Name: Untersuchungen über die Ga (III) -Komplexes von EOB-DTPA and Its 68 Ga Radiolabeled Analog (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-17T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 22 s
Description: Erfahren Sie die radiochemische Markierung von Gallium-68 mit EOB-DTPA für die molekulare Bildgebung. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung von Markierungseffizienz, Stabilität und Lipophilie des Tracers in vitro.

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Die Autoren haben keine Danksagungen.

1. Herstellung von EOB-DTPA und Ga [EOB-DTPA] Achtung: Bitte konsultieren Sie alle relevanten Sicherheitsdatenblätter (MSDS) der verwendeten organischen Lösungsmittel, Säuren und Laugen vor dem Gebrauch. Führen Sie alle Schritte in einem Abzug und persönliche Schutzausrüstung (Schutzbrille, Handschuhe, Kittel). <ol><li> Isolierung von EOB-DTPA aus Gadoxetsäure <ol><li> Setzen Sie 3 ml 0,25 M Gadoxetsäure injizierbare Lösung in einen Kolben. Hinzufügen, 500 mg (5,6 mmol) Oxalsäure zu der gerührten Lösung. </li><li> Nach dem Rühren für 1 Stunde, filtern die Suspension über eine Fritte reduziert Druck. Dann den Rückstand dreimal mit 3 ml Wasser auf. </li><li> Kombinieren Sie die wässrigen Filtrate und statten die Lösung mit einem pH-Elektrode. Liste 12 M Chlorwasserstoffsäure zu dem Filtrat, bis der pH-Wert beträgt etwa -0,1. </li><li> Entferne das Lösungsmittel in vacuo zu einem farblosen Rückstand zu ergeben. Unter Inertgas aufbewahren. </li><li> Waschen Sie den Rückstand gut (mindestens dreimal) mit Ethylacetat das überschüssige Oxalsäure zu entfernen. Trocknet den Rückstand im Vakuum. </li><li> Abgeblasen, und der Rückstand in 2 ml Wasser bei Raumtemperatur und dann die Lösung in einem Eisbad zu kühlen. Ohne Entfernen des Eisbad mit 0,5 M wässriger Natronlauge tropfenweise bis zur Bildung eines farblosen gluey Feststoff wird beobachtet. </li><li> Entfernen Sie das Wasser durch Abgießen. Waschen Sie die solide zwei Mal mit 1 ml kaltem Wasser. Der Feststoff wird im Vakuum die erste Produktfraktion zu ergeben. </li><li> Isolieren einer zweiten Produktfraktion aus den vereinigten Fraktionen von abdekantiert Wasser über Säulenchromatographie (Kieselgel, Methanol / Wasser 4/1). 24 das Lösungsmittel im Vakuum entfernen. </li><li> Wenn das so erhaltene feste nicht rein weiß ist, wieder in Lösung in 1 ml Wasser, 10 ml Ethanol und anschließend 10 ml Diethylether das Produkt zu fällen. Filter durch eine Fritte mit vermindertem Druck und im Vakuum getrocknet. </li><li> Kombinierensowohl feste Fraktionen von EOB-DTPA und NMR - Spektroskopie, 25 massenspektrometrischen 26 und Elementar 27 Analysen durchführen. </li></ol></li><li> Synthese von Ga [EOB-DTPA] VORSICHT: Shop feste Ga (III) -chlorid unter einer trockenen, inerten Atmosphäre, da bei Kontakt mit Luft, Feuchtigkeit oder Fett Zersetzung stattfindet, was zu ätzende Dämpfe und die Bildung von gelb, braun oder schwarz Verunreinigungen. <ol><li> Bereiten Sie eine 0,11 M Stammlösung durch Auflösen von 1,94 g (11,0 mmol) Ga (III) -chlorid in 100 ml Wasser. Verdünne 1 ml 25% iger wässriger Ammoniaklösung mit 4 ml Wasser. </li><li> Man löst 80 mg (0,15 mmol) des EOB-DTPA in einen Kolben in 10 ml Wasser. Falls erforderlich, erwärmen das Lösungsmittel eine vollständige Auflösung zu erreichen. </li><li> In 1,4 ml (0,15 mmol) des Ga (III) -chlorid-Stammlösung. Anlegen des Kolbens mit einem Rührer und pH-Elektrode. Hinzufügen verdünnte wässrige Ammoniaklösung zugetropft, bis der pH-Wert der Lösung ca. 4,1 beträgt. Rühre bei room Temperatur für 30 min. </li><li> Entferne das Lösungsmittel in vacuo. Platzieren Sie den Rückstand in einem Kolben, ausgestattet mit einem Destillationsaufsatz mit einem zentralen und parallelen Seiten Hals. Rüsten Sie den zentralen Hals mit einem Kühlfinger und dem Seitenhals mit einer Vakuumpumpe Auslass </li><li> Heizen Sie den Rückstand unter vermindertem Druck (125 ° C, 0,6 mbar). Entfernen Sie regelmäßig sublimierten Ammoniumchlorid (sichtbar als weiße Beschichtung der Glasoberfläche) aus dem Kühlfinger und immer noch den Kopf, als auch von den oberen Teilen des Kolbens mit einem leicht feuchten Tuch. Setzen Sie den Vorgang, bis es keine sichtbare Bildung neuer Sublimat ist. </li><li> Zum Entfernen letzten Spuren von Ammoniumchlorid den Rückstand dreimal mit 0,5 ml heißem Methanol, respectively. Trocknen der farblose Rückstand in vacuo. Führen NMR - spektroskopische, 25 massenspektrometrischen 26 und Elementar 27 Analysen. </li></ol></li></ol> 2. Allgemeine Markierungsverfahren ACHTUNG: Alle exExperimente mit direkten oder indirekten Kontakt mit radioaktiven Stoffen dürfen nur von geschultem Personal durchgeführt werden. Bitte verwenden Sie geeignete Schutzausrüstung. Sammeln Sie alle radioaktiven Abfälle getrennt und zu speichern und in Übereinstimmung mit den gültigen Vorschriften zu entsorgen. <ol><li> Elution des Generators Hinweis: Ein 40 mCi 68 Ge / 68 Ga - Generator mit der Mutter - Nuklid als Oxid auf Dodecyl-3,4,5-trihydroxybenzoat Kieselsäure gebunden wurde verwendet. Elution und Reinigung kann manuell oder durchgeführt werden, wie es der Fall in diesem Verfahren war, als kombinierte automatisierten Prozess eine peristaltische Pumpe und Spendereinheit. <ol><li> Bereiten Sie Lösungen von 5,5 M, 1,0 M und 0,05 M Salzsäure. Eine Lösung aus 5,0 M Natriumchlorid, 25 &amp; mgr; l von 5,5 M Chlorwasserstoffsäure pro ml enthält. Bereiten einer Pufferlösung von pH 4,6 durch die Kombination von 4,1 g Natriumacetat, 1 ml HCl (30%) und 2,5 ml Eisessig und verdünnt das Gemisch mit Wasser auf 50 ml. </li><li> Precondition der PS-H + Kartusche durch sie langsam mit 1 ml 1,0 M Salzsäure und anschließend mit 5 ml Wasser gespült. </li><li> Eluieren der Silica - Säule des Generators mit 4 ml 0,05 M HCl. 12 Legen Sie das 68 Ga - Eluat auf die PS-H + Patrone. </li><li> Spülen Sie die Kartusche mit 5 ml Wasser und anschließend mit 5 ml Luft trocknen. Eluieren der 68 Ga aus der Kartusche mit 1 ml 5,0 M angesäuerten Natriumchloridlösung. 28 </li></ol></li><li> Die Markierung von EOB-DTPA mit 68 Ga <ol><li> Man löst 1 mg (1,9 umol) EOB-DTPA in 1 ml Wasser. Aus dieser Lösung nehmen 100 ul (0,19 umol) und verdünnen sie mit 9,9 ml Wasser ein 19 &amp; mgr; M herzustellen (10 ug / ml) Stammlösung von EOB-DTPA. </li><li> Entfernen Sie 50 ul (entspricht 22-29 MBq) der Lösung 68 Ga enthält und in ein Fläschchen. In 50 ul (0,5 ug) einer 19 mM Stammlösung von EOB-DTPA und 300 &amp; mgr; l of Puffer den pH-Wert auf 4,0 zu erhöhen. Schütteln Sie kurz und Inkubation der Lösung bei Raumtemperatur für 5 min. Entfernen eines aliquoten von 1-5 &amp; mgr; l und setzen HPLC oder TLC-Analyse. </li><li> Führen Sie Radio - HPLC - Analyse an einer Reversed - Phase (RP) C18 - Säule 29 Verwenden Sie die folgende mobile Phase: a . - Wasser / Trifluoressigsäure (99,9% / 0,1%), B - Acetonitril / Trifluoressigsäure (99,9% / 0,1%), Gradient : 06 min 80% A → 0% A (0,5 ml / min), 610 min 0% A (0,5 ml / min). </li><li> Bestimmen Sie die Peak-Intensitäten der Funk HPLC-Signale als Fläche unter der Kurve. Berechnen Sie die Markierungsausbeute als radiochemische Reinheit (RCP) des Tracers wie folgt: RCP = A Ga-EOB-DTPA / (A Ga + A Ga-EOB-DTPA) ∙ 100% Ein Ga-EOB-DTPA: Fläche unter der Kurve von 68 Ga [EOB-DTPA] A Ga: Fläche unter der Kurve der freien 68 Ga </li></ol></li></ol> 3. Labelingeffizienz <ol><li> Führen Sie Markierungsverfahren wie beschreibend in Abschnitt 2. Verwenden Sie ein durchgängiges Programm an Aktivität von 68 Ga - Eluat starten, zB 22-29 MBq (40-140 &amp; mgr; l, abhängig von der Frische des Eluats). </li><li> Die erforderliche Menge an Pufferlösung , um den pH auf 3,8-4,0 einzustellen (40-190 &amp; mgr; l, abhängig von dem Volumen von 68 Ga - Eluat). Fügen Sie die erforderliche Menge an Ligand-Stammlösung (10-70 ul einer 19 mM Lösung). </li><li> Fügen Sie die erforderlichen Mengen an Wasser, um das Gesamtvolumen jeder Markierungssonde auf 1,75 ml einzustellen. Gut mischen und lassen Sie die Probe stehen für 5 Minuten bei Raumtemperatur. Eine HPLC-Analyse wie in Abschnitt 2 beschrieben, um die Markierungsausbeute zu bestimmen. </li><li> Führen Markierungsverfahren mit Mengen an Liganden zwischen 0,1 &amp; mgr; g und 0,7 &amp; mgr; g in Schritten von 0,1 &amp; mgr; g. Führen Sie Experimente in dreifacher Ausführung für jede Ligandenkonzentration. Berechnen Sie die mittlere Ausbeute und Standardabweichung. </li></ol> 4. In - vitro - Stabilität <ol><li> Allgemein pERFAHREN und Zubereitungen <ol><li> Auflösen einer Tablette von Phosphat-gepufferter Salzlösung (PBS) in 200 ml deionisiertem Wasser mit einer PBS-Stammlösung mit einer Phosphatkonzentration von 10 mM herzustellen. </li><li> Führen Sie die Kennzeichnung von 22-29 MBq 68 Ga mit 0,5 ul EOB-DTPA - Stammlösung, wie in Kapitel 2. Je nach Volumen des 68 Ga - Eluats, stellen Sie die Menge des Puffers, wie in Kapitel 3. Ziehen Proben Markierungslösung 6-12 MBq Tracer enthält Stabilitätsmessungen durchzuführen. </li><li> Führen Radio DC - Analyse auf 80 mm Silicagel-beschichteten Aluminium - Platten unter Verwendung von 0,1 M wässrigem Natriumcitrat als Eluent und zu analysieren , die Platten mit einem Radioaktivität TLC - Scanner. 30 die Intensitäten der TLC - Signale als Fläche unter der Kurve zu bestimmen. Berechnen Sie die RCP des Tracers wie folgt: RCP = A Ga-EOB-DTPA / (A Ga-free + A Ga-EOB-DTPA + A Ga-kolloidalen) ∙ 100% Eine Ga-EOB-DTPA: Fläche unter der Kurve von 68 Ga [EOB-DTPA] Ein Ga-frei: Fläche unter der Kurve der freien 68 Ga Ein Ga-kolloidale: Fläche unter der Kurve von kolloidalem 68 Ga </li><li> Berechnen RCP t / RCP 0 für jeden Zeitpunkt. Zeichnen Sie die so standardisiert RCP vs. Zeitdifferenz seit dem Startpunkt t = 0 min. RCP t = RCP von 68 Ga [EOB-DTPA] zum Zeitpunkt t. 0 RCP = RCP von 68 Ga [EOB-DTPA] bei t = 0 min. </li></ol></li><li> Stabilität in phosphatgepufferter Salzlösung (A) <ol><li> Zu 65 &amp; mgr; l Markierungslösung mit 150 ul PBS-Stammlösung und 60 &amp; mgr; l Natriumhydroxid-Lösung (0,1 M), um den pH-Wert auf 7,4 zu erhöhen. Gründlich durchmischen. </li><li> Entfernen eines aliquoten von 1-5 ul TLC-Analyse durchzuführen ( &quot;Ausgangspunkt&quot;). Sofort speichern, die Lösung in einem Inkubator bei 37 ° C und Aliquots entfernen, um die DC-Analyse an repräsentieren zuführenAtive Zeitpunkten über 3 Stunden. </li></ol></li><li> Stabilität gegenüber mehr als apo -Transferrin in PBS (B) <ol><li> Zu 120 &amp; mgr; l Markierungslösung 50 ul-Lösung und 430 PBS-Stamm ul Natronlauge hinzu (0,1 M), um den pH-Wert auf 7,4 zu erhöhen. Werden 40 ul einer Lösung von apo -Transferrin (25 mg / ml). Gründlich durchmischen. </li><li> Entfernen eines aliquoten von 1-5 ul TLC-Analyse durchzuführen ( &quot;Ausgangspunkt&quot;). Sofort speichern, die Lösung in einem Inkubator bei 37 ° C und Entfernen Aliquots TLC-Analyse bei repräsentativen Zeitpunkten über 3 h durchzuführen. </li></ol></li><li> Stabilität in humanem Serum (C) <ol><li> Bis 500 &amp; mgr; l humanem Serum 25 ul Markierungslösung hinzufügen und 45 &amp; mgr; l Natriumhydroxid-Lösung (0,1 M), um den pH auf 7,4 zu erhöhen. Gründlich durchmischen. </li><li> Entfernen eines aliquoten von 1-5 ul TLC-Analyse durchzuführen ( &quot;Ausgangspunkt&quot;). Unmittelbar speichern Sie die Lösung in einem incubator bei 37 ° C und Entfernen Aliquots TLC-Analyse bei repräsentativen Zeitpunkten über 3 h durchzuführen. </li></ol></li></ol> 5. Bestimmung des Verteilungskoeffizienten LogD <ol><li> Führen Sie Markierungsverfahren, wie in Abschnitt 2. 50 ul Markierungslösung werden 20 ul PBS-Stammlösung und 170 &amp; mgr; l Natriumhydroxid-Lösung (0,1 M) beschrieben, um den pH-Wert auf 7,4 zu erhöhen. </li><li> Ziehen Sie 200 ul von dieser Lösung und steckte es in eine Plastik V-Fläschchen. In 200 ul n- Octanol. Schließen Sie das Fläschchen und Vortex für 2 min. Zentrifuge Dann die Probe bei 1600 × g für 5 min. </li><li> Entfernen Triplikaten von 40 &amp; mgr; l aus der n Octanol - Phase und der wässrigen Phase jeder und sie in separaten V-Fläschchen. Achten Sie darauf, um die Schichten zu vermischen. </li><li> Messen Sie die Aktivität jeder Probe in einem Gamma-Zähler gut für 30 Sekunden. Für jede Probe sofort die Messung zweimal wiederholen und davon die mittlere Aktivität Ᾱ t berechnen </sub&gt; in Zählungen pro Minute (cpm). Liste der auf diese Weise gewonnenen Ᾱ t, W1, Ᾱ t, W2 und Ᾱ t, W3 (Aktivitäten in wässrigen Proben) und Ᾱ t, O1, Ᾱ t, O2, Ᾱ t, O3 (Aktivitäten in n- Octanol) zusammen mit dem jeweiligen Zeitpunkt t ihrer Bestimmung. </li><li> Legen Sie den Zeitpunkt der Messung der letzten Probe als t 0. Bestimmen und in der Liste At in min durch die Berechnung At = tt 0. Führen Sie Zerfallskorrektur von Ᾱ t, mit der folgenden Formel: Ᾱ 0 = Ᾱ t · 2 (&amp; Dgr; t / 68 min). </li><li> Berechnen Ᾱ 0, W als Mittelwert von Ᾱ 0, W1, Ᾱ 0, W2 und Ᾱ 0, W3 sowie Ᾱ 0, O als Mittelwert Ᾱ 0, O1, Ᾱ 0, O2 und Ᾱ 0, O3. Berechnen logD mit folgender Formel: logD = log [(Ᾱ <sub&gt; 0, O · 40 ug) / (Ᾱ 0, W · 33 ug)]. </li><li> Führen Sie das gesamte Experiment in dreifacher Ausfertigung und den Mittelwert logD zusammen mit seiner Standardabweichung. </li></ol>

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</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

EOB-DTPA ist über eine mehrstufige Synthese 33 kann aber auch nur aus den verfügbaren Kontrastmittel Gadoxetsäure enthält , isoliert werden. Zu diesem Zweck kann die Zentral Gd (III) -Ion mit einem Überschuß von Oxalsäure ausgefällt werden. Gd (III) Oxalat und Oxalsäure Nach dem Entfernen der Ligand kann durch Ausfällen in kaltem Wasser bei pH 1,5 isoliert werden. Um jedoch die Ausbeuten Säulenchromatographie des Filtrats zu verbessern kann durchgeführt anstelle oder als Follow-up-Verfahren. Jedes Verfahren e...

Gadoxetsäure ein gemeinsamer Name für den Gd (III) -Komplex des Liganden EOB-DTPA 1, ist ein häufig verwendetes Kontrastmittel in hepatobiliären Magnetresonanztomographie (MRI). 2,3 Aufgrund der spezifischen Aufnahme durch Leber Hepatozyten und hoher Prozentsatz von hepatobiliären Exkretion es die Lokalisierung von fokalen Läsionen und Lebertumoren ermöglicht. 2-5 gewisse Einschränkungen der MRI - Technik (zB Toxizität der Kontrastmittel, begrenzte Anwendbarkeit bei Patienten mit Klaustrophobie oder Metallimplantaten) jedoch für eine alternative Diagnosewerkzeug nennen . Positron - Emissions - Tomographie (PET) ist ein Molekularabbildungsverfahren, bei dem eine kleine Menge einer radioaktiven Substanz (Tracer) verwaltet wird, auf dem ihre Verteilung im Körper durch einen PET - Scanner aufgezeichnet. 6 PET ist ein dynamisches Verfahren , das für Hoch ermöglicht räumliche und zeitliche Auflösung der Bilder sowie die Quantifizierung der Ergebnisse, ohne mitbefassen sich mit den Nebenwirkungen von MRI-Kontrastmittel. Der Aussagewert der erhaltenen metabolischen Informationen kann durch Kombination von weiteren bildgebenden Verfahren, wie es am häufigsten erreicht durch Hybrid-Bildgebung mit Computertomographie (CT) in PET / CT-Scanner erhalten mit anatomischen Daten erhöht werden. Die chemische Struktur der Tracer für PET müssen ein radioaktives Isotop, das als Positronenemitter umfassen. Positronen haben eine kurze Lebensdauer, da sie fast sofort mit Elektronen der Atomschalen umgebenden Gewebe zu vernichten. Durch Vernichtung zwei 511 keV Gammaphotonen mit entgegengesetzter Bewegungsrichtung emittiert werden , die von der PET - Scanner erfasst werden. 7,8 Um einen Tracer, PET Nuklide bilden können kovalent an ein Molekül gebunden sein, wie es der Fall in 2-Desoxy- 2- [18 F] fluoroglucose (FDG), das am häufigsten verwendete PET - Tracer. 7 kann jedoch ein Nuklid auch koordinative Bindungen an einen oder mehrere Liganden bilden (zB[68 Ga] -DOTATOC 9,10) oder als gelöste anorganische Salze eingesetzt werden (beispielsweise [18 F] Natriumfluorid 11). Insgesamt ist die Struktur des Tracers entscheidend, da es seine Bioverteilung bestimmt, Metabolismus und Ausscheidungsverhalten. Eine geeignete PET-Nuklid sollten günstige Eigenschaften wie bequeme Positron Energie und Verfügbarkeit sowie eine Halbwertszeit ausreichend für die geplante Untersuchung zu kombinieren. Die 68 Ga Nuklid ist in den letzten zwei Jahrzehnten eine wesentliche Kraft auf dem Gebiet der PET werden. 12,13 Dies ist vor allem vor Ort durch ein Generatorsystem, das unabhängig von der Nähe eines Zyklotrons Kennzeichnung ermöglicht aufgrund seiner Verfügbarkeit ist. In einem Generator Nuklid die Mutter 68 Ge auf einer Säule aus dem absorbiert wird die Tochter - Nuklid 68 Ga eluiert wird und anschließend in einem geeigneten Chelator gekennzeichnet. 6,14 Da das 68 Ga Nuklid als trival bestehtent - Kation wie Gd (III) 10,13, EOB-DTPA mit 68 Ga Chela statt einen Komplex mit dem gleichen Gesamt negative Ladung als Gadoxetsäure ergeben würde. Dementsprechend könnte , dass 68 Ga - Tracer eine ähnliche Charakteristik Leberspezifität mit der Eignung für die PET - Bildgebung zu kombinieren. Obwohl Gadoxetsäure als Dinatriumsalz gekauft und verwaltet werden , in folgendem Zusammenhang werden wir es als Gd [EOB-DTPA] beziehen und auf die nicht-radioaktiven Ga (III) -Komplex als Ga [EOB-DTPA] oder 68 Ga [ EOB-DTPA] im Falle der radiomarkierten Komponente aus Gründen der Bequemlichkeit. Zur Beurteilung ihrer Eignung als Tracer für PET, radioaktiven Metallkomplexe müssen geprüft werden extensiv in in vitro, in vivo oder ex vivo Experimente zuerst. Zur Bestimmung der Eignung für ein entsprechendes medizinisches Problem, verschiedene Tracer Eigenschaften wie Bioverteilung Verhalten und Lichtraumprofil, Stabilität, Organspezifität und Zelle oder tissue Aufnahme müssen untersucht werden. Aufgrund ihrer nicht-invasiven Charakter, in vitro - Bestimmungen werden häufig vor der in vivo - Experimente durchgeführt. Es ist allgemein anerkannt , dass DTPA und seine Derivate sind von begrenzter Eignung als Chelatoren für 68 Ga aufgrund dieser Komplexe kinetische Inertheit fehlt, in vergleichsweise schnelle Zersetzung führt , wenn in vivo verabreicht. 14-20 Dies in erster Linie durch apo- Transferrin verursacht wird als wirkende Wettbewerber für 68 Ga im Plasma. Dennoch untersuchten wir diese neue Tracer über ihre mögliche Anwendung in Leber - Gallen - Bildgebung, bei Diagnoseinformationen können innerhalb von Minuten nach der Injektion 3,4,21-23, wodurch nicht unbedingt für die langfristige Stabilität Tracer zur Verfügung gestellt werden. Dazu isolierten wir EOB-DTPA aus Gadoxetsäure und ausgeführt zunächst die Komplexbildung mit natürlichen Ga (III), die als Mischung von zwei stabilen Isotopen besteht, 69 Ga und 71 </sup&gt; Ga. Der Komplex somit als nicht-radioaktive Standard für die folgenden Chelat von 68 Ga erhalten serviert. Wir verwendeten Methoden ermittelt und bewertet gleichzeitig ihre Eignung für den 68 Galabeling Effizienz der EOB-DTPA für die Bestimmung und die Lipophilie des neuen 68 Ga - Tracer und seine Stabilität in verschiedenen Medien zu untersuchen.

<table><tbody><tr><td>Primovist</td><td></td><td></td> Bayer-0,25 <td>M</td></tr><tr><td>Gallium(III)-chlorid</td><td>Sigma-Aldrich Co.</td><td></td><td></td>450898</tr><tr><td>Wasser (deionisiert)</td> <td>-</td><td></td> <td>Leitungswasser Deionisierungsanlage von Auma-Tec GmbH</td></tr><tr><td>Salzsäure 12 M</td><td>VWR</td><td>20252.29</td><td></td></tr><tr><td>Natriumhydroxid</td><td>Polskie Odczynniki Chemiczne S.A.</td><td></td><td></td>810925429</tr><tr><td>Oxalsäure</td><td>Sigma-Aldrich Co.</td><td>75688</td><td></td></tr><tr><td>ethylacetat</td><td>Brenntag GmbH</td><td>10010447</td><td></td></tr><tr><td>Kieselgel</td><td>Merck KGaA</td><td>1.10832.9025</td><td>Geduran Si 60 0.063-0.2&nbsp; mm</td></tr><tr><td>DC-Kieselgel 60 F254</td><td>Merck KGaA</td><td>1.16834.0001</td><td></td></tr><tr><td>Methanol</td><td>VWR</td><td>20903.55</td><td></td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>Brenntag GmbH</td><td>10018366</td><td></td></tr><tr><td>Eiethylether</td><td>VWR</td><td>23807.468</td><td>über KOH-Platten gelagert</td></tr><tr><td>Ammoniaklösung (25%)</td><td>VWR</td><td>1133.1</td><td></td></tr><tr><td>pH-Elektrode</td><td>VWR</td><td>662-1657</td><td></td></tr><tr><td>Rühr- und Heizeinheit</td><td>Heidolph</td><td>505-20000-00</td><td></td></tr><tr><td>Pumpe</td><td>Ilmvac GmbH</td><td>322002</td><td></td></tr><tr><td></td> Fritten-Sonderanfertigung <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>NMR-Spektrometer</td><td>Bruker Coorporation-Ultra</td><td></td> <td>Shield 400</td></tr><tr><td>Massenspektrometer</td><td>Thermo Fisher Scientific Inc.</td><td>-</td><td></td></tr><tr><td>Elementaranalysator</td><td>Hekatech GmbH Analysentechnik-EuroVector</td><td></td> <td>EA 3000 CHNS</td></tr><tr><td>deuteriertes Wasser D2O</td><td>euriso-top</td><td>D214</td><td>99,90% D</td></tr><tr><td colspan="4">Material/Ausrüstung für Markierungsverfahren erforderlich</td></tr><tr><td>68Ge/68Ga Generator</td><td>ITG Isotope Technologies Garching GmbH</td><td>A150</td><td></td></tr><tr><td>Pump- und Dosiersystem</td><td>Scintomics</td><td></td> <td>GmbH-Variosystem</td></tr><tr><td>Salzsäure 30% (suprapur)</td><td>Merck KGaA</td><td>1.00318.1000</td><td></td></tr><tr><td>Wasser (ultrapur)</td><td>Merck KGaA</td><td>1.01262.1000</td><td></td></tr><tr><td>Natriumchlorid (suprapur)</td><td>Merck KGaA</td><td>1.06406.0500</td><td></td></tr><tr><td>Natriumacetat (suprapur)</td><td>Merck KGaA</td><td>1.06264.0050</td><td></td></tr><tr><td>Eisessig (suprapur)</td><td>Merck KGaA</td><td>1.00066.0250</td><td></td></tr><tr><td>Natriumcitrat-Dihydrat</td><td>VEB Laborchemie Apolda</td><td>10782></td><td>98,5%</td></tr><tr><td>PS-H+ Kartusche (S)</td><td>Macherey-Nagel</td><td>731867</td><td>Chromafix</td></tr><tr><td>apo-Transferrin</td><td>Sigma-Aldrich Co.</td><td>T2036</td><td></td></tr><tr><td>PBS-Puffer (Tabletten)</td><td>Sigma-Aldrich Co.</td><td>79382</td><td></td></tr><tr><td>Humanserum</td><td>Sigma-Aldrich Co.</td><td>H4522</td><td>aus humanen männlichen AB-Plasmakolben</td></tr><tr><td>, Säulen etc.</td><td>kundenspezifische</td><td></td>pH-Elektrode <td></td></tr><tr><td></td><td>Knick Elektronische Messger&auml; te GmbH & Co. KG</td><td>765-Set</td><td></td></tr><tr><td>binäre Pumpe (HPLC)</td><td>Hewlett-Packard</td><td>G1312A (HP 1100)</td><td></td></tr><tr><td>UV Vis Detektor (HPLC)</td><td>Hewlett-Packard</td><td>G1315A (HP 1100)</td><td></td></tr><tr><td>radioaktiver Detektor (HPLC)</td><td>EGRC Berthold</td><td></td><td></td></tr><tr><td>HPLC C-18-PFP Säule</td><td>Advanced Chromatography Technologies Ltd.</td><td>ACE-1110-1503/A100528</td><td></td></tr><tr><td>HPLC-Glasfläschchen</td><td>GTG Glastechnik Graefenroda GmbH</td><td>8004-HP-H/i3&micro;</td><td></td></tr><tr><td>Pipette</td><td></td> <td>Eppendorf-Kunststofffläschchen</td><td></td></tr> <tr><td></td><td>Sarstedt AG & Co. KG</td><td>6542.007</td><td></td></tr><tr><td>Kunststofffläschchen</td><td>Greiner Bio-One International GmbH</td><td>717201</td><td></td></tr><tr><td>activimeter</td><td>MED Nuklear-Medizintechnik Dresden</td> <td>GmbH-Isomed</td> <td>2010</td></tr><tr><td>Pinzette</td><td></td><td>Custom Design</td><td></td></tr><tr><td>Inkubator</td><td>Heraeus Instruments GmbH</td><td>51008815</td><td></td></tr><tr><td>Wirbelmischer</td><td>Fisons-Whirlimixer</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zentrifuge</td><td>Heraeus Instruments GmbH</td><td>75003360</td><td></td></tr><tr><td>Gamma-Brunnenzähler</td><td>MED Nuklear-Medizintechnik Dresden</td> <td>GmbH-Isomed</td> <td>2100</td></tr><tr><td>Wasser für die Chromatographie</td><td>Merck KGaA</td><td>1.15333.2500</td><td></td></tr><tr><td>Acetonitril für die Chromatographie</td><td>Merck KGaA</td><td>1.00030.2500</td><td></td></tr><tr><td>Trifluoressigsäure</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>91707</td><td></td></tr><tr><td>DC-Radioaktivitätsscanner</td><td>raytest Isotopenmessger&auml; Die te GmbH</td><td>B00003875</td><td>mit Beta-Kunststoff-Detektor ausgestattet</td></tr></tbody></table>

untersuchungen über die ga (iii) -komplexes von eob-dtpa and its<sup&gt; 68</sup&gt; ga radiolabeled analog

Investigations on the Ga(III) Complex of EOB-DTPA and Its 68Ga Radiolabeled Analogue

Wir zeigen, ein Verfahren zur Isolierung von EOB-DTPA (3,6,9-triaza-3,6,9-tris (carboxymethyl) -4- (Ethoxybenzyl) -undecanedioic Säure) von seinem Gd (III) -Komplex und Protokolle für die Vorbereitung seiner neuartigen nicht-radioaktiv, dh natürliche Ga (III) sowie radioaktive 68 Ga - Komplex. Der Ligand als auch das Ga (III) -Komplexes wurde durch kernmagnetische Resonanz (NMR) Spektroskopie, Massenspektrometrie und Elementaranalyse charakterisiert. 68 Ga durch eine Standard - Elution aus einem 68 Ge / 68 Ga - Generator erhalten. Versuche , die 68 Ga-Markierungseffizienz von EOB-DTPA bei pH zu bewerten 3,8-4,0 durchgeführt wurden. Etablierten Analysetechniken Funk TLC (Dünnschichtchromatographie) und Radio-HPLC (Hochleistungs-Flüssigkeitschromatographie) wurden verwendet, um die radiochemische Reinheit des Tracers zu ermitteln. Als eine erste Untersuchung der Lipophilie &#39;68 Ga Tracern der n- Octanol / Wasser distribution Koeffizienten von 68 Ga - Spezies in einem pH 7,4 - Lösung wurde durch ein Extraktionsverfahren bestimmt werden . In vitro - Stabilitätsmessungen des Tracers in verschiedenen Medien bei physiologischem pH durchgeführt wurden, offenbart unterschiedliche Zersetzungsraten.

Der Ligand EOB-DTPA und der nicht-radioaktiven Ga (III) -Komplex wurden mittels 1 H analysiert und 13 C {1 H} -NMR - Spektroskopie, Massenspektrometrie und Elementaranalyse. Die Ergebnisse in Tabelle 1 aufgelistet und dargestellt in Figuren 1-6 , die Reinheit der Substanzen verifizieren. Die Elution der 68 Ge / 68 Ga - Generator l...

Ein Verfahren zur Isolierung von EOB-DTPA und anschließende Komplexierung mit natürlichen Ga (III) und 68 Ga hier präsentiert wird, sowie eine gründliche Analyse aller Verbindungen und Untersuchungen zur Kennzeichnung Effizienz, In - vitro - Stabilität und der n- Octanol / Wasser Verteilungskoeffizient des radiomarkierten Komplexes.

Untersuchungen über die Ga (III) -Komplexes von EOB-DTPA and Its<sup&gt; 68</sup&gt; Ga Radiolabeled Analog

We demonstrate a method for the isolation of EOB-DTPA (3,6,9-triaza-3,6,9-tris(carboxymethyl)-4-(ethoxybenzyl)-undecanedioic acid) from its Gd(III) ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, einen neuen radioaktiven Gallium-68-Komplex für die molekulare Bildgebung zu bewerten. Diese Methode kann helfen, zentrale Fragen im Bereich der Gallium-68-Tracer-Chemie zu beantworten, wie beispielsweise Markierungsbedingungen, Tracer-Stabilität und Lipophilizität. Die Technik der radioaktiven Markierung ist unkompliziert und ermöglicht eine schnelle Ergebnisbestimmung, wobei nur minimale Mengen an Material erforderlich sind.Um dieses Verfahren zu beginnen, geben Sie drei Milliliter einer 0,25-molaren gadoxetischen Säure-Injektionslösung in einen Kolben. Fügen Sie anschließend 500 Milligramm Oxalsäure zu der gerührten Lösung der gadoxetischen Säure hinzu. Nach einer Stunde Rühren wird die Suspension unter vermindertem Druck durch eine Glasfritte filtriert.Waschen Sie den Rückstand dreimal mit jeweils drei Milliliter Wasser. Anschließend sammeln Sie die wässrigen Filtrate in einem Becher und führen eine pH-Elektrode in die Lösung ein. Geben Sie 12-molare Salzsäure zum Filtrat hinzu, bis der pH-Wert etwa 0,1 beträgt.Nach dem Entfernen des Lösungsmittels im Vakuum wird der Rückstand gründlich mit heißem Ethylacetat gewaschen, um die überschüssige Oxalsäure zu entfernen. Anschließend wird der Rückstand im Vakuum getrocknet. Sobald der Rückstand trocken ist, wird er in zwei Milliliter entionisiertem Wasser erneut gelöst und die Lösung anschließend in einem Eisbad gekühlt.Ohne das Eisbad zu entfernen, tropfenweise 0,5 molares Natriumhydroxid hinzufügen, bis ein farbloser, klebriger Feststoff beobachtet wird. Anschließend das Wasser mit einer Pipette entfernen. Um eine 0,11 molare Stammlösung von Galliumtrichlorid herzustellen, 1,94 Gramm des Feststoffs in 100 Milliliter Wasser lösen.Lösen Sie anschließend 80 Milligramm EOB-DTPA in 10 Milliliter Wasser auf. Falls erforderlich, erwärmen Sie die Lösung, um eine vollständige Auflösung zu erreichen. Geben Sie 1,4 Milliliter der Galliumtrichlorid-Stammlösung zur EOB-DTPA-Lösung hinzu und platzieren Sie eine pH-Elektrode in das Becherglas.Dann tropfenweise verdünnte wässrige Ammoniaklösung hinzufügen, bis der pH-Wert der Lösung etwa 4,1 beträgt. Nach dem Entfernen des Lösungsmittels im Vakuum wird der Rückstand in einen Kolben gegeben, der mit einem Destillationskopf mit zentralem und seitlichem Nebenhals ausgestattet ist. Der zentrale Hals wird mit einem Kühlfinger, der seitliche Hals mit einem Vakuumanschluss ausgestattet.Erhitzen Sie den Rückstand unter vermindertem Druck. Entfernen Sie periodisch sublimiertes Ammoniumchlorid aus dem Kolben mit einem leicht feuchten Tuch. Konditionieren Sie eine PSH plus-Kartusche, indem Sie sie langsam mit 1 Milliliter 1-molarer Salzsäure und anschließend mit 5 Millilitern Wasser durchspülen.Danach wird die Silicasäule des Generators mit vier Millilitern 0,05-molarer Salzsäure eluiert und das Gallium-68-Eluat in die PSH-plus-Kartusche geladen. Die Kartusche wird mit fünf Millilitern Wasser gespült. Nach dem Trocknen mit Luft wird das Gallium-68 mit einem Milliliter fünf-molarer, saurer Natriumchloridlösung aus der Kartusche eluiert.Geben Sie nun 50 Mikroliter der Gallium-68-Eluate und 50 Mikroliter einer zuvor hergestellten 19-Mikromolar-EOB-DTPA-Stammlösung in ein Gefäß. Fügen Sie 300 Mikroliter Puffer hinzu, um den pH-Wert auf 4,0 zu erhöhen. Schütteln Sie kurz und inkubieren Sie die Lösung fünf Minuten bei Raumtemperatur.Überführen Sie eine Portion der Lösung von fünf bis 20 Mikroliter in ein HPLC-Gefäß. Führen Sie anschließend eine Radio-HPLC-Analyse an einer umgekehrten Phase C18-Säule durch. Zur Durchführung von in-vitro-Stabilitätsmessungen entnehmen Sie Proben aus der Markierungslösung, die sechs bis 12 Megabecquerel Tracer enthalten.Führen Sie eine Radio-TLC-Analyse auf 80 Millimeter Silicagel-beschichteten Aluminiumplatten unter Verwendung von 0,1 molarer wässriger Natriumcitratlösung als Laufmittel durch. Analysieren Sie die Platten mit einem Radioaktivitäts-TLC-Scanner. Um die Stabilität in phosphatgepufferter Kochsalzlösung zu bestimmen, geben Sie 150 Mikroliter einer 10 Millimolar-PBS-Standardlösung und 60 Mikroliter einer 0,1 molaren Natriumhydroxidlösung zu 65 Mikrolitern Markierungslösung hinzu.Lösen Sie die Lösung gründlich. Danach überführen Sie ein ein bis fünf Mikroliter großes Aliquot der Lösung auf eine Silicagelplatte für die Dünnschichtchromatographie-Analyse. Bewahren Sie die Lösung unverz&uuml;glich bei 37 Grad Celsius in einem Inkubator auf.Entnehmen Sie Aliquote, um innerhalb von drei Stunden zu repräsentativen Zeitpunkten eine Dünnschichtchromatographie (TLC)-Analyse durchzuführen. Um die Stabilität gegenüber einem Überschuss an Apotransferrin zu bestimmen, geben Sie 50 Mikroliter einer 10 Millimolar-PBS-Stammlösung und 430 Mikroliter einer 0,1 Molaren Natriumhydroxidlösung zu 120 Mikrolitern Markierungslösung hinzu. Fügen Sie 40 Mikroliter einer 25 Milligramm pro Milliliter-Lösung von Apotransferrin hinzu und mischen Sie die Lösung gründlich. Überführen Sie anschließend ein ein bis fünf Mikroliter umfassendes Aliquot der Lösung auf eine Kieselgelschicht für die Dünnschichtchromatographie (TLC). Lagern Sie die Lösung unverzüglich im Brutschrank bei 37 Grad Celsius. Entnehmen Sie Aliquots, um innerhalb von drei Stunden zu repräsentativen Zeitpunkten TLC-Analysen durchzuführen.Um die Stabilität in humanem Serum zu bestimmen, geben Sie 45 Mikroliter einer 0,1-molaren Natriumhydroxidlösung und 500 Mikroliter humanes Serum zu 25 Mikrolitern der Markierungslösung hinzu. Nach gründlichem Mischen der Lösung überführen Sie ein ein- bis fünf Mikroliter großes Aliquot auf eine Silicagelplatte zur Dünnschichtchromatographie-Analyse. Bewahren Sie die Lösung unverzüglich bei 37 Grad Celsius in einem Inkubator auf.Entnehmen Sie Aliquote, um innerhalb von drei Stunden zu repräsentativen Zeitpunkten eine Dünnschichtchromatographie (TLC)-Analyse durchzuführen. Zur Bestimmung des Verteilungskoeffizienten geben Sie 20 Mikroliter einer 10 Millimolar PBS-Standardlösung und 170 Mikroliter einer 0,1 Molaren Natriumhydroxidlösung zu 50 Mikrolitern der Markierungslösung hinzu. Überführen Sie 200 Mikroliter der Lösung in ein kunststoffenes Vial mit V-Boden und geben Sie 200 Mikroliter n-Octanol hinzu.Schließen Sie das Gefäß und wirbeln Sie es zwei Minuten lang im Vortex. Zentrifugieren Sie die Probe anschließend bei 1600 × g für fünf Minuten. Entfernen Sie nach der Zentrifugation jeweils drei Proben à 40 Mikroliter aus der n-Octanol-Phase und der wässrigen Phase und geben Sie sie in separate plastische V-Probengefäße. Messen Sie abschließend die Aktivität jeder Probe 30 Sekunden lang in einem Gammazählgerät.Das ligenierte EOB-DTPA und der nicht radioaktive Gallium-3-Komplex wurden mittels Protonen- und Kohlenstoff-NMR-Spektroskopie, Massenspektrometrie und Elementaranalyse analysiert. Das Markierungsverfahren führt zur Bildung des gewünschten Tracers Gallium-68-EOB-DTPA, der als Radio-HPLC-Signal mit einer Retentionszeit von 2,8 Minuten nachgewiesen wird. Der Vergleich mit der Retentionszeit des kalten Standards bei 220 Nanometern bestätigt die erfolgreiche Markierung.Die Gallium-68-Markierungseffizienz von EOB-DTPA wurde untersucht, indem die Markierungsausbeute in Abhängigkeit von der Ligandenkonzentration mittels HPLC bestimmt wurde. Hier ist ein repräsentatives Chromatogramm einer TLC-Platte dargestellt, das mit einem TLC-Radioaktivitätsdetektor analysiert wurde. Um die Stabilität des Tracers zu untersuchen, wurde die radiochemische Reinheit über die Zeit mittels TLC bestimmt.Der standardisierte Prozentsatz an intaktem Tracer ist hier als Funktion der Zeit dargestellt. Aktivitätswerte und die anschließende Berechnung des Verteilungskoeffizienten sind hier aufgeführt. Mit dieser Vorgehensweise können weitere Methoden wie In-vitro-Experimente durchgeführt werden, um zusätzliche Fragen hinsichtlich der Biodistribution und der Aufnahmedynamik zu beantworten.Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis der Techniken zur Bewertung und Analyse von Gallium-68-Tracern für die molekulare Bildgebung haben. Vergessen Sie nicht, dass der Umgang mit radioaktiven Substanzen schädlich sein kann. Er darf nur von geschultem Personal durchgeführt werden.Es sollten immer Sicherheitsvorkehrungen wie die Verwendung von Bleischutzschilden und Pinzetten getroffen werden, wenn dieses Verfahren durchgeführt wird.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Chemistry

Chemie

Wir zeigen die Metallierung, Reinigung und Charakterisierung von Lanthanoid-Komplexen. Die hier beschriebenen Komplexe können konjugiert werden, um Makromoleküle, damit diese Rückverfolgung Moleküle mittels Magnetresonanztomographie.

Herstellung, Reinigung und Charakterisierung von Lanthanoidkomplexe für die Verwendung als Kontrastmittel für die Magnetresonanz-Tomographie

Die bioorthogonale inverse Elektronennachfrage Diels-Alder-Cycloaddition wurde genutzt, um eine effektive und modulare prägezielte PET-Bildgebungsstrategie für Krebs zu entwickeln. In diesem Protokoll werden die Schritte dieser Methodik im Kontext eines Modellsystems beschrieben, das den auf Darmkrebs abzielenden Antikörper huA33 und einen 64-Cu-markierten Radioliganden verwendet.

Die Nutzung der Bioorthogonale inversem Elektronenbedarf Diels-Alder-Cycloaddition für Pretargeted PET Imaging

Dieses Protokoll beschreibt die Herstellung und Charakterisierung eines dendrimeren Magnetresonanztomographie (MRI), die Kontrastmittel trägt cyclen basierenden makrocyclischen Chelate paramagnetischen Ionen Gadolinium- koordinieren. In einer Reihe von MRI - Experimente in vitro produzierte dieses Mittel ein verstärktes MRI - Signal , wenn an dem handelsüblichen monomeren Analogon verglichen.

Vorbereitung und<em&gt; In Vitro</em&gt; Charakterisierung der für Magnetresonanz-Kontrastmittel Dendrimer-basierten

Hier präsentieren wir ein Protokoll erhalten68Ga Kern-dotierte Eisenoxid-Nanopartikel über schnell Mikrowelle-driven Synthese. Die Methodik macht PET / (T1) MRI Nanopartikel mit enzymatische Effizienz höher als 90 % und 99 % in einer 20-min-Synthese radiochemische Reinheit.

Synthese von 68-Ga-Kern-dotierte Eisenoxid-Nanopartikeln für Dual Positronen-Emissions-Tomographie / (T1) Magnetic Resonance Imaging

Gut differenzierte neuroendokrine Tumoren overexpress Somatostatin-Rezeptoren, die für die diagnostische Bildgebung mit der radioaktiven Somatostatin-analog 68Ga-DOTATATE genutzt werden können. Dieses Protokoll beschreibt die enzymatische 68Ga-DOTATATE, Qualitätskontrolle, Patientenvorbereitung und anschließende PET/CT-Bildgebung. Strahlenschutz und Verengungen der Zeit wegen der kurzen Halbwertszeit von 68Ga werden berücksichtigt.

Ein praktischer Leitfaden für die Produktion und PET/CT-Bildgebung von 68Ga-DOTATATE für neuroendokrine Tumoren in der täglichen klinischen Praxis

In dieser Studie wurde eine nicht-invasive Echtzeitmethode entwickelt, um die Verteilung des programmierten Todesliganden 1 im gesamten Körper zu bewerten, basierend auf der positronenemissionstomographischen Bildgebung des [68Ga] D-Dodecapeptid-Antagonisten. Diese Technik hat Vorteile gegenüber der herkömmlichen Immunhistochemie und verbessert die Effizienz bei der Identifizierung geeigneter Patienten, die von einer Immun-Checkpoint-Blockade-Therapie profitieren.

Entwicklung eines 68Gallium-markierten D-Peptid-PET-Tracers für die Bildgebung der programmierten Expression des Todesliganden 1

Das vorliegende Protokoll beschreibt, wie 64Cu PET/CT- und PET/MRT-Bildgebung am Menschen durchgeführt werden können, um kupferbedingte Erkrankungen wie Morbus Wilson und die Auswirkungen der Behandlung auf den Kupferstoffwechsel zu untersuchen.

Positronen-Emissions-Tomographie mit 64-Kupfer als Tracer zur Untersuchung kupferbedingter Erkrankungen

Quantitative Messungen des Sauerstoff- und Glukosestoffwechsels mittels PET sind etablierte Technologien, aber Details zu praktischen Protokollen werden in der Literatur nur spärlich beschrieben. In diesem Beitrag wird ein praktisches Protokoll vorgestellt, das erfolgreich auf einem hochmodernen Positronen-Emissions-Tomographie-Computertomographen implementiert wurde.

Multi-Tracer-Studien des Sauerstoff- und Glukosestoffwechsels im Gehirn mit einem Flugzeit-Positronen-Emissions-Tomographie-Computertomographen

Diese Arbeit beschreibt die automatisierte Herstellung von bis zu 1,7 GBq [68Ga]Ga-FAPI-46 auf dem iPHASE MultiSyn Synthesizer für die PET-Bildgebung von Fibroblasten-Aktivierungsproteinen.

Eine automatisierte Radiosynthese von [68Ga]Ga-FAPI-46 für den routinemäßigen klinischen Einsatz

Dieser Artikel beschreibt die Radiosynthese, Formulierung und Qualitätskontrolle einer neuen radioaktiv markierten Sonde (d.h. 68Ga-markierter Nanobody NM-02) und ihre Verwendung für die PET/CT-Bildgebung von Kleintieren in einem Xenotransplantatmodell.

Radiosynthese, Qualitätskontrolle und Positronenemissionstomographie von Kleintieren Bildgebung von 68Ga-markierten Nanomolekülen

Diese Arbeit beschreibt den automatisierten Prozess zur Herstellung von [68Ga]Ga-3BP-3940 mit dem GAIA V2-Synthesizer für die PET-Bildgebung von Fibroblasten-Aktivierungsproteinen. Die Ergebnisse von Qualitätskontrolltests, die an drei Testchargen durchgeführt wurden, werden ebenfalls vorgestellt.

Automatisierte Präparation von [68Ga]Ga-3BP-3940 auf einem Synthesemodul für die PET-Bildgebung der Tumormikroumgebung

Erfahren Sie die radiochemische Markierung von Gallium-68 mit EOB-DTPA für die molekulare Bildgebung. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung von Markierungseffizienz, Stabilität und Lipophilie des Tracers in vitro.

Untersuchungen über die Ga (III) -Komplexes von EOB-DTPA and Its

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