Name: Zucht- und RNA-vermittelte Gene Knockdown in der ausblenden Doppelstrang-Käfer, Dermestes maculatus (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-28T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 57 s
Description: Erfahren Sie RNA-vermittelte Gen-Knockdown-Methoden bei Dermestes maculatus für Entwicklungs- und Evolutionsbiologie. Diese Techniken ermöglichen gezielte Genfunktionsstudien in Embryonen und adulten Käfern.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Wir danken Dr. Alison Heffer und Dr. Yong Lu für die Einrichtung des Mikroinjektionsgeräts und das Teilen ihres unschätzbaren Wissens und ihrer Erfahrung mit Insekten-RNAi. Diese Arbeit wurde von den National Institutes of Health (R01GM113230 bis L.P.) unterstützt.

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Während im 20. Jahrhundert eine kleine Anzahl ausgeklügelter Modellsysteme (Mäuse, Fliegen, Würmer) entwickelt wurde, gab es im 21. Jahrhundert eine Welle neuer Tiersysteme, die in Labors auf der ganzen Welt entwickelt wurden. Diese neuen Systeme ermöglichen es den Wissenschaftlern, vergleichende, evolutionäre Fragen zu beantworten, die mit den "Standard"-Modellsystemen nicht allein untersucht werden können. Dieser Einsatz neuer Modelle erfordert die rasche Entwicklung von Methoden für die Laborkult...

1998 berichtete Fire and Mello , daß doppelsträngige RNA (dsRNA) Hemmung der Genfunktion in Caenorhabditis elegans 1 induzieren kann. Diese Antwort , ausgelöst durch dsRNA wurde RNA - Interferenz (RNAi) genannt, und solche RNAi-vermittelte Gen - Silencing wurde berichtet , in Tieren, Pflanzen konserviert zu sein, und Pilze 2-7. In Pflanzen und einige Tiere, systemisch RNAi - Funktionen, was bedeutet , dass der Effekt auf andere Zellen / Gewebe ausbreiten , wo wird dsRNA nicht direkt eingeführt ( zusammengefasst in 8-10). Wissenschaftler haben von dieser endogenen zellulären RNAi - Antwort von dsRNAs Gestaltung Gene von Interesse zu zielen, wodurch Klopfen nach unten Genfunktion , ohne direkt die Manipulation des Genoms ( zusammengefasst in 11-14) gemacht. RNAi ist ein leistungsfähiges Werkzeug für funktionelle Studien aufgrund der folgenden Vorteile. Erstens, selbst bei minimaler Gensequenz Informationen kann ein Gen gezielt RNAi verwendet. Dies ist besonders wichtig für studies von Nicht-Modellorganismen genomischen oder Transkriptom-Daten fehlen. Zweitens in Organismen, die RNAi-Antwort robust systemisch ist, kann RNAi-vermittelte Knock-Down bei fast jedem beliebigen Entwicklungsstadium durchgeführt werden. Diese Funktion ist sehr nützlich, um die Funktion von pleiotropen Gene zu studieren. Drittens, in einigen Fällen spreizen RNAi - Effekte auf die Gonaden und Nachkommen, so dass Phänotypen in Nachkommen 15,16 beobachtet werden. Dieses Phänomen, bekannt als elterliche RNAi (pRNAi), ist besonders vorteilhaft für Gene Embryonalentwicklung beeinflussen, zahlreiche Nachkommen von einem einzigen injiziert Mutter hergestellt ohne direkte Manipulation von Eiern untersucht werden. Aus diesen Gründen ist pRNAi die Methode der Wahl. Wenn jedoch pRNAi unwirksam ist, beispielsweise für die Gene für Oogenese erforderlich, dann embryonale RNAi (eRNAi) verwendet werden. Viertens kann RNAi verwendet werden, um das Äquivalent einer allelischen Serie, dass zur Erzeugung der Menge an dsRNA geliefert über einen Bereich variiert werden kann schwach bis stark Defekte zu produzieren. Eine solche Abstufung von Phänotypen können für das Verständnis der Genfunktion hilfreich sein, wenn das Gen in einem komplexen Prozess und / oder vollständigen Verlust der Funktion beteiligt ist, ist letal. Fünftens Lieferung von dsRNA ist in der Regel einfach und machbar, vor allem bei Tieren robusten Reaktionen systemischen RNAi zeigt. dsRNA kann durch Mikroinjektion 1,5, Fütterung / Aufnahme 17,18, Einweichen, 19,20 und Viren / Bakterien-vermittelte Abgabe 21,22 eingeführt werden. Sechstens, im Gegensatz zu einigen Gen-Targeting / Bearbeitungsmethoden, gibt es keine Notwendigkeit für Organismen tragen die Mutation zu screenen oder genetische Kreuzungen durchzuführen Homozygoten zu erzeugen, wenn RNAi verwendet wird. Daher kann im Vergleich zu vielen anderen Techniken zur Untersuchung der Genfunktion ist RNAi schnell, kostengünstig und kann für großflächige Bildschirme 23-25 aufgebracht werden. Die breite Anwendung von RNAi stellt Mittel bereit, funktionelle Studien in einem breiten Spektrum von Organismen durchzuführen, um den Bereich der Arten für das Studium zur Verfügung expandierenden beyond die traditionellen Modellsysteme für die genetische Werkzeuge entwickelt worden. Zum Beispiel können nicht-Modellsysteme Studien mit benötigt Einblicke in die Evolution von Genen und Gen - Netzwerken zu geben , indem die Funktionen von Orthologen von Spezies zu vergleichen , die unterschiedliche Entwicklung Modi oder ausstellenden verschiedene morphologische Merkmale 26-29. Diese Art von Studien wird ein besseres Verständnis der biologischen Vielfalt zur Verfügung stellen, mit Auswirkungen sowohl für angewandte und Grundlagenforschung. Als die größte Tiergruppe auf dem Planeten, Insekten bieten eine große Chance, die zugrunde liegenden Mechanismen Vielfalt zu erkunden. Darüber hinaus sind Insekten im Allgemeinen klein, haben kurze Lebenszyklen, hohe Fruchtbarkeit und sind leicht nach hinten im Labor. In den vergangenen zwei Jahrzehnten hat sich RNAi erfolgreich bei Insekten Spanning Aufträge angewendet worden, einschließlich Diptera (Zweiflügler) 5, Lepidoptera (Schmetterlinge und Motten) 30, Coleoptera (Käfer) 16,31, Hautflügler (SAWFLügen, Wespen, Ameisen und Bienen) 32, Hemiptera (true Bugs), Isoptera (Termiten) 34, Blattodea (Schaben) 35, Orthoptera (Grillen, Heuschrecken, Heuschrecken und katydids) 36 und Phthiraptera (Läuse) 37. Die erfolgreiche Anwendung von RNAi hat sich für die Untersuchung der Musterung in der frühen Embryonalentwicklung (anterior-posteriore Achse 32, dorsalen-ventralen Achse 28, Segmentierung 26,38) funktionelle Daten zur Verfügung gestellt, die Geschlechtsbestimmung 39,40, Chitin / Kutikula Biosynthese 41, Ecdyson 42 signalisiert, Sozialverhalten 43 und mehr. RNAi Methoden für verschiedene Insektenarten entwickelt werden , können von zusätzlichen Vorteil sein, dass sie geeignet sind , für die Schädlingsbekämpfung , nützlich zu sein ( zusammengefasst in 44-46). RNAi-Effekte werden genspezifische sowie artspezifischen, solange nicht konservierten Regionen für die Ausrichtung gewählt. Für nützlichen Insektenarten wie Honigbienen und Seidenwürmer, Gene von entscheidender Bedeutung für das Überleben der TargetingViren oder Parasiten - Infektion zu kontrollieren kann eine neue Strategie bieten diese Spezies 47,48 zu schützen. Dermestes maculatus (D. maculatus), gebräuchliche Bezeichnung verbergen Käfer, ist weltweit mit Ausnahme der Antarktis verteilt. Als holometabolous Insekt umfasst das D. maculatus Lebenszyklus embryonale, Larven, Puppen und adulten Stadien (Abbildung 1). Weil es auf Fleisch ernährt, ist D. maculatus in Museen verwendet tote Tiere zu skeletonize und forensische Entomologen können es verwenden Zeitpunkt des Todes 49,50 abzuschätzen. D. maculatus ernährt sich von tierischen Erzeugnissen einschließlich Kadaver, getrocknetes Fleisch, Käse, und die Puppen / Kokons von anderen Insekten und somit verursacht Schäden an Haushalte, Vorrats und die Seide, Käse und Fleischindustrie 51,52. RNAi in diesem Käfer Anwendung könnte eine effiziente und umweltfreundliche Art und Weise zur Verfügung stellen ihre wirtschaftlichen Auswirkungen zu minimieren. Unser Labor hat D. maculatus als neues m verwendetodel Insekt zu studieren Segmentierung 53. Neben den Lab - Aufzucht zugänglich ist, ist D. maculatus von Interesse für die Grundlagenforschung , wie es ein Zwischenkeim - Entwickler ist es eine nützliche Art den Übergang zwischen kurz- und langfrisKeim Entwicklung zu studieren. <img alt="Abbildung 1" src="/files/ftp_upload/54976/54976fig1.jpg"> Abbildung 1: Lebenszyklus von D. maculatus. Fotografien von D. maculatus in verschiedenen Lebensphasen, wie angegeben. Der Lebenszyklus vom Ei bis zum erwachsenen dauert drei Wochen bei 30 ° C, jedoch bei niedrigeren Temperaturen länger. (A, F) frisch gelegten Embryonen sind weiß bis hellgelb und oval, etwa 1,5 mm in der Länge. Embryonalentwicklung dauert ca. 55 Stunden bei 30 ° C. (B, C und G) Larven haben dunkle pigmentierte Streifen und sind mit Setae bedeckt. gehen Larvae durch mehrere instars abhängig von der Umgebung und deren Länge bis über 1 cm verlängern kann. (D, H) (E, I) Kurz nach dem Schlüpfen, erscheint dunkle Pigmentierung über die erwachsenen Käfer Körper. Erwachsene können bis zu mehrere Monate leben und eine Frau Hunderte von Embryonen über ihr Leben legen. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54976/54976fig1large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier</a> , um <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54976/54976fig1large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> Bisher haben wir gezeigt , dass RNAi in Klopfen nach unten Genfunktion in D. wirksam ist maculatus 53. Hier unsere Erfahrung Aufzucht D. maculatus Kolonien im Labor wird zusammen mit Schritt- für -Schritt - Protokolle geteilt sowohl für die embryonale und die elterliche RNAi Set-up, Injektion, Nacheinspritzung Pflege und phänotypische Analyse. Die dsRNA-vermittelte Knock-Down und Analyseverfahren hier eingeführt nicht nur detaillierte Informationen zu Fragen in D. maculatus Adressierung, sondern auch potenzielle Bedeutung haben for RNAi in anderen nicht-Modell Käfer / Insektenarten anwenden.

<table><tbody><tr><td>Dermestes maculatus lebende Käfer</td><td>Unser Labor oder Carolina Biological Supply</td><td>#144168</td><td>Unser Laborstamm wurde durch COI-Barcoding verifiziert; Stammvariationen aus Carolina können nicht ausgeschlossen werden Nassfutter</td></tr><tr>für<td>Katzen</td><td>Fancy Feast</td><td></td><td>Fleischstücke mit Soße. Kann in den meisten Tierfutter- und Lebensmittelgeschäften gekauft</td></tr> werden <tr><td>Trockenfutter für Hunde</td><td>Purina Puppy Chow</td><td></td><td>Kann in den meisten Tierfutter- und Lebensmittelgeschäften</td></tr><tr><td>gekauft Insektenkäfig (Größe mittel, 30,5 x 19 x 20,3 cm)</td><td>Exo Terra</td><td>PT2260</td><td>Für die Erhaltung von Bienenvölkern. Kann bei Bedarf einen größeren Käfig verwenden</td></tr><tr><td>Insektenkäfig (Größe Mini, 17,8 x 10,2 x 12,7 cm)</td><td>Exo Terra</td><td>PT2250</td><td>Für die Embryonenentnahme</td></tr><tr><td>Petrischale</td><td>VWR</td><td>89038-968</td><td></td></tr><tr><td>Wattebausch</td><td>Fisher</td><td>22-456-883</td><td></td></tr><tr><td>Megascript T7 Transkriptionskit</td><td>Fisher</td><td>AM1334</td><td>Für 40 Reaktionen</td></tr><tr><td>Pneumatische Pumpe</td><td>WPI</td><td>PV830</td><td></td></tr><tr><td>Kapillarhalter</td><td>WPI</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mikromanipulator</td><td>NARISHIGE</td><td>MN-151</td><td></td></tr><tr><td>Schwarzes Filterpapier (90&nbsp; mm)</td><td>VWR</td><td>28342-010</td><td></td></tr><tr><td>Lebensmittelfarbe (grün)</td><td>McCormick</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kapillare aus Borosilikatglas</td><td>Hilgenberg</td><td>1406119</td><td></td></tr><tr><td>Nadelabzieher (Mikropipettenabzieher)</td><td>Sutter Instrument Co.</td><td>P-97</td><td></td></tr><tr><td>Objektträger aus Mikroskopglas</td><td>WorldWide Life Sciences Division</td><td>41351157</td><td></td></tr><tr><td>Versiegelungsfolie (Parafilm M)</td><td>Fisher</td><td>13-374-12</td><td></td></tr><tr><td>Modell 801 Spritze (10&nbsp; &Mikro; l)</td><td>Hamilton</td><td>7642-01</td><td></td></tr><tr><td>Nadel (32 Gauge)&nbsp;</td><td>Hamilton</td><td>7762-05</td><td></td></tr><tr><td>Fixierlösung (Pampel's)</td><td>BioQuip Products, Inc.</td><td>1184C</td><td>Giftig, muss in der Abzugszange gehandhabt werden</td></tr><tr><td>(DUMONT #5)</td><td>Fine Science Tools</td><td>11252-30</td><td></td></tr><tr><td>Deckglas (24 x 50 mm, Nr. 1.5)</td><td>Globe Scientific</td><td>1415-15</td><td></td></tr><tr><td>Eppendorf Femtotips Microloader Pipettenspitze</td><td>Fisher</td><td>E5242956003</td><td></td></tr><tr><td>Präpariermikroskopie für die Embryoneninjektion</td><td>Leica</td><td>M420</td><td></td></tr><tr><td>Präpariermikroskopie für die phänotypische Visualisierung von Larven</td><td>Zeiss</td><td>SteREO Discover. V12</td><td></td></tr><tr><td>DIC Mikroskopie</td><td>Zeiss</td><td>AXIO Imager. M1</td><td></td></tr></tbody></table>

zucht- und rna-vermittelte gene knockdown in der ausblenden doppelstrang-käfer, dermestes maculatus

Rearing and Double-stranded RNA-mediated Gene Knockdown in the Hide Beetle, Dermestes maculatus

Fortschritte in der Genomik haben die Möglichkeit eröffnet, die Artenvielfalt in einem noch nie dagewesenen Ausmaß zu untersuchen. Die Sequenz allein wird jedoch ohne Werkzeuge zur Untersuchung der Genfunktion nicht aussagekräftig sein. Die Entwicklung und der Austausch detaillierter Protokolle für die Etablierung neuer Modellsysteme in Laboratorien und für Werkzeuge zur Durchführung funktioneller Studien ist daher von entscheidender Bedeutung, um die Leistungsfähigkeit der Genomik zu nutzen. Coleoptera (Käfer) sind die größte Gruppe von Insekten und bewohnen praktisch alle Arten von Lebensräumen auf dem Planeten. Studien an Käfern liefern nicht nur ideale Modelle für die Grundlagenforschung, sondern können auch Auswirkungen auf die Schädlingsbekämpfung haben, da sie häufig Schädlinge in Haushalten, in der Landwirtschaft und in der Lebensmittelindustrie sind. Es werden detaillierte Protokolle für die Aufzucht und Pflege von D. maculatus-Laborkolonien und für die Durchführung von dsRNA-vermittelter Interferenz in D. maculatus vorgestellt. Sowohl embryonale als auch elterliche RNAi-Verfahren - einschließlich der Einrichtung des Apparats, der Vorbereitung, der Injektion und der Wiederherstellung nach der Injektion - werden beschrieben. Es werden auch Methoden zur Analyse embryonaler Phänotypen vorgestellt, einschließlich Lebensfähigkeit, Musterungsdefekte bei geschlüpften Larven und Kutikulapräparationen für nicht geschlüpfte Larven. Diese Assays, zusammen mit der in situ Hybridisierung und Immunfärbung für molekulare Marker, machen D. maculatus zu einem zugänglichen Modellsystem für die Grundlagen- und angewandte Forschung. Darüber hinaus liefern sie nützliche Informationen für die Etablierung von Verfahren in anderen aufkommenden Insektenmodellsystemen.

Das Labor der Autoren hat die RNAi-Technologie verwendet, um die funktionelle Evolution von Genen zu untersuchen, die die Segmentierung bei Insekten regulieren53,55. Obwohl alle Insekten segmentiert sind, scheinen sich die Gene, die diesen Prozess steuern, während der Radiation der Insekten divergiert zu haben26,38,56-63. Genetische Screens in Drosophila identifizierten eine Gruppe von neun Pair-Rule-Segmentierungsgenen, die für die Förderung der Bildung von...

Hier präsentieren wir Protokolle für die Aufzucht eines intermediären Keimkäfers, Dermestes maculatus (D. maculatus) im Labor. Wir teilen auch Protokolle für embryonale und elterliche RNAi und Methoden zur Analyse embryonaler Phänotypen, um die Genfunktion bei dieser Spezies zu untersuchen.

Zucht- und RNA-vermittelte Gene Knockdown in der ausblenden Doppelstrang-Käfer, Dermestes maculatus

Advances in genomics have raised the possibility of probing biodiversity at an unprecedented scale. However, sequence alone will not be informative ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens ist es, die Genfunktion in Dermestes maculatus zu erforschen, einem neuen Insektenmodellsystem, das die vielfältige Gruppe der Käfer repräsentiert und die Untersuchung von grundlegenden und angewandten Forschungsfragen erleichtert. Diese Methode kann dazu beitragen, Schlüsselfragen in den Bereichen Entwicklungsbiologie, Evolutionsbiologie und darüber hinaus zu beantworten, indem sie es ermöglicht, die Genfunktion in Dermestes-Embryonen und -Erwachsenen zu testen. Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass RNA-Interferenz verwendet werden kann, um jedes Gen anzugreifen, das nur auf Sequenzinformationen basiert, auch wenn keine vollständige Genomsequenz vorhanden ist.Die hier vorgestellten Methoden bieten nicht nur einen Ansatz zur Untersuchung der Genfunktion bei Dermestes. Sie können auch zur Entwicklung neuer Insektenmodellsysteme und möglicherweise zur Bekämpfung von Schadinsekten eingesetzt werden. Um einen Aufzuchtkäfig für einen D.maculatus vorzubereiten, verteilen Sie zunächst eine dünne Schicht Holzspäne in einen mittelgroßen Insektenkäfig.Legen Sie ein Stück Styropor in den Käfig, um den Larven eine Umgebung zu geben, in der

rearing-double-stranded-rna-mediated-gene-knockdown-hide-beetle

Research

Forschung

JoVE Journal

Genetics

Genetik

In diesem Protokoll kombinieren wir RNAi-vermittelte Gen-Silencing mit...

RNAi-vermittelte Gen-Knockdown und<em&gt; In Vivo</em&gt; Diurese Assay in Adult Female<em&gt; Aedes aegypti</em&gt; Moskitos

In diesem Protokoll beschreiben wir zwei Strategien, die gleichzeitig zwei Gene unterdrücken (doppelte Gen Knockdown) in Honigbienen. Dann präsentieren wir, wie die Rüssel extension response (PER) Test, um die Wirkung der doppelten Gen Knockdown auf Honigbiene geschmacklichen Wahrnehmung studieren verwenden.

RNAi-vermittelte Gene Knockdown Doppelzimmer und Gustatorisch Perception Measurement in Honey Bees (<em&gt; Apis mellifera</em&gt;)

Während dsRNA Fütterung in C. elegans ist ein leistungsfähiges Werkzeug, um Genfunktionen, aktuellen Protokolle für große Bildschirme Fütterung führen zu variablen Zuschlags Effizienz zu beurteilen. Wir beschreiben eine verbesserte Protokoll für die Durchführung groß angelegte RNAi Fütterung Bildschirme, die in hochwirksame und reproduzierbare Zuschlags der Genexpression resultiert.

Groß Gene Knockdown in<em&gt; C. elegans</em&gt; Verwenden dsRNA Fütterung Bibliotheken zu Robust Loss-of-function Phänotypen generieren

RNA-Interferenz (RNAi) basierten Gen-Knockdown-Techniken sind der Kern der Tribolium Forschung. Hier geben wir einen Überblick über unsere Larven RNAi-Technik in Tribolium castaneum. Larven RNAi ist eine einfache, aber leistungsfähige Technik, die den schnellen Zugriff auf Verlust-Funktion Phänotypen bietet, so dass die Forscher Gen-Funktionen in verschiedenen Kontexten zu studieren.

Larven RNA-Interferenz in das rote Mehlkäfer, Tribolium castaneum

Hier beschreiben wir ein Verfahren zur Hemmung der Genfunktion in Krankheitsvektor Mücken durch die Verwendung von Chitosan / interferierenden RNA-Nanopartikel, die durch Larven aufgenommen werden.

Chitosan / interfering RNA Nanopartikel vermittelten Gen-Stummschaltung in Disease Vector Mückenlarven

RNA-Interferenz (RNAi) ist ein äußerst wertvolles Werkzeug zur Aufdeckung der Genfunktion. Die Fähigkeit, Gene mit RNAi im präadulten Stadium anzugreifen, ist jedoch bei dem wichtigsten menschlichen Malariavektor Anopheles gambiae begrenzt. Wir beschreiben ein RNAi-Protokoll zur Verringerung der Genfunktion durch direkte Injektion während der Puppenentwicklung.

RNAi-Trigger Lieferung in<em&gt; Anopheles gambiae</em&gt; Pupae

Hier stellen wir ein Protokoll zur Injektion von Cricket-Eiern vor, eine Technik, die als grundlegende Methode in vielen Experimenten im Cricket dient, einschließlich, aber nicht beschränkt auf, RNA-Interferenz und genomische Manipulation.

Injektion von Gryllus bimaculatus Eiern

RNA-Interferenz ist eine weit verbreitete, leistungsfähige Technik zur Manipulation der Genexpression in bestimmten Entwicklungsstadien. Hier beschreiben wir die notwendigen Schritte zur Umsetzung dieser Technik im Wassertauchkäfer Thermonectus marmoratus, vom Erwerb von Gensequenzen bis zum Knockdown von Genen, die Struktur oder Verhalten beeinflussen.

RNA-Interferenz in Wasserkäfern als leistungsstarkes Werkzeug zur Manipulation der Genexpression an bestimmten Entwicklungszeitpunkten

Wir liefern ein detailliertes Protokoll für elektroporationsvermittelte RNA-Interferenzen bei Insekten der Ordnung Odonata (Libellen und Damselflies) mit dem Blauschwanz-Dammselbst (Ischnura senegalensis: Coenagironidae: Zygoptera) und der pied Skimmer Libelle (Pseudothemis zonata: Libellulidae: Anisoptera).

Elektroporationsvermittelte RNA-Interferenzmethode in Odonata

Hier wird ein Protokoll der Helicoverpa armigera (Hübner) Embryo-Mikroinjektion und Knockout-Mutantenidentifizierung vorgestellt, das durch CRISPR/Cas9-Genom-Editing erstellt wurde. Mutierte Insekten ermöglichen die weitere Erforschung der Genfunktion und Interaktion zwischen verschiedenen Genen in vivo.

Embryo-Mikroinjektion und Knockout-Mutanten-Identifizierung von CRISPR/Cas9 Genome-Edited Helicoverpa Armigera (Hübner)

Das vorliegende Protokoll beschreibt Schritt-für-Schritt-Richtlinien für die RNAi-Operationstechniken in P. americana.

Anwendungen der RNA-Interferenz in amerikanischen Kakerlaken

Erfahren Sie RNA-vermittelte Gen-Knockdown-Methoden bei Dermestes maculatus für Entwicklungs- und Evolutionsbiologie. Diese Techniken ermöglichen gezielte Genfunktionsstudien in Embryonen und adulten Käfern.

Zucht- und RNA-vermittelte Gene Knockdown in der ausblenden Doppelstrang-Käfer, Dermestes maculatus

Weitere Videos entdecken