-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

DE

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

German

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Chemistry
Spin Sättigungstransfer-Differenz-NMR (SSTD NMR): Ein neues Werkzeug zu erhalten kinetischen Para...
Spin Sättigungstransfer-Differenz-NMR (SSTD NMR): Ein neues Werkzeug zu erhalten kinetischen Para...
JoVE Journal
Chemistry
This content is Free Access.
JoVE Journal Chemistry
Spin Saturation Transfer Difference NMR (SSTD NMR): A New Tool to Obtain Kinetic Parameters of Chemical Exchange Processes

Spin Sättigungstransfer-Differenz-NMR (SSTD NMR): Ein neues Werkzeug zu erhalten kinetischen Parameter der chemischen Austauschprozesse

Full Text
18,697 Views
11:44 min
November 12, 2016

DOI: 10.3791/54499-v

María Teresa Quirós1, Colin Macdonald1,2, Jesús Angulo2, María Paz Muñoz1

1School of Chemistry,University of East Anglia, 2School of Pharmacy,University of East Anglia

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a detailed protocol for the SSTD NMR method, aimed at helping researchers obtain kinetic parameters of chemical exchange in small organic and organometallic molecules.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Chemical Exchange
  • Nuclear Magnetic Resonance (NMR)

Background

  • The SSTD NMR method allows for the measurement of kinetic parameters in systems where traditional methods fall short.
  • It is particularly useful for studying molecular dynamics, including conformational changes and tautomerization.
  • The method was inspired by previous work on platinum ion complexes and protein-lignin interactions.
  • Advantages include simultaneous acquisition of rate constants and relaxation times without signal coalescence.

Purpose of Study

  • To provide a protocol for applying the SSTD NMR method in various chemical systems.
  • To enhance understanding of molecular dynamics in organic and organometallic compounds.
  • To facilitate the study of complex chemical exchange processes.

Methods Used

  • Preparation of samples in deuterated solvents.
  • Temperature stabilization of samples prior to NMR experiments.
  • Calibration of NMR parameters, including pulse sequences and spectral widths.
  • Data processing and analysis to extract kinetic parameters from NMR spectra.

Main Results

  • Successful measurement of kinetic parameters for various chemical exchange processes.
  • Demonstration of the method's effectiveness in studying complex molecular dynamics.
  • Validation of the protocol through multiple experimental iterations.
  • Insights into the behavior of small organic and organometallic molecules.

Conclusions

  • The SSTD NMR method is a valuable tool for researchers studying chemical exchange.
  • It provides a comprehensive approach to understanding molecular dynamics.
  • Future applications may expand to other complex chemical systems.

Frequently Asked Questions

What is the SSTD NMR method?
The SSTD NMR method is a technique used to measure kinetic parameters of chemical exchange in small organic and organometallic molecules.
What are the advantages of using SSTD NMR?
It allows for simultaneous measurement of rate constants and relaxation times without the need for signal coalescence.
How does temperature affect the NMR experiments?
Temperature stabilization is crucial for accurate measurements, and samples should be allowed to stabilize for at least 20 minutes.
What types of molecules can be studied with this method?
The method is suitable for small organic and organometallic molecules that exhibit complex chemical exchange processes.
Can this method be applied to other chemical systems?
Yes, the SSTD NMR method can potentially be adapted for various complex chemical systems beyond those initially studied.
What is the significance of the kinetic parameters obtained?
Kinetic parameters provide insights into the dynamics and behavior of molecules during chemical exchange, which is essential for understanding their reactivity and interactions.

Ein detailliertes Protokoll, das die SSTD-NMR-Methode beschreibt, wird hier vorgestellt, um neuen Benutzern zu helfen, diese neue Methode anzuwenden, um die kinetischen Parameter ihrer eigenen Systeme zu erhalten, die einem chemischen Austausch unterzogen werden.

Das übergeordnete Ziel dieses Experiments ist es, die kinetischen Parameter und Prozesse des gegenseitigen chemischen Austauschs in kleinen organischen und metallorganischen Molekülen zu erhalten, die mit herkömmlichen Methoden nur schwer zu messen sind. Diese Methode kann helfen, die Moleküldynamik von organischen und metallorganischen Molekülen zu verstehen, die sich im chemischen Austausch befinden. Zum Beispiel Rotationsvarianz, Konformationsgleichgewicht, Stickstoffinversion, Ligninaustausch und Tautomerisierung.

Die Hauptvorteile dieser Technik bestehen darin, dass keine Koaleszenz der sich austauschenden Signale erforderlich ist und dass die Geschwindigkeitskonstante und die Relaxationszeit im selben Experiment erhalten werden. Wir hatten die Idee zu dieser Methode erstmals, als wir das Funktionsverhalten von Platin-Ionen-Komplexen in Lösung untersuchten und erkannten, dass die Techniken der variablen Temperaturausrichtung nicht geeignet waren. Aufgrund unserer Erfahrung mit Protein-Lignin-Wechselwirkungen durch NMR erkannten wir, dass tatsächlich ähnliche NMR-Ansätze zur Untersuchung von Austauschprozessen in organischen Molekülen angewendet werden könnten, und es stellte sich heraus, dass dies wahr war.

Geben Sie fünf Milligramm nn-Dimethyacidamid in ein NMR-Röhrchen, das für niedrige Temperaturen geeignet ist, und lösen Sie sechs Milliliter duteriertes Tolulen im Nullpunkt auf. Um die SSTD-NMR-Experimente einzurichten, führen Sie zunächst die Probe in den Magneten ein. Einer der wichtigsten Schritte zur Unterstützung des NMR-Experiments ist die Temperaturregelung, also stellen Sie sicher, dass sich die Probe mindestens 20 Minuten lang bei der gewählten Temperatur stabilisiert.

Sobald sich die Probe im Magneten befindet, geben Sie EDTE in die Befehlszeile ein. Ändern Sie die Temperatur auf die erste ausgewählte Temperatur, um das Experiment durchzuführen. Lassen Sie die Probe mindestens 20 Minuten lang bei der gewählten Temperatur stabilisieren.

Führen Sie ein konfessionelles Protonen-NMR-Experiment an der Probe durch, wie im Textprotokoll beschrieben, und erstellen Sie dann einen neuen Datensatz eines Protonen-NMR-Experiments, indem Sie auf Datei, neu klicken und das neue Experiment benennen. Geben Sie im neuen Datensatz RPAR in die Befehlszeile ein. Wählen Sie einen der STDDIFF-Parametersätze aus der Liste aus.

Um die STDDIFF-Impulssequenz auszuwählen, klicken Sie auf die Schaltfläche mit den drei Punkten in der Impulsprogrammzeile. Vor der Durchführung des SSTD-NMR-Experiments kalibrieren Sie das Proton mit einem 90-Grad-Hartpuls P eins. Geben Sie pulsecal in die Befehlszeile ein und kopieren Sie den Wert des 90-Grad-Impulses mit der höheren Leistung, die den kürzesten Impuls ergibt.

Führen Sie die Werte für den kalibrierten harten Impuls im Experiment mit dem Befehl getprosol ein. Stellen Sie als nächstes die Länge des eingestellten Impulses ein, geben Sie P13 ein und geben Sie einen Wert von 50.000 Mikrosekunden ein. Stellen Sie die selektive Impulsform ein, indem Sie auf Ein/Aus gehen und auf die Schaltfläche Bearbeiten neben der Form klicken, dann gehen Sie zur Form gepulst 13 und wählen Sie den Gaußschen Impuls.

Stellen Sie die selektive Impulsleistung SP13 auf 50 Dezibel ein. Geben Sie NS ein, und legen Sie den Wert auf acht fest, und geben Sie dann DS ein, und legen Sie den Wert auf vier fest. Um das SSTD-NMR-Experiment zu erfassen, öffnen Sie das Protonen-NMR-Experiment, um zu überprüfen, wo sich das Signal befindet, das bestrahlt wird.

Durchsuchen Sie dazu das Experiment im Software-Browser, klicken Sie mit der rechten Maustaste in den Datensatz und klicken Sie auf In einem neuen Fenster anzeigen. Die Selektivität der Bestrahlung muss präzise sein, um den Erfolg des Experiments zu gewährleisten. Stellen Sie sicher, dass keine Korrekturchemikalien verwendet werden oder die Bestrahlungsfrequenz falsch eingestellt werden kann.

Bewegen Sie die Cursorlinie in die Mitte des zu bestrahlenden Signals und notieren Sie die chemische Verschiebung in Teilen pro Million. Wählen Sie die spektrale Breite aus, die im Experiment verwendet werden soll. In diesem Fall liegt das zu bestrahlende Signal bei 2,17 ppm und die verwendete spektrale Breite bei 1,46 ppm.

Gehen Sie als Nächstes zum zuvor erstellten SSTD-NMR-Experiment, erstellen Sie eine Liste mit den Bestrahlungshäufigkeiten, indem Sie FQ2LIST in die Befehlszeile eingeben und eine vorhandene Liste auswählen. Bearbeiten Sie die Liste der Bestrahlungsfrequenzen, wie im Textprotokoll beschrieben. Speichern Sie die Liste unter einem neuen Namen.

Geben Sie dann FQ2LIST in die Befehlszeile ein und wählen Sie die soeben erstellte Liste aus. Um das Experiment auf das zu untersuchende Signal zu zentrieren, geben Sie O1P ein und wählen Sie die chemische Verschiebung im Signal, das bestrahlt werden soll, als Zentrum des Experiments aus. Geben Sie SW ein, um die spektrale Breite auszuwählen.

Wählen Sie den Wert für die Inter-Scan-Relaxationsverzögerung D1. Stellen Sie sicher, dass es mindestens das Ein- bis Fünffache des Wertes des T1 des am langsamsten entspannenden Protons beträgt. Geben Sie D1 ein, und legen Sie den Wert auf 40 Sekunden fest. Legen Sie den ersten Wert für die Sättigungszeit fest, indem Sie D20 eingeben und auf 40 Sekunden festlegen.

Bestimmen Sie die Empfängerverstärkung automatisch, indem Sie RGA eingeben. Erstellen Sie das nächste Experiment, indem Sie IEXPNO eingeben. Geben Sie D20 ein und wählen Sie eine Sättigungszeit von 20 Sekunden.

Geben Sie dann RGA ein, um RG automatisch zu bestimmen. Wiederholen Sie den letzten Schritt für D20 gleich 10, fünf, 2,5, 1,25, 0,625 und 0,3 Sekunden. Sobald alle Experimente erstellt sind, öffnen Sie das erste und geben Sie in der Befehlszeile multizg ein und geben Sie die Anzahl der Experimente an. Um die Daten zu verarbeiten, öffnen Sie den Prozess Nummer eins aus der Reihe der Experimente mit der höheren Sättigungszeit.

Geben Sie in der Befehlszeile LB ein und setzen Sie den Wert auf 1,5. Geben Sie in der Befehlszeile EFP ein, und die Prozess-FID-Nummer ist gleich eins, die In-Prozess-Nummer gleich zwei. Korrigieren Sie die Phase des Experiments, indem Sie auf die interaktive Schaltfläche zur Phasenkorrektur klicken, speichern Sie es als Zwei-G-Experiment, speichern Sie es und beenden Sie es.

Geben Sie REP one in die Befehlszeile ein, um zum Prozess Nummer eins zu gelangen. Geben Sie in der Befehlszeile EFP ein, und die Prozess-FID-Nummer ist gleich zwei, die Prozessnummer ist gleich drei. Geben Sie als Nächstes in der Befehlszeile Punkt MD und dann REP 2 ein, um ein Mehrfachanzeigefenster mit den beiden Prozessspektren zwei und drei anzuzeigen.

Klicken Sie auf die Schaltfläche mit dem Delta-Zeichen, um die Differenzspektren zu berechnen und in Prozess Nummer vier zu speichern. Verlassen Sie dann das Fenster mit mehreren Anzeigen. Wählen Sie einen Integrationsbereich aus dem Signal auf der linken Seite.

Integrieren Sie immer die gleiche Region in Prozess Nummer drei und Prozess Nummer vier. Nach der Integration gehen Sie in jedem der Experimente auf die Registerkarte Integrale und kopieren Sie den absoluten Wert des Integrals. Wiederholen Sie den Vorgang für die restlichen Experimente mit unterschiedlichen Sättigungstypen.

Um die kinetischen Parameter zu erhalten, ziehen Sie zunächst die erhaltenen SSTD-Parameterwerte gegen die Sättigungszeit heraus. Fahren Sie mit der Datenanalyse fort, wie im Textprotokoll beschrieben. Die behinderte Rotation um die Amidbindung differenziert beide Methylgruppen in den Protonen-NMR-Spektren in zwei Signale.

Die

Spinsättigung der Methylgruppe bei 2,17 ppm führt dazu, dass ihr Signal im Protonen-NMR verschwindet. Bei Sättigung der Methylgruppe B bei 2,17 ppm kann eine Übertragung der Sättigung auf die Methylgruppe A bei 2,16 ppm aufgrund der internen Rotation durch eine Abnahme der Protonenintensität im Signal bei 2,61 ppm beobachtet werden. Der SSTD-Parameterfaktor wird berechnet, indem der Wert des Integrals der Methylgruppe A im Differenzspektrum durch den Wert des Integrals der Methylgruppe A im ursprünglichen Spektrum dividiert wird.

Für eine bestimmte Temperatur ergab die Darstellung der Werte des SSTD-Parameters gegenüber der Sättigungszeit exponentielle Kurven. Die Anpassung der Kurven ergibt die Geschwindigkeitskonstante und die Relaxationszeit des Protons des gemessenen Signals. Diagramme des SSTD-Parameters über die Sättigungszeit bei verschiedenen Temperaturen ergaben entsprechende Geschwindigkeitskonstanten und die Relaxationszeiten.

Zur Berechnung der thermodynamischen Parameter wurde die Eyring-Gleichung verwendet. Die mit der SSTD-NMR erhaltenen Werte stimmen hervorragend mit den Daten überein, die mit anderen Techniken berichtet wurden. Sobald eine Reihe von Experimenten bei einer bestimmten Temperatur gemeistert wurde, um einen Wert für die Geschwindigkeitskonstante und die Entspannungszeit zu erhalten, kann sie in etwa drei Stunden durchgeführt werden, wenn sie richtig durchgeführt wird.

Wenn Sie dieses Verfahren ausprobieren, ist es wichtig, sich daran zu erinnern, dass die Wahl der Lösungsmittel und Temperaturen entscheidend ist, um gute Ergebnisse zu erzielen. Denn die chemischen Austauschraten können bei diesen Parametern stark variieren. Nach diesem Verfahren können auch andere Prozesse wie kinetischer, weicher, intermolekularer chemischer Austausch und der Ligninaustausch untersucht werden, und außerdem könnte diese Methode erweitert werden, um mit Multi-Site-Austausch und ungleichen Populationen umzugehen, vorausgesetzt, dass eine angemessene Modifikation der Gleichung vorgenommen wird.

Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man ein Spinsättigungstransfer-Differenzexperiment durchführt und wie man den Magnetisierungstransfer verwendet, um kinetische und thermodynamische Parameter in Molekülen zu erhalten, die einem chemischen Austausch unterliegen. Vergessen Sie nicht, dass die Arbeit mit Chemikalien extrem gefährlich sein kann und dass bei der Probenvorbereitung bei diesem Verfahren immer Vorsichtsmaßnahmen wie Schutzbrille und Handschuhe getroffen werden sollten.

Explore More Videos

Chemie Heft 117 NMR Spinsättigungstransfer Sättigungstransfer-Differenz Kinetik chemischen Austausch NOE thermodynamischen Parameter SSTD NMR

Related Videos

Kernspinresonanz zur Untersuchung von Protein-Protein-Wechselwirkungen auf atomarer Ebene

06:05

Kernspinresonanz zur Untersuchung von Protein-Protein-Wechselwirkungen auf atomarer Ebene

Related Videos

868 Views

Atomarer Skala strukturelle Studien der makromolekularen Versammlungen von Festkörper-NMR-Spektroskopie

14:55

Atomarer Skala strukturelle Studien der makromolekularen Versammlungen von Festkörper-NMR-Spektroskopie

Related Videos

16.1K Views

Messung der Interaktionen von Kugelsternhaufen und filamentösen Proteinen Kernresonanzspektroskopie (NMR) und Microscale Thermophorese (MST)

10:28

Messung der Interaktionen von Kugelsternhaufen und filamentösen Proteinen Kernresonanzspektroskopie (NMR) und Microscale Thermophorese (MST)

Related Videos

12.7K Views

Hochtemperatur- und Hochdruck-In-situ-Magic Angle Spinning Nuclear Magnetic Resonance Spectroscopy

08:55

Hochtemperatur- und Hochdruck-In-situ-Magic Angle Spinning Nuclear Magnetic Resonance Spectroscopy

Related Videos

6.2K Views

Praktische Aspekte der Probenvorbereitung und des Aufbaus von 1H R1ρ  Relaxationsdispersionsexperimenten von RNA

08:17

Praktische Aspekte der Probenvorbereitung und des Aufbaus von 1H R1ρ Relaxationsdispersionsexperimenten von RNA

Related Videos

5.3K Views

Glykan-Protein-Wechselwirkungen entwirren: Kernspinresonanz (NMR) als Rettung

07:40

Glykan-Protein-Wechselwirkungen entwirren: Kernspinresonanz (NMR) als Rettung

Related Videos

2.1K Views

Erforschung von Protein-Glykan-Wechselwirkungen: Fortschritte in der Kernspinresonanz

10:07

Erforschung von Protein-Glykan-Wechselwirkungen: Fortschritte in der Kernspinresonanz

Related Videos

662 Views

Struktur- und Koordinationsbestimmung von Peptid-Metall-Komplexen mittels 1D und 2D 1h NMR

14:44

Struktur- und Koordinationsbestimmung von Peptid-Metall-Komplexen mittels 1D und 2D 1h NMR

Related Videos

10.1K Views

Methoden, um die NMR-Resonanzen von Identify 13 C-Dimethyl-N-terminalen Amins auf reduktiv methylierte Proteine

13:59

Methoden, um die NMR-Resonanzen von Identify 13 C-Dimethyl-N-terminalen Amins auf reduktiv methylierte Proteine

Related Videos

6.7K Views

Ethylenpolymerisationen Mit Parallel Druckreaktoren und eine kinetische Analyse chain transfer polymerization

07:28

Ethylenpolymerisationen Mit Parallel Druckreaktoren und eine kinetische Analyse chain transfer polymerization

Related Videos

13.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code