Name: Das Nagetier-Modell der nonarteritic anteriore ischämische Optikusneuropathie (rNAION) (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-11-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 49 s
Description: Erfahren Sie die Erstellung eines Nagetier-Modells der nonarteritischen anterioren ischämischen Optikusneuropathie (rNAION) zur Untersuchung von Schlaganfallmechanismen und neuroprotektiven Strategien.

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Wir danken den vielen Studenten und Stipendiaten, die auf diesem Modell gearbeitet haben, um ihre Wirksamkeit zu verbessern und ihre Mechanismen zu verstehen. Ein besonderer Dank an Dr. gebührt. Mary Johnson (University of Maryland-Baltimore), Nitza Goldenberg-Cohen (Schneiderman Childrens Hospital, Petah-Tikva, Israel), Charles Zhang (Einstein Medical College, Bronx, NY) und Valerie Touitou (Hopital Salpetrie, Paris, Frankreich). Diese Studie wurde teilweise durch RO1 EY015304 zu SLB finanziert.

(; Baltimore, MD, USA IACUC) Dieses Protokoll wurde von der University of Maryland Institutional Animal Care and Utilization Ausschuss genehmigt 1. Experimenteller Aufbau <ol><li> Machen Sie eine kundenspezifische Kontaktlinse aus einem klaren optischer Qualität Kreis 7 mm Durchmesser Plexiglas, 3 mm Dicke. Schneiden Sie die Rundlinsen mit einer Bohrmaschine. Verwenden Sie ein Standard-Bohrer, um die innere Kurve machen und polieren schließlich die äußeren und inneren Kurven eine Kontaktlinse Polierer ultrafeiner Körnung mit (1000/3000). </li><li> Bereiten 2,5 mM Bengalrosa (RB) in pH 7,4 Phosphatpuffer-Salzlösung (PBS) im Voraus, Sterilisieren Filter mit einem 0,45-Mikron-Spritzenfilter und Speicher 1 ml Aliquots in 20 ° C in einem lichtdichten Behälter für bis zu 6 Monate. HINWEIS: Die Verwendung von Albino outbred männlichen Tieren, wie Sprague Dawley minimiert die Belastung abhängige Antwort Unterschiede ermöglicht leichtere Induktions und reduziert die Variabilität, die mit der Brunst cycli auftreten kannng weiblich. </li><li> Richten Sie verdoppelt die Frequenz Neodym-Yttrium-Aluminium-Granat (Fd-YAG) ophthalmische medizinische Laser, der eine 532 nm Laserlicht erzeugt. Montieren Sie den Laser auf einem Haag-Streit ophthalmologischen Spaltlampe ein Standard-ophthalmologischen Laser-Adapter. Das im Handel erhältliche Gerät ermöglicht die gleichzeitige Visualisierung des Auges und der Laserpunkt Anwendung des Tieres. Der medizinische Laser hat auch einen Zielstrahl für die richtige Fokussierung und Zentrierung mit gleichen Punktgröße wie Laserinduktion. Laser Leistungsparameter sind wie folgt: <ol><li> Für Ratte rNAION Induktion: Verwenden Sie 500 um Spotgröße / 50 mW Laserleistung / 1.000 ms Dauer / 1.000 ms Intervall. </li><li> Für Maus rNAION Induktion: die Punktgröße auf 300 &amp; mgr; m für kleinere Papille ändern und andere Parameter, die die gleiche wie die Ratte Einstellung verlassen. </li><li> Verwenden Sie regelmäßig ein Laserleistungsmesser der Laserleistung zu gewährleisten. </li></ol></li></ol> 2. Experimentelles Verfahren <ol><li> Schalten Sie die Laserleistungund stellen Sie den entsprechenden Laserparameter auf. Erwärmen Sie den Laser für mindestens fünf Minuten vor dem Gebrauch. </li><li> Wiegen Sie das Tier die geeignete Dosis für Ketamin / Xylazin und RB Farbstoff zu bestimmen. Anästhesieren das Tier durch intraperitoneale Injektion einer 1 ml / kg Gemisch von 80 mg / ml Ketamin und 4 mg / ml Xylazin. </li><li> Lassen Sie das Tier in einem beheizten Käfig, bis sie vollständig betäubt. Prüfen Sie, ob keine Antwort auf aversiven Reizen (Schwanz oder Zeh Prise). Überprüfen Sie Tiere für Narkosetiefe alle 10 min. </li><li> Erweitern die Schüler des Tieres mit 1% Tropicamid und betäuben die Oberfläche des Auges mit 0,5% Proparacain. Bei der Verwendung von pigmentierten Tieren, wie Long Evans, ein 2,5% Neosynephrin Augentropfen wird Pupillenerweiterung erhöhen. </li><li> Mit einer Schere die Whiskers nahe der Mündung auf der Seite zu schneiden, um die Ansicht zu vermeiden induziert werden blockiert. </li><li> Geben Sie einen Tropfen von 1% Methylcellulose oder andere ophthalmische Kupplungsabfall an der Innenseite des maßgeschneiderte Kontaktlinse, und wenden Sie dann das Objektiv auf ter Ratte Auge. </li><li> Legen Sie das Tier auf einer Plattform auf die Höhe der Spaltlampe eingestellt. Gesetzt den Kopf des Tieres in einem 45 ° Winkel, so dass sich das Auge an der Spaltlampe und Laserstrahls senkrecht ist. </li><li> Visualisieren Sie das Auge durch die Augenspaltlampe. Stellen Sie sicher, dass der Zielstrahl ist die richtige Größe sowie fokussiert und zentriert direkt auf der visualisierten Sehnerv. Fotografieren Sie das Netzhautfundus eine Digitalkamera mit hoher ASA mit (1200 - 2000) auf einem der Okulare der Spaltlampe mit einem Maß Adapter montiert Geschwindigkeit. HINWEIS: Die Fähigkeit, die Choroidealgefässe zeigt die Transparenz der Netzhaut zu sehen. Dies ist ein wichtiges Zeichen, um später retinaler Ischämie zu erkennen zu können, was die Interpretation verwechseln kann, wenn sie auftritt. rNAION ist Sehnerv Ischämie, die in isolierten RGC Verlust führt, während retinaler Ischämie führt zu Schädigungen der Netzhaut alle Zellen der inneren Netzhautschichten zu beeinflussen. </li><li> Optional können weitere Bild der Netzhaut undSehnerv einen Spektralbereich-optischen Kohärenztomographen (SD-OCT 8) unter Verwendung der nichtinduzierten Auge zu evaluieren. Scannen en face (3B) sowie 7 Querschnitts Scans durch die Retina (3C). Die SD-OCT-Bildgebung verwendet die gleiche Kontaktlinse für die Laser-Induktion eingesetzt. </li><li> Injizieren von 1 ml / kg RB intravenös durch die Schwanzvene, und warten Sie für 30 Sekunden, dann aktivieren Sie die Laserleistung. Diese Zeitverzögerung ermöglicht die RB gleichmäßig in der Zirkulation zu verteilen. Wir verwenden einen 50 mW Laserpuls an einem s / Puls. Größere Energien (≥ 60 mW) können die Netzhaut schädigen oder retinale vaskuläre Ischämie verursachen. Achtung: Stellen Sie sicher , dass jeder hat ein Paar von Laserschutzfiltergläser der entsprechenden Sperr Wellenlänge Streu Eingabe Laserlicht Ermittler Auge zu verhindern. HINWEIS: Die Laser Verabreichung rasch nach der IV RB Injektion verabreicht werden muss, da der Farbstoff schnell aus dem Kreislauf eliminiert wird. Je länger die Laserinduzierung, desto schwerer der Sehnerv Ischämie. 12 sec Impulse in schneller Abfolge - In der Regel werden die Tiere 7 angegeben. Der Kontakt des Laserlichts mit dem zirkulierenden Farbstoff gibt den Sehnerv Gefäße einen schönen goldenen Glanz, der durch die Spaltlampe (4B) zu sehen ist. Dies erweist sich der Farbstoff systemisch injiziert und in den Blutstrom verteilt. Wenn die Glut schwach ist, oder gar keine (4A) wurde der Farbstoff nicht intravenös injiziert. In diesem Fall wird keine zweite Injektion sofort geben, da das Tier für mindestens zwei Tage vor Reinjektion erholen müssen. </li><li> Unmittelbar nach der Induktion, entfernen Sie die Kontaktlinse. Decken Sie beide Augen mit Augen Triple-Antibiotikum (Neosporin / Polymyxin / Bacitracin) Salbe mit Dexamethason, und legen Sie das Tier auf einem 37 ° C Erwärmung Pad in einem einzigen untergebracht Käfig unter strenger Beobachtung bis zur vollständigen Genesung. <ol><li> Reinigen Sie die Kontaktlinse mit destilliertem water und für die zukünftige Verwendung mit einem nicht scheuernden Reinigungstuch trocken wischen. </li><li> Zwei Tage nach der Induktion bewerten den Sehnerv Ödem sowohl Fundus Farbfotografie und SD-OCT - Analyse 8. HINWEIS: Um den Grad der Sehnerv Ödem gibt Ischämie eine Abschätzung der Schwere des Sehnervs Vergleich. An zwei Tagen wird der Sehnerv Scheibe Rand unscharf, und die Netzhautvenen leicht erweitert werden, im Vergleich mit der Gegenseite (un-induzierten) Auge. Führen Sie Elektroretinogramm (ERG) und Flash - visuell evozierten Potential (VEP 11) auf zwei und vier Wochen nach der Induktion für die Elektroanalyse. </li></ol></li></ol>

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</ol>

Autoren haben nichts zu offenbaren.

Zwar gibt es eine Reihe von Modellen der Schädigung des Sehnervs (Sehnerv Crush 12, Sehnervdurchtrennung 13 und PION 14) sind, ist das rNAION Modell humane, anpassungsfähig sowohl an Ratten und Mäusen. Es ähnelt mehr dem menschlichen klinischen Zustand von NAION. Dieser Zustand beinhaltet progressive anterioren Sehnerv Ödem, eine vordere Sehnerv Kompartmentsyndrom, fokale axonalen Ischämie, isoliert retinaler Ganglionzellen axonalen Schäden und Verluste über einen längeren Zeitverlauf. D...

Nonarteritic anteriore ischämische Optikusneuropathie (NAION) ist eine fokale ischämische Läsion des vorderen Teils des Sehnervs (ON) 1. NAION ist die häufigste Ursache für den plötzlichen Sehnerv im Zusammenhang mit Sehverlust bei Personen im Alter von 50 2. Der Mechanismus wird angenommen , dass ein Kompartment - Syndrom zu sein , die in intraneuralen Ödem führt, und eine Kompression der Kapillaren die Axone im Sehnerven Versorgung 3. Da die tatsächlich auf das zentrale Nervensystem (ZNS) Trakt ist, kann das Nagetier NAION (rNAION) Modell verwendet werden, um die Mechanismen und Reaktionen auf isolierte CNS weißen Substanz Hübe zu studieren. Das rNAION Modell kann daher sinnvoll sein, viele Probleme in Sezieren zu weißen Substanz mit Schlaganfall im Zusammenhang mit Schäden verbunden. Es kann verwendet werden, um verschiedene neuroprotektive Strategien und Mittel in der weißen Substanz Schlaganfall zu bewerten. Eines der attraktivsten Merkmale des Modells ist, dass esschmerzlos, nicht-invasive Verfahren. Die Laserleistung kann eingestellt werden, um verschiedene Grad der ischämische Schädigung zu erzeugen. Ein weiteres Merkmal ist, dass es auf der laserinduzierten Superoxid-Radikalen beruht, um die Kapillarendothels zu beschädigen, eine progressive Dysfunktion Kapillare zu erzeugen. Es ist diese Funktionsstörungen und progressive Ödeme, die mit dem Mechanismus zu sein bemerkenswert ähnlich angenommen wird, dass NAION verursacht. Die Forschung hat gezeigt , dass es keine direkte kapillare Gerinnungs verursacht, sondern arbeitet durch mindestens zwei Mechanismen: Superoxid - induzierten Tod und Abstreifen eines Teils der kapillaren Endothelzellen 4 und NFkB (nuclear factor kappa-Leichtketten-Enhancer von aktivierten B - Zellen mit) in verbleibenden Endothel Entzündungshochregulierung zugeordnet ist , 5 den Fluidtransport durch die Zellmembranen in das Interstitium erhöht. Die Schließung der Sehnerv Kapillaren und Kompression von interstitieller Flüssigkeit Akkumulationsergebnis in Sehnervenkopf Ischämie verursacht. Ein schematisches Bild gezeigt inFigur 2. Das rNAION Modell kann in beiden Spezies Ratte und Maus 6,7, verwendet werden und kann in der Ebene seiner Schwere variieren, aus einer leichten Läsion zu einem vollständigen, aber schmerzlos Zerstörung des Sehnervs und der Netzhaut, wie beispiels als zentrale Retinaarterienokklusion (ZAV).

<table><tbody><tr><td>50 mW 532 nm Laser</td><td>Iridex</td><td></td><td>Standard Ophthalmic Laser</td></tr><tr><td>0 - 100 mW 532 nm Laser</td><td>Laserglow Technologien</td><td></td><td>Ersatz für Iridex</td></tr><tr><td>Laser Spaltlampenadapter</td><td>Iridex</td><td></td><td>SMA gekoppelter Adapter für Laserausgabe</td></tr><tr><td>Coherent Fieldmate Lasermessgerät mit Thermosäulensensor</td><td>Coherent</td><td></td><td>andere auch passend</td></tr><tr><td>Ophthalmic Examing Spaltlampe Biomikroskop</td><td>Verschiedene</td><td></td><td>Haag-Streit ist das Beste; billigere Versionen bei ebay erhältlich</td></tr><tr><td>Rose Bengal</td><td>Sigma</td><td>330000-1G</td><td>Photoinduzierendes Mittel</td></tr><tr><td>Fundus Kontaktlinse oder Glasdeckglas</td><td>Custom / Cantor und Nissel (UK)</td><td></td><td>Speziell entwickelte plankonvexe Kunststofflinse für die Augenuntersuchung und Induktion</td></tr><tr><td>Tropicamid 1%</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tamiya Polierpaste</td><td>Tamiya, INC</td><td>87068</td><td>Polierkontaktlinse</td></tr><tr><td>2,5% Hypromellose (Goniovisc)/1% Methycellulose</td><td>HUB Pharmaceuticals</td><td></td><td>Kontaktlinsen-Kopplungsmittel</td></tr><tr><td>2,5% Neosynephrin Ophthalmische Tropfen</td><td>Alcon Labs</td><td></td><td>Pupillenerweiterungsmittel</td></tr><tr><td>Tropicamid 1%</td><td>Alcon Labs</td><td></td><td>Pupillenerweiterungsmittel</td></tr><tr><td>0,5% Proparacain</td><td>Alcon Labs</td><td></td><td>topisches Anästhetikum</td></tr><tr><td>30 G Insulinspritze mit verschmolzener Nadel</td><td>Verschiedenes</td><td>zur</td><td>intravenösen Injektion von Rose Bengal</td></tr><tr><td>Ophthamic Antibiotika-Salbe mit Dexamethason hinzugefügt (Dreifach-Antibiotikum-Salbe)</td><td>Verschiedenes</td><td>Verschiedenes</td><td>Nach Induktion auftragen, um die Hornhautvernarbung zu minimieren</td></tr><tr><td>Heidelberg Corporation Spektralbereich-Optischer Kohärenztomograph</td><td>Heidelberg Corporation</td><td></td><td>Für optische Kohärenzmessungen zu Beginn und nach der Induktion; für die Induktion nicht erforderlich</td></tr></tbody></table>

das nagetier-modell der nonarteritic anteriore ischämische optikusneuropathie (rnaion)

The Rodent Model of Nonarteritic Anterior Ischemic Optic Neuropathy (rNAION)

Nichtarteritische anteriore ischämische Optikusneuropathie (NAION) ist eine fokale ischämische Läsion des Sehnervs, die 1/700 Personen im Laufe ihres Lebens betrifft. NAION führt zu einem Ödem des Sehnervs, einem selektiven Verlust der retinalen Ganglienzellneuronen (RGCs) und einer Atrophie des Sehnervs. Es wurde ein Nagetiermodell von NAION entwickelt, das die meisten NAION-Merkmale und -Folgen aufweist und sowohl auf Ratten als auch auf Mäuse anwendbar ist. Dieses Modell verwendet eine fokale Laseranwendung mit einer Wellenlänge von 532 nm, um einen photoaktiven Farbstoff, Rose Bengal (RB), zu beleuchten, um Kapillarschäden und Leckagen am anvisierten vorderen Sehnerv (der laminaren Region) zu verursachen. Nach der rNAION-Induktion kommt es zu einer frühen Ischämie des Sehnervs, einem Sehnervenödem und einer intraneuralen Entzündung, gefolgt von selektivem RGC und axonalem Verlust. Da es sich beim Sehnerv um einen Trakt der weißen Substanz des ZNS handelt, ist das rNAION-Modell sowohl auf mechanistische Studien der selektiven Ischämie der weißen Substanz als auch auf neuroprotektive Analysen und kurz- und langfristige Mechanismen der glialen und neuronalen Reaktion auf Ischämie anwendbar.

<html> Die Kontaktlinse freigegeben zentralen Netzhaut Visualisierung (Abbildung 1). Der Schwerpunkt Laserspot beleuchtet die Papille auf der Rückseite der Netzhaut (Abbildung 2). Die normale un induzierter Netzhaut wird durch Spaltlampen - Biomikroskop (3A) und SD-OCT (3B und 3C) abgebildet gezeigt. Beim Laserinduktion, wenn kein Farbstoff in dem Kreislauf vorhanden ist, wird Laserlicht führen nicht in Gefäß und Platten ...

Der folgende Bericht beschreibt, wie das Nagetiermodell der nicht-arteriitischen anterioren ischämischen Optikusneuropathie (rNAION) unter Verwendung der entsprechenden Farbstoff-, Kontaktlinsen- und Laserparameter repliziert werden kann. Wir zeigen auch die geeigneten Schritte zur Beurteilung der rNAION-Läsion in vivo auf.

Das Nagetier-Modell der nonarteritic anteriore ischämische Optikusneuropathie (rNAION)

Nonarteritic anterior ischemic optic neuropathy (NAION) is a focal ischemic lesion of the optic nerve that affects 1/700 individuals throughout their ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, ein Nagetiermodell der anterior ischämischen Optikusneuropathie zu erstellen, um damit Schlaganfallreaktionsmechanismen zu charakterisieren und die Wirksamkeit neuroprotektiver Wirkstoffe bei der Behandlung eines Sehnervinfarkts zu analysieren. Diese Maßnahme kann helfen, zentrale Fragen auf dem Gebiet des Sehnervinfarkts zu beantworten.Unter anderem Mechanismen des Ödems, der post-stroke-Entzündung sowie Schutz- und Reparaturwege. Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass der ischämische Schaden auf den vorderen Teil des Sehnervs begrenzt ist. Ohne chirurgischen Eingriff ist die Technik schmerzfrei.Und das Ausmaß der Schädigung kann reproduzierbar nach Belieben variiert werden. Diese Methode vermeidet die mit vielen Nervenschädigungsmodellen verbundenen Schmerzen, einschließlich des Zermalmens oder Durchtrennens des Sehnervs.Es ermöglicht zudem eine detaillierte Analyse der Wirkungen isolierter exo-ischämischer Bedingungen an einer einzelnen Neuronenklasse in vivo. Beginnen Sie damit, eine maßgefertigte Kontaktlinse zu besorgen, die gemäß den angegebenen Spezifikationen hergestellt ist. Bereiten Sie außerdem 2,5 mmol/l Rose Bengal in phosphatgepufferter Salzlösung mit pH 7,4 vor.Die Flüssigkeiten werden mit einem 0,5-Mikron-Spritzenfilter sterilisiert. Bereiten Sie Aliquots zu je einem Milliliter vor, geben Sie die Aliquots in ein lichtdichtes, dicht verschlossenes Behältnis und lagern Sie sie bei minus 20 Grad Celsius bis zu sechs Monate lang. Am Tag des Eingriffs stellen Sie den frequenzverdoppelten Neodym-Yttrium-Aluminium-Granat-Augenlaser bereit.Das erzeugt ein Laserlicht mit einer Wellenlänge von 532 Nanometern. Befestigen Sie den Laser mithilfe eines standardmäßigen ophthalmologischen Laseradapters an einer ophthalmologischen Spaltlampe von Haag-Streit, um gleichzeitig das Auge des Tieres und den Laserfleck sichtbar zu machen. Schalten Sie den Laser ein und lassen Sie ihn vor der Verwendung mindestens fünf Minuten lang aufwärmen.Stellen Sie die geeigneten Laserleistungsparameter für das verwendete Versuchstier ein. Befestigen Sie eine digitale Kamera mit hoher ASA-Geschwindigkeit an einem der Okulare der Spaltlampe mit einem speziell angefertigten Adapter. Nachdem das Versuchstier angemessen anästhesiert wurde und die angemessene Anästhesietiefe durch das Fehlen einer Reaktion auf einen Zehenquetschtest bestätigt ist.Weiten Sie die Pupillen der Tiere mit einem Prozent Tropicamid und betäuben Sie die Augenoberfläche mit 0,5 Prozent Proparakain. Anschließend schneiden Sie mit der Schere die Schnurrhaare nahe am Maul auf der Seite der Induktion ab, um eine freie Sicht auf das Auge zu ermöglichen.Danach einen Tropfen einprozentige Methylcellulose oder einen anderen ophthalmologischen Koppelungstropfen auf die Innenseite der speziell angefertigten Kontaktlinse geben. Anschließend die Linse auf das Auge der Ratte aufbringen. Das Tier auf eine Plattform stellen, die auf die Höhe der Spaltlampe eingestellt ist.Stellen Sie den Kopf des Tieres in einem Winkel von 45 Grad ein, sodass das Auge senkrecht zum Spaltlamellenstrahl und Laserstrahl steht. Anschließend visualisieren Sie das Auge mithilfe der ophthalmologischen Spaltlampe. Bei einem gesunden Auge weist der Sehnervenkopf eine scharfe Begrenzung und eine rötliche Umgebung auf. Die Netzhautgefäße sind dünn und gleichmäßig verteilt.Stellen Sie sicher, dass der Zielstrahl die richtige Größe hat und scharf fokussiert sowie genau auf dem sichtbaren Sehnerv zentriert ist. Danach fotografieren Sie den Augenhintergrund mit der Digitalkamera. Als Nächstes injizieren Sie einen Milligramm pro Kilogrammkörpergewicht von Rosenbengal intravenös über die Schwanzvene und warten Sie 30 Sekunden. Eine gleichmäßige, kontinuierliche, intravenöse Injektion von Rosenbengal muss nach 30 Sekunden durch eine Laserbestrahlung des Sehnervenkopfes erfolgen.Abweichungen in der Zeit zwischen diesen beiden Schritten führen zu einer erhöhten Variabilität des Ausmaßes der optischen Nervenverletzung, was die Ergebnisse verfälschen kann. Aktivieren Sie nach 30 Sekunden die Laserleistung.Der Sehnerv zeigt einen goldenen Schimmer innerhalb der Gefäße, der vom Diskus an der Laserpunktstelle ausgeht. Dies weist auf Rosenbengal im Blutstrom hin, das durch grünes Laserlicht angeregt wird. Unmittelbar nach der Induktion die Kontaktlinse entfernen und beide Augen mit einem ophthalmischen Dreifach-Antibiotikum-Salbe sowie Dexamethason bedecken.Das Tier einzeln in einem Käfig auf einer Heizplatte mit 37 Grad Celsius unter engmaschiger Beobachtung unterbringen, bis es sich vollständig erholt hat. Dieses farbige Fundusbild zeigt eine Schwellung des Sehnervs und eine Blässe der Papille, begleitet von einem Verlust des umgebenden choroidalen Blutflusses.Die Venen sind vergrößert und gekrümmt. Dieses n-Gesicht SDOCT-Bild nach Induktion zeigt eine Diskusödem und eine venöse Dilatation. Die Scan-Richtung ist mit einem grünen Pfeil markiert; der Querschnitt im nächsten Bild wurde innerhalb des grünen Kastens erzeugt.Hier zeigt ein Querschnitt ein Ödem der Sehnervpapille, erkennbar an einer verminderten Grauintensität und einer erhöhten Dicke der retinalen Nervenfaserschicht, was mit einem höheren Wassergehalt übereinstimmt. Der Durchmesser des intraretinalen Sehnervs, angegeben zwischen den schwarzen Pfeilen, ist vergrößert.Während des Durchführens dieses Verfahrens ist es wichtig, eine saubere, polierte Kontaktlinse oder Deckglas zur Hand zu haben, die eine gute Sichtbarmachung des Nervs und eine präzise Fokussierung des Laserlichts auf den Nerv ermöglichen. Nach diesem Verfahren können weitere Methoden wie Immunhistochemie, Zytokinanalyse oder Genexpressionsanalyse durchgeführt werden, um zusätzliche Fragestellungen zu beantworten.Wie entzündliche Reaktionen nach einem Schlaganfall oder Veränderungen in den Zielgeweben.

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Forschung

JoVE Journal

Medicine

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Dieses Protokoll zeigt, wie man retrograd Label retinalen Ganglienzellen, und wie man später machen ein Sehnerv Quetschverletzung um retinalen Ganglienzellen Überleben und Apoptose zu analysieren. Es ist eine experimentelle Krankheit Modell für verschiedene Arten von Optikusneuropathie, einschließlich Glaukom.

Ein Optic Nerve Crush Injury Mausmodell zur retinalen Ganglienzellen Survival Study

Das Ziel des Protokolls ist es, photochemisch induzieren ischämischen Schädigung des hinteren Sehnervs bei Ratten. Dieses Modell ist für Studien der Pathophysiologie der hinteren ischämischer optischer Neuropathie und therapeutischen Ansätzen für diese und andere Optikusneuropathien sowie anderer ZNS-ischämischen Erkrankungen.

Rattenmodell der photochemisch-induzierte Posterior ischämische Optikusneuropathie

Hier präsentieren wir das Maus-Laser-induzierte choroidale Neovaskularisation (CNV) Protokoll, ein experimentelles Modell, das die vaskulären Kennzeichen der neovaskulären altersbedingten Makuladegeneration (AMD) nachbildet. Einmal gemeistert, kann es zuverlässig und effektiv CNV als Modellsystem induzieren, um verschiedene experimentelle Maßnahmen zu testen.

Ein Mausmodell für Laser-induzierten CNV

Das Glaukom ist durch eine Schädigung der retinalen Ganglienzellen gekennzeichnet. Die Induktion des Glaukoms in Tiermodellen kann Aufschluss über die Erforschung dieser Krankheit geben. Hier skizzieren wir ein Verfahren, das den Verlust von RGCs in einem in vivo Rattenmodell induziert und die Vorbereitung von Whole-Mount-Netzhäuten für die Analyse demonstriert.

Glaucoma auslösende Verfahren in ein<em&gt; In Vivo</em&gt; Rat Modell und Whole-mount Retina Vorbereitung

Sekundäre Degeneration der retinalen Ganglienzellen (Routinggruppenconnectors) tritt häufig bei Glaukom. Diese Studie beschreibt eine innovative operative Vorgehensweise für partielle Sehnerv Durchtrennung. Die Verwendung dieses platzsparende operativen Ansatzes erstreckt sich das Modell Einsatzbereich und ermöglicht Erforschung der sekundären Verletzungen Mechanismen in Routinggruppenconnectors in einer neuen Weise.

Partielle Sehnerv Durchtrennung bei Ratten: ein Modell gegründet mit einem neuen operativen Ansatz zur sekundären Degeneration der retinalen Ganglienzellen bewerten

Hier stellen wir ein Protokoll zur Induzieren von okulärer Hypertonie und glaukomatischer Neurodegeneration in Mausaugen durch intracameralInjektion von Silikonöl und das Verfahren zur Silikonölentfernung aus der vorderen Kammer vor, um erhöhten Augeninnendruck Normalen.

Ein reversibles Siliziumöl-induziertes Okularhypertonie-Modell bei Mäusen

Die sauerstoffinduzierte Retinopathie (OIR) kann verwendet werden, um ischämische Netzhauterkrankungen wie Retinopathie der Frühreife und proliferative diabetische Retinopathie zu modellieren und als Modell für Proof-of-Concept-Studien zur Bewertung antiangiogener Medikamente für neovaskuläre Erkrankungen zu dienen. OIR induziert eine robuste und reproduzierbare Neovaskularisation in der Netzhaut, die quantifiziert werden kann.

Sauerstoffinduzierte Retinopathie-Modell für ischämische Netzhauterkrankungen bei Nagetieren

Hier beschreiben wir ein Mausmodell der retinalen Ischämie durch vorübergehende bilaterale gemeinsame Karotisarterienverschluss mit einfachen Nähten und einer Klemme. Dieses Modell kann nützlich sein, um die pathologischen Mechanismen der retinalen Ischämie zu verstehen, die durch kardiovaskuläre Anomalien verursacht wird.

Ein murines Modell der ischämischen Netzhautverletzung induziert durch transiente bilaterale gemeinsame Carotis ArterieNverschluss

In diesem Artikel werden detaillierte Anweisungen zur Durchführung einer Sehnervenquetschung in einem Kaninchenmodell unter Verwendung von Standard-ophthalmochirurgischen Techniken vorgestellt.

Ein chirurgischer Ansatz zur Quetschung des Sehnervs in einem Kaninchenmodell

Dieses Protokoll beschreibt eine einzigartige Technik, die einen transkonjunktivalen Ansatz verwendet, um Zugang zum Sehnerv der Ratte für Injektionen zu erhalten.

Transkonjunktivaler Zugang zur Injektion in den Sehnerv der Ratte

Erfahren Sie die Erstellung eines Nagetier-Modells der nonarteritischen anterioren ischämischen Optikusneuropathie (rNAION) zur Untersuchung von Schlaganfallmechanismen und neuroprotektiven Strategien.

Das Nagetier-Modell der nonarteritic anteriore ischämische Optikusneuropathie (rNAION)

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