Modifizierung und Anwendung eines Laubbläser-vac für Feld Probenahme von Arthropoden
August 10th, 2016
Beurteilung der Arthropoden Fülle in Kulturen ist von entscheidender Bedeutung für die Populationsdynamik zu untersuchen und Interaktionen zwischen den Arten. Hier haben wir die Änderung und Anwendung eines Laubbläser-vac für die Absaugung Probenahme von Arthropoden in Reis zu beschreiben.
Die Bewertung der Abundanz von Arthropoden in Kulturpflanzen ist entscheidend für die Untersuchung der Populationsdynamik von Arten und der Artinteraktionen. Es ist jedoch eine Herausforderung, zuverlässige Populationsschätzungen zu erhalten, die die tatsächlichen Häufigkeiten von Arthropoden in diesem Feld widerspiegeln. Hier beschreiben wir die Modifikation und Anwendung eines Laubbläser-Vakuums zur Saugprobenahme von Arthropoden in Reis.
Im ersten Abschnitt dieses Videos erklären wir Ihnen die schrittweise Modifikation eines Laubbläser-Saugers für die Saugprobenahme. Im zweiten Teil erklären wir Ihnen, wie Sie den Gebläse-Vac-Probenehmer vor Ort einsetzen. Im dritten Teil zeigen wir die Ergebnisse der Probenahme.
Zuerst müssen wir alle Teile sammeln, die für die Modifikation notwendig sind. Für dieses Video haben wir einen Oleo-Mac BV300 Laubbläser-Sauger verwendet, der im Handel erhältlich ist. Das erste PVC-Rohr hat einen Durchmesser von 110 mm und wird an den Gebläse-Sauger angeschlossen.
PVC-Rohr zwei ist ein Standardrohr mit einem Durchmesser von 110 mm und wird verwendet, um PVC-Rohr eins mit PVC-Rohr drei zu verbinden, wodurch der Rohrdurchmesser von 110 mm auf 50 mm reduziert wird. PVC-Rohr vier ist ein Standardrohr mit einem Durchmesser von 50 mm und wird zum Verbinden von PVC-Rohren drei und fünf verwendet. Durch das fünfte PVC-Rohr wird der Rohrdurchmesser weiter auf 32 mm reduziert.
Das PVC-Rohr sechs vergrößert den Durchmesser des Mundteils von 32 mm auf 63 mm. Das PVC-Rohr sieben ist ein Standardrohr mit einem Durchmesser von 63 mm, das die Saugöffnung der Maschine bildet. Das Ende dieses Rohres wird mit dem Schlauch verbunden.
Der Schlauch sollte dem Durchmesser von Rohr fünf und sechs entsprechen und etwa einen Meter lang sein. Er sollte mit Metall verstärkt werden, da er der erheblichen Saugkraft des Gebläse-Saugers standhalten muss. Die erste Metallschlauchschelle wird verwendet, um den Schlauch an Rohr fünf zu befestigen.
Eine zweite Schlauchschelle aus Metall wird verwendet, um den Schlauch am Mundteil zu befestigen. Eine Metallgaze wird verwendet, um zu verhindern, dass Material in die Maschine gesaugt wird. Die Verbindung zwischen den PVC-Rohren und dem Schlauch wird mit Gewindedichtband abgedichtet.
PVC-Kleber wird verwendet, um die PVC-Rohre zu verbinden. Zum Schluss werden noch drei Schrauben benötigt, um die Rohre mit der Maschine zu verbinden. Denken Sie daran, dass je nach Art der Maschine, die Sie verwenden, eine andere Größe des PVC-Rohrs benötigt werden kann.
Möglicherweise müssen dann die anderen Rohre entsprechend ausgetauscht werden. Wichtig hierbei ist, dass sich der Außendurchmesser des offenen Rohrendes nahtlos in den Innendurchmesser des Saugmunds der Maschine einfügt, um eine optimale Leistung zu erzielen. Des Weiteren sollte der Durchmesser von Rohr sieben weder zu groß noch zu klein sein.
Ein zu großes Rohr verringert die Saugleistung. Ein zu kleines Rohr verringert die Probenahmeeffizienz aufgrund der kleineren Probenahmefläche. Nachdem wir nun alle Teile gesammelt haben, können wir mit dem Zusammenbau des Gebläse-Saug-Probenehmers beginnen.
Nehmen Sie die Rohre, den UPVC-Kleber und das Gewindedichtungsband. Reinigen Sie alle Oberflächen, die verklebt werden müssen. Verbinden Sie Rohr eins mit Rohr zwei, indem Sie eine dünne Schicht Klebstoff auf den inneren Teil des ersten Rohrs und eine dicke Schicht Klebstoff auf den äußeren Teil des zweiten Rohrs auftragen.
Der Lautsprecher pausiert sechs Sekunden*Führe dann sofort nach dem Hinzufügen des Klebers das zweite Rohr in das erste Rohr ein und entferne überschüssigen Kleber. Verbinden Sie als Nächstes Rohr zwei mit drei, indem Sie den Kleber auf ähnliche Weise hinzufügen, und führen Sie Rohr zwei in Rohr drei ein. Lautsprecher pausiert 10 Sekunden*Wiederholen Sie diese Schritte, um Rohr drei auf vier, Rohr vier auf fünf und Rohr sechs auf sieben zu verbinden und lassen Sie den Kleber trocknen.
Das Ergebnis sollte wie folgt aussehen. Jetzt können Sie die Rohre eins bis fünf an den Laubbläser-Sauger anschließen. Stecken Sie das offene Ende des ersten Rohrs in den Einlass des Laubbläser-Saugers.
Stellen Sie sicher, dass das Rohr den Lüfter nicht berührt. Bohren Sie drei gleichmäßig verteilte Löcher durch die Maschine und das Rohr. Etwa fünf Millimeter vom Verbindungsrand entfernt und das Rohr mit drei Schrauben an der Maschine befestigen.
Verwenden Sie keinen Klebstoff, um das PVC-Rohr mit der Maschine zu verbinden, da Sie es öffnen können sollten, um den Lüfter zu reinigen. Jetzt können wir den Schlauch anschließen. Legen Sie zunächst Gewindedichtband an die offenen Enden des Rohrs fünf und sechs, um eine nahtlose Verbindung zwischen den Rohren und dem Schlauch herzustellen.
Verbinden Sie dann den Schlauch mit der Metall-Schlauchschelle mit dem Rohrende fünf. Decken Sie das sechste Rohrende mit dem Stück Metallgaze ab und verbinden Sie den Schlauch mit dem sechsten Rohrende, während Sie die Metallgaze an Ort und Stelle halten. Die Metallgaze in der Saugöffnung verhindert das Eindringen von Schmutz in die Maschine.
Der Gebläse-Vac-Probenehmer ist nun einsatzbereit. Bevor Sie es jedoch verwenden, prüfen Sie zunächst, ob alle Verbindungen fest sitzen. Der zweite Schritt besteht darin, die Probenahmekabine vorzubereiten.
Nehmen Sie einen 50-Liter-Eimer mit einem Bodendurchmesser von 40 cm und entfernen Sie den Boden. Die untere Fläche wird etwa einen Achtel Quadratmeter betragen. Befestigen Sie eine Nylon-Netzhülle mit einer Länge von etwa einem Meter mit einem Gummiband an der Oberseite des Eimers.
Nach der Assemblage kann der Gebläse-Vac-Probenehmer für die Probenahme von Arthropoden im Feld verwendet werden. Am Untersuchungsort angekommen, können Sie die Maschine starten. Bei laufender Maschine können Sie ein Probenahmenetz in das Mundteil einführen und mit einem Gummiband sichern.
Der Lautsprecher pausiert fünf Sekunden*Jetzt, da die Maschine einsatzbereit ist, kann eine andere Person das Gehäuse abrupt über die Pflanzen des Probenahmeortes legen. Stellen Sie sicher, dass die Hülle geschlossen ist, um zu verhindern, dass Gliederfüßer aus dem oberen Teil des Geheges entweichen. Drücke den Boden des Eimers fest in die Erde, damit keine Gliederfüßer aus dem Boden des Geheges entkommen können.
Entfernen Sie alle Gliederfüßer spiralförmig von oben nach unten aus dem Gehege, um eine standardisierte Probenahmedauer zu gewährleisten. Die Probenahmezeit sollte an die Größe, Struktur und Pflanzdichte der Pflanze angepasst werden, um ein ähnliches Effizienzniveau zu gewährleisten. Die Wirksamkeit der Probenahme sollte nach der Probenahme durch eine sorgfältige amtliche Kontrolle des geschlossenen Bereichs überprüft werden.
Der Lautsprecher pausiert vier Sekunden*Nachdem Sie die Probe beendet haben, entfernen Sie das Gummiband vom Probenahmenetz, schließen Sie das Netz schnell und nehmen Sie es aus dem Mundteil des Gebläsesaugers, während Sie das Gerät laufen lassen, um ein Entweichen von Arthropoden zu verhindern. Das Probenahmenetz kann mit einem Knoten oder mit einem Gummiband verschlossen werden. Lautsprecher pausiert 10 Sekunden*Sobald die Probe sicher gesichert ist, kann die nächste Probe entnommen werden.
Wir führten acht Proben in einem Reisfeld im Reifestadium mit einer Probenahmedauer von drei Minuten durch. Bei der amtlichen Inspektion nach jeder Probenentnahme wurden keine Arthropoden im Gehege gefunden. Insgesamt wurden 298 Gliederfüßer aus acht Ordnungen gesammelt.
Die durchschnittliche Anzahl der Individuen pro Probe betrug 37 vier. Die drei dominantesten Ordnungen sind Hemiptera, Araneae und Diptera. In jeder Probe wurde unsere dreiminütige Stichprobe in sechs Unterproben von je 30 Sekunden aufgeteilt.
Die ersten 30 Sekunden ergaben mehr als die Hälfte der Gesamtzahl der Individuen. Nach zweiminütiger Probenahme betrug die relative Ausbeute in Prozent der nach drei Minuten gesammelten Anzahl 92,4 %Nach zweieinhalb Minuten betrug die relative Ausbeute 97,3 %Zusammenfassend lässt sich sagen, dass die hier beschriebene Modifikation des Gebläse-Vacs leicht durchzuführen ist. Einfach im Feld zu bedienen und unsere Ergebnisse zeigen, dass der Gebläse-Vac-Probenehmer effizient ist.
Dies ermöglicht es uns, zuverlässige Populationsschätzungen zu erhalten, die die tatsächlichen Häufigkeiten von Arthropoden in Reisfeldern widerspiegeln. Vielen Dank fürs Zuschauen und viel Glück beim Bau Ihres eigenen Gebläse-Staubsaugers.
Übersicht
Dieser Artikel bespricht die Bedeutung der Bewertung der Häufigkeit von Arthropoden in Nutzpflanzen, um die Populationsdynamik und Arteninteraktionen zu verstehen. Er beschreibt die Modifikation und Anwendung eines Laubbläser-Vakuums für die effektive Absaugprobe von Arthropoden im Reis.
Hauptkomponenten der Studie
Wissenschaftsbereich
- Entomologie
- Agrarwissenschaft
- Ökologie
Hintergrund
- Zuverlässige Populationsschätzungen von Arthropoden sind für ökologische Studien unerlässlich.
- Es gibt Herausforderungen bei der genauen Probenahme von Arthropodenpopulationen im Feld.
- Die Modifikation bestehender Werkzeuge kann die Probenahmeeffizienz verbessern.
- Laubbläser-Vakuums können für die Absaugprobe angepasst werden.
Zweck der Studie
- Die Modifikation eines Laubbläser-Vakuums für die Arthropodenprobenahme zu demonstrieren.
- Eine Schritt-für-Schritt-Anleitung für die Verwendung des modifizierten Geräts im Feld bereitzustellen.
- Die Ergebnisse der Arthropodenprobenahme mit dieser Methode zu präsentieren.
Verwendete Methoden
- Modifikation eines kommerziell erhältlichen Laubbläser-Vakuums.
- Zusammenbau von PVC-Rohren zur Erstellung eines Saugsamplers.
- Feldanwendung des Laubbläser-Vakuums für die Arthropodenkollektion.
- Standardisierte Probenahmetechniken zur Sicherstellung der Effizienz.
Hauptergebnisse
- Das modifizierte Laubbläser-Vakuum saugte Arthropoden effektiv in Reisfeldern ab.
- Die Probenahmeeffizienz wurde durch sorgfältige Montage und Technik aufrechterhalten.
- Die Ergebnisse demonstrierten die Machbarkeit der Verwendung dieser Methode für ökologische Studien.
- Feldtests bestätigten die Zuverlässigkeit des Probenahmeprozesses.
Schlussfolgerungen
- Die Modifikation von Laubbläser-Vakuums ist eine praktikable Methode für die Arthropodenprobenahme.
- Dieser Ansatz kann die Genauigkeit von Populationsschätzungen in der ökologischen Forschung verbessern.
- Zukünftige Studien können auf dieser Methode für verschiedene landwirtschaftliche Umgebungen aufbauen.
Häufig gestellte Fragen
Executive Industry Relevance
Accurate quantification of arthropod populations in agricultural systems supports target validation in agrochemical discovery by enabling mechanistic de-risking of pest control strategies. Reliable field sampling methods improve predictive confidence in early-stage screening by providing disease-relevant system data for phenotypic assays. This approach facilitates translational biomarker alignment and preclinical model development for sustainable crop protection solutions.
Strategic Applications in Biopharma R&D
Early Discovery & Target Validation
- Scientific Value: Enables interrogation of therapeutic hypotheses through absolute population estimates of arthropods per standardized area.
- Operational Value: Supports biological de-risking by providing quantitative data on species interactions in rice field ecosystems.
- Predictive Value: Enhances target confidence by delivering reproducible abundance measurements for pathway clarification studies.
Screening & Assay Development
- Scientific Value: Prepares validated biological systems for downstream workflows through standardized suction sampling of arthropod communities.
- Operational Value: Ensures assay standardization and reproducibility via controlled sampling duration and enclosure techniques.
- Scalability: Facilitates platform reuse and screening readiness with low-cost, easily constructed sampling devices.
Translational & Preclinical Research
- Scientific Value: Supports disease-relevant system modeling by enabling sampling of arthropods on water surfaces and soil in paddies.
- Operational Value: Provides continuity from discovery through preclinical validation with field-tested sampling efficiency benchmarks.
- Risk Mitigation: Informs risk-adjusted advancement decisions by establishing sampling duration thresholds for >90% population capture.
Pipeline & Workflow Integration
The method integrates into discovery biology workflows by enabling hypothesis testing and pathway clarification through quantitative arthropod abundance data.
- Discovery Biology: Supports hypothesis testing and biological de-risking via absolute population estimates in standardized enclosures.
- Screening: Delivers assay readiness through reproducible suction sampling with measurable efficiency curves over time.
- Analytics: Provides quantitative dependent variable measurements (arthropod counts per sample) enabling condition comparison and statistical analysis.
- Translational Research: Connects to preclinical continuity through disease-relevant arthropod sampling in rice paddies.
- Enterprise Reuse: Functions as a scalable, low-cost capability for repeated field sampling across multiple study sites.
Operational & Enterprise Impact
- Scientific Value: Predictive confidence through reliable population estimates that reflect true field abundances.
- Operational Value: Standardization and reproducibility via fixed sampling durations and enclosure protocols.
- Strategic Value: Better go/no-go decisions by reducing mechanistic ambiguity in arthropod-mediated crop damage models.
- Portfolio Impact: Risk-adjusted prioritization through quantitative screening of arthropod community responses to interventions.
Implementation Considerations
- Requires expertise in entomological field methods and equipment assembly.
- Needs PVC piping, leaf blower-vac units, metal clamps, hose, gauze, and sealing materials.
- Demands cross-team standardization of sampling duration and enclosure setup for reproducible results.
- Requires adaptation considerations for different crop structures, plant densities, and target arthropod mobility.
- Limited suitability for fast-flying insects such as Odonata or large parasitoids, per source constraints.
