Name: Geschmackspräferenz Assay für Erwachsene Drosophila (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-09-08T12:30:00.000+00:00
Duration: 4 min 31 s
Description: Lernen Sie einen einfachen Ingestion-Assay zur Untersuchung von Geschmackspräferenzen bei erwachsenen Drosophila. Diese Methode ermöglicht die Analyse genetischer Faktoren der Geschmacksauswahl ohne spezialisierte Geräte.

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Wir möchten den Mitgliedern des Tessier-Labors für die kritische Lektüre dieses Manuskripts und die hilfreichen Vorschläge bei der Erstellung dieses Protokolls danken.

1. Starvation <ol><li> Bereiten Sie Hunger Fläschchen fliegen durch einen Wattebausch mit 18,2 MOhm Wasser am Boden eines Standard-Fliegen Fläschchen zu sättigen. Alternativ in ähnlicher Weise einen kleinen Streifen aus Filterpapier mit 18,2 MOhm Wasser und in einem Winkel in der Phiole zu sättigen. </li><li> Sammeln Sie Fliegen in Gruppen von ~ 100 Tiere auf einem CO 2 Pad und fügen Sie dann die Fliegen auf einem vorbereiteten Fläschchen. Hinweis: Die besten Ergebnisse werden mit den Tieren erhalten, die weniger als 5 Tage alt sind. Jedoch kann die genaue Alter der Tiere als experimentelle Variable gesteuert werden, um Änderungen in Geschmack bevorzugt im Laufe der Zeit zu bestimmen. </li><li> Verwenden Sie einen Wattebausch oder Schaumstoffstopper zu sichern die Fläschchen verschlossen. Legen Sie Fläschchen auf ihrer Seite in einem umwelt kontrollierten Inkubator. Man hält die Temperatur bei 25 ° C und die Feuchtigkeit über 70%. Lassen Sie Fläschchen unberührt für 24 Stunden. </li></ol> 2. Geschmackspräferenz Assay <ol><li> Bereiten Sie alle tastants für den Test am selben Tag eins-Tests. Hinweis: Die genauen tastants verwendet werden, je nach Versuchs Frage variieren gefragt. Im Folgenden sind beispiels tastants in diesem Protokoll verwendet. Siehe Abschnitt 4 für Optimierungen. <ol><li> Bereiten Kontrolle Geschmacksträger (1 mM Saccharose) von 10 &amp; mgr; l von 100 mM Saccharose-Lösung kombiniert, 13 ul rote Lebensmittelfarbe, und 977 &amp; mgr; l von 18,2 M &amp; Omega; Wasser. </li><li> Bereiten Sie experimentellen Geschmacksträger (5 mM Saccharose) von 50 &amp; mgr; l von 100 mM Saccharose-Lösung kombiniert, 10 ul blauen Lebensmittelfarbe, und 940 &amp; mgr; l von 18,2 M &amp; Omega; Wasser. </li></ol></li><li> Machen Assaykammern unter Verwendung eines Standard 100 mm x 15 mm Kunststoff-Petrischale in der folgenden Weise hergestellt: <ol><li> Platzieren Sie drei 10 ul Tropfen Steuergeschmacksträger am nächsten zu dem Rand der Platte um 12 Uhr und weitere 3 Tropfen bei 6 Uhr. Sicherzustellen, dass der Abstand zwischen den Tropfen ähnelt. </li><li> Platzieren drei 10 ul Tropfen experimentellen Geschmacksträger am nächsten zu der Kante der Platte bei 3 Uhr und einandere 3 fällt um 9 Uhr. Sicherzustellen, dass der Abstand zwischen den Tropfen ähnelt. </li><li> Wiederholen Sie die Schritte 2.2.1 und 2.2.2 für so viele Wiederholungen wie gewünscht. </li></ol></li><li> Leer 1 Flasche ~ 100 verhungert Fliegen auf einen CO 2 Pad gerade lang genug , um alle Tiere zu betäuben (ca. 10 sec). Bürsten Sie die Tiere in die Mitte eines vorbereiteten Testkammer und Deckel mit dem Schalendeckel. Hinweis: Längere CO 2 Exposition sollte vermieden werden , um Erholungszeit und Begrenzung Interferenzen mit dem Fressverhalten zu verbessern. Die Exposition gegenüber Eis (~ 5 min) für anesthetizing verwendet werden , um CO 2 Verhaltenseffekte zu vermeiden , die von selbst eine begrenzte Exposition entstehen können. </li><li> Legen Sie die Testkammer in einem undurchsichtigen Karton. Achten Sie darauf, die außerhalb der Box mit der Bedingung und Genotyp getestet zu beschriften. </li><li> Platzieren Sie die gesamte Einrichtung (Testkammer enthalten innerhalb Karton aus Schritt 2.4) in einen 25 ° C-Inkubator mit mindestens 70% Feuchtigkeit für 2 Stunden. </li&gt; <li> Wiederholen Sie die Schritte 2.3 bis 2.5 für alle Wiederholungen. </li><li> Nach 2 Stunden, legen Sie die Testkammern, noch in Kartons enthalten sind, direkt in einem -20 ° C Gefrierschrank bis sie bereit zur Quantifizierung. </li></ol> 3. Geschmackspräferenz Assay Quantifizierung <ol><li> Lassen Sie einen einzigen Test Kammer auf Raumtemperatur erwärmen (ca. 5 min). </li><li> Unter einem Präpariermikroskop, einer Bürste oder einem Paar Pinzette, Gruppe Tiere auf der Grundlage der Farbe ihres Bauches: rot, blau, violett oder klar (Abbildung 1). </li><li> Notieren Sie die Anzahl der Tiere in jeder Gruppe. Betrachten wir klare Tiere wurden nicht in den Test teilgenommen und deshalb sind sie nicht in allen Berechnungen. </li><li> Berechne den Vorzugsindex nach einer der folgenden Gleichungen: <ol><li> Wenn die experimentelle Geschmacksträger von Interesse für den roten Farbstoff zugesetzt wird, dann verwenden (N rot + 0,5 N lila) / (N rot + blau N + N purple). </li><li> Wenn die experimentelle Geschmacksträger auf den blauen Farbstoff hinzugefügt wird, und stellen Sie dann die Gleichung (N blau + 0,5 N lila) / (N + N blau rot + N violett). </li></ol></li><li> Wiederholen Sie die Berechnungen für alle experimentellen Bedingungen und Replikate. </li></ol> 4. Optimierung der Geschmackspräferenz Assay <ol><li> Empirisch bestimmen verwendet werden, um die Konzentration von Lebensmittelfarbe Indikatoren so Lebensmittelfarbe nicht das Ergebnis des Geschmackstest wirkt sich wie folgt: <ol><li> Bereiten Sie 4 tastants die gleiche Basis - Verbindung (zB 5 mM Saccharose) , wie in Schritt angegeben 2.1, aber lassen Sie die Lebensmittelfarbe. </li><li> In 1,3% rote Lebensmittelfarbe auf eine der tastants. Nehmen Sie die restlichen 3 tastants mit blauen Lebensmittelfarbe von unterschiedlichen Konzentrationen in jedem Röhrchen (zB 0,6%, 1% und 1,3%). </li><li> Vollständige Protokollschritte 2.2 bis 3.4 für jedes Paar Geschmacksträger: 1,3% rot vs. 0,6% blau; 1,3% rot vs. 1% blau und1,3% rot vs. 1,3% blau. </li><li> Wiederholen Sie Schritt 4.1.1-4.1.3 mit unterschiedlichen Prozentsätzen der blauen Lebensmittelfarbe , bis die Präferenz - Index Mittelwerte ein Wert von 0 (Abbildung 2). Hinweis: Als Ausgangspunkt, um 1,3% rote Lebensmittelfarbe in Verbindung mit 1% blau Lebensmittelfarbe der Regel gute Ergebnisse liefert. Wenn keine befriedigende Konzentration an blauen Lebensmittelfarbe kann auf 1,3% Farbstoff angepaßt werden, wird im Schritt 4.1.1 bis 4.1.3 mit variierenden Konzentrationen von roten Färbung und eine konstante Konzentration an blauen Lebensmittelfarbe wiederholt werden. </li><li> Analyse alle Bedingungen mit den gleichen optimierten Lebensmittelfarbe Konzentrationen getestet werden. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Herrero, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fruit+fly+behavior+in+response+to+chemosensory+signals%5BTitle%5D)+AND+%22Peptides%22%5BJournal%5D)">Fruit fly behavior in response to chemosensory signals.</a> Peptides. 38 (2), 228-237 (2012).</li>
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<li>Tanimura, T., Isono, K., Yamamoto, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Taste+sensitivity+to+trehalose+and+its+alteration+by+gene+dosage+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Taste sensitivity to trehalose and its alteration by gene dosage in Drosophila melanogaster.</a> Genetics. 119 (2), 399-406 (1988).</li>
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<li>French, A. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dual+mechanism+for+bitter+avoidance+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Dual mechanism for bitter avoidance in Drosophila.</a> J Neurosci. 35 (9), 3990-4004 (2015).</li>
<li>Deshpande, S. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantifying+Drosophila+food+intake%3A+comparative+analysis+of+current+methodology%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Quantifying Drosophila food intake: comparative analysis of current methodology.</a> Nat Methods. 11 (5), 535-540 (2014).</li>
</ol>

Die Autoren erklären, dass sie keine konkurrierenden finanziellen Interessen haben.

Wir haben für die Bestimmung Geschmackspräferenz in Drosophila eine einfache aber effektive Protokoll beschrieben. Versionen dieses Tests werden routinemäßig in Experimenten verwendet, die Beiträge von Geschmacks- Rezeptoren (GRS) zur Wahrnehmung der verschiedenen Qualitäten (bitter, süß, sauer, salzig und umami) Geschmacksverbindungen zu bestimmen. Das Drosophila - Genom enthält etwa 60 Gene , die 8,9 68 identifiziert Geschmacks- Rezeptoren durch alternatives Spleißen kodieren. Allerdings h...

Tiere verwenden Chemosensorik vorteilhaften Bedingungen zu unterscheiden, abgesehen von ungünstigen Bedingungen. Diese Wahrnehmung kann für solche Dinge entscheidend sein , wie die beste Nahrungsquelle zu bestimmen, die Vermeidung toxischer Substanzen oder zur Bestimmung der besten Paarungspartner 1. Chemosensorik wird oft in zwei sensorische Komponenten aufgeteilt: Geruchssinn und Geschmacks-Sinne. Ein Hauptunterscheidungsmerkmal dieser Sinne ist, dass olfaction (Geruch) die umgebende gasförmige chemische Umgebung verwendet wird, zu probieren, während gustation (Geschmack) physischen Kontakt mit einem nichtflüchtigen Substrat erfordert. Beide sensorischen Modalitäten stimulieren neurologische Reaktionen , die verarbeitet werden und im Gehirn dekodiert die entsprechende anziehende oder abstoßende Verhalten 2 zu erzeugen. Diese Sinne sind daher von entscheidender Bedeutung für das Überleben der Tiere. Die Fruchtfliege Drosophila melanogaster ist ein Modellorganismus, der in der Popularität für den Einsatz weiter zu wachsen in verstehening, wie Insekten Geruch und Geschmack wahrnehmen. Fruchtfliegen bieten enorme Vorteile gegenüber anderen Modellsystemen aufgrund der Fülle von genetischen Werkzeuge zur Verfügung, für das Aufschneiden der molekularen, zellulären und Verhaltenswege. Arbeit in den letzten 15 Jahren hat sich besonders dazu beigetragen, die spezifische zelluläre Identitäten bei der Charakterisierung, neuronale Rezeptoren und Signal beide Mechanismen, die in Geruch und Geschmack. Nun ist die Macht der Drosophila Genetik verwendet wird , um weiter erläutern , wie diese Prozesse im einzelnen Neurons und einzelne Schaltungsebene codiert sind 3-6. Daher Assays, die Ablesungen von Veränderungen an sensorischen Bahnen vital dieser Felder auf die anhaltende Fortschritt sind leicht erzielt bieten. Während viel über bekannt ist, wie olfaktorische Signale werden im Gehirn kodiert und verarbeitet werden, viel weniger über ähnliche Mechanismen in der Geschmacks- Weg verstanden. Wir beschreiben hier ein Protokoll, das verwendet werden kann, Geschmack preferen zu ermittelnce in Drosophila. Drosophila, wie Säugetiere, bevorzugen in der Regel süß schmeckende Verbindungen als zu bitter schmeckenden Verbindungen gegenüber . Jede Kombination dieser Nahrungsquellen können in diesem Versuchsdesign verwendet werden, um festzustellen, wie bekannte genetische Veränderungen Geschmack Wahl beeinflussen. Zusätzlich können pharmakologische Interventionsstrategien in ähnlicher Weise auf ihre Wirkungen auf Tiere Geschmackspräferenz bewertet werden. Die Leichtigkeit und Flexibilität dieses Assays ist es ein nützliches Paradigma für die Natur der gustatory Wahrnehmung in Drosophila zu verstehen.

<table><tbody><tr><td>Blaue Lebensmittelfarbe (Wasser, Propylenglykol, FD& C Blau 1 und Rot 40, Propylparaben)</td><td>McCormick</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Kryo-/Gefrierboxen ohne Trennwände</td><td>Fisher</td><td>03-395-455</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #5 Pinzette</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-20</td><td></td></tr><tr><td>Eisessig</td><td>Fisher</td><td>BP2401-500</td><td></td></tr><tr><td>Leica S6 E Stereozoom 0,63X-4,0X Mikroskop</td><td>W. Nuhsbaum, Inc.</td><td></td><td></td>10446294</tr><tr><td>Petrischale (100 mm x 15 mm)</td><td>BD Falcon</td><td>351029</td><td>Wiederverwendbar, wenn es gründlich gewaschen und getrocknet</td></tr><tr><td>wird Quick-Snap Mikroröhrchen</td><td>Alkali Scientific Inc.</td><td>C3017</td><td></td></tr><tr><td>Rote Lebensmittelfarbe (Wasser, Propylenglykol, FD& C Reds 40 und 3, Propylparaben)</td><td>McCormick</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Saccharose</td><td>IBI Scientific</td><td>IB37160</td><td></td></tr></tbody></table>

geschmackspräferenz assay für erwachsene<em&gt; drosophila</em

Taste Preference Assay for Adult Drosophila

Die olfaktorische und geschmackliche Wahrnehmung der Umgebung ist entscheidend für das Überleben der Tiere. Die naheliegendste Anwendung dieser Chemosenses besteht darin, gute Nahrungsquellen von potenziell gefährlichen Nahrungsquellen unterscheiden zu können. Gustation erfordert den physischen Kontakt mit einer chemischen Verbindung, die in der Lage ist, Signale über Geschmacksrezeptoren zu senden, die auf der Oberfläche von Neuronen exprimiert werden. Bei Insekten können diese geschmacklichen Neuronen im ganzen Körper des Tieres angeordnet sein, so dass der Geschmack eine wichtige Rolle bei vielen verschiedenen Verhaltensweisen spielt. Insekten bevorzugen in der Regel Verbindungen, die Zucker enthalten, während Verbindungen, die als bitter schmeckend gelten, vermieden werden. Angesichts der grundlegenden biologischen Bedeutung des Geschmacks besteht ein großes Interesse daran, die molekularen Mechanismen zu verstehen, die dieser sensorischen Modalität zugrunde liegen. Wir beschreiben einen adulten Drosophila-Geschmackstest, der die Präferenz der Tiere für eine bestimmte schmackhafte Verbindung widerspiegelt. Dieser Assay kann auf Tiere beliebiger genetischer Herkunft angewendet werden, um die Geschmackspräferenz für eine gewünschte lösliche Verbindung zu untersuchen.

Einige typische Ergebnisse von Geschmackspräferenz Assays sind unten dargestellt. In den meisten Experimenten wird eine gewisse Variation in der Intensität der abdominalen Färbung zu sehen (Abbildung 1). Jede Färbung im Bauch, ob intensiv oder schwach ist, eine positive Aufnahme in Betracht gezogen. Es ist daher ratsam, für Forscher Tiere während blind für die experimentellen Bedingungen zu erzielen, um mögliche Verzerrungen zu begrenzen. <p class="jove_content" fo:k...

Geschmack ist ein wichtiger sensorischer Prozess, der die Anziehungskraft auf nützliche Substanzen und die Vermeidung von giftigen Substanzen erleichtert. Dieses Protokoll beschreibt einen einfachen Ingestion-Assay zur Bestimmung der gustatorischen Präferenz von Drosophila für eine gegebene chemische Verbindung.

Geschmackspräferenz Assay für Erwachsene<em&gt; Drosophila</em

Olfactory and gustatory perception of the environment is vital for animal survival.  The most obvious application of these chemosenses is to be able to ...

Das allgemeine Ziel dieses Verfahrens besteht darin, die relative Präferenz erwachsener Drosophila für einen chemischen Geschmacksstoff gegenüber einem anderen zu bestimmen. Diese Methode kann helfen, zentrale Fragen im Forschungsbereich des Drosophila-Geschmackssinns zu beantworten, beispielsweise welche Gene notwendig sind, um zwischen süßen Verbindungen oder potenziell toxischen, bitteren Verbindungen zu unterscheiden.Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass sie einfach ist und keinerlei spezielle Instrumente erfordert. Die Durchführung des Verfahrens wird Andrew Bantel, ein Techniker aus meinem Labor, demonstrieren. Um das Experiment zu beginnen, befeuchten Sie einen Wattebausch mit Wasser am Boden einer standardmäßigen Fliegenflasche vollständig.Sammeln Sie anschließend Fliegen in Gruppen von jeweils 100 Tieren auf einem CO2-Betäubungspad und geben Sie sie in ein vorbereitetes Gefäß. Verschließen Sie die Gefäße mit einem Wattebausch. Stellen Sie die Gefäße danach liegend in einen klimatisch geregelten Inkubator.Bereiten Sie den kontrollierten Geschmacksstoff mit einer Konzentration von einem Millimolar Saccharose vor, indem Sie 10 Mikroliter einer 100-Millimolar-Saccharoselösung, 13 Mikroliter rote Lebensmittelfarbe und 977 Mikroliter Wasser kombinieren. Bereiten Sie anschließend den experimentellen Geschmacksstoff mit einer Konzentration von fünf Millimolar Saccharose vor. Erstellen Sie danach die Testkammern, indem Sie eine 100 Millimeter mal 15 Millimeter große Kunststoff-Petri-Schale verwenden und Tropfen des kontrollierten Geschmacksstoffs mit je drei Mikrolitern so nah wie möglich am Rand der Platte in der 12-Uhr-Position aufbringen.Platzieren Sie am Drei-Uhr-Position drei Tropfen des experimentellen Geschmacksstoffes mit je 10 Mikroliter so nah wie möglich am Rand der Platte. Platzieren Sie drei weitere Tropfen des kontrollierten Geschmacksstoffes an der Sechs-Uhr-Position. Danach platzieren Sie drei weitere Tropfen des experimentellen Geschmacksstoffes an der Neun-Uhr-Position.Als Nächstes eine Flasche mit 100 hungernden Fliegen auf ein CO2-Pad entleeren, nur so lange, bis alle Tiere anästhesiert sind. Die Tiere in die Mitte einer vorbereiteten Testkammer fegen und diese mit dem Deckel der Schale abdecken. Die Testkammer in eine undurchsichtige Pappschachtel stellen.Dann beschriften Sie die Außenseite der Schachtel mit der getesteten Bedingung und dem Genotyp. Bringen Sie die gesamte Apparatur in einen Inkubator. Nach zwei Stunden stellen Sie die Testkammern, die sich noch in den Pappschachteln befinden, direkt in einen Gefrierschrank bei minus 20 Grad Celsius, bis sie zur Quantifizierung bereitstehen.Lassen Sie eine einzelne Assaykammer auf Raumtemperatur erwärmen. Gruppieren Sie die Tiere unter einem Stereomikroskop mithilfe eines Pinsels anhand der Farbe ihres Abdomens. Rot, blau oder lila.Notieren Sie die Anzahl der Tiere in jeder Gruppierung. Dieses Diagramm zeigt die Wirkung unterschiedlicher Konzentrationen des blauen Farbstoffs bei konstanter Konzentration des roten Farbstoffs und verdeutlicht eine optimale Kombination von 1,3 % rot zu 1,0 % blau. Drosophila werden von hohen Saccharosekonzentrationen natürlicherweise angezogen, was sich in einem Präferenzindex nahe eins widerspiegelt, wenn sie die Wahl zwischen fünf Millimolar Saccharose und einem Millimolar Saccharose haben.Diese Präferenz kehrte sich bei Zugabe von Säure um, wodurch der Präferenzindex nahezu null sank. Bei Durchführung dieses Verfahrens ist es wichtig, die Zusatzstoffe der Lebensmittelfarben zu testen: Gab es Auswirkungen auf den Präferenztest? Die Konzentrationen jeder Farbe sollten keinen Einfluss auf den Leistungsindex haben.

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Forschung

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Neurowissenschaften

Drosophila-Larven sind in der Lage, um Geruch Reize mit geschmackliche Belohnung assoziieren. Hier beschreiben wir eine einfache Verhaltensänderungen Paradigma, das die Analyse von appetitive assoziative olfaktorische Lernen ermöglicht.

Appetitive Assoziative olfaktorischen Lernens in<em&gt; Drosophila</em&gt; Larven

Dieses Video beschreibt einen Fütterungstest für Fruchtfliegen, bei dem farbiges Futter verwendet wird, um die Fütterung und die Wirkung zugesetzter Verbindungen auf die Fressaktivität zu überwachen. Das Beispielprotokoll testet die Wirkung verschiedener endokrin wirksamer Chemikalien (EDC).

Fütterungstest: Erfassung der Fresspräferenzen bei Drosophila melanogaster

Dieses Video beschreibt den Geschmackspräferenz-Assay, eine Verhaltensmethode, die verwendet wird, um die Anziehungskraft oder Vermeidung von farbigen Lösungen, die anders schmecken, zu messen, indem die Bauchfärbung der Fliege nach der Einnahme der bevorzugten Substanz bewertet wird. Das vorgestellte Protokoll demonstriert das Verfahren, mit dem die Präferenz von Fliegen für Lösungen mit unterschiedlichen Saccharosekonzentrationen gemessen wird.

Geschmackspräferenz-Assay: Eine Methode zur Messung des Fressverhaltens bei Drosophila

Dieses Video beschreibt den CApillary FEeder oder CAFE-Assay, eine Verhaltensmethode, die die Nahrungsaufnahme und -präferenz von ungezügelten Fruchtfliegen misst. Das vorgestellte Protokoll zeigt, wie der Assay mit minimaler Verdunstung aus den flüssigkeitsgefüllten Kapillaren durchgeführt wird, die zur Abgabe der Nahrung und zur Verfolgung ihrer Aufnahme verwendet werden.

Der CApillary FEeder (CAFE) Assay: Eine Methode zur Verfolgung des Lebensmittelkonsums und der Präferenz bei Drosophila

Drosophila-Weibchen wählen zwischen Substraten und wählen Standorte, die für die Eiablage attraktiv sind. Dieses Video beschreibt einen Verhaltensassay, der ihre Entscheidungsfindung testet, den sogenannten Eiablage-Präferenz-Assay. Der vorgestellte Clip demonstriert das Verfahren mit einem speziell angefertigten Setup, das es den Forschern nicht nur ermöglicht, das Verhalten vieler Weibchen gleichzeitig zu testen, sondern auch mit Videoaufzeichnungen und optogenetischen Setups kompatibel ist.

Drosophila Egg Lege-Preference Assay: Eine Methode zur Überprüfung der Entscheidungsfindung bei Fliegen

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Ein Single-fly-Assay für Sammelverhalten in Drosophila

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Testen<em&gt; Drosophila</em&gt; Riechen mit einem Y-Labyrinth-Test

Dieses Protokoll beschreibt einen Hochdurchsatz-Assay zum Testen der Eiablagepräferenzen von Drosophila melanogaster bei Einzeltierauflösung.  Dieser Assay bietet eine einfache, effiziente und skalierbare Plattform zur Identifizierung von Genen und Schaltkreiskomponenten, die einen einfachen Entscheidungsprozess steuern.

Assay mit hohem Durchsatz Eiablage Präferenzen der einzelnen zu untersuchen<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Wir beschreiben ein Protokoll zur Induktion lohnend und nonrewarding Erfahrungen in Fruchtfliegen (Drosophila melanogaster) mit freiwilligen Ethanolkonsum als Maß für Änderungen in Lohn Staaten.

Ein einfacher Weg zu messen Veränderungen in Reward-seeking Verhalten verwenden<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Der CApillary FEeder (CAFE) Assay ist eine einfache, budgetfreundliche und äußerst zuverlässige Methode zur Untersuchung von Mechanismen, die der Nahrungsaufnahme zugrunde liegen. In Verbindung mit dem vielseitigen genetischen Modellorganismus Drosophila melanogaster bietet es ein leistungsfähiges Mittel, um neue Erkenntnisse über die Regulationsmechanismen der Nahrungsaufnahme zu gewinnen.

Die kapillare feeder Assay misst die Nahrungsaufnahme in<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Wir präsentieren ein Protokoll für einen Fütterungstest mit zwei Wahlmöglichkeiten für Fliegen. Dieser Fütterungstest ist schnell und einfach zu betreiben und eignet sich nicht nur für kleine Laborforschung, sondern auch für Verhaltensbildschirme mit hohem Durchsatz bei Fliegen.

Ein schneller Food-Preference-Test in Drosophila

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Geschmackspräferenz Assay für Erwachsene

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