Name: Generation of Murine Monoclonal Antibodies by Hybridomtechnologie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-02T12:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 42 s
Description: Lernen Sie die Hybridomtechnologie zur Erzeugung monoklonaler Antikörper in Mäusen. Diese Methode ermöglicht die Herstellung spezifischer Binder für die Biomoleküldetektion und biotechnologische Anwendungen.

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Die Autoren danken dem Bundesministerium für Bildung und Forschung (BMBF, Förderkennzeichen: 03IPT7030X, 03IPT703A und 03IP703) für die Finanzierung unserer Projekte "Künstliche Immunreaktionen", "Kameliden-Antikörper" und "Antikörpertechnologien". Wir danken Prof. Burkhard Micheel für das Korrekturlesen des Manuskripts und für die hilfreichen Kommentare.

Balb / c oder NMRI - Mäuse (Mus musculus) aus unserer Brutkolonie an der Universität Potsdam (Potsdam, Deutschland) wurden für die Herstellung von monoklonalen Antikörpern verwendet. Das Tier Arbeit wurde nach den einschlägigen nationalen und internationalen Richtlinien durchgeführt. Die Studie wurde von dem Brandenburger Ministerium für Umwelt, Gesundheit und Verbraucherschutz (Referenznummer V3-2347-A16-4-2012) zugelassen. 1. Herstellung von Immunkonjugaten <ol><li> Zur Kopplung des Antigens an einen Träger, verwenden Standard - Kopplungsprotokolle über amino-, Carboxy- oder Sulfo-Gruppen, wie zum Beispiel durch Glutaraldehyd, N - (3-dimethylaminopropyl) - N -ethylcarbodiimide (EDC) oder N - [y-Maleimidobutyryloxy ] succinimidester (sulfo-GMBS). </li><li> Zur Kopplung (beispielsweise mit Glutaraldehyd) 13 verwenden , das Zielprotein oder Peptid und dem Träger (Ovalbumin, Rinderserumalbumin oder keyhole limpet hemocyanin) in einem 1: 1 - Verhältnis. Verdünnen Sie die Ziel protein oder Peptid in phosphatgepufferter Salzlösung (PBS) und das Trägerprotein in 50 mM NaHCO 3 -Puffer. Passen Sie die Lautstärke und die Konzentration auf die Menge, die für Immunisierungen. <ol><li> Das Vermischen der beiden Lösungen und fügen 1,25% Glutaraldehyd. Mischen und Inkubation der Probe für 4 Stunden bei Raumtemperatur (RT). Um die Hybridomzellen wählen, machen den gleichen Immunkonjugat, aber mit einem anderen Träger, um die Auswahl von unspezifischen Träger Bindemittel zu vermeiden. </li></ol></li><li> Dialysiere die Kupplung Probe durch eine schnelle Dialyse mit kommerziellen groben Harz durchführen (zB Sephadex G25). <ol><li> Perforieren den Boden einer 1,5-ml-Reaktionsgefäß mit einer Hohlnadel und legen Sie sie in einem Rohr 15 mL. Setzen Glaswolle in den Boden zum Abdichten und decken Sie es mit 300 mg groben Harz (bis zur Eichmarke von 0,5 ml). </li><li> Vorsichtig setzen 1 ml PBS tropfenweise in einem Reaktionsröhrchen 1,5 ml und stellen Sie sicher, dass die Glaswolle noch die Perforation dichtet. Lassen Sie das Grob Harz sgut und Zentrifuge die Säule bei 500 × g für 2 min. Eine solche Säule kann verwendet werden, 200 &amp; mgr; l des Kopplungsprobe dialysieren. Für größere Mengen, mehr Spalten machen. </li><li> Ändern Sie den Schlauch und legen Sie die Kupplungslösung auf den gequollenen groben Harz. Zentrifuge wieder bei 500 × g für 2 min. Entfernen Sie das Eluens aus der Tube und verwenden Sie es für die Immunisierung. </li></ol></li></ol> 2. Immunisierung von Tieren <ol><li> Wählen zwei oder drei 6- bis 12 Wochen alte Balb / c-Mäuse für die Immunisierung. </li><li> Für ein Tier, bereiten 150-200 ug des Immunkonjugat in 200 ul PBS und mischen Sie es mit 100 &amp; mgr; l der vollständigen Freund&#39;s Adjuvans (CFA). Mischen Sie die Lösung 3 mal mit einem kurzen und dünnen Nadel (0,6 mm Durchmesser) auf einer 1-ml-Spritze. Injizieren Sie die Lösung intraperitoneal in die Maus. </li><li> Geben Sie eine Booster-Injektion 6 Wochen später mit der gleichen Menge der Immunkonjugat, aber ohne CFA. Nehmen Sie Blut 7 Tage später zurück (aus dem retroorbitalen Sinus) und prepare Serum durch das Blut inkubiert wird für 3 bis 4 Stunden bei Raumtemperatur (RT). <ol><li> Zentrifugieren der Mischung bei 3000 × g für 5 min. Nehmen Sie die Serumüberstand und gibt sie in eine neue Röhre. Bewahren Sie es bei -20 ° C. Entsorgen Sie das Pellet. </li></ol></li><li> Analysieren Sie den Seren über ELISA, wie in Schritt 3 beschrieben Für Fusion, wählen Sie die Maus mit dem höchsten Serumtiter. </li><li> In der Vorbereitung für die Zellfusion, erhöhen Sie die Maus mit 150-200 ug des Immunkonjugat in 300 &amp; mgr; l PBS ohne Adjuvans nur 4 Tage vor der Fusion. </li></ol> 3. ELISA <ol><li> Bereiten Sie eine Antigen-Lösung mit einer Konzentration von 5 ug / ml in PBS und Transfer 50 ul in jedes ELISA Vertiefung einer 96-Well-Platte. </li><li> Inkubieren der Platte für 2 h bei 37 ° C oder über Nacht bei 4 ° C in einer feuchten Kammer. </li><li> Waschen Sie die Platte 3-mal mit Leitungswasser. Blockieren die Vertiefungen mit 80 ul PBS / 5% Neugeborenenkälberserum (NCS) pro Vertiefung für 1 h bei RT in einer feuchten chBernstein. Bereiten Sie die Serumverdünnungen in einem 1: 5-Serie mit 01.50 beginnen. Für die Analyse der Zellkultur, verwenden Sie den unverdünnten Kulturüberstand. </li><li> Waschen Sie die Platte 3-mal mit Leitungswasser. Je 50 ul der Probe pro Vertiefung und in einer feuchten Kammer für 1 h bei RT inkubiert. Vorbereiten des sekundären Antikörperlösung in einer 1: 5000-Verdünnung eines Ziege-anti-Maus-IgG-Antikörper, konjugiert an Meerrettich-Peroxidase (HRP). </li><li> Waschen Sie die Platte 3-mal mit Leitungswasser und 50 &amp; mgr; l des sekundären Antikörperlösung pro Vertiefung. Inkubieren für 45 min bei RT in einer feuchten Kammer. </li><li> Eine frische Substratlösung. Machen Stammlösungen von 0,1 M NaH 2 PO 4 und 0,1% Wasserstoffperoxid. Nehmen Sie 5 Teile NaH 2 PO 4, 4 Teile Wasserstoffperoxid und 1 Teil Tetramethylbenzidin für die frische Substratlösung. <ol><li> Waschen Sie die Platte 10-mal mit Leitungswasser. Je 50 ml frisches Substratlösung in die Vertiefungen und Inkubation 5 - 10 min in derdunkel. </li></ol></li><li> Stoppen Sie die Reaktion mit 50 &amp; mgr; l 1 MH 2 SO 4 pro Vertiefung. Mit Hilfe eines Plattenlesegerät, messen die optische Dichte bei 450 nm mit einer Referenzwellenlänge von 630 nm. </li></ol> 4. Herstellung von Zellkulturen Myeloma <ol><li> Von nun an führen alle Arbeiten unter sterilen Bedingungen. </li><li> Bereiten Sie ein frisches Kulturmedium für die Zellkultivierung. Supplement 500 ml RPMI1640 mit 10% fötalem Kälberserum (50 ml), 2 mM L-Glutamin (5 ml) und 50 uM Mercaptoethanol (5 ml). Ersetzen Sie den Glutamin alle 7 Tage. </li><li> Tauen Sie ein Fläschchen mit murinen SP2 / 0-Zellen in warmem Wasser. Übertragung der Zelllösung in 10 ml frisches Kulturmedium und zentrifugieren für 10 min bei 200 x g. Überstand verwerfen und das Pellet in 1 ml frischem Kulturmedium. </li><li> Übertragen , um die Zellen in einem 25 cm 2 -Kolben und inkubieren bei 37 ° C und 5% CO 2 in einem Inkubator. Erweitern Sie die Zellen auf zwei 75-m 2 Flaschen befErz-Fusion. Konservieren Aliquots für die Langzeitlagerung, wie in Schritt 7 beschrieben. </li></ol> 5. Herstellung von Feeder-Zellen <ol><li> Opfere eine 12 Wochen alte NMRI Maus (nach nationalen und institutionellen Richtlinien, zB durch CO 2 Inhalation). Entfernen Sie das Fell und reinigen Sie den Bauch mit 70% Ethanol. </li><li> Injizieren von 5 ml eiskaltem RPMI-Medium in den Bauch massieren den Bauch mit einer Pinzette und absaugen Feeder-Zellsuspension. Legen Sie die Zellen in einem leeren 50-ml-Röhrchen. Führen Sie diesen Schritt noch einmal. 7 bis 10 ml der Zellsuspension feeder sollte abgerufen werden. </li><li> Bereiten einen 100 ml-Feeder-Zellsuspension durch Zugabe von 90 mL Vollzellkulturmedium (RPMI 1640, 10% fötales Kälberserum, 2 mM Glutamin und 50 uM Mercaptoethanol). Mischen Sie es und dann 100 &amp; mgr; l / Vertiefung in 10 x 96-Well-Zellkulturplatten. Inkubieren der Platten über Nacht bei 37 ° C und 5% CO 2 in einem Inkubator. </li></ol> 6. Zellfusion<ol><li> Sacrifice der immunisierten Maus durch Genickbruch oder CO 2 Inhalation und auszuschneiden die Milz 14. Nehmen zusätzliche Blut aus dem Herzen und bereiten die Serum, wie in Schritt 2.3 als Positivkontrolle im ELISA beschrieben. </li><li> Bereiten Sie eine Milz-Zellsuspension durch die Milz durch eine Zelle Sieb drücken. Füllen Sie bis zu 20 ml mit Vollzellkulturmedium. Ernte der Zellen in 50-ml-Röhrchen durch Zentrifugation (200 xg, 10 min und 4 ° C). Überstand verwerfen. </li><li> Spülen der Zellkulturflasche und Ernte der myeloma Zellen durch Zentrifugation (200 xg, 10 min und 4 ° C) und den Überstand zu verwerfen. </li><li> Resuspension der Zellpellets in 20 ml balanced salt Puffer (BSS) (125 mM NaCl, 5 mM KCl, 4 mM CaCl 2, 2,5 mM MgCl 2 und 5 mM Tris-HCl; pH 7,4) und erneut zentrifugieren. Wiederholen der Waschschritte dreimal. </li><li> Zur Einstellung des Splenozyten-: Myelom-Zellverhältnis, zählen die Zellen nach dem zweiten Waschschritt durch Tannest Resuspendieren des Pellets in 1 ml BSS-Puffer. Machen Sie eine Verdünnung von 1:10 und Transfer 10 ul in eine Zelle Zählkammer. Zählen Sie die Zellen und bestimmen die Zellkonzentration in 1 ml. </li><li> Stellen Sie die Zellzahlen in den BSS-Puffer bis drei Teilen Splenozyten und einteiliger Myelomzellen in einem 1 ml Endvolumen. Nehmen Sie 200 ul der Zellsuspension und mischen Sie es mit 200 ul PEG8000 (1 g in 4 ml BSS-Puffer). Übertragen Sie die 400 &amp; mgr; l in eine Elektroporationsküvette mit einem Durchmesser von 2 mm und stellen Sie den Puls (600-650 V und 25 ms). <ol><li> Nach dem Puls der Zellen bei RT für 3 min in der Küvette inkubiert. Entfernen Sie die Zellen und legte sie tropfenweise in einen Erlenmeyerkolben mit 100 ml HAT-Medium (RPMI 1640, 10% FCS, 2 mM Glutamin, 50 uM Mercaptoethanol, 100 uM Hypoxanthin, 5,8 uM Azaserin und 16 uM Thymidin). </li><li> Wiederholen Sie die Fusion 4-mal, bis die 1-ml-Charge ausgegeben wird. Inkubieren den Erlenmeyerkolben für 3 h bei 37 ° C und 5% CO 2in einem Inkubator. </li></ol></li><li> Ergänzen Sie die Zellsuspension erneut mit Hypoxanthin, Azaserin und Thymidin, bevor sie die Zellen auf den Feeder-Layer-Beschichtung. Füge 100 &amp; mgr; l der Zellsuspension pro Vertiefung auf die Feeder - Schicht - Platten und Inkubation der Platten bei 37 ° C und 5% CO 2 (in einem Inkubator). Die endgültige Konzentration innerhalb des Bohrlochs sollte 100 uM Hypoxanthin, 5,8 uM Azaserin und 16 uM Thymidin sein. </li><li> Durchführen einer mikroskopischen Untersuchung (Vergrßerung: 10fach Objektivlinse, 10X Okular) für klonale Wachstum in jeder Vertiefung der Platte nach 7 Tagen, um zu bestimmen, ob die Vertiefungen mono- oder polyklonalen sind. Monoklonale Zellen sind eine Gruppe von Zellen, die aus einer einzigen Zelle stammen. Polyklonalen Zellen sind mehrere Cluster von Zellen in einem gut. Ändern Sie den kompletten Medien nach 7 Tagen und Inkubation wieder für 7 Tage im HAT-Medium. </li><li> Ändern Sie das HAT-Medium und pflegen die Zellen in Vollzellkulturmedium. Verwenden Sie den Überstand eine E auszuführenLISA, wie in Schritt 3. Positive Hybridomzellen beschrieben müssen in 24-Well-Platten expandiert werden nach den Tests für die Produktion von spezifischen Antikörpern. Wenn die Zellen polyklonal sind, hat eine begrenzte Verdünnung durchgeführt werden (beschrieben in Stufe 8). </li></ol> 7. Kryokonservierung von Hybridome <ol><li> Cryoconserve positive mono- und polyklonalen Hybridome für die Langzeitlagerung. Ernte der Zellen aus einer 24-Well-Platte mit einer Konfluenz von&gt; 60% durch Zentrifugation (200 xg, 10 min und 4 ° C). </li><li> Das Pellet in 500 &amp; mgr; l Vollzellkulturmedien und gibt sie in eine Kryoröhrchen. In 500 &amp; mgr; l Gefriermedium (RPMI 1640, 20% FCS und 15% Dimethylsulfoxid), mischen Sie es und steckte es in eine Styropor-Box oder einem speziellen Gefrierkasten. Bei -80 ° C für 3 Tage. Nach 3 Tagen kann die Kryoröhrchen für langfristige Lagerung in flüssigen Stickstoff überführt werden. </li></ol> 8. Begrenzung Verdünnung von polyklonalen Hybridome <ol><li> Makea feeder layer Kultur, wie 5. Ernte positive polyklonale Zellen in Schritt beschrieben ist, wie in Schritt 7.1 beschrieben. Zählen Sie die Zellen, wie in Schritt 6.5, und stellen Sie die Zellzahl auf 10 Zellen / ml, mit einem Endvolumen von 10 ml für eine 96-Well-Platte. 100 l / Vertiefung auf die Feeder-Schicht. </li><li> Inkubieren für 7 Tage bei 37 ° C und analysieren die Klonwachstum mikroskopisch (Vergrößerung: 10x Objektivlinse, 10x Okular). Machen Sie einen ELISA von dem Kulturüberstand, wie in Schritt 3 beschrieben, und identifizieren die geeigneten monoklonalen Hybridome für die Massenkultur. </li></ol> 9. Massenkultur und Aufreinigung von monoklonalen Antikörpern <ol><li> Übertragung der monoklonalen Hybridome mit den entsprechenden ELISA - Signale bis 25 cm 2 oder 75 cm 2 -Kolben und sammeln , um 500 ml des Kulturüberstand auf. Testen Sie die Kultur wöchentlich für spezifische Antikörperproduktion und zur Erhaltung 3-5 Aliquots pro Hybridom für die Langzeitlagerung, wie in Schritt 7 beschrieben. </li><li&gt; Centrifuge der Kulturüberstand bei 4.900 xg und 4 ° C für 15 min und durch ein 0,45-um-Filter gefiltert werden. Mischen Sie den Überstand mit Bindungspuffer (4 M NaCl und 2 M Glycin-NaOH, pH 8,9) in einem 3: 1-Verhältnis. </li><li> Bereiten Sie eine Protein - A - Säule durch Waschen mit Waschpuffer (verdünnt den Bindungspuffer 1: 3 in dH 2 O). Führen Sie den Überstand von Schritt 9.2 über die Säule und sammeln den Durchfluss. Eluieren des gebundenen Antikörpers mit 0,1 M Citrat, pH 3,5, und neutralisiert den pH-Wert sofort mit 500 ul Tris-HCl, pH 9,0. </li><li> Charakterisieren der eluierten Antikörper durch SDS-PAGE, Western Blot und ELISA, und bestätigen Sie für die endgültige Anwendung. <ol><li> Für die SDS-PAGE, nehmen Sie 3 bis 5 ug gereinigte Antikörperlösung pro Spur (eine 20-ul-Probe), 5 ul 4x SDS-Probenladepuffer hinzufügen (8% SDS, 20% 2-Mercaptoethanol, 40% Glycerin und 0,015 % Bromphenol, reduziert) und erhitzt die Sonden bei 95 ° C für 5 min. Als Kontrolle verwenden die gleiche Probe mit einer gereinigten antibody des gleichen Isotyps, aber irrelevanter Spezifität. </li><li> Legen Sie die Proben auf einem 12,5% SDS-Gel, legen 5 ul einer ungefärbten Protein Leiter in einer zusätzlichen Spur, und trennen Sie diese durch Elektrophorese. Stain das Gel mit Coomassie Brilliant Blue und dokumentieren die Ergebnisse. Eine grundlegende SDS - Protokoll wurde im Jahr 1970 15 von Laemmli etabliert. </li></ol></li></ol>

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</ol>

Die Autorinnen Pamela Holzlöhner und Katja Hanack sind Mitgründerinnen der new/era/mabs GmbH, einem Unternehmen, das die maßgeschneiderte Generierung von monoklonalen Antikörpern anbietet.

Die Erzeugung von monoklonalen Antikörpern von Hybridoma-Technologie erfordert eine intensive und ausführliche Epitop-Analyse, insbesondere im Hinblick auf die endgültige Anwendung, wenn der Antikörper das Ziel erkennen sollte. Dies wird oft von den Benutzern unterschätzt und führt zu Antikörpern mit schwachen Leistungen. Der Fusionsprozess ist immer zufällig, was bedeutet, dass das Ergebnis der spezifischen Hybridomen auf das Zellverhältnis in hohem Maße abhängig ist und die Vitalität an dieser Stelle. Nach limited dil...

Die Hybridom - Technologie in diesem Protokoll vorgestellt wurde zuerst von Köhler und Milstein 1 1975 beschrieben und mit Ausnahme von einigen technischen Verbesserungen hat die Hauptprozedur nicht dramatisch während der letzten 40 Jahre 2 geändert. Das Ziel dieses Protokolls ist es, eine geeignetere Immunisierungsstrategie, eine Standardmethode zur Erzeugung von monoklonalen Antikörpern, und ein Beispiel für eine Validierungsmethode (ELISA) zu erklären. Antikörper sind unglaubliche Werkzeuge und tragen zu einer breiten Palette von technologischen Ansätzen, wie Durchflusszytometrie, magnetische Zellsortierung oder Immun sowie zu diagnostischen und therapeutischen Möglichkeiten für die Überwachung der Krankheiten und Behandlung 3. Die kommerzielle Verfügbarkeit von monoklonalen Antikörpern für die gewünschten Ziele wird durch die Anwesenheit von mehr als 24 verschiedenen Web - Datenbanken mit fast unzähligen Mengen von Antikörpern oder Antikörper-verwandte Produkte 4 gezeigt. Im Jahr 2015 einntibody Moleküle waren Teil einer internationalen Diskussion 5-7 aufgrund schwerwiegender Probleme in der richtigen Validierung und Charakterisierung von im Handel erhältlichen Antikörpern. Es kann schwierig und teuer sein, um spezifische Antikörper für eine gezielte Antigen zu finden, und oft haben sie nicht die Affinität oder Spezifität benötigt. Obwohl einen Antikörper zu erzeugen ist immer noch zeitaufwendig und erfordert qualifiziertes Personal um den Antikörper zu entwickeln und zu validieren, einen Antikörper einzeln produzieren könnte besser als ein Kauf. Aufgrund der Tatsache, dass die Antikörperproduktion ist zeitaufwendig und erfordert Erfahrung, alternative Verfahren zur Herstellung von Bindungsmolekülen wurden entwickelt, um diese Probleme zu überwinden. Die am häufigsten verwendete alternative Methode ist die rekombinante Herstellung von einkettigen Antikörpern mittels Phagen-Display. Die Gene für die variable Bindungsregion aus Zellen und in Kombination mit dem Beschichtungsprotein eines Phagen extrahiert. Die single Kette wird dann auf der Oberfläche eines Bakteriophagen exprimiert und in mehreren Schritten Panning 8 gescreent. Die Herstellung von Einzelketten-Antikörper ist ein bisschen schneller, aber es erfordert auch ein erfahrener Experimentator. Die Nachteile einiger rekombinanter Einketten-Antikörper sind schlechte Stabilität und fehlende Eignung für die in vitro Diagnostik. In den meisten diagnostischen Tests, ein Fc-Rezeptor für die Detektion erforderlich ist, die anschließend zu einem rekombinanten Einketten-Antikörper zugegeben werden muss. Auch dies ist zeitaufwendig und sogar noch komplexer ist als die Hybridom-Technik. In In - vitro - Diagnostik, wurden in voller Länge monoklonalen Maus und Kaninchen - Antikörper zeigte die beste Wahl zu sein. Einer der wichtigsten Schritte in der Herstellung monoklonaler Antikörper erzeugen, muss getan werden, bevor die Arbeit im Labor beginnt: das Design der Immunkonjugat. Fragen, die gelöst werden müssen, sind: Was ist die physikalische Zusammensetzung des Targets in der letzten applicat istIon, und die Matrizen vorhanden sind? Welche Konzentration wird das Ziel in der Anwendung? Was ist die letzte Anwendung, und was sind die Voraussetzungen, dass der Antikörper erfüllen muss? immer berücksichtigen, dass, wenn ein lineares Peptidfragment verwendet wird, ist es auch in der endgültigen Epitop in der Zielwahl linear zu sein hat; andernfalls, binden die Antikörper nicht. Natürlich unabhängig von der Durchmusterungsverfahren, unterschiedliche antigenische Formate in verschiedenen Anwendungen zu erkennen Antikörper könnten ausgewählt werden, aber dies muss sehr genau überprüft werden. Dies sind die Gründe, warum der Antikörperentwicklung und Validierung sind solche ehrgeizigen Prozesse. Die Wahl des Antigen-Format für die Immunisierung ist von grundlegender Bedeutung für die Entwicklung von Antikörpern und bestimmt den Erfolg oder das Scheitern dieses Prozesses. Nachdem die Mäuse einen entsprechenden Antikörpertiter exprimieren, werden die Milzzellen isoliert und mit Myelomzellen fusioniert. Die am häufigsten verwendeten Myelom-Zelllinienmurinen monoklonalen Antikörper Entwicklung sind X63-Ag 8.653 9 und Sp2 / 0-Ag 14 10 von einer Balb / c - Maus - Stamm. Die Zellen stammen von einem bösartigen B-Zell-Lymphom und wurden ausgewählt, weil sie alle ihre eigenen schweren oder leichten Ketten nicht absondern. 1 (Splenozyten gegen Myelomzellen): Die Zellen können zwischen 1:10 und 10 bis zu einem Verhältnis angepasst werden. 1 und verschmolzenen durch Polyethylenglykol (PEG) und Elektrofusion , gemäß Stoicheva und Hui 11: In diesem Protokoll wurden die Zellen in einem Verhältnis von 3 angepasst. Die Fusion von B-Zellen und Myelomzellen ist ein Zufallsprozess. Daher Hybride von zwei B-Lymphozyten oder zwei Myelomzellen könnten erzeugt werden, aber diejenigen Hybride würde nicht für eine lange Zeit in Kultur überleben können. Die Zellen werden einer Hypoxanthin, Aminopterin und Thymidin (HAT) Auswahl, nach dem nur fusionierten Hybridomzellen aufgrund der Möglichkeit der Verwendung der de novo - Weg der Pyrimidinsynthese überleben kann. Für die Erzeugung von monoclonal Antikörper ist es notwendig, eine Zelllinie Ursprung von einer Mutterzelle zu erhalten. Die Monoklonalität wird sichergestellt durch die Verdünnungstechniken begrenzen und die mikroskopische Analyse des Zellwachstums. Die Hybridom-Kulturüberstände werden auf spezifische Antikörperproduktion, meist durch ELISA gescreent oder Durchflusszytometrie, und die besten Bindemittel ausgewählt. Nach der Massenkultur und Reinigung kann schließlich das Antikörpermolekül charakterisiert und für die gewünschte Anwendung validiert werden.

<table><tbody><tr><td>Glutaraldehyd</td><td>Sigma Aldrich</td><td>G5882</td><td></td></tr><tr><td>N-(3-dimethylaminopropyl)-N-ethylcarbodiimid (EDC)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>39391-10ML</td><td></td></tr><tr><td>Sulfo-GMBS</td><td>Perbio Science Germany</td><td>22324</td><td></td></tr><tr><td>Ovalbumin</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A5503</td><td></td></tr><tr><td>Rinderserumalbumin</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A2153</td><td></td></tr><tr><td>Schlüsselloch-Napfschnecke Hämocyanin</td><td>Sigma Aldrich</td><td>H8283</td><td></td></tr><tr><td>Falcon Röhrchen 15 mL</td><td>Biochrom GmbH</td><td>P91015</td><td></td></tr><tr><td>Reaktionsgefäße, 1,5 mL</td><td>Carl Roth GmbH & C0.KG</td><td>CNT2.1</td><td></td></tr><tr><td>Hohlnadel</td><td>Carl Roth GmbH & C0.KG</td><td>C724.1</td><td></td></tr><tr><td>Glaswolle</td><td>Carl Roth GmbH & C0.KG</td><td>6574.1</td><td></td></tr><tr><td>Sephadex G25 grob</td><td>Sigma Aldrich</td><td>GE-17-0034-02</td><td></td></tr><tr><td>Freund&akut; s adjuvans, komplette</td><td>Sigma Aldrich</td><td>F5881-10ML</td><td></td></tr><tr><td>ELISA Platten, 96 well</td><td>Greiner bio-one</td><td>655101</td><td></td></tr> für <tr><td>Neugeborene Kälberserum</td><td>Biochrom GmbH</td><td>S1025</td><td></td></tr><tr><td>TipOne Tips 1.000 &micro; L</td><td>Starlab</td><td>S1111-2021</td><td></td></tr><tr><td>Pipettenspitzen 200 & Mikro; L</td><td>Greiner bio-one</td><td>739291</td><td></td></tr><tr><td>HRP-konjugierter Ziegen-Anti-Maus IgG-Antikörper</td><td>Dianova</td><td>115-035-003</td><td></td></tr><tr><td>Tetramethylbenzidin</td><td>Carl Roth GmbH & C0.KG</td><td>6350.2</td><td></td></tr><tr><td>Natriumdihydrogenphosphat</td><td>Carl Roth GmbH & C0.KG</td><td>K300.2</td><td></td></tr><tr><td>Peroxid/Harnstoffschwefelsäure</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>Carl Roth GmbH & C0.KG</td><td>4623.3</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640</td><td>Life technologies GmbH</td><td>31870074</td><td></td></tr><tr><td>L-Glutamin</td><td>Carl Roth GmbH & C0.KG</td><td>HN08.2</td><td></td></tr><tr><td>Beta-Mercaptoethanol</td><td>Sigma Aldrich</td><td>M6250</td><td></td></tr><tr><td>fötales Kälberserum</td><td>Invitrogen</td><td>10270106</td><td></td></tr><tr><td>TC-Kolben 25 cm2</td><td>Peske GmbH</td><td>86-V025</td><td></td></tr><tr><td>TC-Kolben 75 cm2</td><td>Peske GmbH</td><td>86-V075</td><td></td></tr><tr><td>Ethanol, 96%</td><td>Carl Roth GmbH & C0.KG</td><td>P075.1</td><td></td></tr><tr><td>Küvettensieb</td><td>VWR international</td><td>734-0002</td><td></td></tr><tr><td>Falcon Röhrchen 50 mL</td><td>Biochrom GmbH</td><td>P91050</td><td></td></tr><tr><td>PEG 8000</td><td>Sigma Aldrich</td><td>1546605</td><td></td></tr><tr><td>Elektroporationsküvette, 2 mm</td><td>Biodeal Handelsvertretung Edelmann e.K.</td><td>EKL2,25</td><td></td></tr><tr><td>Hypoxanthin</td><td>Sigma Aldrich</td><td>H9636-25G</td><td></td></tr><tr><td>Azaserin</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A4142</td><td></td></tr><tr><td>Thymidin</td><td>USB Europa GmbH</td><td>22305 1 GM</td><td></td></tr><tr><td>TC-Platten 96 Vertiefung</td><td>Biochrom GmbH</td><td>P92696</td><td></td></tr><tr><td>TC-Platten 24 Vertiefung</td><td>Biochrom GmbH</td><td>P92424</td><td></td></tr><tr><td>Kryoröhrchen, 1 mL</td><td>Sigma Aldrich</td><td>V7384-1CS</td><td></td></tr><tr><td>Dimethylsulfoxid</td><td>Carl Roth GmbH & C0.KG</td><td>4720.1</td><td></td></tr><tr><td>Protein A Sepharose</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P3391-1G</td><td></td></tr><tr><td>SDS Probenladepuffer, Roti-Load 1</td><td>Carl Roth GmbH & C0.KG</td><td>K929.1</td><td></td></tr><tr><td>ungefärbte Proteinleiter</td><td>BioRad Laboratories</td><td>161-0363</td><td></td></tr><tr><td>comassie brilliant blau R-250</td><td>BioRad Laboratories</td><td>161-0406</td><td></td></tr></tbody></table>

generation of murine monoclonal antibodies by hybridomtechnologie

Generation of Murine Monoclonal Antibodies by Hybridoma Technology

Monoklonale Antikörper sind universelle Bindungsmoleküle und werden in der Biomedizin und Forschung häufig eingesetzt. Dennoch ist die Erzeugung dieser Bindungsmoleküle aufgrund der komplizierten Handhabung und des Mangels an Alternativen zeit- und kostenintensiv. Ziel dieses Protokolls ist es, eine Standardmethode für die Erzeugung monoklonaler Antikörper unter Verwendung der Hybridomtechnologie bereitzustellen. Diese Technologie kombiniert zwei Schritte. Schritt 1 ist eine geeignete Immunisierung des Tieres und Schritt 2 ist die Fusion von B-Lymphozyten mit unsterblichen Myelomzellen, um Hybride zu erzeugen, die beide elterlichen Funktionen besitzen, wie z. B. die Produktion von Antikörpermolekülen und die Unsterblichkeit. Die erzeugten Hybridomzellen wurden dann rekloniert und verdünnt, um stabile monoklonale Zellkulturen zu erhalten, die den gewünschten monoklonalen Antikörper im Kulturüberstand sezernierten. Die Überstände wurden in Enzyme-linked Immunosorbent Assays (ELISA) auf Antigenspezifität getestet. Nach der Auswahl geeigneter Zellklone wurden die Zellen in die Massenkultivierung überführt, um das gewünschte Antikörpermolekül in großen Mengen herzustellen. Die Aufreinigung der Antikörper erfolgt routinemäßig durch Affinitätschromatographie. Nach der Aufreinigung kann das Antikörpermolekül charakterisiert und für die finale Testanwendung validiert werden. Der gesamte Prozess dauert 8 bis 12 Monate Entwicklungszeit, und es besteht ein hohes Risiko, dass der Antikörper im gewünschten Testsystem nicht funktioniert.

1 zeigt ein Beispiel für den Antigen-spezifischen Serumtiter für eine Immunisierung im Labor durchgeführt. 5.000.000 im Vergleich zu einem Serum eines naiven Maus: In dieser Figur wurden die Immunseren A und B von 1:50 bis 1 titriert. Das Antigen wurde auf der festen Phase beschichtet ist, und die spezifischen Antikörper wurden mit einem POD-konjugiertes Ziege-anti-Maus-Ig-Antikörper nachgewiesen. Beide Seren der immunisierten Mäuse zeigten eine signifikant höhere Antige...

Es wird ein optimiertes Protokoll für die Erzeugung von monoklonalen Antikörpern auf Basis der Hybridom-Technologie vorgestellt. Die Mäuse wurden mit einem Immunkonjugat immunisiert. Milzzellen wurden durch PEG und einen elektrischen Impuls mit unsterblichen Myelomzellen fusioniert. Antikörper-produzierende Hybridomzellen wurden mittels HAT und antigenspezifischem ELISA-Screening selektiert.

Generation of Murine Monoclonal Antibodies by Hybridomtechnologie

Monoclonal antibodies are universal binding molecules and are widely used in biomedicine and research. Nevertheless, the generation of these binding ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens ist die Generierung von Antikörper-produzierenden Hybridom-Zelllinien für die biotechnologische Herstellung von monoklonalen Antikörpern. Mit dieser Methode können spezifische Bindemittel für den Nachweis und die Visualisierung von Biomolekülen und für die Entwicklung effektiver Nachweissysteme wie ELISA, Durchflusszytometrie oder magnetische Zellsortierung erzeugt werden. Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass sie die Erzeugung von monoklonalen Antikörpern produzierenden Zelllinien mit einer vordefinierten Spezifität und einer kontinuierlichen Verfügbarkeit ermöglicht.Um die Myelomzellen vorzubereiten, tauen Sie ein Fläschchen mit murinen SP2/0-Zellen in warmem Wasser auf. Anschließend werden die Zellen in 10 mL Kulturmedium überführt und durch Zentrifugation gesammelt. Das Pellet wird in 10 ml frischem Nährmedium resuspendiert und die Zellen in einen 25 Quadratzentimeter großen Kolben für die Inkubation bei 37 Grad Celsius und 5 % CO2 ausgesät, wobei die Aliquote der Zellen für die Langzeitlagerung nach der entsprechenden Anzahl von Expansionen aufbewahrt werden.Um Feederzellen vorzubereiten, entfernen Sie das Fell von einer 1

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Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie und Infektion

Dieses Video demonstriert eine Methode zur Erzeugung von Antikörpern aus Säugetierzellen durch Einführung von Plasmidvektoren mit schweren und leichten Kettengenen. Diese Vektoren interagieren mit Polyethylenimin und gelangen durch Bildung von Polyplexen in die Zellen; Später werden sie in einzelne Proteine übersetzt und zu vollständigen Antikörpern zusammengesetzt, die in das extrazelluläre Medium sezerniert werden.

Erzeugung rekombinanter monoklonaler Antikörper aus Säugetierzellkulturen

Dieses Video zeigt einen Assay zur Herstellung von monoklonalen Antikörpern gegen die porzine Aminopeptidase N (APN), eine membrangebundene Metallopeptidase, unter Verwendung einer traditionellen Hybridomtechnologie. Bei der Immunisierung einer Maus mit APN werden die Milzzellen geerntet und mit unsterblichen Myelomzellen fusioniert, um Hybridome zu erzeugen. Die Hybridome werden dann unter Verwendung des HAT-Mediums (Hypoxanthin-Aminopterin-Thymidin) selektiert und proliferiert, um monoklonale...

Eine Hybridom-Technologie zur Herstellung monoklonaler Antikörper gegen eine Metallopeptidase

Das Video demonstriert eine Technik zur Erzeugung monoklonaler Antikörper aus antigenspezifischen B-Zellen. Eukaryotische Expressionsvektoren, die für die schweren und leichten Ketten von Antikörpern kodieren, die von isolierten antigenspezifischen B-Zellen kloniert wurden, werden mit Hilfe von Polyplexen in Säugetierzellen eingeführt. Sobald sich diese Vektoren in den Zellen befinden, durchlaufen sie eine Translation, und die resultierenden schwer- und leichtkettigen Peptide lagern sich zu...

Eine Technik zur Erzeugung monoklonaler Antikörper aus antigenspezifischen B-Zellen

Die Synthese von humanen monoklonalen Antikörpern ist der erste Schritt in Studien, die darauf abzielen, die pathophysiologischen Mechanismen von Autoantikörper-vermittelten Immunantworten zu entschlüsseln. Wir haben ein Protokoll zur Erzeugung rekombinanter monoklonaler Immunglobulin G (IgG)-Antikörper aus blutsortierten B-Zellen entwickelt, einschließlich B-Zellisolierung, Antikörperklonierung und In-vitro-Synthese.

Erzeugung von rekombinanten humanen IgG monoklonalen Antikörpern aus Immortalisierte Sortiert B Cells

Wir beschreiben eine Methode zur Herstellung von menschlichen Antikörpern, die spezifisch für ein Antigen des Interesses, ausgehend von seltenen B-Zellen im menschlichen Blut zirkulieren. Generation dieser natürliche Antikörper ist rasch und effizient, und die Antikörper erhalten können sehr ähnliche Antigene unterscheiden.

Generation von diskriminierendem menschlichen monoklonalen Antikörpern aus seltenen Antigen-spezifische B-Zellen im Blut zirkulierenden

Dieser Artikel enthält ein detailliertes Protokoll für die Vorbereitung und Auswertung von monoklonalen Antikörpern gegen natürliche Produkte für den Einsatz in verschiedenen Immunoassays. Dieses Verfahren beinhaltet Immunisierung, Zellfusion, indirekte wettbewerbsfähige ELISA positiven Klon screening und monoklonalen Hybridom-Vorbereitung. Die Spezifikationen für Antikörper Charakterisierung mittels MALDI-TOF-MS und ELISA Analysen sind ebenfalls vorhanden.

Generierung von monoklonalen Antikörpern gegen Naturprodukte

Das rekombinante Antikörperprotein, das in pIRES2-ZSGreen1-rAbs-APN-CHO-Zellen und monoklonalen Antikörpern, die mit der traditionellen Hybridomtechnologie hergestellt werden, exprimiert wird, kann das porcine Aminopeptidase N (APN)-Protein erkennen und daran binden.

Produktion von monoklonalen Antikörpern gegen Aminopeptidase N im Darmschleimhautepithel des Schweins

C57BL / 6 Mäuse wurden verwendet, um Hc Pathogenese zu studieren und bieten das beste Modell. Wir erforschen die potenziellen Vorteile der humoralen Immunität gegen diesen Pilz erzeugt und mehrere mAbs [zum Histon H2B und ein heat shock protein 60kDa], dass wir für ihre Schutzwirkung nach intraperitonealer Verabreichung getestet.

Passive Verwaltung von monoklonalen Antikörpern gegen H. capsulatum Ua Pilzpathogene

Dendritische Zellen Aufnahme Antigene und wandern in Richtung Immunsystem Organe prozessierte Antigene, die auf T-Zellen präsentieren. Qdot Nanokristall Kennzeichnung stellt eine langfristige und stabile Fluoreszenz-Signal. Dies ermöglicht die Verfolgung von dendritischen Zellen in verschiedenen Organen durch Fluoreszenz-Mikroskopie.

Erzeugung und Kennzeichnung von Murine Knochenmark gewonnenen dendritischen Zellen mit Qdot Nanokristalle für Tracking-Studien

Dieses Protokoll beschreibt insbesondere die Extraktion der Gesamt-IgY aus Eigelb mittels Polyethylenglykol Niederschlag und gibt allgemeine Informationen über IgY-Technologie.

IgY-Technologie: Extraction of Chicken Antikörper aus Eidotter durch Polyethylenglykol (PEG) Niederschlag

Lernen Sie die Hybridomtechnologie zur Erzeugung monoklonaler Antikörper in Mäusen. Diese Methode ermöglicht die Herstellung spezifischer Binder für die Biomoleküldetektion und biotechnologische Anwendungen.

Generation of Murine Monoclonal Antibodies by Hybridomtechnologie

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