REF 352058</td><td></td></tr><tr><td>1,5 ml Mikrozentrifugenröhrchen</td><td>Light Labs</td><td>A-7001-R</td><td></td></tr><tr><td>Reasy Mini&nbsp; Kit&nbsp;</td><td>Qiagen</td><td>74104</td><td></td></tr><tr><td>Pellet-Pestil-Motor (Gewebehomoginizer)</td><td>Sigma</td><td>Z359971-1EA</td><td></td></tr><tr><td>96-Well-Mikrotiterplatten V-Boden</td><td>Thermo</td><td>2605</td><td></td></tr><tr><td>1X PBS</td><td>Gibco</td><td>10010-023</td><td></td></tr><tr><td>OneComp eBeads</td><td>eBioscience</td><td>01-1111-42</td><td></td></tr><tr><td>CD45.2-APC</td><td>eBioscience</td><td>17-0454-81</td><td>Arbeitsverdünnung 1:100</td></tr><tr><td>Ly-6G-eFlor 450</td><td>eBioscience</td><td>48-5931-82</td><td>Arbeitsverdünnung 1:100</td></tr><tr><td>BSA</td><td>HyClone</td><td>SH30574.03</td><td></td></tr><tr><td>RBC Lysis Buffer (10X)</td><td>Biolegend</td><td>420301</td><td></td></tr><tr><td>Lebend/tot fixierbares Aqua Totzellen-Färbekit</td><td>Invitrogen</td><td>L-34957</td><td></td></tr><tr><td>EDTA (0,5M)</td><td>lifetechnologies</td><td>15575-020</td><td></td></tr><tr><td>CD16/ CD32 FcBlock</td><td>BD</td><td>553142</td><td></td></tr><tr><td>Facs Röhrchen Polystyrol Rundbodenröhrchen</td><td>BD</td><td>352052</td><td></td></tr><tr><td>Formaldehyd</td><td>Polyscience</td><td>4018</td><td></td></tr></tbody></table>

intratracheale verabreichung von<em&gt; haemophilus influenzae</em&gt; in mausmodelle zur untersuchung atemwegsentzündung

Intra-tracheal Administration of Haemophilus influenzae in Mouse Models to Study Airway Inflammation

Hier beschreiben wir ein detailliertes Verfahren , um effizient und direkt Haemophilus influenzae liefern in die unteren Atemwege von Mäusen. Wir zeigen das Verfahren zur Herstellung von H. influenzae Inokulum, intratracheale Instillation von H. influenzae in die Lunge, Sammlung von broncho-alveolären Lavage (BALF), Analyse von Immunzellen in der BALF und RNA - Isolation für Differentialgenexpressionsanalyse. Dieses Verfahren kann verwendet werden, um die Lungenentzündungsreaktion auf alle Bakterien, Viren oder Pilze zu untersuchen. Direkt tracheale Instillation wird meist über intranasale oder Aerosolinhalationsverfahren bevorzugt, da es effizienter das bakterielle Inokulum in die unteren Atemwege mit geringer Mehrdeutigkeit liefert.

Intratracheale Instillation führte zu einer deutlich erhöhten Anzahl von Leukozyten in der BALF (1A, linkes Feld) als Anlage mit Kochsalzlösung. Die Differentialzählung Analyse der Leukozyten zeigte deutlich erhöhte neutrophile Infiltration (Abbildung 1, rechts). Die FACS - Analyse der Zellen in der BALF bestätigt weiter die erhöhte Anzahl von Neutrophilen (1B). Histologische Analyse von H &amp; E-gefärbten Schnitten des Lungengewebes ze...

Wir demonstrieren das Verfahren zur intratrachealen Inokulation von Haemophilus influenzae in die unteren Atemwege von Mäusen. Dies ist ein sehr nützliches Werkzeug, um Signalwege zu untersuchen, die die Entzündung der Atemwege in Mausmodellen regulieren.

Intratracheale Verabreichung von<em&gt; Haemophilus influenzae</em&gt; In Mausmodelle zur Untersuchung Atemwegsentzündung

Here, we describe a detailed procedure to efficiently and directly deliver Haemophilus influenzae into the lower respiratory tracts of mice. We ...

Das übergeordnete Ziel dieses Experiments besteht darin, die Immunantworten in der Lunge während einer bakteriellen Infektion zu untersuchen. Diese Fragestellung kann dabei helfen, zentrale Fragen im Bereich der Lungenerkrankungen zu beantworten, beispielsweise, welche regulatorischen Mechanismen und Gene die Lungenentzündung hemmen oder fördern. Der entscheidende Vorteil dieser Methode liegt darin, dass sie aufgrund der direkten Applikation des bakteriellen Inokulums in die unteren Atemwege sehr effizient und hochgradig reproduzierbar ist.Als Erstes werden die NTHi auf einer Schokoladen-Agar-Platte ausgestrichen. Die Platte wird über Nacht bei 37 Grad Celsius mit 5 % Kohlendioxid invertiert inkubiert. Am folgenden Tag werden die Bakterien in einer Gehirn-Herz-Infusionsbrühe kultiviert.Dann fügen Sie in einem Mikrozentrifugenröhrchen ein Milliliter der Brühe hinzu. Zentrifugieren Sie die Mischung fünf Minuten bei 4.000 g bei Raumtemperatur. Entsorgen Sie anschließend den Überstand und resuspendieren Sie das Pellet in einem Milliliter PBS.Wiederholen Sie diesen Waschschritt noch einmal. Verdünnen Sie anschließend 100 Mikroliter der resuspendierten Lösung in 900 Mikrolitern PBS und m

intra-tracheal-administration-haemophilus-influenzae-mouse-models-to

Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie und Infektion

Quelle: Venuprasad, K., et al. Intratracheale Verabreichung von Haemophilus influenzae in Mausmodellen zur Untersuchung von Atemwegsentzündungen. J. Vis. Exp. (2016)Dieses Video zeigt die intratracheale Verabreichung eines lungenpathogenen bakteriellen Inokulums an eine anästhesierte Maus, um eine Infektion der unteren Atemwege zu modellieren.

Durchführung der intratrachealen bakteriellen Verabreichung in einem Mausmodell

Quelle: Venuprasad, K., et al. Intratracheale Verabreichung von Haemophilus influenzae in Mausmodellen zur Untersuchung von Atemwegsentzündungen. J. Vis. Exp. (2016)Dieses Video zeigt die Entnahme und Verarbeitung von bronchoalveolärer Lavage-Flüssigkeit aus einer euthanasierten Maus, die mit nicht typisierbaren Haemophilus influenzae infiziert war, für die nachgelagerte Analyse.

Entnahme von bronchoalveolärer Lavage-Flüssigkeit aus einem Mausmodell, das mit nicht typisierbarem Haemophilus influenzae infiziert war

Quelle: Lenhard, A. et al. Ein Mausmodell für den Übergang von Streptococcus pneumoniae vom Kolonisator zum Erreger bei viraler Koinfektion wiederholt altersbedingte Erkrankungen. J. Vis. Exp. (2022)Dieses Video demonstriert ein Modell der Maus-Koinfektion, bei dem das Influenzavirus den Übergang von Streptococcus pneumoniae vom Kolonisator zu einem Krankheitserreger auslöst. Es beschreibt die Schritte, die bei bakterieller Besiedlung, Virusinfektion und Krankheitsprogression beteiligt sind.

Ein Mausmodell zur Untersuchung des pathogenen Übergangs von Streptococcus pneumoniae nach viraler Koinfektion

Wir haben eine einfache, zuverlässige und relativ kostengünstiges Verfahren zur Intubation bei Mäusen durch direkte Laryngoskopie mit einem Otoskop mit einem 2,0-mm-Spekulum entwickelt. Diese Technik ist atraumatisch und für wiederholte Messungen bei chronischen Experimente eingesetzt werden. Wir finden es besser als zuvor berichtet, Tracheostoma oder chirurgischen Techniken.

Intubation bei Mäusen<em&gt; Über</em&gt; Direkte Laryngoskopie Mit einem Otoskop

Die Verwendung eines Modells, das den Zustand von Lungenerkrankungen in Menschen nachahmt, ist für die Untersuchung der Pathophysiologie und / oder Ätiologie von bestimmten Krankheiten und für die Entwicklung von therapeutischen Eingriff. Hier eine nicht-invasive Methode, die intratracheale Intubation direkt liefern kann exogene Materialien Maus Lunge wird vorgestellt.

Nichtinvasive Intratracheale Intubation, die Pathologie und Physiologie der Maus Lung Study

Die Immunantwort des Wirts auf Pathogen-Infektion ist eine streng reguliert Prozess. Mit Hilfe eines Lipopolysaccharid Lungenexpositionsmodell in Mäusen, ist es möglich, hochauflösende Auswertungen der komplexen Mechanismen der Krankheitsentstehung verbunden durch.

Die Nutzung der Oropharyngeale Intratracheale PAMP Verwaltung und bronchoalveoläre Lavage, um die Immunantwort in Mäusen Bewerten

Intubation vermittelte intratracheale (IMIT) Instillation von Reagenzien ist ein ausgezeichnetes, nicht-invasive Methode zur Untersuchung Atemwegserkrankungen, sowie ein Verfahren zum Einträufeln therapeutische Reagenzien direkt in die Lunge. Es ist eine schnelle und hoch reproduzierbare Methode, die sich für vorklinische Tests ist.

Intubation vermittelte Intratracheale (IMIT) Instillation: eine nichtinvasive, lungenspezifischen Delivery System

Es besteht ein allgemeiner Mangel an Wissen darüber, wie Impfstoffe wirken. Hier schlagen wir die kombinierte Verwendung von reverser Genetik und chimären Knochenmarkmäusen vor, um Einblicke in die frühen Immunantworten des Wirts auf Impfstoffe zu erhalten, mit besonderem Fokus auf dendritische Zellen und T-Zell-Immunität.

Die intranasale Verabreichung von rekombinantem Influenza Vaccines in chimären Maus-Modelle zu Mucosale Immunität Studieren

Verschiedene Verfahren wurden für die Modellierung von bakterieller Pneumonie bei Mäusen in der Literatur beschrieben. Hier beschreiben wir eine nicht-invasive, kostengünstige, schnelle Methode zur Lungenentzündung durch Aspiration induzierenden (dh Inhalation) eines bakteriellen Inokulums in den Oropharynx pipettiert. Downstream Methoden zur Beurteilung der Lungen angeborenen Immunantwort sind auch detailliert.

Ein Nicht-invasive und in technischer Hinsicht nicht intensive Verfahren zur Induktion und Phänotypisierung für experimentelle bakterielle Pneumonie bei Mäusen

In dieser Studie stellen wir ein Protokoll zur zwei-Photon intravitalen Bildgebung und Zelle Interaktionsanalyse in der murinen trachealen Schleimhaut nach Infektion mit Influenza-Virus führen. Dieses Protokoll wird für Forscher Immunzelle Dynamik bei Atemwegsinfektionen relevant sein.

Bildgebung Zelle Interaktion in Trachealen Schleimhaut während der Influenza-Virus-Infektion mit Intravitalen zwei-Photonen-Mikroskopie

Dieses Protokoll enthält Anweisungen für die intranasale Verabreichung von IAV und die nachgelagerte Analyse von Lungenschäden an Mäusen und damit verbundenen transkriptionellen Veränderungen an Lungenzelltypen.

Modellierung der dysplastischen und funktionellen Lungenalveolarreparatur nach einer Influenzainfektion

Erfahren Sie die intratracheale Verabreichung von Haemophilus influenzae in Mäusen zur Untersuchung von Atemwegsentzündungen. Diese effiziente Methode ermöglicht die direkte Analyse immunologischer Reaktionen im unteren Respirationstrakt.

Intratracheale Verabreichung von

Weitere Videos entdecken