Name: Ableitung von Leptomeningen Explantation Kulturen von Postmortem Human Brain Donors (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-21T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 18 s
Description: Erfahren Sie die Explantatkultur von Leptomeningen aus postmortem menschlichem Hirngewebe zur Gewinnung fibronektin-positiver Fibroblasten. Diese Methode ermöglicht die Erforschung von Parkinson-Zelllinien.

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Die Entwicklung dieses Protokolls wurde durch private Spenden finanziert, die an das Gehirnspendeprogramm des Parkinson's Institute gerichtet waren.

Das Gehirn Spende Anmeldung umfasst die Dokumentation vom Registranten ihrer Absicht zu spenden. Die Autopsie Erlaubnis für Gewebeentnahme wird durch die nächsten Angehörigen zur Verfügung gestellt, wie dies gesetzlich zulässig ist. Wissenschaftliche Studien gesammelt Autopsieproben verwendet werden von der Institutional Review Board (IRB) überprüft, um die Einhaltung Health Insurance Portability and Accountability Act (HIPAA) Vorschriften. HINWEIS: Leptomeningen Proben werden durch das Gehirn Dissektor oder neuropathologist während einer Gehirnsezierung gesammelt und in 50 ml konischen Röhrchen, die 25-30 ml Meningen Wachstumsmedium gespeichert. Die Probe wird bei 4ºC bis zur Probenvorbereitung aufbewahrt. Die Verarbeitung sollte so schnell wie möglich durchgeführt werden, da die Lebensfähigkeit von Zellen mit der Zeit post mortem abnimmt. 1. Set-up, bevor die Leptomeningen Dissection starten Hinweis: Die Schritte 1,1-1,3 sind in einem Biosicherheitsschrank durchgeführt werden. <ol><li> Bereiten Meningen Wachstumsmedien durch die Kombination 375 ml Dulbeccos modifiziertem Eagle-Medium, 100 ml fötalem Rinderserum, 5 ml 10 mM nicht-essentielle Aminosäuren, 5 ml 200 mM L-Alanyl-L-Glutamin, 5 ml 100 mM Natriumpyruvat, 5 ml 10.000 U / ml Penicillin / Streptomycin und 5 ml 250 ug / ml Amphotericin B in 500 ml-Filtereinheit. Filter und mischen. Verwenden Sie Medien für bis zu vier Wochen. </li><li> Legen Sie alle Materialien, die in der Biosicherheitsschrank vor der Präparation beginnen: 4x Petrischalen, 2x 6-Well-Platten, 2x Skalpelle, 15-20 sterilisierten 15-mm-Deckgläser, Phosphatpuffer-Salzlösung (PBS), serologischen Pipetten, Absaugen Pipetten. </li><li> 1 ml steriles autoklavierte 0,1% ige Gelatinelösung zu jeder Vertiefung einer Platte mit 6 Vertiefungen. Stellen Sie den Teller zur Seite 30-60 min. Bereiten Sie 2x 6-Well-Platten. </li></ol> 2. Herstellung von Leptomeningen Proben Hinweis: Die Schritte 2,1-2,3 sind in einem Biosicherheitswerkbank durchgeführt werden. <ol><li> In etwa 10 ml PBSeine sterile 10-cm-Gewebekulturschale und die Meningen Probe in die Schüssel legen. Mit einer Pinzette vorsichtig waschen Leptomeningen mit PBS Blut zu entfernen. </li><li> Übertragen Sie die Meningen in eine neue 10-cm-Gewebekulturschale mit 10 ml frischem PBS und Waschen fortzusetzen. Bei Bedarf wiederholen, so viel Blut wie möglich zu entfernen. </li><li> Mit Hilfe von zwei Skalpelle schneiden Leptomeningen Gewebe in einem ca. 6 cm x 6 cm großes Stück. </li><li> Deckel auf einer Kulturschale und in ein Präpariermikroskop in einer horizontalen laminaren Strömungshaube. </li></ol> 3. Dissection von Leptomeningen Tissue Hinweis: Die Schritte 3,1-3,3 sind in einer horizontalen Laminar-Flow-Haube durchgeführt werden, um ein Binokular mit. <ol><li> Entfernen Blutgefäße aus einem Bereich auf der Leptomeningen Stück (Schritt 2.3) groß genug, um mindestens 20 bis 25 März mm x 3 mm Stücke zu schaffen. Halten Sie die Leptomeningen an Ort und Stelle mit einem Skalpell und mit dem anderen, verwenden Sie eine sanfte und flache Schaben motion die Gefäße zu trennen. </li><li> Schneiden Sie kleine Quadrate von Gewebe aus dem vorbereiteten Region. Schneiden Sie in einem schrittweisen Prozess durch erste größere Stücke zu machen und dann diejenigen in kleinere Abschnitte schneiden. </li><li> Verwenden Sie ein Skalpell, das Gewebe in Position zu halten und ein weiteres Skalpell das Gewebe mit einer Schaukelbewegung zu schneiden. Aufgrund der Konsistenz des Gewebes, ist es schwierig, die Skalpelle, gegeneinander zu gleiten. Dies wird nur das Gewebe zerreißen und führt in unregelmäßigen Kanten. </li><li> Weiter, um die Stücke zu halbieren, bis es ca. 20-25 3 mm x 3 mm große Stücke. </li></ol> 4. Übertragung von Dissected Meninges Stück auf Gewebekulturplatten HINWEIS: Schritt 4 ist im Inneren eines biologischen Sicherheit Schrank durchgeführt werden. <ol><li> Absaugen Gelatine aus 6-Well-Platte (aus Schritt 1.3). 1 mL Hirnhaut Wachstumsmedien in jede Kammer. Mit einer sterilen Pinzette, legen 3-4 Biopsie Stücke in jede Vertiefung. </li></ol> 5. Platzierung der Deckgläser über Meninges Pieces Hinweis: Die Schritte 5,1-5,2 sind in einer horizontalen Laminar-Flow-Haube durchgeführt werden, um ein Binokular mit. <ol><li> Decken Sie die Stücke mit 1-2 sterilen 15-mm-Kreisdeck pro Vertiefung. </li><li> Drücken Sie fest mit einer Pinzette die Stücke berühren den Boden der Platte zu gewährleisten. Dies ermöglicht Befestigung von Gewebestücken an den Boden des Bohrlochs. </li><li> Legen Sie die 6-Well - Platte in eine 37 ° C, 5% CO 2 Inkubator. </li></ol> 6. Zellkultur Wartung Hinweis: Die Schritte 6,1-6,3 sind in einem Biosicherheitswerkbank durchgeführt werden. Behandeln Sie Kulturschalen mit Sorgfalt als Deck sollten nicht die Meningen Stücke bewegen und entfernen. <ol><li> Nach 2 Tagen in Kultur zusätzlich 1 ml frisches Meningen Wachstumsmedien in jede Vertiefung hinzu. </li><li> Am 7. Tag absaugen sorgfältig die Medien und fügen Sie 2 ml frisches Medium zu jeder Vertiefung. </li><li> Nach dem Tag 9, weiterhin Wachstumsmedien wechseln alleanderen Tag bis Kultur wird konfluent. </li></ol> 7. Passagierung HINWEIS: Alle Schritte in einem Biosicherheitsschrank durchgeführt werden sollen. Sobald meningealen Fibroblasten wurden aus den meningealen Gewebestücke migriert und beginnen zu den Rändern des Kulturgefäßes zu wachsen, meningealen Fibroblasten in größere Kulturschale erweitern. <ol><li> Vor dem Start der Passagierung Beschichtung der Kulturschale mit 1% Gelatine für 15-30 min. </li><li> Absaugen Medien von 6-Well-Platte und waschen Sie die Zellen mit 2 ml PBS. </li><li> 1 ml Trypsin / EDTA zu jeder Vertiefung und Inkubation bei 37 ° C für 5-10 min. Es ist nicht erforderlich, die Deckgläser oder die meningealen Gewebe für diesen Schritt zu entfernen. </li><li> Wenn die Zellen sind gerundet und beginnen zu lösen, fügen Sie 2 ml Kulturmedien. </li><li> Pipette Zellen nach oben und unten, um vollständig alle Klumpen stören und die Zelllösung zu größeren Kulturschale übertragen. </li><li> Verwenden, um ein Verhältnis von 1: 3 bis 1: 4 zu Zellen von drei 6-Well-Schalen in kombinierenzu einer T75 Kulturschale. </li><li> Sobald Zellen meningealen Fibroblasten in T75 Kulturflaschen konfluent sind, trypsinize die Zellen, und in Kryokonservierung Medien bei 1x10 6 Zellen / ml pro Fläschchen Kryokonservierung. Ein T75 Kulturflasche mit konfluenten meningeal Fibroblasten enthält etwa 5-7 Millionen Zellen. </li></ol> 8. Charakterisierung der Meningeale Fibroblasten durch Immunostaining HINWEIS: Vor Beginn des Verfahrens, Herstellung von 4% Paraformaldehydlösung, 5% normalem Ziegenserum in PBS (Blocking-Puffer), 0,3% Triton X-100 in PBS (Permeabilisierung Puffer), primäre und sekundäre Antikörperlösungen und 1 &amp; mgr; g / ml Hoechst 33342 in PBS von 10 mg / ml Stamm verdünnt. <ol><li> Seed 15.000 bis 30.000 meningealen Fibroblasten in 8-Well-Kammerobjektträger mit 0,1% Gelatine beschichtet. </li><li> Nach 24 Stunden, wenn die Zellen gebunden sind, fixieren Zellen in 100 &amp; mgr; l 4% Paraformaldehyd pro Vertiefung für 10 Minuten bei Raumtemperatur. Waschen Sie die Vertiefungen 3 mal mit 1x PBS. </li><li> Permeabilisierung der Zellen mit 150 &amp; mgr; l 0,3% Triton X-100 für 5 min bei Raumtemperatur. Waschen Sie die Vertiefungen 3 mal mit 1x PBS. </li><li> Mit 200 &amp; mgr; l Blockierungslösung (PBS + 5% normales Ziegenserum) für 1 h bei Raumtemperatur. </li><li> Saugen Sie das Blockierungslösung, und fügen Sie 150 ul der gewünschten Primär in Blockierungslösung verdünnt Antikörper. Für Doppel-Färbung, bereiten Verdünnungen von primären Antikörpern in separaten Zentrifugenröhrchen auf Eis arbeitet wie folgt: <ol><li> Vorbereitung 1: 300 Verdünnung von anti-Fibronectin + 1: 200-Verdünnung von Anti-Nestin in Blockierlösung. Bereiten Sie 1: 250 Verdünnung von Anti-SERPINH1 + 1: 1000 Verdünnung von Anti-TuJ1 in Blocking-Lösung. Vorbereitung 1: 250 Verdünnung von anti-SERPINH1 + 1: 100-Verdünnung von anti-SOX2 in Blockierungslösung </li></ol></li><li> über Nacht bei 4 ° C inkubieren. </li><li> Waschen Sie die Vertiefungen 3 mal mit 1x PBS. </li><li> Bereiten Sie eine Arbeits 1: 400 Verdünnung von fluoreszenzmarkierten Sekundärantikörper Ziege anti-Kaninchen (grün; Ex / Em 2 </sup&gt; 495/519 nm) und Ziege anti-Maus (rot; Ex / Em 2 590/617 nm) in Blocking - Lösung und mit 100 &amp; mgr; l zu jeder Vertiefung. Inkubieren für 1 h im Dunkeln bei Raumtemperatur. Dann waschen Brunnen einmal mit 1x PBS. </li><li> Je 100 &amp; mgr; l von 1 ug / ml Hoechst 33342 (blau; Ex / Em 2 358/461 nm) Lösung in jede Vertiefung und Inkubation für 3 min im Dunkeln. Waschen Sie Wells 3 mal mit 1x PBS, in der auch in der letzten 1x PBS waschen lassen, und decken Sie die Folie mit einer Aluminiumfolie. </li><li> Analysieren Sie die Zellen unter dem Fluoreszenzmikroskop. </li></ol>

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<li>Vangipuram, M., Ting, D., Kim, S., Diaz, R., Schüle, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Skin+punch+biopsy+explant+culture+for+derivation+of+primary+human+fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Skin punch biopsy explant culture for derivation of primary human fibroblasts.</a> J Vis Exp. (77), e3779(2013).</li>
<li>Byers, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SNCA+triplication+Parkinson%27s+patient%27s+iPSC-derived+DA+neurons+accumulate+alpha-synuclein+and+are+susceptible+to+oxidative+stress%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">SNCA triplication Parkinson's patient's iPSC-derived DA neurons accumulate alpha-synuclein and are susceptible to oxidative stress.</a> PLoS One. 6 (11), e26159(2011).</li>
<li>Sanders, L. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((LRRK2+mutations+cause+mitochondrial+DNA+damage+in+iPSC-derived+neural+cells+from+Parkinson%27s+disease+patients%3A+reversal+by+gene+correction%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol+Dis%22%5BJournal%5D)">LRRK2 mutations cause mitochondrial DNA damage in iPSC-derived neural cells from Parkinson's disease patients: reversal by gene correction.</a> Neurobiol Dis. 62, 381-386 (2014).</li>
<li>Beevers, J. E., Caffrey, T. M., Wade-Martins, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induced+pluripotent+stem+cell+%28iPSC%29-derived+dopaminergic+models+of+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+Soc+Trans%22%5BJournal%5D)">Induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived dopaminergic models of Parkinson's disease.</a> Biochem Soc Trans. 41 (6), 1503-1508 (2013).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Dieses Protokoll beschreibt einen einfachen und robusten Protokoll eine meningealen Fibroblastenkultur von humanen post mortem Leptomeningen in Verbindung mit einer Gehirn Spende gesammelt abzuleiten. Es gibt sehr wenige Beschreibungen von Protokollen Zellkulturen aus postmortalen menschlichen Material abzuleiten. Zwei Studien beschreiben Haut abgeleiteten Fibroblastkulturen 7, 8, 9, eine Studie beschreibt dura Proben <sup clas...

Meninges bestehen aus drei Membranen, die das Gehirn zu schützen: Dura mater, Arachnoidea und Pia mater. In jüngerer Zeit wurde erkannt , dass Meningen eine wichtige Rolle auch in der Entwicklung des Gehirns und des Gehirns Homöostase 1. Meningen aus mesenchymalen und Neuralleiste abgeleiteten Zellen abgeleitet und interessanterweise , es , dass Vorläuferzellen in Meningen wurden , können in verursachen Neuronen in vitro und vivo nach der Transplantation 2, 3, 4 wohnhaft gezeigt. Meningen Kulturen wurden auch erfolgreich als Feeder - Schichten verwendet werden, wie sie für stromal cell-derived induzierende Aktivität besitzen , die Differenzierung von embryonalen Stammzellen in dopaminerge Neuronen 5. Außerdem haben Leptomeningen das Potential direkt differenzieren sich in Neuronen, Astrozyten und Oligodendrozyten unter ischämischen Bedingungen 6. Aus diesem Protokoll werden menschliche Obduktion Hirnhaut Proben aus der Arachnoidea und Pia mater gesammelt, kollektiv die Leptomeningen und werden als Teil eines menschlichen Gehirns Spende für wissenschaftliche Zwecke beschafft. Sezieren des Gehirns wird in 24 h des Todes durchgeführt und die Probe wird in Leptomeningen Kaltwachstumsmedien für die Weiterverarbeitung in der nächsten 6-8 h angeordnet, wie hier in diesem Protokoll veranschaulicht. Dieses Protokoll beschreibt die Präparation und Herstellung von Human Meningen Proben für die Entwicklung der Patienten primären Leptomeningen Zellkultur. Das Gewebe wird zugeschnitten 25-30 Stücke von ca. 3 mm x 3 mm Quadraten. Drei Stücke sind in jedem 6-Well-Gelatine beschichtete gut und gehalten mit runden Glasplättchen gelegt. Die Meningen Präparation dauert etwa 25-35 min. Die größte Herausforderung bei dieser Kultur ist Sterilität wie das Gehirn Beschaffung, Transport und Präparation werden in der Regel nicht unter sterilen Bedingungen durchgeführt. Therefore, ist es wichtig, die Kulturmedien mit einem Cocktail aus Penicillin, Streptomycin und Amphotericin B und verwenden Multiwellschalen separat Kulturgewebestücke zu ergänzen. Outgrowth meningealer Fibroblasten erfolgt in der Regel innerhalb der ersten Woche. Medium wird alle zwei bis drei Tage gewechselt, bis die Zellen konfluent sind und die Zellen enzymatisch agiert. Die meningeal Fibroblasten sind kryokonservierten bei 1 Million Zellen pro ml / Fläschchen in Kryokonservierung Medien. Mit diesem Protokoll 20-30 Millionen meningealen Fibroblasten können in 6-8 Wochen für die Kryokonservierung ableiten. Downstream Anwendungen dieser meningeal Fibroblasten sind Primärkulturen für die Erforschung von Krankheiten, direkte neuronale Differenzierung oder Ableitung von induzierten pluripotenten Stammzellen, die aus den Leptomeningen für das Verständnis von Krankheitsmechanismen und für die Arzneimittelentwicklung.

<table><tbody><tr><td>Corning Petrischalen</td><td>Fisher Scientific</td><td>351029</td><td></td></tr><tr><td>Nunc 6-Well-Platte</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-832-11</td><td></td></tr><tr><td>15-mm-Deckgläser</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-545-83 15CIR-1D</td><td></td></tr><tr><td>Skalpelle, sterile Klinge, Nr. 15</td><td>Miltex</td><td>4-415</td><td></td></tr><tr><td>Gebogene Präzisionszange</td><td>Fisher Scientific</td><td>16-100-122</td><td></td></tr><tr><td>Serologische Pipetten</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-678-11E</td><td></td></tr><tr><td>Pasteur-Pipetten</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-230490</td><td></td></tr><tr><td>Gelatine</td><td>Sigma</td><td>G1890-100G</td><td></td></tr><tr><td>Phosphatpuffer Kochsalzlösung</td><td>Fisher Scientific</td><td>SH30264.02</td><td></td></tr><tr><td>Corning 500 mL Filtereinheit</td><td>Fisher Scientific</td><td>430770</td><td>Kombinieren Sie Medienkomponenten und Filter.</td></tr><tr><td>Nunc Zellkultur-behandelte Kolben mit Filterkappen, T175 cm2&nbsp;</td><td>Thermo Scientific</td><td>178883</td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>Katalognummer</td><td>Kommentare</strong</td></tr><tr><td>>Growth Media</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hyclone DMEM Fisher</td><td>Scientific</td><td>SH30081.02</td><td></td></tr><tr><td>Hyclone FBS</td><td>Fisher Scientific</td><td>SH30910.03</td><td></td></tr><tr><td>MEM Lösung für nicht-essentielle Aminosäuren (100x)</td><td>Thermo Fisher</td><td>11140-050</td><td></td></tr><tr><td>GlutaMAX Supplement (100x)</td><td>Thermo Fisher</td><td>35050-061</td><td></td></tr><tr><td>Natriumpyruvat (100 mM)</td><td>Thermo Fisher</td><td>11360-070</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin-Streptomycin (10.000 U/ml)</td><td>Thermo Fisher</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>Amphotericin B (gelbe Lösung/250 &micro; g/mL)</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP264520</td><td></td></tr><tr><td>Bambanker Freeze 120 mL</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC9582225</td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>Katalognummer<</td><td>strong>Kommentare</td></tr><tr><td>Fibronektin-Färbung</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>8-Well-Kammer-Schieber&nbsp;</td><td>Fisher</td><td>Scientific 1256518</td><td></td></tr><tr><td>20% Paraformaldehyd&nbsp;</td><td>Elektronenmikroskopie</td><td>15713</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>T8787</td><td></td></tr><tr><td>100% Glycerin</td><td>BioRad</td><td>9455</td><td></td></tr><tr><td>100% normales Ziegenserum</td><td>Fisher Scientific</td><td>101098-382</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Fibronektin-Antikörper [F1]</td><td>Abcam</td><td>ab32419</td><td>1:300 Verdünnung in Blockierungslösung</td></tr><tr><td>Anti-SERPINH1</td><td>Sigma</td><td>S5950-200ul</td><td>1:250 Verdünnung in Blockierungslösung</td></tr><tr><td>Anti-SOX2</td><td>Millipore</td><td>MAB4343</td><td>1:100 Verdünnung in Blockierungslösung</td></tr><tr><td>Anti-Nestin</td><td>Millipore</td><td>MAB5326</td><td>1:200 Verdünnung in Blockierungslösung</td></tr>, <tr><td>Anti-TUJ1</td>, <td>Covance</td><td>MMS-435P</td>, <td>Verdünnung 1:1.000, Verdünnung in Blockierungslösung</td></tr>, <tr><td>Alexa Fluor 488, Anti-Kaninchen</td>, <td>Thermo Fisher</td><td>A11029</td><td>1:400, Verdünnung in Blockierungslösung; (grüner Kanal; Ex/Em2 495/519 nm)&nbsp;</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 555 Anti-Maus</td><td>Thermo Fisher</td><td>A21424</td><td>1:400 Verdünnung in Blockierungslösung; (roter Kanal; Ex/Em2 590/617 nm)&nbsp;</td></tr><tr><td>Hoechst 33342 Beizmittel</td><td>Thermo Fisher</td><td>H3570</td><td>auf eine Endkonzentration von 1,0 & mu verdünnen; g/ml; (blauer Kanal; Ex/Em2 358/461 nm)</td></tr><tr><td colspan="4">Lieferanten sind Vorschläge, ähnliche Produkte von alternativen Anbietern können ebenfalls verwendet werden.</td></tr></tbody></table>

ableitung von leptomeningen explantation kulturen von postmortem human brain donors

Derivation of Leptomeninges Explant Cultures from Postmortem Human Brain Donors

Obwohl große Fortschritte in der klinischen Charakterisierung der Parkinson-Krankheit, einige Studien durchgeführt worden, berichten, dass die Diagnose der Parkinson-Krankheit ist nicht pathologisch bis zu 25% der klinisch diagnostizierten Parkinson-Krankheit bestätigt. Daher ist aus klinisch diagnostizierten Patienten gesammelt Gewebe mit idiopathischen Parkinson-Krankheit eine hohe Rate von Fehldiagnose haben kann; daher in vitro Studien aus solchen Geweben Parkinson-Krankheit zu studieren , wie einem präklinischen Modell zwecklos werden kann. Durch das Sammeln von postmortalen humanen Leptomeningen mit einer bestätigten neuropathologischen Diagnose der Parkinson-Krankheit und gekennzeichnet durch nigrostriatalen Zellverlust und die intrazelluläre Proteineinschlüsse genannt Lewy - Körperchen, kann man sicher sein , dass klinisch beobachtet Parkinsonismus nicht von einem anderen zugrundeliegenden Krankheitsprozess verursacht wird (zB Tumor, Arteriosklerose). Dieses Protokoll presents die Präparation und Herstellung von postmortalen menschlichen Leptomeningen zur Ableitung eines meningeal Fibroblasten-Kultur. Dieses Verfahren ist robust und besitzt eine hohe Erfolgsquote. Die Herausforderung der Kultur liegt Sterilität als das Gehirn Beschaffungs allgemeinen nicht unter sterilen Bedingungen durchgeführt wird. Daher ist es wichtig, die Kulturmedien mit einem Cocktail aus Penicillin, Streptomycin und Amphotericin B. zu ergänzen Die Ableitung der meningealen Fibroblasten von Autopsie bestätigten Fälle mit Parkinson-Krankheit ist die Grundlage für in vitro - Modellierung von Parkinson-Krankheit. Meningeale Fibroblasten erscheinen 3-9 Tage nach der Probenvorbereitung und etwa 20-30 Millionen Zellen können in 6-8 Wochen kryokonserviert werden. Die meningeal Fibroblasten-Kultur ist homogen und die Zellen exprimieren Fibronektin, eine häufig verwendete Marker Hirnhaut zu identifizieren.

Wenn das Leptomeningen Verarbeitungsprotokoll erfolgreich war, Auswuchs meningealer Fibroblasten beobachtet ersten drei bis neun Tage nach der Sektion, obwohl dies von der Länge der Post-mortem-Intervall für das Gehirn verlassen können. Abbildung 1 zeigt meningeal Fibroblasten - Kulturen von vier verschiedenen Spendern. 1A zeigt eine Leptomeningen Stück von einem Deckglas (dunkel diagonale Linie) und Fibroblasten - Auswuchs um das Gewebe vier Tage nach d...

Die Leptomeningen Explantatkultur Protokoll aus menschlichem post mortem Gehirn ist eine technisch robuste und einfache Art und Weise Fibronektin-positive meningeal Fibroblasten innerhalb von 6-8 Wochen und kryokonserviert werden etwa 20-30 Millionen Zellen abzuleiten.

Ableitung von Leptomeningen Explantation Kulturen von Postmortem Human Brain Donors

Even though great progress has been made in the clinical characterization of Parkinson&#39;s disease, several studies report that the diagnosis of ...

Ich bin Birgitt Schule, die Direktorin des Hirnspendeprogramms am Parkinson's Institute and Clinical Center. In diesem Video beschreiben wir eine Technik für eine Explantat-Zellkultur und die Dauer von primären Fibroblasten aus Leptomeningen des postmortalen menschlichen Gehirns von Patienten mit Parkinson-Krankheit. Diese Fibroblasten können für eine Vielzahl von Anwendungen verwendet werden, einschließlich zellbasierter Assays.Dies ist wichtig, da wir Zelllinien aus autopsiegesicherten Fällen von sporadischer Parkinson-Krankheit mit Lewy-Körperchen-Pathologie untersuchen können. Beginnen Sie damit, alle erforderlichen Materialien in die Gewebekulturhaube zu geben. Alle Gegenstände, die in die Dunstabzugshaube gelangen, müssen mit 70 % Ethanol besprüht und abgewischt werden.Der erste Schritt besteht darin, die Hirnhäute von der Röhre in die Schneideschale zu übertragen. Beginnen Sie damit, etwa 10 Milliliter phosphatgepufferte Kochsalzlösung in eine sterile 10 Zentimeter große Schneidschale zu gießen. Hier sieht man die Hirnhäute.Übertragen Sie die Hirnhäute vorsichtig mit einer sterilen Pinzette in die Schneidschale. Führen Sie diesen Schritt langsam aus, um ein Reißen zu verhindern. Der nächste Schritt besteht darin, die Hirnhäute in PBS zu waschen, um so viel Blut wie möglich zu entfernen.Wenn deine Probe zu blutig ist, kannst du sie in eine andere Schneideschale umfüllen. Gib weitere 10 Milliliter PBS in eine frische 10-Zentimeter-Schale. Wiederholen Sie diese Wäsche, um weiterhin Blut aus den Hirnhäuten zu entfernen.Zum Schluss die Hirnhäute in eine frische 10-Zentimeter-Schale mit PBS geben. Wenn Sie fertig sind, decken Sie die Schale ab und geben Sie sie in das Präpariermikroskop in der Laminar-Flow-Haube. Dieser nächste Schritt besteht darin, die Hirnhäute weiter in kleinere Stücke zu schneiden.Trennen Sie mit zwei sterilen Skalpellen die Blutgefäße vorsichtig von den Hirnhäuten mit einer flachen Schabebewegung. Bereiten Sie einen Bereich vor, der groß genug ist, um etwa 18 3 x 3 Millimeter große Stücke zu schneiden, wie in diesem Bild gezeigt. Nehmen Sie dann das Skalpell und schneiden Sie die vorbereitete Region mit einer Schaukelbewegung in 3 Millimeter x 3 Millimeter große Stücke.Es ist einfacher, dies in einem schrittweisen Prozess zu tun, indem man zuerst die Hirnhäute in größere Stücke schneidet und diese dann in kleinere Abschnitte schneidet. Decken Sie die Schneidschale ab und geben Sie sie zurück in die Gewebekulturhaube. Bereiten Sie sich als Nächstes darauf vor, die Hirnhäute in eine Sechs-Well-Gewebekulturplatte zu überführen, die 30 bis 60 Minuten lang mit 1 Milliliter 0,1 Prozent Gelatine beschichtet wurde.Geben Sie einen Milliliter Meningemedium in jede Vertiefung. Übertragen Sie dann mit einer sterilen Pinzette drei bis vier Hirnhäute in die Mitte jeder Vertiefung. Die Zellen, die auf dieser Platte gezüchtet werden, werden eine Passage Null sein.Im nächsten Schritt werden Deckgläser verwendet, um sicherzustellen, dass die Hirnhäute stationär sind und in Kontakt mit der Kulturschale bleiben. Legen Sie ein steriles 15 Millimeter langes kreisförmiges Deckglas über die Hirnhäute. Gegebenenfalls die Hirnhäute mit einem Deckglas neu positionieren.Drücken Sie dann mit der Pinzette fest auf das Deckglas, um sicherzustellen, dass die Stücke die Platte berühren. Dieses Bild zeigt die Hirnhäute, die mit einem Deckglas an Ort und Stelle gehalten werden. Setzen Sie die Abdeckung über die Sechs-Well-Platte und geben Sie die Platte vorsichtig in einen Inkubator, der auf 37 Grad Celsius und 5 % Kohlendioxid eingestellt ist.Geben Sie nach zwei Tagen Kultur einen weiteren Milliliter frisches Hirnhäutchen in jede Vertiefung. Nach sieben Tagen aspirieren Sie die Medien. Füllen Sie dann jede Vertiefung mit 2 Millilitern frischem Medium auf.Füllen Sie die Vertiefungen nach dem siebten Tag jeden zweiten Tag mit 2 Millilitern Frischmedium auf. Dieses Bild zeigt den Anfangstag der Hirnhäute und der Kultur unter einem inversen Mikroskop. Nach etwa sechs bis neun Tagen kann eine zelluläre Anheftung im ersten Auswuchs beobachtet werden.Zwischen 15 und 19 Tagen nimmt die Zellzahl zu und das Wachstum wird dichter. Meningeale Fibroblasten zeichnen sich durch die Expression von Fibronektin aus. Diese Bilder zeigen kultivierte Meningealzellen, die gefärbt wurden und positiv für Fibronektin sind.Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man Leptomeninge-Explantatkulturen von postmortalen menschlichen Gehirnspendern ableiten kann. Diese Technik bietet eine einfache und robuste Möglichkeit, meningeale Fibroblasten innerhalb von drei bis sechs Wochen zu gewinnen, und ermöglicht es, 15 bis 20 Millionen Zellen mit einer niedrigen Passagezahl zu lagern.

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Präparation frei schwebender Schnittkulturen aus einem erwachsenen menschlichen Gehirn

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Induktion von Leptomeningealzellen Modifikation über intrazisternale Injektion

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Isolierung von Geweben des Zentralnervensystems und zugehörigen Hirnhäuten für die nachgeschaltete Analyse von Immunzellen

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Erfahren Sie die Explantatkultur von Leptomeningen aus postmortem menschlichem Hirngewebe zur Gewinnung fibronektin-positiver Fibroblasten. Diese Methode ermöglicht die Erforschung von Parkinson-Zelllinien.

Ableitung von Leptomeningen Explantation Kulturen von Postmortem Human Brain Donors

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