11. November 2016
Hier beschreiben wir Einstellungen, um die zirkadiane Biolumineszenz und die sekretorische Aktivität von menschlichen Inselzellen und primären Myotuben parallel zu überwachen. Zu diesem Zweck verwendeten wir die lentivirale Genverabreichung eines Luciferase-Kernuhrreporters, gefolgt von einer in vitro Synchronisation und Sammlung des Ausflussmediums durch kontinuierliche Zellperifusion
.Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens ist die parallele Beurteilung der zirkadianen Biolumineszenz und der sekretorischen Aktivität von humanen primären endokrinen Zellen, die en vitro kultiviert und synchronisiert werden. Diese Methode kann helfen, das zeitliche Muster der Zellsekretion zu untersuchen und wie es durch zellautonome zirkadiane Uhren reguliert werden kann. Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass sie es uns ermöglicht, die zirkadianen Luciferine als Reporteraktivität zu überwachen und gleichzeitig das Ausflussmedium zu sammeln, um die Spiegel der sezernierten Hormone und Myokine zu messen. Um zirkadiane Biolumineszenz-Reporter durch lentivirale Transduktion in die Primärzellen einzuführen, werden zunächst die 3,5 cm großen Petrischalen mit humanen Myoblasten mit einer Konfluenz von 30 % bis 50 % in einen Laminar-Flow-Schrank überführt. Ersetzen Sie das humane Myoblastenmedium durch 2 ml Wachstumsmedium. Transduzieren Sie dann die primäre Zellkultur, indem Sie Lentiviruslösung in die Schale pipettieren, um eine Infektionsvielfalt von gleich drei zu erhalten. Inkubieren Sie die Zellen über Nacht in einem Gewebekultur-Inkubator. Wechseln Sie am nächsten Tag das Medium. Um eine En-vitro-Synchronisation zu erreichen, fügen Sie 10 mikromolare Adenylylcyclase-Aktivatoren in 2 ml Medium pro 3,5 cm Petrischale hinzu, die die zuvor transfizierten Primärzellen enthält. Inkubieren Sie die Zellen 60 Minuten lang bei 37
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Diese Studie beschreibt Methoden zur Überwachung der zirkadianen Biolumineszenz neben der sekretorischen Aktivität menschlicher Inselzellen und primärer Myotuben. Der Ansatz beinhaltet die lentivirale Genübertragung eines Luciferase-Core-Clock-Reporters, gefolgt von der In-vitro-Synchronisation und kontinuierlichen Zellperifusion zur Mediumsammlung.
Parallel measurement of circadian clock gene expression and hormone secretion in human primary cell cultures enables direct interrogation of temporal regulation in human endocrine and muscle systems. This approach enhances predictive confidence in target validation by linking molecular circadian oscillators to functional secretory outputs. Integrating these measurements at the discovery stage supports risk-adjusted advancement of metabolic and chronobiology programs across the portfolio.
This method bridges early discovery and preclinical research by enabling hypothesis testing of circadian regulation in human primary cells, supporting both target validation and translational continuity.