Name: Die protektive Wirksamkeit und pulmonale Immunantwort nach subkutaner und intranasale BCG Verabreichung an Mäuse (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-09-19T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 32 s
Description: Erfahren Sie, wie die BCG-Impfung intranasal und subkutan bei Mäusen verglichen wird, um die pulmonale Immunantwort und protektive Wirksamkeit gegen Tuberkulose zu untersuchen. IL17 spielt eine zentrale Rolle.

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Diese Arbeit wurde unterstützt von "Spanisches Ministerium für Wirtschaft und Wettbewerbsfähigkeit" [Fördernummer BIO2014-5258P], "Europäische Kommission" durch die H2020-Programme [Fördernummern TBVAC2020 643381].

Alle Mäuse wurden unter kontrollierten Bedingungen gehalten und auf Anzeichen von Krankheit beobachtet. Experimentelle Arbeiten wurde in Übereinstimmung mit den europäischen und nationalen Richtlinien für den Schutz von Versuchstieren und mit der Zustimmung der zuständigen lokalen Ethikausschüsse durchgeführt. 1. Herstellung von Quantifizierte Glycerol Stocks von BCG dänischen und Mycobacterium tuberculosis H37Rv HINWEIS: Alle beschriebenen Protokolle wurden unter BSL3 Bedingungen durchgeführt. <ol><li> Auftau gefrorenen Glycerinstammkulturen von BCG Danish oder H37Rv Stämme und 100 &amp; mgr; l in 10 ml 7H9 - Medium 10 mit Tween-80 0,05% (v / v) und ADC (Albumin, Dextrose, Catalase) 10% (v / v) ergänzt inokulieren. </li><li> Inkubiere unter statischen Bedingungen für eine Woche bei 37 ° C, bis die Kultur in log-Phasenwachstum ist. </li><li> Scale-up Bakterienkultur durch die Übertragung der 10-ml-Kultur zu 200 ml frischem Medium. Inkubieren für 20 weitereTagen unter statischen Bedingungen. </li><li> Transfer in 50-ml-Zentrifugenröhrchen und zentrifugiere für 15 Minuten bei 2500 x g. </li><li> Entsorgen Sie Stände und Bakterienpellet im Restvolumen resuspendieren. In jedes Röhrchen sterile 3 mm Durchmesser Glasperlen (10 bis 15 pro Röhrchen). </li><li> Vortex kräftig während 1 min, um Bakterienklumpen zu distanzieren. Resuspendieren jedes Pellet in 10 ml PBS mit Tween-80 0,05% (v / v). </li><li> Lassen Sie Rohre für 10 Minuten erlaubt die größten Bakterien Aggregate und Glasperlen zu beruhigen. </li><li> Recover 9,5 ml Überstand aus jeder der vier Röhrchen, die kleine Klumpen und einzelne Bakterien und Transfervolumina zu einem einzigen frischen 50-ml-Zentrifugenröhrchen (endgültige gewonnen Volumen 38 ml). Zentrifuge für 10 min bei 400 x g. </li><li> Recover 35 ml Überstand (die hauptsächlich einzelne Bakterien) in einem einzigen frischen 50-ml-Zentrifugenröhrchen und 15 ml PBS mit Glycerin 50% (v / v), eine endgültige Glycerinkonzentration von 15% zu erhalten (v / v). </li><li> vorsichtig mischenund zum Einfrieren in 1-ml-Teilmengen in entsprechenden Röhrchen verteilen. Bei -80 ° C (ein Los liefert etwa 50 Aliquots Glycerolstammlösung). </li><li> Um Glycerin-Stamm quantifizieren, tauen Sie den Tag mit einem Glycerin nach dem Einfrieren und führen sieben zehnfache serielle Verdünnungen in separaten 1,5-ml-Röhrchen, die 900 &amp; mgr; l PBS. </li><li> Platte 100 &amp; mgr; l jeder Verdünnung in 7H10 Fest Agarmedium , ergänzt mit 10 ADC 10% (v / v) hergestellt , in 55-mm - Durchmesser - Petrischalen. </li><li> Vorsichtig 3 mm Durchmesser Glasperlen (ca.. 10 pro Platte) und sanft Platte schütteln, um gleichermaßen Volumen über Agar-Platte verteilen. Entsorgen Sie Perlen und versiegeln Agar-Platte mit Parafilm. </li><li> bei 37 ° C für 21 Tage inkubieren und koloniebildende Einheiten (CFU) in den Verdünnungen in denen Einzelkolonien genau unterschieden werden können durch Zählen von Bakterienkonzentration zu bestimmen. </li></ol> 2. Maus Impfung <ol><li> Tauen Sie eine vorher quantifiziert BCG Glycerin und verdünnen Sie es in PBS zu prepzwei Suspensionen. Endvolumen Berechnen Sie die Dosis pro Tier unter Berücksichtigung von 100 &amp; mgr; l für die subkutane Verabreichung (10 7 KBE pro ml für die subkutane Impfung) und 40 &amp; mgr; l für die intranasale Verabreichung (2,5 x 10 7 CFU für die intranasale Impfung). </li><li> Verwenden Sie eine spezielle Anästhesiearbeitsplatz für Nager mit einer Mischung von Isofluran und Sauerstoff Mäuse zu betäuben. Verwenden Isofluran 5% Anästhesie zu induzieren und 2% der Mäuse in der Anästhesiekammer aufrechtzuerhalten. (Andere akzeptierte Anästhesie Methode kann verwendet werden). </li><li> Zur subkutanen Verabreichung des Impfstoffes füllen eine 1-ml - Spritze mit einer 26 G - Nadel mit 1 ml Bakteriensuspension (10 7 KBE / ml). Luftblasen entfernen. </li><li> Legen Sie eine narkotisierten Maus auf einer ebenen Fläche in Bauchlage in einer Laminar - Flow - Haube und impfen subkutan 100 &amp; mgr; l (10 6 CFU / Dosis) des Impfstoffes in einer Flanke der Maus zurück. Bringen Sie die Maus an den Käfig und zu überwachen, um sicherzustellen, dass es Properly erholt sich von der Narkose. </li><li> Ändern Sie die Spritzennadel zwischen jeder Maus Verwaltung. Luftblasen entfernt, wie oben beschrieben. </li><li> Für die intranasale Verabreichung, im Inneren der Kapuze eine narkotisierten Maus in Rückenlage legen. </li><li> Mit einer Mikropipette nehmen 20 ul der Suspension mit 2,5 x 10 7 CFU / ml. Legen Sie das Inokulum Drop-by-Drop zwischen den beiden Nüstern, bis das gesamte Volumen abgeschieden wurde, so dass Zeit zwischen Tropfen der Maus atmen die Lautstärke in zu ermöglichen. Hinweis: Mäuse, die von Atemnot während dieses Verfahrens leiden können, so sollten sie bleiben assimilieren jeden Tropfen, bevor der nächste administrieren es so weit wie möglich zu verhindern. </li><li> Nachfüllung der Mikropipette mit einem weiteren 20 ul und den Vorgang wiederholen. Wenn die Maus aus der Narkose nach der ersten Impfung aufzuwachen beginnt, legen Sie sie in der Anästhesie Kammer vor dem zweiten. Bringen Sie die Maus an den Käfig und sicherzustellen, dass es richtig erholtaus der Narkose. </li></ol> 3. Maus intranasale Herausforderung mit Stamm H37Rv <ol><li> Tauen Sie eine vorher quantifiziert H37Rv Glycerin und verdünnen Sie es in PBS eine bakterielle Suspension von 2500 KBE pro ml herzustellen. Endvolumen Berechnen Sie die Dosis pro Tier unter Berücksichtigung beträgt 40 ul. </li><li> H37Rv intranasal geimpft wie in 2.5 beschrieben - 2.7. Endgültige Herausforderung Dosis pro Maus ist 10 2 CFU / 40 &amp; mgr; l. </li></ol> 4. Analyse der induzierten Immunantwort in Lungs <ol><li> Lung Zellsuspension HINWEIS: Beurteilung der Impfstoff-induzierte adaptive Immunantwort in der Lunge erfordert die Erzeugung von Einzelzellsuspension. Zu diesem Zweck verwenden wir ein Gewebe Dissociator wie gentleMACS. <ol><li> Opfere die Maus durch Genickbruch (oder andere anerkannte humane Methode) und gewährleisten Maus tot ist, den Augapfel zu berühren abwesend von Lidschlussreflexes zu bestätigen. </li><li> Innerhalb einer Laminar-Flow-Haube, extrahieren Sie die lungs mit einer sterilen Schere und Pinzette und legen Sie sie auf eine saubere Oberfläche. Saubere Lungen Trachea und Bindegewebe zu entfernen, und übertragen Sie die Lungen in ein 1,5-ml-Röhrchen mit PBS (halten auf Eis bis zur Verarbeitung). </li><li> Zu erzeugen , eine Zellsuspension, legen Lungen in einem geeigneten Schlauch für organ Dissoziation (C-Dissociator Rohr) , das 5 ml 10 mM HEPES-NaOH pH 7,4, 150 mM NaCl, 5 mM KCl, 1 mM MgCl 2 und 1,8 mM CaCl 2 Puffer. </li><li> Füge 100 &amp; mgr; l Kollagenase D 100 mg / ml (2 mg / ml Endkonzentration) und 40 &amp; mgr; l DNAse I 20.000 IU / ml (160 IU / ml Endkonzentration. HINWEIS: Stammlösungen von Kollagenase D oder DNaseI werden hergestellt , lyophilisiert Auflösen Enzyme in PBS oder Glycerol 50% (v / v), 20 mM Tris-HCl , pH 7,5 , y MgCl 2 1 mM, respectively. </li><li> Das Röhrchen wird in das Gewebe Dissociator und nutzen Sie das vordefinierte Programm m_lung_01 für Lungen Fragmentierung. Inkubieren der Röhrchen bei 37 ° C in einem Wasserbad für 30 min. </li><li> Platz the Rohr im Dissociator und nutzen Sie das vordefinierte Programm m_lung_02 für die komplette Lunge Homogenisierung in einzelne Zellsuspension. </li><li> Übergeben Sie die Zellsuspension durch ein 70 &amp; mgr; m Sieb Nylon Zelle mit einem Schlauch 50-ml-Zentrifugen ausgestattet. Waschen Sie das Sieb mit 10 ml RPMI 1640-Medium. </li><li> Centrifuge Zellen für 5 Minuten bei 400 · g und Überstand verwerfen. </li><li> 1 ml der Erythrozyten Lysepuffer, mischen durch Vortexen und Inkubation für 1 min bei Raumtemperatur. </li><li> 10 ml RPMI 1640-Medium und zentrifugieren Zellen für 5 Minuten bei 400 x g. </li><li> Die Zellen in 0,5 ml komplettem Medium RPMI 1640 mit 10% hitzeinaktiviertem fötalen Kälberserum (FCS) supplementiert, 2 mM L-Glutamin, 100 ug / ml Streptomycin, 100 IU / ml Penicillin und 50 &amp; mgr; M 2-Mercaptoethanol. HINWEIS: FCS durch Inkubation für 30 Minuten bei 56 ° C inaktiviert wird. </li><li> Zählen von Zellen und fügen vollständigen RPMI 1640 - Medium bis zur endgültigen Zelldichte von 10 7 Zellen / ml erreichen. HINWEIS: Für die Zellzahl, verwenden wir die automatische Zellzähler. </li><li> Verteilen von 100 &amp; mgr; l Zellsuspension in U-Boden - 96-Well - sterile Platte (10 6 Zellen / Vertiefung). </li><li> Werden 50 &amp; mgr; l / Vertiefung vollständigem RPMI 1640-Medium mit 15 ug / ml kommerzieller H37Rv Purified Protein Derivative (PPD) (5 ug / ml Endkonzentration). </li></ol></li><li> Supernatant Sammlung für Zytokin Bestimmung durch ELISA <ol><li> Inkubieren Platte von 4.1.14 für 48 Stunden bei 37 ° C und 5% CO 2. </li><li> Zentrifugenplatte für 5 Minuten bei 400 · g und erholen 100 ul Überstand. </li><li> Bei -80 ° C. </li><li> Verdünnen Stände 1/10 und 1/2 in Testpuffer für IFNy und IL17A Bestimmung sind. Bestimmen Sie Zytokin-Konzentrationen mit im Handel erhältlichen ELISA-Kits nach den Anweisungen des Herstellers (ELISA Development Kits). </li></ol></li><li> Intrazelluläre Färbung zur Bestimmung der Zytokin-produzierenden CD4 + Zellen mittels Durchflusszytometrie <ol><li> Inkubieren Platte von 4.1.14 für 18 h bei 37 ° C und 5% CO 2. </li><li> In 1,5 ul Brefeldin A 1 mg / ml (Lager in DMSO gelöst) in jede Vertiefung (10 ug / ml Endkonzentration) und Inkubation für weitere sechs Stunden. </li><li> Zentrifugieren Sie die Platte aus 4.3.2 für 1 min bei 3200 xg und Überstand verwerfen. </li><li> Resuspendiere Zellen in 50 ul anti-Maus-CD4-FITC, verdünnt in RPMI 1640 mit 10% FCS (1/500) und bei 4 ° C für 10 min inkubieren. </li><li> Zentrifugieren Sie die Platte aus 4.3.4 für 1 min bei 3200 × g Überstand verwerfen und mit 100 ul / Vertiefung Fixierungslösung. für 20 min bei 4 ° C inkubieren. </li><li> Waschen Sie die Zellen zweimal mit 150 &amp; mgr; l / Wäsche von Permeabilisierung Lösung. HINWEIS: 10x konzentriert Lager wird in entionisiertem Wasser verdünnt, 1x Arbeitslösung herzustellen. </li><li> Resuspendiere Zellen in 50 ul anti-Maus IFN &amp; ggr;-APC und Anti-Maus-IL17A APC.Cy7 in permeabil verdünntisierung Lösung (1/250 beide Antikörper). </li><li> Inkubieren für 1 h bei RT. </li><li> Waschen Sie die Zellen zweimal mit 150 &amp; mgr; l / Wäsche von Permeabilisierung Lösung. </li><li> Die Zellen in 200 ul PBS für die Durchflusszytometrie Akquisition. </li></ol></li></ol> 5. Analyse von Immunglobulinen in Bronchiallavage (BAL) <ol><li> Gewinnung von BAL - Proben <ol><li> Opfere die Maus durch Genickbruch (oder andere anerkannte humane Methode) und gewährleisten Maus tot ist, den Augapfel zu berühren abwesend von Lidschlussreflexes zu bestätigen. </li><li> Setzen Sie die Luftröhre unter Verwendung geeigneter Präzision einer sterilen Pinzette und Schere, und führen Sie einen kleinen Schnitt in die Luftröhre, so dass sicher nicht vollständig auszuschneiden. Achten Sie darauf, nicht zu Blutungen führen, die BAL Probe verunreinigen könnten. </li><li> Einführung in die Trachea eine Kanüle mit einer sterilen 1-ml-Spritze mit 800 ul eiskaltem PBS. </li><li> Impfen langsam die PBS in die Lungen und dann rEcover BAL Volumen der Spritze des Kolbens sehr langsam, um Zurückziehen Lungenkollaps zu vermeiden. HINWEIS: Wiederherstellung von 500 bis 600 &amp; mgr; l zufriedenstellend ist. </li><li> Übertragen BAL Volumen in ein 1,5-ml-Röhrchen und bestätigen BAL ungefärbt bleibt, was darauf hinweist, dass nicht mit Blut (halten auf Eis, bis die Verarbeitung) verunreinigt ist. </li><li> Zentrifuge BAL-Proben für 5 min bei 400 xg und Überstand in ein neues Röhrchen. </li><li> Store Überstand bei -80 ° C. </li></ol></li><li> Bestimmung von IgA in BAL Stände HINWEIS: Alle verwendeten Reagenzien bei RT sind. <ol><li> Coat High-Protein - Bindung Polystyrol - Flachboden - 96-Well - Platten mit 100 ul PPD verdünnt in PBS (10 ug / ml) für M. tuberculosis spezifisches IgA Bestimmung oder mit 100 ul Überstand BAL 10 - mal in PBS verdünnt , für Gesamt - IgA Bestimmung. </li><li> Inkubieren über Nacht bei 4 ° C. </li><li> Überstand verwerfen und tippen Sie auf die Platte auf einem Papiertuch zu dry. Waschen mit 200 ul / Vertiefung PBS. </li><li> Blockieren mit 200 ul / Vertiefung einer Rinderserumalbumin (BSA) 1% (w / v) in PBS-Tween-80 0,05% (v / v) (Blockierungspuffer). </li><li> Inkubiere 1 h bei RT. </li><li> Wasche einmal mit 200 ul / Vertiefung PBS-Tween-80 0,05% (v / v) (Waschpuffer). </li><li> 100 l unverdünntem BAL-Überstand in den PPD-beschichteten Vertiefungen. Inkubiere zwei Stunden bei Raumtemperatur. HINWEIS: Wenn die gesamte IgA Bestimmung in parallel mit der PPD-spezifischen IgA, Gesamt-IgA lassen Vertiefungen mit 100 ul Waschpuffer während dieser Inkubation erfolgt. </li><li> Waschen dreimal mit 200 ul / Vertiefung Wasch buffer.0170004 </li><li> Je 100 ul Meerrettich-Peroxidase (HRP) -konjugiertem IgA-anti-Maus verdünnt in Blockierungspuffer (1 / 10.000). </li><li> Inkubiere 1 h RT. </li><li> Waschen fünfmal mit 200 ul / Vertiefung Waschpuffer. </li><li> 100 l / Vertiefung von 3,3 &#39;, 5,5&#39;-Tetramethylbenzidin (TMB). Inkubiere 20 Minuten bei Raumtemperatur in ter dunkel. </li><li> 100 l / Vertiefung von H 2 SO 4 0,5 N. Lesen Sie die Platte in einem Spektralphotometer bei einer Wellenlänge von 450 nm. </li></ol></li></ol> 6. Bakterienbelastung Bestimmung in der Lunge <ol><li> Lung Homogenisierung und Galvanisieren <ol><li> Vier Wochen nach der Herausforderung, opfern, um die Maus durch Genickbruch (oder andere anerkannte humane Methode) und gewährleisten Maus tot ist, den Augapfel zu berühren abwesend von Lidschlussreflexes zu bestätigen. </li><li> Platzieren Sie die Maus in Rückenlage fixiert auf einer flachen und desinfizierten Oberfläche innerhalb einer Laminarströmungsabzug. </li><li> Einen Einschnitt und entfernen Sie die Haut von Brustbereich, um den Thoraxbereich sichtbar lassen. </li><li> Schneiden Sie die Rippen und ernten die Lungen und das Herz mit einer sterilen Schere und Pinzette. Legen Organe auf eine saubere Oberfläche. </li><li> Reinigen Sie die Lunge durch Entfernen des Herzens, der Trachea und Bindegewebe und übertragen Sie die Lungen in ein 1,5-ml-Röhrchen mit 1 ml VE-Wasser(Auf Eis halten, bis die Verarbeitung). </li><li> Verwenden einer sterilen Pinzette in die Lungen jeder Maus in eine richtige Rohr für Orgel Homogenisierung zu übertragen (M - Dissociator Rohr), 1 ml VE-Wasser enthält. </li><li> Das Röhrchen wird in das Gewebe Dissociator und nutzen Sie das vordefinierte Programm RNA_1, um die Lunge zu homogenisieren. </li><li> Stellen fünf zehnfache serielle Verdünnungen in 1,5-ml-Röhrchen mit 100 ul Lungenhomogenat in 900 &amp; mgr; l verdünnt beginnen. </li><li> Platten Verdünnungen wie in 1,11-1,14 beschrieben. </li></ol></li><li> Eine Differenzierung zwischen BCG und H37Rv durch PCR HINWEIS: In den Platten von 6.1.6 auf die Gruppe mit BCG durch den intranasalen Weg geimpft entsprechenden analysierten wir eine repräsentative Anzahl von Kolonien durch eine anspruchsvolle PCR zwischen BCG und H37Rv, um sicherzustellen, dass der CFU als Impfstoff-verliehenen Schutzwirkung zu beurteilen entsprach eindeutig H37Rv. Dieses PCR-Amplifikation von Zielen RD9, eine genomische Region unterschiedlich in BCG und M. tuberkulose, so dass ein Fragment von 2618 bp für H37Rv und 465 bp für BCG 11. <ol><li> Bereiten Sie einen Master-Mix Lager für alle Proben mit einem Volumen pro Probe, wie angegeben, und verteilen dann in PCR-Röhrchen (9 ul / Probe). HINWEIS: Puffer 5x: 2 &amp; mgr; l. Forward - Primer 25 uM (GTGTAGGTCAGCCCCATCC): 0,32 &amp; mgr; l, Reverse - Primer 25 uM (GCCCAACAGCTCGACATC): 0,32 &amp; mgr; l, Taq - Polymerase 5 Einheiten / ul: 0,04 ul, Entionisiertes H 2 O: 6,32 ul. </li><li> Tippen Sie auf eine Kolonie mit einem sterilen Zahnstocher und tauchen Sie den Zahnstocher mit der Probe in einem PCR-Röhrchen mit dem Master-Mix. </li><li> Führen Sie die PCR mit dem folgenden Programm: 10 min 95 ° C (dieser Schritt ist die bakterielle Unterbrechung auszulösen), 10 min 95 ° C (dieser Schritt ist die bakterielle Unterbrechung auszulösen), 35 Zyklen (30 Sekunden bei 95 ° C, 1 min bei 58 ° C und 4 min bei 72 ° C). </li><li> Laden Sie die PCR-Proben in einem 1% igen Gel mit Ethidiumbromid und Laufproben, um die Fragmente zu visualisieren. </li&gt; </ol></li></ol>

<ol><li>Zumla, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+WHO+2014+global+tuberculosis+report--further+to+go%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet+Glob+Health%22%5BJournal%5D)">The WHO 2014 global tuberculosis report--further to go.</a> Lancet Glob Health. 3 (1), e10-e12 (2015).</li>
<li>Mangtani, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protection+by+BCG+vaccine+against+tuberculosis%3A+a+systematic+review+of+randomized+controlled+trials%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Infect+Dis%22%5BJournal%5D)">Protection by BCG vaccine against tuberculosis: a systematic review of randomized controlled trials.</a> Clin Infect Dis. 58 (4), 470-480 (2014).</li>
<li>Aguilo, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pulmonary+Mycobacterium+bovis+BCG+vaccination+confers+dose-dependent+superior+protection+compared+to+that+of+subcutaneous+vaccination%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Vaccine+Immunol%22%5BJournal%5D)">Pulmonary Mycobacterium bovis BCG vaccination confers dose-dependent superior protection compared to that of subcutaneous vaccination.</a> Clin Vaccine Immunol. 21 (4), 594-597 (2014).</li>
<li>Chen, L., Wang, J., Zganiacz, A., Xing, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single+intranasal+mucosal+Mycobacterium+bovis+BCG+vaccination+confers+improved+protection+compared+to+subcutaneous+vaccination+against+pulmonary+tuberculosis%5BTitle%5D)+AND+%22Infect+Immun%22%5BJournal%5D)">Single intranasal mucosal Mycobacterium bovis BCG vaccination confers improved protection compared to subcutaneous vaccination against pulmonary tuberculosis.</a> Infect Immun. 72 (1), 238-246 (2004).</li>
<li>Giri, P. K., Verma, I., Khuller, G. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protective+efficacy+of+intranasal+vaccination+with+Mycobacterium+bovis+BCG+against+airway+Mycobacterium+tuberculosis+challenge+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Infect%22%5BJournal%5D)">Protective efficacy of intranasal vaccination with Mycobacterium bovis BCG against airway Mycobacterium tuberculosis challenge in mice.</a> J Infect. 53 (5), 350-356 (2006).</li>
<li>Lagranderie, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BCG-induced+protection+in+guinea+pigs+vaccinated+and+challenged+via+the+respiratory+route%5BTitle%5D)+AND+%22Tuber+Lung+Dis%22%5BJournal%5D)">BCG-induced protection in guinea pigs vaccinated and challenged via the respiratory route.</a> Tuber Lung Dis. 74 (1), 38-46 (1993).</li>
<li>Gopal, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interleukin-17-dependent+CXCL13+mediates+mucosal+vaccine-induced+immunity+against+tuberculosis%5BTitle%5D)+AND+%22Mucosal+Immunol%22%5BJournal%5D)">Interleukin-17-dependent CXCL13 mediates mucosal vaccine-induced immunity against tuberculosis.</a> Mucosal Immunol. 6 (5), 972-984 (2013).</li>
<li>Khader, S. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((IL-23+and+IL-17+in+the+establishment+of+protective+pulmonary+CD4%2B+T+cell+responses+after+vaccination+and+during+Mycobacterium+tuberculosis+challenge%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Immunol%22%5BJournal%5D)">IL-23 and IL-17 in the establishment of protective pulmonary CD4+ T cell responses after vaccination and during Mycobacterium tuberculosis challenge.</a> Nat Immunol. 8 (4), 369-377 (2007).</li>
<li>Aguilo, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pulmonary+but+Not+Subcutaneous+Delivery+of+BCG+Vaccine+Confers+Protection+to+Tuberculosis-Susceptible+Mice+by+an+Interleukin+17-Dependent+Mechanism%5BTitle%5D)+AND+%22J+Infect+Dis%22%5BJournal%5D)">Pulmonary but Not Subcutaneous Delivery of BCG Vaccine Confers Protection to Tuberculosis-Susceptible Mice by an Interleukin 17-Dependent Mechanism.</a> J Infect Dis. , (2015).</li>
<li>Middlebrook, G., Cohn, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bacteriology+of+tuberculosis%3A+laboratory+methods%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Public+Health+Nations+Health%22%5BJournal%5D)">Bacteriology of tuberculosis: laboratory methods.</a> Am J Public Health Nations Health. 48 (7), 844-853 (1958).</li>
<li>Brosch, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+evolutionary+scenario+for+the+Mycobacterium+tuberculosis+complex%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">A new evolutionary scenario for the Mycobacterium tuberculosis complex.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 99 (6), 3684-3689 (2002).</li>
<li>Kaushal, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mucosal+vaccination+with+attenuated+Mycobacterium+tuberculosis+induces+strong+central+memory+responses+and+protects+against+tuberculosis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Mucosal vaccination with attenuated Mycobacterium tuberculosis induces strong central memory responses and protects against tuberculosis.</a> Nat Commun. 6, 8533(2015).</li>
<li>Lochhead, J. J., Thorne, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intranasal+delivery+of+biologics+to+the+central+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Drug+Deliv+Rev%22%5BJournal%5D)">Intranasal delivery of biologics to the central nervous system.</a> Adv Drug Deliv Rev. 64 (7), 614-628 (2012).</li>
<li>Lochhead, J. J., Wolak, D. J., Pizzo, M. E., Thorne, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+transport+within+cerebral+perivascular+spaces+underlies+widespread+tracer+distribution+in+the+brain+after+intranasal+administration%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cereb+Blood+Flow+Metab%22%5BJournal%5D)">Rapid transport within cerebral perivascular spaces underlies widespread tracer distribution in the brain after intranasal administration.</a> J Cereb Blood Flow Metab. 35 (3), 371-381 (2015).</li>
<li>Griffiths, K. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cholera+toxin+enhances+vaccine-induced+protection+against+Mycobacterium+tuberculosis+challenge+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Cholera toxin enhances vaccine-induced protection against Mycobacterium tuberculosis challenge in mice.</a> PLoS One. 8 (10), e78312(2013).</li>
<li>Hirota, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasticity+of+Th17+cells+in+Peyer%27s+patches+is+responsible+for+the+induction+of+T+cell-dependent+IgA+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Immunol%22%5BJournal%5D)">Plasticity of Th17 cells in Peyer's patches is responsible for the induction of T cell-dependent IgA responses.</a> Nat Immunol. 14 (4), 372-379 (2013).</li>
<li>Jaffar, Z., Ferrini, M. E., Herritt, L. A., Roberts, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cutting+edge%3A+lung+mucosal+Th17-mediated+responses+induce+polymeric+Ig+receptor+expression+by+the+airway+epithelium+and+elevate+secretory+IgA+levels%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Cutting edge: lung mucosal Th17-mediated responses induce polymeric Ig receptor expression by the airway epithelium and elevate secretory IgA levels.</a> J Immunol. 182 (8), 4507-4511 (2009).</li>
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Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Obwohl der derzeitige Impfstoff gegen Tuberkulose, BCG, der am häufigsten verabreichte Impfstoff in der Geschichte ist, ist Tuberkulose nach wie vor eine der häufigsten Todes- und Morbiditätsursachen durch Infektionskrankheiten weltweit. Dieses Paradoxon erklärt sich durch den mangelnden Schutz dieses Impfstoffs gegen Lungentuberkulose, die verantwortliche Form der Übertragung. Neue Impfansätze, die gegen pulmonale Formen der Krankheit wirksam sind, sind dringend erforderlich, da sie weltweit den größten Einfluss auf die...

Tuberkulose (TB) ist einer der führenden Infektionskrankheiten verursacht mehr Todesfälle assoziiert als HIV in der Welt und in Kombination mit steigenden Zunahme von multiresistenten Stämmen macht TB eine alarmierende globales Gesundheitsproblem dar 1. Neue Diagnose-Tools, effektiver und weniger toxische Medikamente und neue sichere und wirksame TB-Impfstoffe sind ein dringender Bedarf, vor allem in den Entwicklungsländern. Lebendes attenuiertes Bazillus Calmette-Guerin (BCG) ist derzeit der einzige zugelassene Impfstoff gegen Tuberkulose, die seit den 1970er Jahren weltweit intradermal bei der Geburt verabreicht wurde. BCG als wirksam bei der Verhinderung von schweren Formen der Erkrankung (Meningitis und miliary TB) bei Kindern, hat aber inkonsistent Wirksamkeit gegen Lungentuberkulose verantwortlich für die Übertragung von Krankheiten 2 gezeigt. Pulmonale Impfung, die natürliche Weg der TB-Infektion nachahmt, stellt ein attraktiver Ansatz für die lokale Immunantwort des Wirts Grundierens. Folgende Lungen Immunisierung In dieser Hinsicht wurden verschiedene präklinische Arbeiten in verschiedenen relevanten Tiermodellen TB größer Impfstoff Wirksamkeit gezeigt , wie 3-6 zur subkutanen oder intradermalen Weg verglichen. Dennoch werden die Schutzmechanismen ausgelöst durch Lungen Impfung nicht gut verstanden. In den letzten Jahren haben mehrere Werke IL17-vermittelte Reaktion als ein wichtiger Faktor der TB-spezifische Schleimhautimmunantwort, wie sie in Mausmodellen defizienten für IL17 Schleimhaut - Impfstoff-induzierte Schutzwirkung zeigte auf 7,8 wird beeinträchtigt. Vor kurzem haben wir gezeigt , zum ersten Mal , die BCG - Administration intranasale DBA / 2 - Mäuse geschützt, eine Belastung der Maus durch den Mangel an Schutz nach subkutaner BCG Impfung 9 gekennzeichnet. Diese Ergebnisse legen nahe, dass der Atemwege TB-Impfung könnte effektiver sein Rate von TB in Endemiegebieten bei der Verringerung, wo intradermale BCG ist unwirksam gegen Pulmon betrachtetary TB.

<table><tbody><tr><td>Middlebrook 7H9 Bouillon</td><td>BD</td><td>271310</td><td></td></tr><tr><td>Middlebrook ADC Anreicherung</td><td>BD</td><td>211887</td><td></td></tr><tr><td>Tween 80</td><td>Scharlau</td><td>TW00800250</td><td></td></tr><tr><td>Glasperlen Durchmesser 3 mm</td><td>Scharlau</td><td>038-138003</td><td></td></tr><tr><td>Middlebrook 7H10 Agar</td><td>BD</td><td>262710</td><td></td></tr><tr><td>1-ml-Spritze 26GA 0,45 x 10 mm</td><td>BD</td><td>301358</td><td></td></tr><tr><td>GentleMACS-Dissoziator</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-093-235</td><td></td></tr><tr><td>C Röhrchen</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-093-237</td><td></td></tr><tr><td>M Röhrchen</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-093-236</td><td></td></tr><tr><td>Collagenase D</td><td>Roche</td><td>11088882001</td><td></td></tr><tr><td>DNaseI</td><td>Applichem</td><td>A3778,0100</td><td></td></tr><tr><td>Falcon 70 &micro; m Cell Strainer</td><td>Corning</td><td>352350</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640</td><td>Sigma</td><td>R0883</td><td></td></tr><tr><td>Lysing Buffer für rote Blutkörperchen</td><td>Sigma</td><td>R7757</td><td></td></tr><tr><td>GlutaMAX Supplement</td><td>Gibco</td><td>35050-061</td><td>100x konzentrierte</td></tr><tr><td>Penicillin-Streptomycin-Lösung</td><td>Sigma</td><td>P4333</td><td>100x konzentriertes</td></tr><tr><td>fötales Kälberserum</td><td>Biologisch Branchen</td><td>04-001-1A</td><td></td></tr><tr><td>2-Mercaptoethanol</td><td>Sigma</td><td>M3148-25ML</td><td></td></tr><tr><td>Zepter 2.0 Handheld Automatisierter Zellzähler</td><td>Millipore</td><td>PHCC20040</td><td></td></tr><tr><td>Zepter Zellzählersensoren, 40 & Mikro; m</td><td>Millipore</td><td>PHCC40050</td><td></td></tr><tr><td>Mycobacterium Tuberculosis - Tuberculin PPD</td><td>Statens Serum Institut (SSI)</td><td>2390</td><td></td></tr><tr><td>Maus IFN-& gamma ELISA-Entwicklungskit&nbsp;</td><td>Mabtech</td><td>3321-1H</td><td></td></tr><tr><td>Maus IL17A ELISA-Entwicklungskit&nbsp;</td><td>Mabtech</td><td>3521-1H</td><td></td></tr><tr><td>Brefeldin A</td><td>Sigma</td><td>B7651</td><td></td></tr><tr><td>FITC Ratte Anti-Maus CD4</td><td>BD</td><td>553047</td><td></td></tr><tr><td>BD Cytofix/Cytoperm Kit</td><td>BD</td><td>555028</td><td></td></tr><tr><td>APC-Cy7 Ratte Anti-Maus IL-17A</td><td>BD</td><td>560821</td><td></td></tr><tr><td>APC Maus Anti-Maus IFNg</td><td>BD</td><td>554413</td><td></td></tr><tr><td>LACHRYMAL OLIVE LUER LOCK 0,60 x 30 mm. 23G x 1 1/4"</td><td>UNIMED</td><td>27.134</td><td>Zur Verwendung als Luftröhrenkanüle für</td></tr><tr><td>BAL-hochproteinbindende Polystyrolplatten mit flachem Boden und 96 Vertiefungen MAXISORP</td><td>NUNC</td><td>430341</td><td></td></tr><tr><td>Albumin, aus Rinderserum</td><td>Sigma</td><td>A4503</td><td></td></tr><tr><td>Ziege Anti-Maus IgA (&alpha;-kettenspezifisch)&minus; Peroxidase Antikörper</td><td>Sigma</td><td>A4789</td><td></td></tr><tr><td>3,3&prime;,5,5&prime;-Tetramethylbenzidin (TMB)&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>T0440</td><td></td></tr><tr><td>MyTaq DNA-Polymerase</td><td>Bioline</td><td>BIO-21107</td><td>Das Kit enthält Puffer 5x</td></tr></tbody></table>

die protektive wirksamkeit und pulmonale immunantwort nach subkutaner und intranasale bcg verabreichung an mäuse

Protective Efficacy and Pulmonary Immune Response Following Subcutaneous and Intranasal BCG Administration in Mice

Trotz der weltweiten Abdeckung der intradermalen BCG-Impfung bleibt Tuberkulose eine der am weitesten verbreiteten Infektionskrankheiten der Welt. Präklinische Daten haben Lungentuberkulose-Impfstoffe als vielversprechende Strategie zur Vorbeugung von Lungenerkrankungen empfohlen, die für die Übertragung verantwortlich sind. In dieser Arbeit beschreiben wir die Methodik, mit der im Mausmodell die Vorteile der intranasalen BCG-Impfung im Vergleich zur subkutanen Impfung demonstriert werden. Unsere Daten zeigten eine größere schützende Wirksamkeit nach intranasaler BCG-Verabreichung. Darüber hinaus deuten unsere Ergebnisse darauf hin, dass die Lungenimpfung eine höhere Immunantwort in der Lunge auslöst, einschließlich Th1- und Th17-Antworten, sowie einen Anstieg der Immunglobulin-A-Konzentration (IgA) in den Atemwegen. Unsere Daten zeigen eine Korrelation zwischen der schützenden Wirksamkeit und dem Vorhandensein von IL17-produzierenden Zellen in der Lunge nach der Provokation durch Mycobacterium tuberculosis, was auf eine Rolle dieses Zytokins bei der schützenden Reaktion durch die Lungenimpfung hindeutet. Schließlich beschreiben wir den globalen Arbeitsablauf, den wir entwickelt haben, um die Atemwegsimpfung im Mausmodell zu untersuchen, der auf andere Tuberkulose-Impfstoffe extrapoliert werden könnte, abgesehen von BCG, und zwar auf die Schleimhautreaktion oder andere pulmonale Verabreichungswege wie Intratracheal- oder Aerosolverabreichungswege.

Diese Arbeit beschreibt den Vergleich von zwei Arten der Verabreichung von BCG: subkutane und intranasale. Subkutanem Weg ist vergleichbar mit dem intradermal, die der aktuellen klinischen Weg für BCG weltweit ist. Die intranasale Weg der Impfung zielt darauf ab , den natürlichen Weg der Infektion von M. zu imitieren tuberculosis mit dem Ziel - Immunantwort zu induzieren , direkt in die Lunge, das Hauptzielorgan dieses Erregers. <p class="jove_content" fo:keep-toget...

Wir beschreiben hier die Methodik, die zum Vergleich der schützenden Wirksamkeit und der Immunantwort der Lunge, die durch intranasale und subkutane Immunisierung mit BCG im Mausmodell induziert wird. Unsere Ergebnisse zeigen die Vorteile der Lungenimpfung und deuten auf eine Rolle der IL17-vermittelten Reaktion beim impfinduzierten Schutz hin.

Die protektive Wirksamkeit und pulmonale Immunantwort nach subkutaner und intranasale BCG Verabreichung an Mäuse

Despite global coverage of intradermal BCG vaccination, tuberculosis remains one of the most prevalent infectious diseases in the world. Preclinical data ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, Immunantworten in der Lunge nach einer Tuberkulose-Impfung zu untersuchen, einschließlich der Schutzwirkung des Impfstoffs gegen eine intranasale Herausforderung und der lokalen, durch den Impfstoff ausgelösten Immunantwort in der Lunge. Diese Methodik kann dabei helfen, unsere zentralen Fragen im Bereich der Tuberkulose-Impfstoffforschung zu beantworten, insbesondere die Identifizierung der von pulmonalen Impfstoffen hervorgerufenen schützenden Immunantworten in der Lunge, die eine optimale Immunprotektion gewährleisten. Ein Vorteil dieser Methodik liegt darin, dass die Immunantwort in der Lunge jedes einzelnen Versuchstiers parallel zur Schutzwirkung individuell bewertet wird.was die Identifizierung der spezifischen immunologischen Parameter ermöglicht, die mit Schutz korrelieren. Für die subkutane Verabreichung des BCG-Impfstoffs füllen Sie zunächst eine Ein-Milliliter-Spritze, die mit einer 26-Gauge-Nadel ausgestattet ist, mit einem Milliliter der BCG-Impfstoffsuspension und entfernen Sie die Luftblasen. Danach platzieren Sie eine anästhesierte Maus in Bauchlage innerhalb eines Laminar-Flow-Geräts und impfen subkutan 100 Mikroliter Bakterien in eine Hinterflanke des Tieres ein.Für die intranasale Applikation laden Sie eine Mikropipette mit 20 Mikrolitern der BCG-Suspension und platzieren die anästhetisierte Maus in Rückenlage innerhalb des Sicherheitswerks. Geben Sie das Inokulum tropfenweise zwischen die beiden Nasenlöcher, bis das gesamte Volumen von 20 Mikrolitern appliziert ist, und lassen Sie zwischen den Tropfen jeweils ausreichend Zeit, damit die Maus die Suspension einatmen kann. Danach befüllen Sie die Mikropipette erneut mit weiteren 20 Mikrolitern Bakterien und wiederholen die Applikation.Für die intranasale Infektion mit dem Mycobacterium-tuberculosis-Stamm H37Rv impfen Sie die Tiere zum geeigneten experimentellen Zeitpunkt nach der Impfung durch intranasale Verabreichung von 40 Mikrolitern der H37Rv-Bakteriensuspension, wie gerade gezeigt. Um die bronchoalveoläre Lavage oder BAL-Probe zu gewinnen, exponieren Sie zunächst mit sterilen Pinzetten und einer Schere die Luftröhre. Anschließend führen Sie einen kleinen Schnitt in die Luftröhre ein, wobei darauf geachtet werden muss, das Gewebe nicht vollständig zu durchtrennen, und setzen eine Kanüle ein, die mit einer sterilen 1-mL-Spritze verbunden ist, die 800 Mikroliter eiskaltes PBS enthält.Wenn die Kanüle korrekt positioniert ist, füllen Sie die Lungen vorsichtig mit PBS und ziehen Sie dann langsam den Kolben zurück, um mindestens 500 bis 600 Mikroliter Lavageflüssigkeit zu gewinnen. Geben Sie die Probe in ein 1,5-mL-Röhrchen auf Eis und überprüfen Sie, ob die Suspension farblos ist, was auf das Fehlen einer Blutkontamination hinweist. Lagern Sie die Proben bis zur weiteren Verarbeitung auf Eis.Um die bakterielle Belastung und die Immunantwort in der Lunge zu bestimmen, fixieren Sie die Maus mit Nadeln in Rückenlage auf einer flachen und desinfizierten Oberfläche innerhalb des laminaren Luftstroms, und führen Sie einen Schnitt in der oberen Haut über dem Brustkorb durch. Anschließend ziehen Sie die Haut zurück, um den Brustkorb freizulegen, und öffnen Sie die Lunge. Entnehmen Sie mithilfe steriler Scheren und Pinzetten Lunge und Herz und legen Sie die Organe auf eine saubere Oberfläche.Entfernen Sie anschließend das Herz, die Luftröhre und das Bindegewebe. Geben Sie jede Lunge in ein separates 1,5-mL-Röhrchen mit 1 mL entionisiertem Wasser auf Eis zur nachfolgenden Bestimmung der bakteriellen Belastung und der zellulären Immunantworten. Im Vergleich zur subkutanen Applikation verleiht die intranasale Impfungsroute eine deutlich höhere Schutzwirkung in den Lungen.Die Analyse einer repräsentativen Anzahl von Kolonien aus der intranasalen BCG-Impfgruppe mittels PCR, spezifisch für den RD9-Genomabschnitt, zeigt, dass alle Kolonien ein Fragment von 0,4 Kilobasenpaaren liefern, das dem von H37Rv entspricht. Die intranasale BCG-Impfung löst eine stärkere Produktion von IL-17 und Interferon-gamma in der Lunge aus und zeigt eine Korrelation zwischen der Schutzwirkung der intranasalen BCG-Impfung und der vaccineinduzierten Immunantwort in der Lunge vor der Herausforderung, wobei eine höhere Konzentration sowohl der gesamten als auch der H37Rv-spezifischen gereinigten Proteinderivat-spezifischen IgA-Konzentration in den Lavageproben der intranasal Geimpften beobachtet wurde. Eine weitere Analyse der zytokinproduzierenden Zellen in der Lunge nach der Tuberkulose-Herausforderung ergab, dass zwar Interferon-gamma-produzierende Zellen in allen infizierten Gruppen nachgewiesen wurden, IL-17A-produzierende CD4+-Zellen jedoch ausschließlich in der intranasalen BCG-Gruppe gefunden wurden, was eine signifikante Korrelation zwischen dem Vorhandensein von IL-17 und der Verringerung der bakteriellen Belastung in der Lunge belegt.Mit dieser Methode ist es möglich, die lokalen immunologischen Reaktionen in der Lunge bei der Verwendung biodiverser Tuberkuloseimpfstoffe sowie unterschiedlicher Applikationswege und Zeitpunkte nach der Infektion zu vergleichen. Darüber hinaus kann diese Methodik verwendet werden, um die Immunität nach Impfung und Infektion zu bewerten, was die Identifizierung der immunologischen Reaktionen ermöglichen könnte, die mit Schutz korrelieren.Wichtig ist, dass die Arbeit mit Mycobacterium Tuberculosis BCL-freie Laborräume erfordert, und es sollten stets die geeigneten Vorsichtsmaßnahmen getroffen werden, wenn dieses Verfahren durchgeführt wird.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie und Infektion

In diesem Video beschreiben wir ein Protokoll, um die Wirksamkeit eines azellulären Pertussis-Impfstoffs gegen Bordetella pertussis-Infektionen bei Mäusen zu testen. Nach der Impfung wurden die Mäuse einer Infektion unterzogen, und ihr Gewebehomogenat wurde kultiviert, um die Bakterienkolonien als Auslese der impfstoffinduzierten schützenden Immunität zu analysieren.

Evaluierung der impfstoffinduzierten Immunität gegen bakterielle Infektionen im Mausmodell

Dieses Video zeigt die intranasale BCG-Immunisierung bei Mäusen, die sowohl die angeborene als auch die adaptive Immunantwort aktiviert, was zur Entwicklung von lungenresidenten Gedächtnis-T-Zellen und Effektor-B-Zellen führt und so den Schutz vor Mycobacterium-Infektionen verbessert.

Intranasale Immunisierung mit BCG im Mausmodell

Prophylaktischen und therapeutischen Impfung oft nicht starke Immunantworten aufgrund Woche Entwässerung des Impfstoffs zu stimulieren, um Knoten und folglich schlechte Beteiligung von Immunzellen Lymphe. Durch direkte Injektion des Impfstoffes in Lymphknoten, sogenannte intralymphatischer Injektion, die Wirksamkeit des Impfstoffes kann stark verbessert werden, und Impfstoffdosen verringert werden.

Intralymphatische Immuntherapie und Impfungen bei Mäusen

Die vorliegende Arbeit veranschaulicht die Zweckmäßigkeit der sublingualen Immuntherapie, um die angeborene Immunantwort in der Lunge zu verstärken und Schutz vor akuter Pneumokokken-Pneumonie bei Mäusen zu bieten.

Sublinguale Immuntherapie als Alternative zum Schutz vor akuten Atemwegsinfektionen ausgelöst werden

Langzeit-kultivierten Interferon-γ enzymgebundenen immunospot Assay wird als Maß der zentralen Speicher-Antworten verwendet, und korreliert mit Schutz antimykobakteriellen Impfstoff Antworten. Mit diesem Test werden die peripheren mononukleären Blutzellen mit mycobakteriellen Antigene und IL-2 für 14 Tage, so dass die Differenzierung und Expansion des zentralen Gedächtnis-T-Zellen stimuliert.

Anwendung von Langzeit kultiviert Interferon-γ Enzyme-linked Immunospot Assay zur Beurteilung Effektor und Gedächtnis-T-Zell-Antworten in Cattle

Eine neuartige Technik für schnelle Antigen-Anzeige auf eine bakterielle Oberfläche präsentiert, die Oberfläche Biotinylierungen, gefolgt von Exposition gegenüber Proteine des Interesses an Fusion mit Monomeren Avidin beinhaltet. Laden von BCG mit ausgewählten Antigene erfolgreich verbessert seine Immunogenität, was darauf hindeutet, dass Oberflächendekoration traditionelle gentechnische Ansätze ersetzen kann.

Ausdruck der exogene Antigene im Mycobacterium Bovis BCG Impfstoff über nicht-genetische Oberfläche Dekoration mit dem Avidin-Biotin-System

Die Entwicklung der Interferon-Gamma ELISpot Assay für Meerschweinchen PBMCs ermöglicht die Charakterisierung der T-Zell-Reaktionen in diesem hochaktuellen Modell für die Untersuchung von Infektionskrankheiten. Wir haben den Test zur Messung der T-Zell-Antworten intradermale Bereitstellung von DNA-Impfstoffen angewandt.

Optimierte Interferon-Gamma ELISpot Assay zur Maßnahme T-Zell-Antworten im Meerschweinchen-Modell nach der Impfung

Hier präsentieren wir eine elegante Protokoll für in Vivo Evaluierung der Impfstoff Wirksamkeit und Host Immunantworten. Dieses Protokoll kann für Impfstoff-Modelle, die studieren, virale, bakterielle oder parasitäre Erreger angepasst werden.

Bewertung der Wirt-Pathogen-Antworten und Wirksamkeit des Impfstoffes bei Mäusen

Dieses Protokoll beschreibt die Anreicherung nativer mykobakterieller extrazellulärer Vesikel (mEVs) aus axenischen Kulturen von Mycobacterium smegmatis (Msm) und wie mCherry (ein rot fluoreszierender Reporter) enthaltende rekombinante MsmEVs entworfen und angereichert werden können. Schließlich wird der neuartige Ansatz mit der Anreicherung von MsmEVs verifiziert, die das EsxA-Protein von Mycobacterium tuberculosis enthalten.

Anreicherung nativer und rekombinanter extrazellulärer Vesikel von Mykobakterien

In dieser Arbeit stellen wir ein alternatives Protokoll vor, um eine experimentelle autoimmune Enzephalomyelitis in C57BL/6-Mäusen aktiv zu induzieren, indem wir das immunogene Epitop Myelin-Oligodendrozyten-Glykoprotein (MOG)35-55 verwenden, das in einem unvollständigen Freund-Adjuvans suspendiert ist, das die hitzeabgetötete Mycobacterium avium-Subspezies paratuberculosis enthält.

Adjuvante Aktivität von Mycobacterium paratuberculosis bei der Verbesserung der Immunogenität von Autoantigenen während der experimentellen autoimmunen Enzephalomyelitis

Die Bestimmung koloniebildender Einheiten (KBE) ist die Goldstandard-Technik zur Quantifizierung von Bakterien, einschließlich Mycobacterium tuberculosis , die Wochen brauchen kann, um sichtbare Kolonien zu bilden. Hier beschreiben wir eine Mikrokbe für die KBE-Bestimmung mit erhöhter Zeiteffizienz, reduziertem Laborplatz und Reagenzienkosten sowie Skalierbarkeit auf Experimente mit mittlerem und hohem Durchsatz.

Mikrokoloniebildender Unit-Assay zur Wirksamkeitsbewertung von Impfstoffen gegen Tuberkulose

Erfahren Sie, wie die BCG-Impfung intranasal und subkutan bei Mäusen verglichen wird, um die pulmonale Immunantwort und protektive Wirksamkeit gegen Tuberkulose zu untersuchen. IL17 spielt eine zentrale Rolle.

Die protektive Wirksamkeit und pulmonale Immunantwort nach subkutaner und intranasale BCG Verabreichung an Mäuse

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