Name: Ein Polyanilin basierenden Sensor von Nucleic Acids (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-11-01T10:45:00.000+00:00
Duration: 7 min 58 s
Description: Erfahren Sie die markierungsfreie Detektion von Nukleinsäuren mit Polyanilin für biotechnologische Diagnostik. Diese kostengünstige Methode ermöglicht die Unterscheidung einzelner Nukleotide ohne enzymatische Manipulation.

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1. verarbeitbaren PANI Synthese <ol><li> Auflösen Anilin (1 ml, 11 mmol) vollständig in 60 ml Chloroform in einem 250 ml Rundkolben. Rühre bei 600 Umdrehungen pro Minute für 5 Minuten und Abkühlen auf 0-5 ° C mit Eis. Dies dauert in der Regel 15 bis 20 min (2A). </li><li> Hinzufügen Natriumdodecylbenzolsulfonat (NaDBS) (7,44 g, 21 mmol) zu der Anilin-Lösung in einem Rundkolben während bei 600 rpm gerührt wurde. </li><li> Man löst Ammoniumpersulfat (APS) (3,072 g, 13,5 mmol) in 20 ml Wasser und fügen Sie alle tropfenweise über 30 Minuten eine Überhitzung der Reaktion zu vermeiden. </li><li> Führen Sie die Reaktion bei 0-5 ° C für 24 Stunden, und lassen Sie es Raumtemperatur für weitere 24 Stunden zu erreichen. </li><li> Beachten Sie das Reaktionsgemisch zunächst drehen milchig weiß nach 15 min, dann dunkelbraun nach 2 h und schließlich zu dunkelgrün nach 24 h (2B-F). </li><li> Filtern Sie die PANI-NaDBS Lösung mit einem Büchner-Trichter. Mischen Sie mit 80 ml Chloroform und 120 ml Wasser in alseparation Trichter (2G). </li><li> Inkubiere die Lösung 24 h bei Raumtemperatur und sammle die dunkelgrüne PANI aus dem Scheidetrichter, so dass nicht-umgesetztes NaDBS und APS in dem wässrige Überstand. </li></ol> 2. PANI-Sonde Mischen und UV-Bestrahlung <ol><li> Verdünnen Sie PANI Lösung 10x mit Chloroform-Wasser (1: 3 v / v) und mischen Sie 200 ul verdünnt PANI mit 6,4 &amp; mgr; mol Sonden-DNA-Oligonukleotide durch sanftes für 15 min rocking in ein Mikrozentrifugenröhrchen. </li><li> Bestrahlen , um die PANI-DNA - Lösung mit 1200 &amp; mgr; J / cm 2 UV in einem Vernetzer für 2 min. Es ist kritisch, dass die UV-Belichtung mit der angegebenen Menge beschränkt ist. Verlängerte Exposition gegenüber UV kompromittiert die Fluoreszenzänderung in PANI, wahrscheinlich durch kovalente Vernetzung von PANI und DNA. </li><li> Pellet-Komplexe durch Zentrifugation bei 17.000 xg für 6 min und Waschen mit phosphatgepufferter Salzlösung (PBS). Pellet erneut und resuspendieren in PBS. </li></ol> 3. Hybridization von PANI-Sonde <ol><li> Aus 8 ul 100 uM komplementären DNA-Oligonucleotide oder Zielnukleinsäuren zu 200 ul PANI-Sonde-Komplexe. </li><li> Führen Hybridisierung durch Lösungsgemisch 15 min bei 40 rocking ° C. </li><li> Pellet die PANI-Komplexe durch Zentrifugation bei 17.000 xg für 6 min. Waschen mit PBS und Resuspendieren in Wasser. </li></ol> 4. Emissions Steady-State-Fluoreszenzmessung <ol><li> In PANI aus verschiedenen Behandlungen in einer 96-Well-Mikroplatte und messen Emissionsfluoreszenz im 270-850 nm-Bereich durch Anregung bei 250 nm. Ein Emissionsspitze für PANI sollte etwa 500 nm zu beobachten. </li></ol> 5. Fluoreszenzmikroskopie Messung der hybridisierten Duplex <ol><li> Drop-Mantel PANI auf einem Borosilikat-Deckglas und trocken bei 40 ° C für 48 Stunden. </li><li> In Sonde (8 ul 100 uM) auf einem getrockneten PANI Film und bestrahlen es mit UV - Licht (1200 &amp; mgr; J / cm 2 </sup&gt;) für 2 min. </li><li> Waschen Sie die PANI-Sonde Film mit PBS und trocken bei 40 ° C für 48 Stunden. </li><li> Führen Sie die Hybridisierung für 15 min von Ziel-Nukleinsäuren hinzufügen. Dies könnte eine biologische Probe oder eine Kontroll Zieloligonucleotid (8 ul 100 uM) sein. Folgen Sie mit einem PBS waschen. </li><li> Besorgen Sie sich die Fluoreszenzbilder bei 40-facher Vergrößerung, mit einem 500 nm Langpassfilter. </li></ol>

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</ol>

Die Arbeit wurde vom University of Southern Mississippi College of Science and Technology und dem Mississippi College of Science and Technology sowie dem Mississippi INBRE-Programm (Award Number P204M103476 vom National Institute of General Medical Science) unterstützt.

A PANI-basierten Sensor von Nukleinsäuren erfordert die Solubilisierung des Polymers in Wasser, um mit DNA und RNA zu interagieren. Die Dispersion von PANI in Wasser Tenside erreicht Verwendung bilden Mizellen wie zuvor 8 berichtet. Neben den hier NaDBS andere anionische Tenside wie dodecylester von 4-Sulfophthalsäure, nicht - ionische Tenside wie Nonylphenolethoxylat oder kationische oberflächenaktive Mittel wie Cetyltrimethylammoniumbromid könnte auch für die Synthese von verarbeitbaren PANI 9,10...

Konjugierte Polymere bieten viele Optionen für molekulare Sensoren. Dazu gehören Fluoreszenz-, elektronische und kolorimetrische Reaktionen1. Es gab viele Bemühungen, konjugierte Polymere in Nukleinsäuresensoren einzubauen. Die meisten Systeme erfordern jedoch eine sekundäre Detektion, was die Erfassungsoptioneneinschränkt 2. Kürzlich haben wir über eine auf konjugierten Polymeren basierende Sensorplattform auf Basis von Polyanilin (PANI) berichtet, die die Eigenschaften dieses Polymers ausnutzt und so ein markierungsfreies System schafft3. PANI ist ein umfassend konjugiertes elektroaktives Polymer mit Eigenschaften wie Fluoreszenz und Beständigkeit, die für die Messung biologischer Systeme geeignet sind4. Die Exzitonen innerhalb der Struktur sind nicht lokalisiert, was zu einer Beweglichkeit der positiven Ladung zwischen monomeren Untereinheiten führt. Dies bietet ein flexibles Gerüst aus positiven Ladungen, die mit dem negativ geladenen Rückgrat der DNAinteragieren können 5,6. Wichtig ist, dass elektrostatisch gebundene DNA so orientiert ist, dass stickstoffhaltige Basen an der Basenpaarung teilnehmen können. Die Assoziation mit DNA verändert die elektronischen Eigenschaften von PANI, ein Effekt, der durch UV-Bestrahlung verstärkt werden kann (Abbildung 1)3. Mit diesem System können Oligonukleotide, die zu den Zielnukleinsäuren komplementär sind, auf PANI immobilisiert werden. Mehrere Studien haben gezeigt, dass elektrostatisch adsorbierte Oligonukleotide nach der Hybridisierung von PANI oder anderen kationischen Matrizen dissoziieren, und zwar aufgrund von Konformationsänderungen, die durch den Wechsel zu einer doppelsträngigen DNA-Struktur verursacht werden3,5,7.
In einem Sensorsystem, in dem die Sondenbefestigung konjugierte Polymereigenschaften moduliert, können Hybridisierungsereignisse ohne Markierung oder enzymatische Modifikation von Sonden oder Zielnukleinsäuren transduziert werden. Konjugierte Polymere bieten eine große Flexibilität bei den Nachweismethoden, zu denen auch die Fluoreszenz gehört. Durch die Überwachung der PANI-Fluoreszenz können Konzentrationen von Zielnukleinsäuren von nur 10-11 M (10 pM) nachgewiesen werden3. Der Nachweis erfolgt schnell, erfolgt innerhalb von 15 Minuten nach der Hybridisierung und ist spezifisch, wenn eine einzelne Fehlanpassung in einem Zielmolekül unterschieden werden kann3. 
Die Herstellung von PANI-Sensoren ist unkompliziert. PANI mit hohem Molekulargewicht kann erzeugt werden, das unter Verwendung von Standardsyntheseverfahren mit Anilinmonomer, Tensid und kontrollierter Zugabe eines Oxidationsmittels gut in Wasser dispergiert ist. Die Ausbeute kann sehr hoch sein und nicht umgesetztes Oxidationsmittel durch Waschen mit Wasser entfernen, um sicherzustellen, dass kein weiteres PANI-Wachstum stattfindet. Die PANI-Sonden-Assoziation tritt spontan nach dem Mischen auf, und die Komplexbildung wird durch milde UV-Exposition verstärkt. Die Hybridisierung kann sofort durchgeführt werden, und die Veränderungen der PANI-Fluoreszenz können nach einer kurzen Inkubation untersucht werden. Die Einfachheit dieser Technologie macht sie für viele Labore leicht zugänglich.

<table><tbody><tr><td>Anilin&nbsp;</td><td>Fisher Wissenschaftlich&nbsp;</td><td>Nr. A7401-500&nbsp;</td><td>ACS, flüssig, gekühlt</td></tr><tr><td>Ammoniumperoxydisulfat</td><td>Fisher Scientific&nbsp;</td><td>A682-500&nbsp;</td><td>ACS, kristallin</td></tr><tr><td>Natriumdodecylbenzolsulfonat</td><td>Pfaltz & Bauer&nbsp;</td><td>D56340&nbsp;</td><td>95% fest</td></tr><tr><td>Chloroform</td><td>Fisher Scientific&nbsp;</td><td>MCX 10601&nbsp;</td><td>Flüssigkeit</td></tr><tr><td>DNA-Primer</td><td>MWG-Operon</td><td>n/eine</td><td>benutzerdefinierte DNA-Sequenz ~20&nbsp; </td></tr><tr><td>bps Mikrotiterplatte&nbsp;</td><td>USA Wissenschaftlich&nbsp;</td><td>1402-9800&nbsp;</td><td>96 gut, Polypropylen, da es nicht auf Chloroform reagiert</td></tr><tr><td>Mikrotiterplatten-Klebefolie</td><td>USA Wissenschaftlich</td><td>2920-0000&nbsp;</td><td>Reduziert die Kontamination von Bohrloch zu Bohrloch, das Verschütten und Verdunsten von Proben</td></tr><tr><td>Mikroskop-Deckglas</td><td>Fisher Scientific&nbsp;</td><td>12-544-D&nbsp;</td><td>PANI-beschichtet auf UV-bestrahltem Deckglas</td></tr><tr><td>UV-Vernetzer&nbsp;</td><td>UVP&nbsp;</td><td>HL-2000&nbsp;</td><td>Energie: X100 &mu; J/cm2; Zeit: 2 min</td></tr><tr><td>Hybridisierungsofen</td><td>VWR</td><td>01014705 T</td><td>Temperatur: 400&nbsp; &#176; C; mit Schaukeln für 15 min</td></tr><tr><td>Glasapparat&nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td>Dreihalsiger Rundkolben für die Reaktion; Tropftrichter, Stopfen, Kondensor, Scheidetrichter</td></tr><tr><td>Mikroskop</td><td>Leica Microsystems&nbsp;</td><td>Leica IMC S80</td><td>Vergrößerung 20X; Pseudofarbe 536 nm; Exposition 86 ms; Gewinn 1,0x; Gamma 1.6</td></tr><tr><td>Mikroplatten-Reader</td><td>Molekulare Geräte&nbsp;</td><td>Tel.: 89429-536</td><td></td></tr></tbody></table>

ein polyanilin basierenden sensor von nucleic acids

A Polyaniline-based Sensor of Nucleic Acids

Der Nachweis von Nukleinsäuren steht im Mittelpunkt der diagnostischen Technologien, die in der Forschung und in der Klinik eingesetzt werden. Die in diesen Technologien verwendeten Standardansätze beruhen auf enzymatischer Modifikation, die zu Verzerrungen und Artefakten führen kann. Ein entscheidendes Element der Detektionsplattformen der nächsten Generation wird die direkte molekulare Sensorik sein, wodurch die Notwendigkeit von Amplifikation oder Markierung vermieden wird. Fortschrittliche Nanomaterialien könnten die geeigneten chemischen Modalitäten bieten, um markierungsfreie Sensoren zu realisieren. Konjugierte Polymere eignen sich ideal für die biologische Sensorik, da sie Eigenschaften besitzen, die mit Biomolekülen kompatibel sind, und eine hohe Empfindlichkeit gegenüber lokalen Umweltveränderungen aufweisen. In diesem Artikel wird ein Verfahren zum Nachweis von Nukleinsäuren unter Verwendung des elektrisch leitenden Polymers Polyanilin vorgestellt. Einfache DNA-"Sonden"-Oligonukleotide, die zu den Zielnukleinsäuren komplementär sind, werden elektrostatisch an das Polymer gebunden, wodurch ein Sensorsystem entsteht, das Einzelnukleotidunterschiede in Zielmolekülen unterscheiden kann. Abgesehen von der spezifischen und unvoreingenommenen Natur dieser Technologie ist sie sehr kostengünstig.

2A erfasst zu Beginn des Polymerisationsverfahrens des Reaktionsaufbau, also vor APS hinaus. Mizellenbildung ist der erste Schritt in dem Reaktionsverfahren-PANI - Synthese an der mizellaren Schnittstelle auftritt. 2B zeigt eine milchige Lösung nach 5 min. 30 min nach dem APS zugegeben wird die Reaktion dann auch in eine leicht braune Farbe. 2C zeigt die Farbänderung mit der Bildung von Oligomeren verbunden. 2D ...

Nukleinsäuren sind gängige Analyten zur Beurteilung biologischer Systeme; Verzerrungen durch enzymatische Manipulation können jedoch Anlass zur Sorge geben. Hier wird ein Verfahren zur markierungsfreien Detektion von Nukleinsäuren mittels Polyanilin beschrieben. Diese empfindliche, kostengünstige Sensortechnologie kann Einzelnukleotidunterschiede zwischen Molekülen unterscheiden.

Ein Polyanilin basierenden Sensor von Nucleic Acids

Detection of nucleic acids is at the center of diagnostic technologies used in research and the clinic. Standard approaches used in these technologies ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens ist die Synthese von wasserdispersiertem Polyanilin, das zur Detektion von Nukleinsäuren ohne Markierung verwendet werden könnte. Diese Technik ist eine kostengünstige Methode zur Nachweisung von Nukleinsäuren. Labore, die sie anwenden, werden sie als einfach, robust und empfindlich empfinden.Der Hauptvorteil der Technik besteht darin, dass sie markierungsfrei ist und direkt RNA und DNA nachweisen kann, ohne dass eine enzymatische Manipulation erforderlich ist. Diese Technik hat Potenzial für neue diagnostische Verfahren, und da sie keine Markierung verwendet, eignet sie sich zur Verarbeitung von Patientenproben mit geringem Aufwand. Eine visuelle Demonstration wird dazu beitragen, den Sensor verständlicher zu machen.Diese Plattform umfasst die Polymerwissenschaft und Biologie, die zwar sehr exotisch erscheinen, jedoch außerordentlich einfach zu realisieren sind. Lösen Sie Anilin vollständig in 60 ml Chloroform in einem 250 ml Rundkolben. Rühren Sie fünf Minuten lang bei 600 U/min und kühlen Sie anschließend mit Eis auf null bis fünf Grad Celsius ab.Das dauert normalerweise 15 bis 20 Minuten. Fügen Sie anschließend Natriumdodecylbenzolsulfonat unter Rühren mit 600 U/min zur Anilinlösung in einem Rundkolben hinzu. Lösen Sie Ammoniumpersulfat in 20 ml Wasser auf und geben Sie es zur Vermeidung einer Überhitzung der Reaktion innerhalb von 30 Minuten tropfenweise zu.Führen Sie die Reaktion bei null bis fünf Grad Celsius für 24 Stunden durch. Beobachten Sie, wie das Reaktionsgemisch sich zunächst nach 15 Minuten milchig-weiß verfärbt, dann nach zwei Stunden dunkelbraun und schließlich nach 24 Stunden dunkelgrün. Anschließend lassen Sie es weitere 24 Stunden lang auf Raumtemperatur ansteigen.Filtern Sie die PANI-Natriumdodecylbenzolsulfonat-Lösung mit einem Büchner-Trichter. Mischen Sie das Filtrat in einem Trenntrichter mit 80 ml Chloroform und 120 ml Wasser. Inkubieren Sie die Lösung 24 Stunden bei Raumtemperatur und sammeln Sie anschließend das dunkelgrüne PANI aus dem Trenntrichter, wobei unumgesetztes Natriumdodecylbenzolsulfonat und APS im wässrigen Überstand verbleiben.Verdünnen Sie die PANI-Lösung 10-fach mit Chloroformwasser und mischen Sie anschließend 200 Mikroliter der verdünnten PANI-Lösung mit 6,4 Mikromol DNA-Sonden-Oligonukleotiden durch vorsichtiges Schaukeln für 15 Minuten in einem Mikrozentrifugenröhrchen. Bestrahlen Sie die PANI-DNA-Lösung in einem Crosslinker mit 1200 Mikrojoule pro Quadratzentimeter UV-Licht für zwei Minuten. Es ist entscheidend, dass die UV-Bestrahlung auf die angegebene Menge begrenzt bleibt.Langzeitbelichtung gegenüber UV-Licht beeinträchtigt die Fluoreszenzänderung in PANI, wahrscheinlich aufgrund einer kovalenten Quervernetzung von PANI und DNA. Pelletieren Sie die Komplexe durch Zentrifugation bei 17.000 × g für sechs Minuten und waschen Sie sie mit phosphatgepufferter Kochsalzlösung oder PBS. Nachdem die Probe ein zweites Mal pelletiert wurde, resuspendieren Sie sie in PBS.Geben Sie acht Mikroliter 100 Mikromolar komplementärer DNA-Oligonukleotide oder Ziel-Nukleinsäuren zu 200 Mikrolitern PANI-Sondenkomplexen hinzu. Führen Sie die Hybridisierung durch, indem Sie die Lösungsmischung 15 Minuten lang bei 40 Grad Celsius schütteln. Nachdem Sie die PANI-Komplexe durch Zentrifugation bei 17.000 × g für sechs Minuten pelletiert haben, waschen Sie sie mit PBS und resuspendieren sie in Wasser.Geben Sie PANI aus verschiedenen Behandlungen in eine 96-Well-Mikroplatte und messen Sie die Emissionsfluoreszenz im Bereich von 270 bis 850 Nanometer bei einer Anregung bei 250 Nanometern. Ein Emissionsmaximum für PANI sollte bei etwa 500 Nanometern beobachtet werden. Um die Fluoreszenzmikroskopie-Messung des hybridisierten Duplex durchzuführen, tragen Sie PANI mittels Tropfenbeschichtung auf einen Borosilikatglas-Deckel auf und trocknen Sie diesen bei 40 Grad Celsius für 48 Stunden.Geben Sie acht Mikroliter einer 100 Mikromolar-Probe auf einen getrockneten PANI-Film und bestrahlen Sie diesen anschließend zwei Minuten lang mit UV-Licht. Nach der Bestrahlung waschen Sie den PANI-Probefilm mit PBS und trocknen ihn 48 Stunden bei 40 Grad Celsius. Führen Sie die Hybridisierung durch Hinzufügen von Target-Nukleinsäuren für 15 Minuten durch.Dies könnte eine biologische Probe oder ein kontrollierter Ziel-Oligonukleotid sein. Anschließend mit PBS waschen. Erhalten Sie die fluoreszierenden Bilder mit 40-facher Vergrößerung unter Verwendung eines Langpassfilters mit 500 Nanometern.Hier wird die elektrostatische Wechselwirkung zwischen PANI und DNA-Sonden gezeigt, die durch UV-Bestrahlung verstärkt wird. Die Hybridisierung der Ziel-Nukleinsäure führt zur Duplexbildung und damit zu einer Änderung der strukturellen Konformation, was die Dissoziation der Ziel-Sonde von der PANI-Oberfläche zur Folge hat. Diese Abbildung zeigt die Änderung der PANI-Fluoreszenz in Abwesenheit oder Anwesenheit der Sonde, sowohl in Lösung als auch in fester Beschichtungsform.Der Anstieg der Fluoreszenz beruht auf dem Elektronenfluss von negativ geladener DNA, wodurch die Elektronendichte des Polymers erhöht wird. Bei der Hybridisierung komplementärer Ziel-Oligonukleotide lösen sich die Sonden ab, was zur Wiederherstellung der basilaren Fluoreszenz führt. Im Gegensatz dazu führt die Hybridisierung mit einzelnen fehlgepaarten Ziel-Oligonukleotiden nicht zur Wiederherstellung der basilaren Fluoreszenz.Die Hauptneuheit dieser Technik besteht darin, dass sie milder UV-Strahlung für eine gezielte Wechselwirkung verwendet, wodurch sie in der Lage ist, unspezifische und lichtinduzierte Wechselwirkungen voneinander zu unterscheiden. Wenn man diese Technik einmal beherrscht, kann sie bis zu zwei Stunden in Anspruch nehmen, ausgenommen die Einwirkzeit und die Trocknungszeit der Beschichtungen. Bei der Durchführung dieses Verfahrens ist es wichtig zu beachten, dass sich die DNA in Wasser löst und der saure Tee tatsächlich die elektronischen Eigenschaften des PANI verändert.Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man wasserdispergiertes Polyanilin synthetisieren und seine fluoreszierenden Eigenschaften zur Detektion von Nukleinsäuren nutzen kann. Sie werden in der Lage sein, Sonden-DNAs zu immobilisieren und Hybridisierungen durchzuführen, um Zielstrukturen nachzuweisen. Bei der Arbeit mit dem Monomer ist es wichtig, sich daran zu erinnern, dass diese Synthese gefährlich ist und in einer Abzugshaube unter Verwendung von Schutzausrüstung wie Schutzbrille, Handschuhen und Laborkitteln durchgeführt werden sollte.

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Technik Molekulare Erkennung mit Bio-Mimetikum Polymers auf einwandigen Kohlenstoff-Nanoröhrchen

Dabei berichten wir über eine neue Methode, um Protein-Protein-Interaktionen mit Hilfe eines conductimetric Biosensors basierend auf die β-Lactamase-Hybridtechnologie zu studieren. Diese Methode beruht auf der Freisetzung von Protonen bei der Hydrolyse des β--Lactame.

Die Verwendung eines β-Lactamase-basierte Conductimetric Biosensor-Assays, biomolekulare Wechselwirkungen zu erkennen

Ein Protokoll für die Entwicklung der eine elektrochemische DNA-Biosensor bestehend aus eine Polymilchsäure Säure stabilisiert, gold-Nanopartikeln modifiziert, Siebdruck kohlenstoffelektrode Vibrio Parahaemolyticus erkennen wird vorgestellt.

Entwicklung der eine elektrochemische DNA-Biosensor, einem Foodborne Krankheitserreger zu erkennen

Dieses Protokoll beschreibt die Herstellung einer kleinen, Ready-to-Use Kassette, die für die visuelle Erkennung von mehreren Nukleinsäuren in einem Einzeltest können, die einfach angewendet werden zu bedienen ist. Bei diesem Ansatz wurde ein Kapillar Array für multiplex und hocheffiziente Nachweis von GVO Ziele verwendet.

Visuelle Erkennung von mehreren Nukleinsäuren in einem Kapillar Array

Hier berichten wir über das Protokoll für die Herstellung von einer Nafion-beschichtet, Polyaniline funktionalisiert, elektrochemisch reduzierte Graphene Oxid Chemiresistive Mikro pH-Sensor. Diese Chemiresistor-basierte, Solid-State-Mikro-pH-Sensor erkennt pH-Wert-Änderungen in Echtzeit während Lactococcus Lactis Fermentationsprozess.

Herstellung von Nafion-beschichtet, reduziert Graphene Oxid/Polyaniline Chemiresistive Sensor Monitor pH in Echtzeit während der mikrobiellen Fermentation

Hier beschreiben wir ein Protokoll zur Erstellung diskreter und genauer anorganischer Nanostrukturen auf Substraten, die DNA-Origami-Formen als Leitmotive verwenden. Die Methode wird durch die Erstellung von plasmonischen Gold-Bowtie-förmigen Antennen auf einem transparenten Substrat (Saphir) demonstriert.

DNA Origami-vermittelte Substrat Nanomusterung von anorganischen Strukturen für Sensoranwendungen

Die DNAzyme-basierten Nanomaschinen können für den hochselektiven und sensitiven Nachweis von Nukleinsäuren eingesetzt werden. Dieser Artikel beschreibt ein detailliertes Protokoll für das Design von DNAzym-basierten Nanomaschinen mit einem 10-23-Kern unter Verwendung freier Software und deren Anwendung am Beispiel der Detektion eines Epstein-Barr-Virusfragments.

DNAzyme 10-23 - basierte Nanomaschinen zur Nukleinsäureerkennung

Erfahren Sie die markierungsfreie Detektion von Nukleinsäuren mit Polyanilin für biotechnologische Diagnostik. Diese kostengünstige Methode ermöglicht die Unterscheidung einzelner Nukleotide ohne enzymatische Manipulation.

Ein Polyanilin basierenden Sensor von Nucleic Acids

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