Name: Kutane Surgical Denervation: eine Methode zur Prüfung der Voraussetzung für die Nerven in Maus-Modellen der Haut-Krankheit (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-26T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 1 s
Description: Erfahren Sie die chirurgische Denervierung der Haut bei Mäusen, um die Rolle von Nerven in normaler und pathologischer Hautbiologie zu untersuchen. Diese Methode ermöglicht den Vergleich intakter und denervierter Gewebeproben.

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Die Autoren danken Autumn Peterson für die Hilfe bei der Mausfotografie, Daniel Thoresen für die Hilfe bei Mäusen und Dr. Nicole Ward und Abdelmadjid Belkadi für die Hilfe bei der chirurgischen Denervierung. Diese Studien wurden durch Mittel des National Institute of Arthritis and Musculoskeletal and Skin Diseases (Zuschüsse R00AR059796 und R01AR065409) unterstützt. die Abteilung für Dermatologie der Universität von Michigan; das Biological Sciences Scholars Program; das Zentrum für Organogenese; das Comprehensive Cancer Center der Universität von Michigan; und der John S. and Suzanne C. Munn Cancer Fund. S.C.P. wurde mit Mitteln des National Institute of General Medical Sciences gefördert (Grant T32 GM007315). Diese Arbeit wurde auch vom NIH Intramural Research Program, Center for Cancer Research, National Cancer Institute, unterstützt.

Alle in diesem Protokoll beschriebenen Verfahren wurden in Übereinstimmung mit den Vorschriften von der University of Michigan Einheit für Labortiermedizin etabliert durchgeführt. 1. Induce genetische Rekombination bei Mäusen Hinweis: Die Gli1 tm3 (cre / ERT2) Alj / J - Maus - Stamm (Gli1-CreERT2) 13 ermöglicht Targeting von Tamoxifen-induzierte genetische Rekombination Epithelien TD. Überqueren Sie diesen Stamm mit B6.129S4-Gt (ROSA) 26Sor tm1Sor / J Reporter - Mäuse (LacZ) 22 Gli1 zu erzeugen; LacZ Tiere TD Zellen sichtbar zu machen , indem ganze Montage unten Färbung. <ol><li> Bereiten tamoxifen Lösung auf eine Konzentration von 12,5 mg / ml in Maisöl. <ol><li> In einem 1,5-ml-Röhrchen, in den 20 mg kristallines Tamoxifen, und dann 1 ml Maisöl. Fest mit Klebeband um das Rohr zu einem Wirbelmischer und Wirbel kontinuierlich bei der höchsten Einstellung bei RT, bis die Tamoxifen vollständig (2-4 h) gelöst hat, alsbestätigt durch das Rohr unter einem Binokular auf die Abwesenheit von Tamoxifen-Partikel zu untersuchen. </li><li> Die Lösung wird in einem 15 ml-Röhrchen und verdünne die Tamoxifen auf eine Endkonzentration von 12,5 mg / ml mit zusätzlichem Maisöl. Mischen durch Vortexen die viskose Lösung für weitere 30 sec. Bewahren Sie diese Lösung für bis zu 1 Woche bei 4 ° C im Dunkeln. </li></ol></li><li> Injizieren der Tamoxifen - Lösung intraperitoneal in Gli1; ​​LacZ Mäusen in einem Volumen von 200 &amp; mgr; l pro 20 g Mauskörpergewicht, für eine wirksame tamoxifen Dosis von 2,5 mg pro 20 g Mausgewicht. </li></ol> 2. Ernte Hautproben Hinweis: Je nach Experiment Ernte Hautbiopsien mehrere Tage bis Wochen nach einer Tamoxifen-Induktion. Für alle Operationen, folgen Standardprotokolle zur Bekämpfung von Nagetieren Chirurgie, einschließlich sterile Handschuhe verwenden, eine chirurgische Maske oder Haarnetz tragen, und bedeckt das Tier mit einem sterilen Operationstuch während des Verfahrens. <ol><li> Bereiten Sie 10fach Betäubungslösung durch Mischen von 90 mg / ml Ketamin und 6,5 mg / ml Xylazin in Wasser. Verdünnen dieser Stammlösung 01.10 in sterile PBS unmittelbar vor der Verwendung und Speicherung bei RT im Dunkeln für bis zu 8 Monaten. <ol><li> Alternativ anästhesieren Mäusen durch Isofluran-Inhalations, mit einer Gaskonzentration von 4% mit Sauerstoff beginnen vollständig das Tier zu betäuben, und dann anschließend das für die Dauer des Verfahrens auf 1-2% zu senken. </li></ol></li><li> Injizieren Sie die Anästhesielösung intraperitoneal bei einer Dosis von 200 &amp; mgr; l pro 20 g Körpergewicht der Maus. Überprüfen Sie, ob das Tier die richtige Ebene der Sedierung durch Zehe Prise Test erreicht hat, und bestätigen, dass die Herz- und Atemfrequenz sind normal (etwa 600 Schläge und 160 Atemzüge pro Minute, jeweils). </li><li> Verwenden Sie einen elektrischen Klipper das Haar von der Stelle der Biopsie an der dorsalen Rückenhaut, wobei darauf geachtet, nicht zu nick oder beschädigen die darunter liegende Haut zu entfernen. </li><li> Bereiten Sie die Operationsstelle durch die Rasur Abwischend Bereich in einer anterioren-to-posterior mit Betadine und Alkoholtupfer. Sicherstellen, dass alle Haarabschnitte von der Website entfernt werden. </li><li> Skizzieren Sie die Biopsiestelle eine schwarze Markierung, legen Sie das Tier auf eine wärmende Unterlage in einem aseptischen OP-Bereich mit und decken mit einem sterilen Operationstuch (zu Demonstrationszwecken wurde sterile Abdeckung weggelassen Sichtbarkeit zu erhöhen). Hinweis: Um die Längsschnitte der Haarfollikel zu erhalten, die längere Kante der Biopsie (die Kante werden für die Histologie geschnitten, ~ 1 cm) in einer anterior-posterioren Richtung laufen soll (parallel zur Richtung der Haarfollikel), parasagital zu der dorsalen Mittellinie (1A). </li><li> Verwenden Sie eine sterile # 11 Skalpell eine vollständige Dicke Exzision entlang des markierten Bereichs zu machen, ohne die zugrunde liegende Muskelfaszie zu beschädigen. Hinweis: Die ausgeschnittene Hautgewebe enthält die Epidermis, Dermis, subkutanes Fett und panniculus carnosus. Bluten ist in der Regel minimal. </li><li> Flatten ter Hautprobe auf einem trockenen Papiertuch ausgeschnitten, Seite Dermis nach unten, schneiden Sie das überschüssige Papiertuch, und speichern Sie die Probe in kaltem PBS für bis zu 1 Stunde weg, wenn andere Proben gesammelt werden müssen. Wenn Sie fertig sind, gehen Sie zu den Schritten 3.1 oder 3.2 Proben für die Histologie zu verarbeiten, oder Schritt 4 für ganze Montage β-Galactosidase (LacZ) Färbung. </li><li> Suture schließen Sie die Biopsiestelle mit 6-0 Nylonnaht, in einem einfachen unterbrochenen Muster etwa 3 mm voneinander entfernt. </li><li> Rückkehr nicht Mäuse, die Chirurgie in den gleichen Käfig wie andere Tiere durchlaufen, bis nach vollständiger Genesung haben. </li><li> Überwachen Tiere unmittelbar nach der Operation, bis sie wieder zu Bewusstsein, und auch täglich, bis die OP-Bereich verheilt ist, in der Regel innerhalb von 1 Woche. Verwenden Sie Analgetika entsprechend bezeichneten institutionellen Tierpflege und Richtlinien zur Verwendung, wenn Mäuse Anzeichen von Schmerzen oder Leiden aufweisen. Entfernen Nähte innerhalb von 7-10 Tagen nach der Operation. Hinweis: Bei Bedarf vorbereiten Analgetikum Lösung von Carprofen Verdünnung (50 mg / ml Stamm solutIon) 1: 100 in sterilem Wasser. Injizieren Sie die Lösung subkutan zwischen die Schulterblätter in der Nähe der Genick, in einer Dosis von 200 &amp; mgr; l pro 20 g Körpergewicht (5 mg / kg Maus Körpergewicht). </li></ol> 3. Verfahren Die Proben für die Histologie Hinweis: Um das zu beheben und verarbeiten, um die ausgeschnittenen Gewebe, entweder Methode unten, je nach Anwendung. <ol><li> Um in Paraffin eingebettete histologische Proben, fixieren Sie die Haut in 3,7% Formalin in PBS O / N bei RT und Speicher in 70% Ethanol für bis zu 2 Wochen generieren. Entfernen Sie das Papiertuch, bevor sie in Paraffin eingebettet wird. </li><li> Für gefrorene histologischen Proben zu erzeugen, um das Gewebe in kaltem 4% Paraformaldehyd in PBS versenken und sanft für 1 Stunde schütteln. Entfernen Sie die Lösung und waschen Sie die Probe mit 3 Änderungen von PBS, etwa jeweils 5 Minuten. Als nächstes wird die Probe in 30% Saccharose in PBS überschwemmen das Gewebe ( &quot;Sucrose Versenken&quot;) zu cryoprotect. </li><li> Inkubieren unter leichtem O / N bei 4 ° C schütteln. Am nächsten Tag, entfernen Sie das Papier Schlepptauel und überschüssiges Fettgewebe von der Hautseite der Haut wegschneiden. Einbetten des Gewebes direkt in Oktober und lagern Sie den gefrorenen Block bei -80 ° C. Hinweis: Nach dem Schneiden, entweder Paraffin oder gefrorenen Proben können durch Immunhistochemie gefärbt werden TDs zu identifizieren, Merkel - Zellen und Nerven Antikörper gegen Keratin 17, Keratin 8 und Neurofilament mit jeweils wie vorstehend beschrieben 5,19. </li></ol> 4. Visualize Proben von Whole-mount LacZ-Färbung <ol><li> Bereiten Sie X-gal-Färbung Lösung. <ol><li> Kombinieren 0,94 g monobasisches Natriumphosphat und 2,6 g dibasisches Natriumphosphat in 250 ml sterilem Wasser. Der pH-Wert auf 7,3. Dazu werden 0,5 ml 1 M Magnesiumchlorid, 0,528 g Kalium-Ferrocyanid und 0,412 g Kaliumferricyanid. In 250 ul octylphenyl-Polyethylenglykol und 125 mg Deoxycholat. Die Basislösung kann für bis zu 6 Monate im Dunkeln bei 4 ° C gelagert werden. </li><li> Bereiten 50x Lager X-gal solution von Dimethylformamid zur X-gal Vorratsflasche Zugabe einer 50 mg / ml Lösung zu erzeugen. Bewahren Sie diese Lösung bei -20 ° C im Dunkeln. </li><li> Unmittelbar vor der Verwendung, Lager X-gal-Lösung 01.50 in X-gal Basenlösung verdünnen Färbelösung zu erzeugen. Für kleinere Biopsien (&lt;1 cm 2), aliquoten 1-2 ml Färbelösung pro Probe. </li></ol></li><li> Befestigen Sie die Hautprobe in Schritt gesammelt 2,7 in einer Lösung, die 2% Paraformaldehyd / 0,2% Glutaraldehyd in kaltem PBS für 30 min auf Eis sanft schütteln. Für kleinere Biopsien (&lt;1 cm 2), 1-2 ml Fixierungslösung pro Probe verwenden. Hinweis: Alternativ fixieren Proben in 2-4% Paraformaldehyd nur, oder nur in 0,5% Glutaraldehyd. Optimale Fixierung Bedingungen hängen von dem Gewebe, dem Grad der LacZ-Expression und Anwendung. </li><li> Entfernen Sie die Fixierungslösung und Spülen Proben mit 3 Änderungen der PBS, 5 min jeweils auf einem Schüttler bei RT. </li><li> Entfernen Sie das Papiertuch unterhalb der Probe und wegschneiden excess Fettgewebe von der dermalen Seite der Haut durch das Fett mit stumpfen Pinzette greifen und Trimmen mit Dissektionsscheren. </li><li> Tauchen Sie die Probe in X-gal-Färbung Lösung und Inkubation bei 37 ° CO / N. LacZ - Expression wird als blauer Fleck unter einem Binokular (Abbildung 1B) sichtbar sein. Hinweis: Wenn die Signalstärke schwach ist, ersetzen Sie die Färbelösung am nächsten Tag und wiederholen Sie die O / N Inkubation. Wenn die Hintergrundfärbung zu intensiv ist, reduzieren die Zeit der Färbung oder der Probe bei RT inkubieren anstelle von 37 ° C. </li><li> Entfernen Sie die Färbelösung und waschen Sie die Proben in drei Änderungen von PBS für ca. 5 min 3% DMSO enthält, vorsichtig bei RT schütteln. </li><li> Wasch Proben in 2-3 Änderungen von 70% Ethanol für jeweils 5 Minuten. Store Proben in 70% Ethanol. </li></ol> 5. Chirurgische Denervation <ol><li> Anesthetize das Tier, wie in Schritt 2.2 und rasieren die gesamte Rückenhaut. </li><li> Bereiten Sie den OP-Bereich of der Rückseite Haut mit Betadine und Alkoholtupfer, und das Tier mit einem sterilen Operationstuch abdecken (zu Demonstrationszwecken wurde sterile Abdeckung zu erhöhen Sichtbarkeit weggelassen). Halten Sie das Tier warm und ein Heizkissen mit, während in einem aseptischen OP-Bereich arbeitet. </li><li> Einen Einschnitt ein steriles Skalpell # 11 entlang der dorsalen Mittellinie von der Basis des Halses etwa 0,5 cm oberhalb des Schwanzes verwenden. </li><li> Mit stumpfen Pinzette, reflektieren die Haut sanft auf der linken Seite von der Flanke entfernt das darunter liegende Gewebe aus den Skapulier Fettpolstern in der Nähe des Halses zu visualisieren über dem Hinterbein nur. Hinweis: dorsale Hautnerven als weiße Stränge erscheinen , die kaudal durch die transluzente Faszie des Rumpfwand reisen , bevor scharfe Kurven machen und das lockere Bindegewebe unter der Haut eintritt (Abbildung 2). </li><li> Mit ultra-feinen Pinzette unter einem Lichtmikroskop seziert, entfernen Sie die Nerven ausschließlich von der linken Seite der Animal liegt an anatomischen Stellen T3-12 durch Zupfen von wo die Segmente Biegung an der Rumpfwand an ihren Eintrittsstellen in die Haut (Abbildung 2). <ol><li> Orient Zange vertikal und die Nerven zu entfernen um etwa 0,5 cm unterhalb ihrer bend Seiten Greifen und Ziehen nach oben, wodurch die Nerven zu dehnen und zu trennen von dem umgebenden Gewebe (2C - E). Achten Sie darauf, zu vermeiden benachbarte Blutgefäße zerreißen. </li><li> Weiter, bis alle Nerven von der Rumpfwand an der Haut verlauf entfernt werden. Sie nicht die Nerven innerhalb der dichten Faszie des Rumpfwand stören. Halten Sie das Gewebe feucht während des gesamten Verfahrens durch periodisches Tropfen steriler 0,9% Salzlösung anwenden. </li><li> Alternativ entfernen Nerven durch ihre proximalen Enden in der Nähe der Rumpfwand mit einer Pinzette greifen und schnippeln mit einer feinen Schere. Danach trennen die distalen Enden in der Nähe der Haut (2F - H). Schließlich entfernen Sie die intervening Nervensegmente (Abbildung 2i). </li></ol></li><li> Entfernen Sie alle Nerven von der Hautlappen ausgesetzt in Schritt 5.4. Diese Fasern umfassen , um die distalen Zweige der dorsalen Hautnerven und erscheinen als weiße verzweigenden Stränge angeordnet sporadisch im Bindegewebe auf der dermalen Seite der Haut Klappe (Figuren 2J - K). <ol><li> Um diese feinen Zweige zu entfernen, positionieren Sie die feinen Pinzette auf die Hautoberfläche in etwa parallel, greifen die Nerven und zupfen nach oben zu vermeiden, Blutgefäße zu stören und Stechen der Haut. Fortfahren, bis alle sichtbaren Nerven entfernt wurden. </li></ol></li><li> Mit stumpfen Dissektion, spiegeln die Haut auf der rechten Seite der Rückenmittellinie Schnitt, aber nicht entfernen Sie die Nerven. Dies wird als der Gegenscheinoperierten Kontrolle dienen. </li><li> Suture entlang der dorsalen Mittellinie in einer einfachen unterbrochenen Muster den Schnitt zu schließen. Überwachen Sie das Tier während der Wiederherstellung und Post-opertiv wie zuvor gezeigt (Schritte 2,8-10). Entfernen Nähte innerhalb von 7-10 Tagen nach der Operation. </li><li> Um funktionell beurteilen stabil Denervierung bis zu mehreren Wochen nach der Operation, entfernen Sie die Haare aus der Rückenhaut eine elektrische Klipper verwenden. </li><li> stechen Sie vorsichtig die denervierten Hautbereich eine Injektionsnadel, und beachten Sie, ob das Tier, in der Regel durch Schaudern oder den Kopf drehen reagiert. Wenn der Hautbereich stabil denervierten wurde, wird das Tier zeigen wenig oder keine Antwort. </li><li> Mit einem schwarzen Marker, umreißen die Fläche keine Antwort, sowie eine Fläche von ähnlicher Größe und Lage auf der Gegenseite Schein. </li><li> Sammeln Sie Biopsien von diesen Seiten, wie in den Schritten 2.1-2.9 für die Analyse. Hinweis: Alternativ kann die gesamte dorsale Rückenhaut, einschließlich denervierten und scheinoperierten Regionen können für ganze-mount-Färbung ähnlich wie ein einzelnes Blatt entfernt werden, wie in Schritt 4 beschrieben. </li></ol>

<ol><li>Magnon, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autonomic+nerve+development+contributes+to+prostate+cancer+progression%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Autonomic nerve development contributes to prostate cancer progression.</a> Science. 341, 1236361(2013).</li>
<li>Zhao, C. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Denervation+suppresses+gastric+tumorigenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Transl+Med%22%5BJournal%5D)">Denervation suppresses gastric tumorigenesis.</a> Sci Transl Med. 6, 115(2014).</li>
<li>Chiu, I. M., von Hehn, C. A., Woolf, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurogenic+inflammation+and+the+peripheral+nervous+system+in+host+defense+and+immunopathology%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Neurogenic inflammation and the peripheral nervous system in host defense and immunopathology.</a> Nat Neurosci. 15, 1063-1067 (2012).</li>
<li>Gautron, L., Elmquist, J. K., Williams, K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+control+of+energy+balance%3A+translating+circuits+to+therapies%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Neural control of energy balance: translating circuits to therapies.</a> Cell. 161, 133-145 (2015).</li>
<li>Peterson, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Basal+cell+carcinoma+preferentially+arises+from+stem+cells+within+the+hair+follicle+and+mechanosensory+niches%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Basal cell carcinoma preferentially arises from stem cells within the hair follicle and mechanosensory niches.</a> Cell Stem Cell. 16, 400-412 (2015).</li>
<li>Ostrowski, S. M., Belkadi, A., Loyd, C. M., Diaconu, D., Ward, N. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cutaneous+denervation+of+psoriasiform+mouse+skin+improves+acanthosis+and+inflammation+in+a+sensory+neuropeptide-dependent+manner%5BTitle%5D)+AND+%22J+Invest+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Cutaneous denervation of psoriasiform mouse skin improves acanthosis and inflammation in a sensory neuropeptide-dependent manner.</a> J Invest Dermatol. 131, 1530-1538 (2011).</li>
<li>Ward, N. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Botulinum+neurotoxin+A+decreases+infiltrating+cutaneous+lymphocytes+and+improves+acanthosis+in+the+KC-Tie2+mouse+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Invest+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Botulinum neurotoxin A decreases infiltrating cutaneous lymphocytes and improves acanthosis in the KC-Tie2 mouse model.</a> J Invest Dermatol. 132, 1927-1930 (2012).</li>
<li>Roggenkamp, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epidermal+nerve+fibers+modulate+keratinocyte+growth+via+neuropeptide+signaling+in+an+innervated+skin+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Invest+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Epidermal nerve fibers modulate keratinocyte growth via neuropeptide signaling in an innervated skin model.</a> J Invest Dermatol. 133, 1620-1628 (2013).</li>
<li>Riol-Blanco, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nociceptive+sensory+neurons+drive+interleukin-23-mediated+psoriasiform+skin+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Nociceptive sensory neurons drive interleukin-23-mediated psoriasiform skin inflammation.</a> Nature. 510, 157-161 (2014).</li>
<li>Zanchi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Botulinum+toxin+type-A+for+the+treatment+of+inverse+psoriasis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Eur+Acad+Dermatol+Venereol%22%5BJournal%5D)">Botulinum toxin type-A for the treatment of inverse psoriasis.</a> J Eur Acad Dermatol Venereol. 22, 431-436 (2008).</li>
<li>Farber, E. M., Lanigan, S. W., Rein, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+psychoneuroimmunology+in+the+pathogenesis+of+psoriasis%5BTitle%5D)+AND+%22Cutis%22%5BJournal%5D)">The role of psychoneuroimmunology in the pathogenesis of psoriasis.</a> Cutis. 46, 314-316 (1990).</li>
<li>Dewing, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Remission+of+psoriasis+associated+with+cutaneous+nerve+section%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Remission of psoriasis associated with cutaneous nerve section.</a> Arch Dermatol. 104, 220-221 (1971).</li>
<li>Brownell, I., Guevara, E., Bai, C. B., Loomis, C. A., Joyner, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nerve-derived+sonic+hedgehog+defines+a+niche+for+hair+follicle+stem+cells+capable+of+becoming+epidermal+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Nerve-derived sonic hedgehog defines a niche for hair follicle stem cells capable of becoming epidermal stem cells.</a> Cell Stem Cell. 8, 552-565 (2011).</li>
<li>Liao, X. H., Nguyen, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epidermal+expression+of+Lgr6+is+dependent+on+nerve+endings+and+Schwann+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Epidermal expression of Lgr6 is dependent on nerve endings and Schwann cells.</a> Exp Dermatol. 23, 195-198 (2014).</li>
<li>Lumpkin, E. A., Marshall, K. L., Nelson, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+cell+biology+of+touch%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">The cell biology of touch.</a> J Cell Biol. 191, 237-248 (2010).</li>
<li>Maricich, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Merkel+cells+are+essential+for+light-touch+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Merkel cells are essential for light-touch responses.</a> Science. 324, 1580-1582 (2009).</li>
<li>Reinisch, C. M., Tschachler, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+touch+dome+in+human+skin+is+supplied+by+different+types+of+nerve+fibers%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Neurol%22%5BJournal%5D)">The touch dome in human skin is supplied by different types of nerve fibers.</a> Ann Neurol. 58, 88-95 (2005).</li>
<li>Doucet, Y. S., Woo, S. H., Ruiz, M. E., Owens, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+touch+dome+defines+an+epidermal+niche+specialized+for+mechanosensory+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">The touch dome defines an epidermal niche specialized for mechanosensory signaling.</a> Cell Reports. 3, 1759-1765 (2013).</li>
<li>Xiao, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+Hedgehog+signaling+maintains+stem+cell+renewal+in+the+sensory+touch+dome+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Neural Hedgehog signaling maintains stem cell renewal in the sensory touch dome epithelium.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 112, 7195-7200 (2015).</li>
<li>English, K. B., Van Norman, D. K. -V., Horch, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+chronic+denervation+in+type+I+cutaneous+mechanoreceptors+%28Haarscheiben%29%5BTitle%5D)+AND+%22Anat+Rec%22%5BJournal%5D)">Effects of chronic denervation in type I cutaneous mechanoreceptors (Haarscheiben).</a> Anat Rec. 207, 79-88 (1983).</li>
<li>Burgess, P. R., English, K. B., Horch, K. W., Stensaas, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patterning+in+the+regeneration+of+type+I+cutaneous+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Patterning in the regeneration of type I cutaneous receptors.</a> J Physiol. 236, 57-82 (1974).</li>
<li>Soriano, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generalized+lacZ+expression+with+the+ROSA26+Cre+reporter+strain%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Genet%22%5BJournal%5D)">Generalized lacZ expression with the ROSA26 Cre reporter strain.</a> Nat Genet. 21, 70-71 (1999).</li>
<li>Wright, M. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atoh1%2B+progenitors+maintain+the+Merkel+cell+population+in+embryonic+and+adult+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Atoh1+ progenitors maintain the Merkel cell population in embryonic and adult mice.</a> J Cell Biol. 208, 367-379 (2015).</li>
<li>Kumar, A., Brockes, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nerve+dependence+in+tissue%2C+organ%2C+and+appendage+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Nerve dependence in tissue, organ, and appendage regeneration.</a> Trends Neurosci. 35, 691-699 (2012).</li>
<li>Rinkevich, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clonal+analysis+reveals+nerve-dependent+and+independent+roles+on+mammalian+hind+limb+tissue+maintenance+and+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Clonal analysis reveals nerve-dependent and independent roles on mammalian hind limb tissue maintenance and regeneration.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 111, 9846-9851 (2014).</li>
<li>Ueno, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dependence+of+corneal+stem%2Fprogenitor+cells+on+ocular+surface+innervation%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Dependence of corneal stem/progenitor cells on ocular surface innervation.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 53, 867-872 (2012).</li>
<li>Westphalen, C. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-lived+intestinal+tuft+cells+serve+as+colon+cancer-initiating+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Long-lived intestinal tuft cells serve as colon cancer-initiating cells.</a> J Clin Invest. 124, 1283-1295 (2014).</li>
<li>Uhmann, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Hedgehog+receptor+Patched+controls+lymphoid+lineage+commitment%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">The Hedgehog receptor Patched controls lymphoid lineage commitment.</a> Blood. 110, 1814-1823 (2007).</li>
<li>Lau, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Temporal+control+of+gene+deletion+in+sensory+ganglia+using+a+tamoxifen-inducible+Advillin-Cre-ERT2+recombinase+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Pain%22%5BJournal%5D)">Temporal control of gene deletion in sensory ganglia using a tamoxifen-inducible Advillin-Cre-ERT2 recombinase mouse.</a> Mol Pain. 7, 100(2011).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Nerves dienen wichtige Funktionen nicht nur in der Empfindung, sondern auch in Säugetierorgan Entwicklung, Pflege und Regeneration 13,24-27. Wie Nerven kürzlich verwickelt in verschiedenen Hautkrankheiten haben, werden die hier beschriebenen Techniken kann die Anforderung für Innervation in einer Vielzahl von Tierkrankheitsmodellen zur Untersuchung verwendet werden. Tatsächlich erlaubt die einseitige Denervierung Technik für den direkten Vergleich der Haut mit entweder intakten oder gestört Nerven aus der gle...

In den letzten Jahren hat sich die Wertschätzung für den Einfluss von Nerven auf Krankheiten, die typischerweise nicht als klassische Neuropathien1-4 angesehen werden, erweitert. In der Haut deuten neuere experimentelle Beweise darauf hin, dass sensorische Nerven verschiedene Pathologien modulieren können, die von Psoriasis bis Krebs reichen5-9. Dies wurde mit Techniken wie der chirurgischen Denervierung und der pharmakologischen Hemmung der neuronalen Funktion bei Nagetieren nachgewiesen. Im Fall von Psoriasis haben diese Studien einen mechanistischen Rahmen für das Verständnis geliefert, warum sich menschliche Psoriasis-Plaques nach Verlust der neuronalen Funktion zurückbilden7,10-12.
Hautnerven können auch die Genexpression beeinflussen13,14 und sind entscheidend für die Mechanosensorik in normaler Haut15. Insbesondere bestehen Touch Dome (TD)-Epithelien aus einem Fleck von säulenförmigen Epidermiszellen in Gegenüberstellung mit neuroendokrinen Merkelzellen, die durch langsam angepasste Nervenfasern vom Typ 1 (SA1)16-18 innerviert werden. TDs vermitteln die Empfindung von leichten Berührungen und zeigen nachweislich die Aktivität des Hedgehog-Signalwegs5,19. Die Aufrechterhaltung der TD hängt von der Innervationab 20,21, da Nerven Hedgehog-Liganden sezernieren, um normale TDs und die mit ihnen assoziierten Merkelzellen aufrechtzuerhalten19. Darüber hinaus fördert die Innervation die Hedgehog-abhängige Tumorbildung aus TD-Epithelien5. Zusammengenommen bekräftigen diese Studien die Vorstellung, dass komplizierte molekulare Wechselwirkungen, die zwischen Nerven und den umgebenden Zellen in ihrer Nische stattfinden, sowohl für die normale TD-Physiologie als auch für die Krankheit entscheidend sind.
Um die Natur dieser Wechselwirkungen zu untersuchen, beschreiben wir hier eine Reihe von in vivo Techniken zur Manipulation der Genexpression in der TD, sowie zur Entnahme von Hautbiopsien für die TD-Visualisierung nach der Abstammungsverfolgung. Schließlich beschreiben wir Verfahren zur Durchführung einer unilateralen chirurgischen Denervierung, bei der Nerven von einer Seite der Rückenhaut der Maus entfernt werden, während die kontralaterale Seite als vorgetäuschte interne Kontrolle intakt bleibt. Einige Wochen nach der Operation werden denervierte und scheinkontrollierte Haut verglichen, um Veränderungen zu beurteilen, die auftreten, wenn Nerven abgetragen werden. Obwohl diese Techniken im Zusammenhang mit normalen TDs beschrieben werden, wurde das Denervierungsverfahren verwendet, um den Bedarf an Nerven in Mausmodellen der Psoriasis6, der Wundheilung13 und der Tumorgenese5 zu untersuchen. Da die Haut für wiederholte Biopsien empfänglich ist, bietet dies die Möglichkeit, das langfristige Schicksal der markierten Zellen zu überwachen oder das Fortschreiten der Krankheit über mehrere Zeitpunkte hinweg zu beurteilen.

<table><tbody><tr><td>Alkoholvorbereitungspads</td><td>PDI</td><td>B339</td><td></td></tr><tr><td>AnaSed (Xylazin)</td><td>Lloyd</td><td>NADA 139-236</td><td></td></tr><tr><td>Antikörper, Anti-Keratin 8</td><td>Entwicklungsstudien Hybridoma Bank</td><td>TROMA-I</td><td>Ratten-Antikörper, Verwendung in einer Konzentration von 1:500</td></tr><tr><td>Antikörper, Anti-Keratin 17</td><td>Cell Signaling</td><td>#4543</td><td>Kaninchen-Antikörper, Verwendung in einer Konzentration von 1:1.000</td></tr><tr><td>Antikörper, Anti-Neurofilament</td><td>Cell Signaling</td><td>C28E10</td><td>Kaninchen-Antikörper, Verwendung in einer Konzentration von 1:500</td></tr><tr><td>Betadine Vorbereitungspads</td><td>Medline</td><td>MDS093917</td><td></td></tr><tr><td>Carprofen (Rimadyl)</td><td>Zoetis</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cordless wiederaufladbare Haarschneidemaschine</td><td>Wahl</td><td>Trimmer Modell 8900</td><td></td></tr><tr><td>Maisöl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C8267</td><td></td></tr><tr><td>Kryostat</td><td>Leica</td><td>CM1860</td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>D1306</td><td>Verwendung in einer Konzentration von 1:1.000</td></tr><tr><td>Desoxycholat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D6750</td><td></td></tr><tr><td>Enthaarungscreme</td><td>Nair</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Dimethylforamid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>319937</td><td></td></tr><tr><td>Dimethylsulfoxid (DMSO)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8418</td><td></td></tr><tr><td>Glutaraldehyd</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G5882</td><td></td></tr><tr><td>ImmEdge Pen</td><td>Vector Laboratories</td><td>H-4000</td><td></td></tr><tr><td>Ketamin HCl</td><td>Hospira</td><td>NDC 0409-2051-05</td><td></td></tr><tr><td>Magnesiumchlorid</td><td>Sigma</td><td>M8266</td><td></td></tr><tr><td>Mikro-Deckglas</td><td>VWR</td><td>48404-454</td><td></td></tr><tr><td>Mikro-Objektträger</td><td>VWR</td><td>48311-703</td><td></td></tr><tr><td>10% neutrales gepuffertes Formalin</td><td>VWR</td><td>BDH0502-4LP</td><td></td></tr><tr><td>6-0 Nylon Nahtmaterial</td><td>DemeTECH</td><td>NL166012F4P</td><td></td></tr><tr><td>Octylphenyl-Polyethylenglykol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I8896</td><td></td></tr><tr><td>O.C.T. Verbindung</td><td>Sakura Tissue-Tek</td><td>4583</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehyd</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>158127</td><td></td></tr><tr><td>Kaliumferrocyanid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9387</td><td></td></tr><tr><td>Kaliumferricyanid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>702587</td><td></td></tr><tr><td>Natriumphosphat monobasisch</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9791</td><td></td></tr><tr><td>Natriumphosphat zweibasisch</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S5136</td><td></td></tr><tr><td>Saccharose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>84097</td><td></td></tr><tr><td>Tamoxifen</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T5648-1G</td><td></td></tr><tr><td>Ultrafeine Pinzette</td><td>Dumont</td><td>0103-5-PO</td><td></td></tr><tr><td>Vectashield</td><td>Vector Laboratories</td><td>H1000</td><td></td></tr><tr><td>X-gal</td><td>Roche</td><td>10 651 745 001</td><td>Vor der Verwendung in Dimethylforamid auflösen, um einen 50-fachen Stamm zu erzeugen</td></tr></tbody></table>

kutane surgical denervation: eine methode zur prüfung der voraussetzung für die nerven in maus-modellen der haut-krankheit

Cutaneous Surgical Denervation:  A Method for Testing the Requirement for Nerves in Mouse Models of Skin Disease

kutane somatosensorische Nerven haben die Funktion, verschiedene Reize zu erkennen, die auf die Haut einwirken. Zusätzlich zu ihrer etablierten sensorischen Rolle deuten neuere Studien darauf hin, dass Nerven auch Hauterkrankungen wie atopische Dermatitis, Psoriasis und Krebs modulieren können. Hier beschreiben wir Protokolle zum Testen der Anforderung an Nerven bei der Aufrechterhaltung eines kutanen mechanosensorischen Organs, der Tastkuppel (TD). Insbesondere diskutieren wir Methoden zur genetischen Markierung, Ernte und Visualisierung von TDs durch Whole-Mount-Färbung und zur Durchführung einer einseitigen chirurgischen Denervierung an der dorsalen Rückenhaut von Mäusen. Zusammen können diese Ansätze verwendet werden, um die TD-Morphologie und die Genexpression in denervierter sowie scheinoperierter Haut desselben Tieres direkt zu vergleichen. Diese Methoden können auch leicht angepasst werden, um den Bedarf an Nerven in Mausmodellen der Hautpathologie zu untersuchen. Schließlich bietet die Möglichkeit, wiederholt Hautproben zu nehmen, die Möglichkeit, das Fortschreiten der Krankheit in verschiedenen Stadien und zu verschiedenen Zeitpunkten nach der Einleitung zu überwachen.

Durch die Erzeugung von Mäusen Tamoxifen-induzierbare Gli1-CreERT2 und einem LacZ - Reporter - Allel exprimieren , ist es möglich , TD Epithelien und verfolgen das Schicksal dieser Zellen im Laufe der Zeit sichtbar zu machen. Das gesamte Denervierung Verfahren kann in der Regel innerhalb von 1 Stunde pro Maus abgeschlossen sein und minimal Qualen des Tieres verursachen sollte. Unsere frühere Studien haben gez...

Dieser Artikel enthält detaillierte Protokolle für die genetische Markierung von Maushaut, chirurgische Denervierung, Hautbiopsie und Visualisierung markierter Epithelien durch Ganzbett-β-Galactosidase-Färbung. Mit diesen Methoden kann der Bedarf an Nerven in Mausmodellen normaler und pathologischer Haut getestet werden.

Kutane Surgical Denervation: eine Methode zur Prüfung der Voraussetzung für die Nerven in Maus-Modellen der Haut-Krankheit

Cutaneous somatosensory nerves function to detect diverse stimuli that act upon the skin. In addition to their established sensory roles, recent studies ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, den Einfluss von Nerven auf normale und pathologische Haut zu untersuchen. Diese Methode kann verwendet werden, um zentrale Fragen in der Biologie der normalen Haut zu beantworten, beispielsweise, ob kutane Nerven die Homöostase und Krankheiten beeinflussen. Der Hauptvorteil dieser Technik liegt darin, dass intakte und denervierte Hautproben desselben Tieres miteinander verglichen werden können.Die visuelle Demonstration dieser Technik ist entscheidend, da Nerven schwer zu erkennen und mit minimalem Schaden für das umliegende Gewebe zu entfernen sind. Zuerst betäuben Sie die Maus und überprüfen, ob die richtige Sedierungstiefe durch einen Zehenquetschtest erreicht wurde. Bestätigen Sie außerdem, dass die Maus eine normale Atmung und einen regelmäßigen Herzschlag aufweist.Legen Sie das Tier nun auf eine Wärmematte in einen aseptischen Operationsbereich. Entfernen Sie mit einem elektrischen Schermesser vorsichtig das Haar an der dorsalen Seite, an der die Biopsie entnommen wird. Wischen Sie anschließend die rasierte Fläche mit Betadine- und Alkoholtüchern ab.Stellen Sie sicher, dass alle Haarabschnitte von der Stelle entfernt wurden. Umreißen Sie nun die Biopsiestelle mit einem schwarzen Stift. Um Längsschnitte der Haarfollikel zu erhalten, sollte die längere Kante der Biopsie in anteriore-posteriore Richtung paraszepital zur dorsalen Mittellinie verlaufen.Erstellen Sie mit einem Skalpell einen vollständigen Exzisionschnitt, ohne die darunterliegende Muskeleinfassung zu beschädigen. Blutungen sind in der Regel minimal. Die Biopsieprobe sollte Epidermis, Dermis, subkutanes Fettgewebe und Panniculus carnosus umfassen.Das ausgeschnittene Hautprobenstück mit der Dermisseite nach unten auf ein trockenes Papiertuch legen. Überschüssiges Papiertuch abschneiden und die Probe gegebenenfalls bis zu einer Stunde lang auf kaltem TBS aufbewahren, wenn noch weitere Proben gesammelt werden müssen. Zurück beim Mäuschen: Die Biopsiestelle mit 60 Nylon-Nähten, die etwa drei Millimeter voneinander entfernt liegen, vernähen.Überwachen Sie anschließend die Maus in einem Erholungskäfig, bis sie das Bewusstsein wiedererlangt. Verwenden Sie Analgetika gemäß den vorgeschriebenen Richtlinien der institutionellen Tierversorgung und befolgen Sie deren Vorgaben, falls die Maus gestresst erscheint. Entfernen Sie die Nähte innerhalb von sieben bis zehn Tagen nach der Operation.Fahren Sie mit der Aufarbeitung der Biopsien für die Histologie oder die Ganzpräparat-Färbung fort. Betäuben Sie das Tier, rasieren Sie die gesamte dorsale Haut ab und reinigen Sie die Region analog zum Biopsieverfahren. Führen Sie nun mit einem sterilen Skalpell einen Schnitt entlang der dorsalen Mittellinie von der Halsbasis bis etwa einen halben Zentimeter über dem Schwanzansatz durch.Unter Verwendung steriler stumpfer Pinzette die Haut an der linken Seite vorsichtig vom Flankengewebe wegziehen, um das darunterliegende Gewebe vom Schulterfettgewebe in Halsnähe bis knapp oberhalb der Hinterextremität sichtbar zu machen. Identifizieren Sie nun unter dem Stereomikroskop den dorsalen kutanen Nerv. Diese erscheinen als weiße Stränge, die kaudal durch die durchscheinende Faszie der Körperwand verlaufen, bevor sie scharfe Biegungen machen und in das lockere Bindegewebe unter der Haut eintreten.Als Nächstes entfernen Sie mit feinsten Pinzetten exklusiv die Nerven der linken Körperseite des Tieres, die sich an den anatomischen Stellen T3 bis T12 befinden, indem Sie sie von der Stelle, an der ihre Segmente an der Körperwand abknicken, bis zu ihren Eintrittsstellen in die Haut abziehen. Halten Sie die Pinzette vertikal ausgerichtet und greifen Sie die Nerven etwa einen halben Zentimeter unterhalb ihrer Knickstellen. Sobald sie erfasst sind, ziehen Sie nach oben, um die Nerven zu dehnen und von dem umgebenden Gewebe zu lösen, um sie anschließend zu entfernen.Vermeiden Sie eine Beschädigung der benachbarten Blutgefäße. Achten Sie darauf, das Gewebe während des gesamten Verfahrens feucht zu halten, indem Sie in regelmäßigen Abständen Tropfen einer 0,9 %igen Kochsalzlösung hinzufügen. Entfernen Sie weiterhin alle Nerven, die sich von der Körperwand zum Hautgewebe ziehen, verletzen Sie jedoch nicht die Nerven innerhalb der dichten Faszie der Körperwand. Entfernen Sie anschließend sämtliche Nerven aus dem freigelegten Hautlappen. Diese Fasern bestehen aus den distalen Ästen des dorsalen kutanen Nervs und erscheinen als weiße, verzweigte Stränge, die unregelmäßig im Bindegewebe auf der dermalen Seite des Hautlappens liegen. Um diese feinen Äste zu entfernen, positionieren Sie die Pinzette annähernd parallel zur dermalen Oberfläche, greifen Sie den Nerv an und ziehen Sie nach oben. Entfernen Sie auf diese Weise alle sichtbaren Nerven. Verletzen Sie dabei weder die Blutgefäße noch die Haut. In diesem Schritt ist es wichtig, das Platzen benachbarter Blutgefäße zu vermeiden.Wenn Sie einen Nerv mit einem angrenzenden Blutgefäß finden, verfolgen Sie ihn schließlich zu einer Stelle, an der kein angrenzendes Gefäß vorhanden ist, und entfernen Sie ihn durch Herausziehen. Lockern Sie nun die Haut auf der rechten Seite des dorsalen Mittellinien-Schnitts, entfernen Sie jedoch keine Nerven. Dies dient als kontralaterale placebochirurgische Kontrolle.Schließen Sie schließlich das Tier chirurgisch und überwachen Sie es wie zuvor postoperativ. Um später den dauerhaften Ausfall der Nervenfunktion zu bestätigen, pieksen Sie Wochen nach der Operation den denervierten Bereich vorsichtig mit einer sterilen Hohlnadel. Achten Sie darauf, ob das Tier reagiert, typischerweise durch Schaudern oder Drehen des Kopfes.Wenn der Hautbereich stabil denerviert wurde, zeigt das Tier kaum oder keine Reaktion. Entnehmen Sie Hautbiopsien aus dem Bereich ohne Reaktion und der kontralateralen Schein-Seite, um paarierte experimentelle und Kontrollproben zu erhalten. Aus den Biopsien ist es wichtig, mehrere histologische Schnitte zu untersuchen, um mögliche Unterschiede in der Häufigkeit oder Morphologie von Tastkuppen zwischen den Schein- und den denervierten Proben zu identifizieren.Der glebe one cree ERT2-Mausstamm ermöglicht es, die durch Tamoxifen induzierte genetische Rekombination auf Hautareale zu beschränken, die eine hohe Hedgehog-Signalwegaktivität aufweisen, wie beispielsweise die Berührungskuppen-Epithelien. Diese Mäuse wurden mit abolaxi-Reportermäusen gekreuzt, um die Berührungskuppen-Epithelien sichtbar zu machen. Knoten sind entscheidend für die Aufrechterhaltung sowohl normaler Berührungskuppen als auch der damit assoziierten Merkel-Zellen. Dies wird experimentell durch den schrittweisen Verlust der normalen Morphologie der Tastkuppe sowie durch den Verlust von Keratin-acht-exprimierenden Zellen nach Denervierung belegt. Nerven sind außerdem entscheidend, um die Hedgehog-Signalübertragung in der Tastkuppe zu fördern, wie durch die Expression von Glebe-one-cree-ERE2 und durch kollektive Beta-Seitenfärbungen in Hautproben sowohl von Scheinkontrollen als auch von denervierten Tieren nachgewiesen wurde. Nach Anschauung dieses Videos sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man dorsale kutane Nerven chirurgisch ablatiert, um zu testen, ob diese Nerven an der normalen Hautfunktion beteiligt sind oder ob sie Krankheiten modulieren.Wenn die Technik einmal beherrscht ist, kann sie routinemäßig und zuverlässig mit minimalem Stress für das Tier durchgeführt werden. Nach diesem Verfahren können Methoden wie die amino-fluoreszierende Färbung verwendet werden, um zu überprüfen, ob die Nerven vollständig aus der Haut ablatiert wurden und ob die Genexpression beeinflusst wird.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Die Verschont Nerve Injury Tiermodell wird hier als ein Maus-Modell von peripheren neuropathischen Schmerzen nach einer partiellen Denervation der Ischiasnerv durch Läsion der Tibia-und N. peronaeus Filialen beschrieben, so dass die verbleibenden Nervus suralis intakt. Verhaltensmodifikation durch mechanische Allodynie wird durch von Frey Filamente quantifiziert.

Die Verschont Nerve Injury (SNI) Modell induzierte mechanische Allodynie in Mäusen

Dieses Video demonstriert das Testen der sensorischen Nervenfunktion in einem Mausmodell, indem eine Seite chirurgisch denerviert und die andere als Kontrolle belassen wird. Die Reaktion auf mechanische Stimulation bestätigt die Rolle der sensorischen Nerven.

Testen der sensorischen Nervenfunktion in einem operativ denervierten Mausmodell

Die tibiale Nervendurchtrennung Modell ist ein gut verträgliches, validiert und reproduzierbares Modell der Skelettmuskelatrophie. Das Modell chirurgische Protokoll beschrieben und in C57Black6 Mäusen nachgewiesen.

Tibialisnerv Durchtrennung - ein standardisiertes Modell für Denervation-induzierte Skelettmuskelatrophie in Mice

Neuropathische Schmerzen sind die Folge einer Verletzung oder Erkrankung des somatosensorischen Systems. Die "Manschette Modell" von neuropathischen Schmerzen bei Mäusen besteht aus der Implantation einer Polyethylen Manschette um den Hauptzweig des Ischiasnervs. Mechanische Allodynie wird mit Hilfe von Frey Filamente getestet.

Der Ischiasnerv cuffing Modell von neuropathischen Schmerzen bei Mäusen

Wir präsentieren ein chirurgisches Protokoll, das detailliert beschreibt, wie eine Schnitt- oder Quetschaxotomie am Gesichtsnerv in der Maus durchgeführt wird. Die Axotomie des Gesichtsnervs kann eingesetzt werden, um die physiologische Reaktion auf Nervenverletzungen zu untersuchen und therapeutische Techniken zu testen.

Facial Nerve Axotomie bei Mäusen: Ein Modell zur Motoneuron Reaktion auf eine Verletzung Studieren

Diese Studie stellt ein experimentelles Modell der reinen kleine Faser Neuropathie mit Resiniferatoxin (RTX). Eine einmalige Dosis von RTX (50 µg/kg) ist optimal für die Entwicklung eines Modells der kleine Faser-Neuropathie, die Patientencharakteristika imitiert und könnte dazu beitragen, die nozizeptiven molekularen Bedeutung zugrunde liegenden neuropathischen Schmerzen zu untersuchen.

Einrichtung ein Mausmodell eine reine kleine Faser Neuropathie mit Ultrapotent Agonisten von transienten Rezeptor Potential Vanilloid Typ 1

Die modifizierte Operation ist eine vereinfachte Methode für das Modell der Nervenverletzung von Mäusen oder Ratten, die nur eine Ligatur und einen Schnitt erfordern, um sowohl den Nervus peroneus als auch den Nervus suralis zu verletzen.

Modifiziertes Modell der Chirurgie der Nervenverletzung bei neuropathischen Schmerzen bei Mäusen

Die partielle Ligatur des Ischiasnervs induziert lang anhaltende chronische neuropathische Schmerzen, die durch übertriebene Reaktionen auf thermische und mechanische Reize gekennzeichnet sind. Dieses Mausmodell für neuropathische Schmerzen wird häufig verwendet, um innovative Therapien zur Schmerzbehandlung zu untersuchen. Dieser Artikel beschreibt detailliert das chirurgische Verfahren zur Verbesserung der Standardisierung und Reproduzierbarkeit.

Partielle Ischiasnervligatur: Ein Mausmodell für chronische neuropathische Schmerzen zur Untersuchung der antinozizeptiven Wirkung neuartiger Therapien

Dieses Manuskript stellt ein Protokoll für die chirurgische Entfernung der postganglionären lumbalen sympathischen Neuronen bei einer Maus vor. Dieses Verfahren wird eine Vielzahl von Studien ermöglichen, die darauf abzielen, die Rolle der sympathischen Innervation in distalen Gewebezielen zu untersuchen.

Chirurgische lumbale Sympathektomie bei Mäusen

Dieses Protokoll stellt ein reproduzierbares Rattenmodell vor, das sensorische Nerven verwendet, um menschliche Neuromschmerzen nachzuahmen und chirurgische Behandlungen zu bewerten, und bietet ein wertvolles Werkzeug für die translationale Neuromforschung.

Neuartiges chirurgisches Nagetiermodell zur Untersuchung von Behandlungsmöglichkeiten für Neuromschmerzen mit gezielter Muskelreinnervation durch den Nervus saphenus

Erfahren Sie die chirurgische Denervierung der Haut bei Mäusen, um die Rolle von Nerven in normaler und pathologischer Hautbiologie zu untersuchen. Diese Methode ermöglicht den Vergleich intakter und denervierter Gewebeproben.

Kutane Surgical Denervation: eine Methode zur Prüfung der Voraussetzung für die Nerven in Maus-Modellen der Haut-Krankheit

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