Name: Ableitung von Leptomeningen Explantation Kulturen von Postmortem Human Brain Donors (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-21T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 18 s
Description: Erfahren Sie die Explantatkultur von Leptomeningen aus postmortem menschlichem Hirngewebe zur Gewinnung fibronektin-positiver Fibroblasten. Diese Methode ermöglicht die Erforschung von Parkinson-Zelllinien.

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Die Entwicklung dieses Protokolls wurde durch private Spenden finanziert, die an das Gehirnspendeprogramm des Parkinson's Institute gerichtet waren.

Das Gehirn Spende Anmeldung umfasst die Dokumentation vom Registranten ihrer Absicht zu spenden. Die Autopsie Erlaubnis für Gewebeentnahme wird durch die nächsten Angehörigen zur Verfügung gestellt, wie dies gesetzlich zulässig ist. Wissenschaftliche Studien gesammelt Autopsieproben verwendet werden von der Institutional Review Board (IRB) überprüft, um die Einhaltung Health Insurance Portability and Accountability Act (HIPAA) Vorschriften. HINWEIS: Leptomeningen Proben werden durch das Gehirn Dissektor oder neuropathologist während einer Gehirnsezierung gesammelt und in 50 ml konischen Röhrchen, die 25-30 ml Meningen Wachstumsmedium gespeichert. Die Probe wird bei 4ºC bis zur Probenvorbereitung aufbewahrt. Die Verarbeitung sollte so schnell wie möglich durchgeführt werden, da die Lebensfähigkeit von Zellen mit der Zeit post mortem abnimmt. 1. Set-up, bevor die Leptomeningen Dissection starten Hinweis: Die Schritte 1,1-1,3 sind in einem Biosicherheitsschrank durchgeführt werden. <ol><li> Bereiten Meningen Wachstumsmedien durch die Kombination 375 ml Dulbeccos modifiziertem Eagle-Medium, 100 ml fötalem Rinderserum, 5 ml 10 mM nicht-essentielle Aminosäuren, 5 ml 200 mM L-Alanyl-L-Glutamin, 5 ml 100 mM Natriumpyruvat, 5 ml 10.000 U / ml Penicillin / Streptomycin und 5 ml 250 ug / ml Amphotericin B in 500 ml-Filtereinheit. Filter und mischen. Verwenden Sie Medien für bis zu vier Wochen. </li><li> Legen Sie alle Materialien, die in der Biosicherheitsschrank vor der Präparation beginnen: 4x Petrischalen, 2x 6-Well-Platten, 2x Skalpelle, 15-20 sterilisierten 15-mm-Deckgläser, Phosphatpuffer-Salzlösung (PBS), serologischen Pipetten, Absaugen Pipetten. </li><li> 1 ml steriles autoklavierte 0,1% ige Gelatinelösung zu jeder Vertiefung einer Platte mit 6 Vertiefungen. Stellen Sie den Teller zur Seite 30-60 min. Bereiten Sie 2x 6-Well-Platten. </li></ol> 2. Herstellung von Leptomeningen Proben Hinweis: Die Schritte 2,1-2,3 sind in einem Biosicherheitswerkbank durchgeführt werden. <ol><li> In etwa 10 ml PBSeine sterile 10-cm-Gewebekulturschale und die Meningen Probe in die Schüssel legen. Mit einer Pinzette vorsichtig waschen Leptomeningen mit PBS Blut zu entfernen. </li><li> Übertragen Sie die Meningen in eine neue 10-cm-Gewebekulturschale mit 10 ml frischem PBS und Waschen fortzusetzen. Bei Bedarf wiederholen, so viel Blut wie möglich zu entfernen. </li><li> Mit Hilfe von zwei Skalpelle schneiden Leptomeningen Gewebe in einem ca. 6 cm x 6 cm großes Stück. </li><li> Deckel auf einer Kulturschale und in ein Präpariermikroskop in einer horizontalen laminaren Strömungshaube. </li></ol> 3. Dissection von Leptomeningen Tissue Hinweis: Die Schritte 3,1-3,3 sind in einer horizontalen Laminar-Flow-Haube durchgeführt werden, um ein Binokular mit. <ol><li> Entfernen Blutgefäße aus einem Bereich auf der Leptomeningen Stück (Schritt 2.3) groß genug, um mindestens 20 bis 25 März mm x 3 mm Stücke zu schaffen. Halten Sie die Leptomeningen an Ort und Stelle mit einem Skalpell und mit dem anderen, verwenden Sie eine sanfte und flache Schaben motion die Gefäße zu trennen. </li><li> Schneiden Sie kleine Quadrate von Gewebe aus dem vorbereiteten Region. Schneiden Sie in einem schrittweisen Prozess durch erste größere Stücke zu machen und dann diejenigen in kleinere Abschnitte schneiden. </li><li> Verwenden Sie ein Skalpell, das Gewebe in Position zu halten und ein weiteres Skalpell das Gewebe mit einer Schaukelbewegung zu schneiden. Aufgrund der Konsistenz des Gewebes, ist es schwierig, die Skalpelle, gegeneinander zu gleiten. Dies wird nur das Gewebe zerreißen und führt in unregelmäßigen Kanten. </li><li> Weiter, um die Stücke zu halbieren, bis es ca. 20-25 3 mm x 3 mm große Stücke. </li></ol> 4. Übertragung von Dissected Meninges Stück auf Gewebekulturplatten HINWEIS: Schritt 4 ist im Inneren eines biologischen Sicherheit Schrank durchgeführt werden. <ol><li> Absaugen Gelatine aus 6-Well-Platte (aus Schritt 1.3). 1 mL Hirnhaut Wachstumsmedien in jede Kammer. Mit einer sterilen Pinzette, legen 3-4 Biopsie Stücke in jede Vertiefung. </li></ol> 5. Platzierung der Deckgläser über Meninges Pieces Hinweis: Die Schritte 5,1-5,2 sind in einer horizontalen Laminar-Flow-Haube durchgeführt werden, um ein Binokular mit. <ol><li> Decken Sie die Stücke mit 1-2 sterilen 15-mm-Kreisdeck pro Vertiefung. </li><li> Drücken Sie fest mit einer Pinzette die Stücke berühren den Boden der Platte zu gewährleisten. Dies ermöglicht Befestigung von Gewebestücken an den Boden des Bohrlochs. </li><li> Legen Sie die 6-Well - Platte in eine 37 ° C, 5% CO 2 Inkubator. </li></ol> 6. Zellkultur Wartung Hinweis: Die Schritte 6,1-6,3 sind in einem Biosicherheitswerkbank durchgeführt werden. Behandeln Sie Kulturschalen mit Sorgfalt als Deck sollten nicht die Meningen Stücke bewegen und entfernen. <ol><li> Nach 2 Tagen in Kultur zusätzlich 1 ml frisches Meningen Wachstumsmedien in jede Vertiefung hinzu. </li><li> Am 7. Tag absaugen sorgfältig die Medien und fügen Sie 2 ml frisches Medium zu jeder Vertiefung. </li><li> Nach dem Tag 9, weiterhin Wachstumsmedien wechseln alleanderen Tag bis Kultur wird konfluent. </li></ol> 7. Passagierung HINWEIS: Alle Schritte in einem Biosicherheitsschrank durchgeführt werden sollen. Sobald meningealen Fibroblasten wurden aus den meningealen Gewebestücke migriert und beginnen zu den Rändern des Kulturgefäßes zu wachsen, meningealen Fibroblasten in größere Kulturschale erweitern. <ol><li> Vor dem Start der Passagierung Beschichtung der Kulturschale mit 1% Gelatine für 15-30 min. </li><li> Absaugen Medien von 6-Well-Platte und waschen Sie die Zellen mit 2 ml PBS. </li><li> 1 ml Trypsin / EDTA zu jeder Vertiefung und Inkubation bei 37 ° C für 5-10 min. Es ist nicht erforderlich, die Deckgläser oder die meningealen Gewebe für diesen Schritt zu entfernen. </li><li> Wenn die Zellen sind gerundet und beginnen zu lösen, fügen Sie 2 ml Kulturmedien. </li><li> Pipette Zellen nach oben und unten, um vollständig alle Klumpen stören und die Zelllösung zu größeren Kulturschale übertragen. </li><li> Verwenden, um ein Verhältnis von 1: 3 bis 1: 4 zu Zellen von drei 6-Well-Schalen in kombinierenzu einer T75 Kulturschale. </li><li> Sobald Zellen meningealen Fibroblasten in T75 Kulturflaschen konfluent sind, trypsinize die Zellen, und in Kryokonservierung Medien bei 1x10 6 Zellen / ml pro Fläschchen Kryokonservierung. Ein T75 Kulturflasche mit konfluenten meningeal Fibroblasten enthält etwa 5-7 Millionen Zellen. </li></ol> 8. Charakterisierung der Meningeale Fibroblasten durch Immunostaining HINWEIS: Vor Beginn des Verfahrens, Herstellung von 4% Paraformaldehydlösung, 5% normalem Ziegenserum in PBS (Blocking-Puffer), 0,3% Triton X-100 in PBS (Permeabilisierung Puffer), primäre und sekundäre Antikörperlösungen und 1 &amp; mgr; g / ml Hoechst 33342 in PBS von 10 mg / ml Stamm verdünnt. <ol><li> Seed 15.000 bis 30.000 meningealen Fibroblasten in 8-Well-Kammerobjektträger mit 0,1% Gelatine beschichtet. </li><li> Nach 24 Stunden, wenn die Zellen gebunden sind, fixieren Zellen in 100 &amp; mgr; l 4% Paraformaldehyd pro Vertiefung für 10 Minuten bei Raumtemperatur. Waschen Sie die Vertiefungen 3 mal mit 1x PBS. </li><li> Permeabilisierung der Zellen mit 150 &amp; mgr; l 0,3% Triton X-100 für 5 min bei Raumtemperatur. Waschen Sie die Vertiefungen 3 mal mit 1x PBS. </li><li> Mit 200 &amp; mgr; l Blockierungslösung (PBS + 5% normales Ziegenserum) für 1 h bei Raumtemperatur. </li><li> Saugen Sie das Blockierungslösung, und fügen Sie 150 ul der gewünschten Primär in Blockierungslösung verdünnt Antikörper. Für Doppel-Färbung, bereiten Verdünnungen von primären Antikörpern in separaten Zentrifugenröhrchen auf Eis arbeitet wie folgt: <ol><li> Vorbereitung 1: 300 Verdünnung von anti-Fibronectin + 1: 200-Verdünnung von Anti-Nestin in Blockierlösung. Bereiten Sie 1: 250 Verdünnung von Anti-SERPINH1 + 1: 1000 Verdünnung von Anti-TuJ1 in Blocking-Lösung. Vorbereitung 1: 250 Verdünnung von anti-SERPINH1 + 1: 100-Verdünnung von anti-SOX2 in Blockierungslösung </li></ol></li><li> über Nacht bei 4 ° C inkubieren. </li><li> Waschen Sie die Vertiefungen 3 mal mit 1x PBS. </li><li> Bereiten Sie eine Arbeits 1: 400 Verdünnung von fluoreszenzmarkierten Sekundärantikörper Ziege anti-Kaninchen (grün; Ex / Em 2 </sup&gt; 495/519 nm) und Ziege anti-Maus (rot; Ex / Em 2 590/617 nm) in Blocking - Lösung und mit 100 &amp; mgr; l zu jeder Vertiefung. Inkubieren für 1 h im Dunkeln bei Raumtemperatur. Dann waschen Brunnen einmal mit 1x PBS. </li><li> Je 100 &amp; mgr; l von 1 ug / ml Hoechst 33342 (blau; Ex / Em 2 358/461 nm) Lösung in jede Vertiefung und Inkubation für 3 min im Dunkeln. Waschen Sie Wells 3 mal mit 1x PBS, in der auch in der letzten 1x PBS waschen lassen, und decken Sie die Folie mit einer Aluminiumfolie. </li><li> Analysieren Sie die Zellen unter dem Fluoreszenzmikroskop. </li></ol>

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<li>Vangipuram, M., Ting, D., Kim, S., Diaz, R., Schüle, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Skin+punch+biopsy+explant+culture+for+derivation+of+primary+human+fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Skin punch biopsy explant culture for derivation of primary human fibroblasts.</a> J Vis Exp. (77), e3779(2013).</li>
<li>Byers, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SNCA+triplication+Parkinson%27s+patient%27s+iPSC-derived+DA+neurons+accumulate+alpha-synuclein+and+are+susceptible+to+oxidative+stress%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">SNCA triplication Parkinson's patient's iPSC-derived DA neurons accumulate alpha-synuclein and are susceptible to oxidative stress.</a> PLoS One. 6 (11), e26159(2011).</li>
<li>Sanders, L. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((LRRK2+mutations+cause+mitochondrial+DNA+damage+in+iPSC-derived+neural+cells+from+Parkinson%27s+disease+patients%3A+reversal+by+gene+correction%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol+Dis%22%5BJournal%5D)">LRRK2 mutations cause mitochondrial DNA damage in iPSC-derived neural cells from Parkinson's disease patients: reversal by gene correction.</a> Neurobiol Dis. 62, 381-386 (2014).</li>
<li>Beevers, J. E., Caffrey, T. M., Wade-Martins, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induced+pluripotent+stem+cell+%28iPSC%29-derived+dopaminergic+models+of+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+Soc+Trans%22%5BJournal%5D)">Induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived dopaminergic models of Parkinson's disease.</a> Biochem Soc Trans. 41 (6), 1503-1508 (2013).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Dieses Protokoll beschreibt einen einfachen und robusten Protokoll eine meningealen Fibroblastenkultur von humanen post mortem Leptomeningen in Verbindung mit einer Gehirn Spende gesammelt abzuleiten. Es gibt sehr wenige Beschreibungen von Protokollen Zellkulturen aus postmortalen menschlichen Material abzuleiten. Zwei Studien beschreiben Haut abgeleiteten Fibroblastkulturen 7, 8, 9, eine Studie beschreibt dura Proben <sup clas...

Meninges bestehen aus drei Membranen, die das Gehirn zu schützen: Dura mater, Arachnoidea und Pia mater. In jüngerer Zeit wurde erkannt , dass Meningen eine wichtige Rolle auch in der Entwicklung des Gehirns und des Gehirns Homöostase 1. Meningen aus mesenchymalen und Neuralleiste abgeleiteten Zellen abgeleitet und interessanterweise , es , dass Vorläuferzellen in Meningen wurden , können in verursachen Neuronen in vitro und vivo nach der Transplantation 2, 3, 4 wohnhaft gezeigt. Meningen Kulturen wurden auch erfolgreich als Feeder - Schichten verwendet werden, wie sie für stromal cell-derived induzierende Aktivität besitzen , die Differenzierung von embryonalen Stammzellen in dopaminerge Neuronen 5. Außerdem haben Leptomeningen das Potential direkt differenzieren sich in Neuronen, Astrozyten und Oligodendrozyten unter ischämischen Bedingungen 6. Aus diesem Protokoll werden menschliche Obduktion Hirnhaut Proben aus der Arachnoidea und Pia mater gesammelt, kollektiv die Leptomeningen und werden als Teil eines menschlichen Gehirns Spende für wissenschaftliche Zwecke beschafft. Sezieren des Gehirns wird in 24 h des Todes durchgeführt und die Probe wird in Leptomeningen Kaltwachstumsmedien für die Weiterverarbeitung in der nächsten 6-8 h angeordnet, wie hier in diesem Protokoll veranschaulicht. Dieses Protokoll beschreibt die Präparation und Herstellung von Human Meningen Proben für die Entwicklung der Patienten primären Leptomeningen Zellkultur. Das Gewebe wird zugeschnitten 25-30 Stücke von ca. 3 mm x 3 mm Quadraten. Drei Stücke sind in jedem 6-Well-Gelatine beschichtete gut und gehalten mit runden Glasplättchen gelegt. Die Meningen Präparation dauert etwa 25-35 min. Die größte Herausforderung bei dieser Kultur ist Sterilität wie das Gehirn Beschaffung, Transport und Präparation werden in der Regel nicht unter sterilen Bedingungen durchgeführt. Therefore, ist es wichtig, die Kulturmedien mit einem Cocktail aus Penicillin, Streptomycin und Amphotericin B und verwenden Multiwellschalen separat Kulturgewebestücke zu ergänzen. Outgrowth meningealer Fibroblasten erfolgt in der Regel innerhalb der ersten Woche. Medium wird alle zwei bis drei Tage gewechselt, bis die Zellen konfluent sind und die Zellen enzymatisch agiert. Die meningeal Fibroblasten sind kryokonservierten bei 1 Million Zellen pro ml / Fläschchen in Kryokonservierung Medien. Mit diesem Protokoll 20-30 Millionen meningealen Fibroblasten können in 6-8 Wochen für die Kryokonservierung ableiten. Downstream Anwendungen dieser meningeal Fibroblasten sind Primärkulturen für die Erforschung von Krankheiten, direkte neuronale Differenzierung oder Ableitung von induzierten pluripotenten Stammzellen, die aus den Leptomeningen für das Verständnis von Krankheitsmechanismen und für die Arzneimittelentwicklung.

<table><tbody><tr><td>Corning Petrischalen</td><td>Fisher Scientific</td><td>351029</td><td></td></tr><tr><td>Nunc 6-Well-Platte</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-832-11</td><td></td></tr><tr><td>15-mm-Deckgläser</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-545-83 15CIR-1D</td><td></td></tr><tr><td>Skalpelle, sterile Klinge, Nr. 15</td><td>Miltex</td><td>4-415</td><td></td></tr><tr><td>Gebogene Präzisionszange</td><td>Fisher Scientific</td><td>16-100-122</td><td></td></tr><tr><td>Serologische Pipetten</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-678-11E</td><td></td></tr><tr><td>Pasteur-Pipetten</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-230490</td><td></td></tr><tr><td>Gelatine</td><td>Sigma</td><td>G1890-100G</td><td></td></tr><tr><td>Phosphatpuffer Kochsalzlösung</td><td>Fisher Scientific</td><td>SH30264.02</td><td></td></tr><tr><td>Corning 500 mL Filtereinheit</td><td>Fisher Scientific</td><td>430770</td><td>Kombinieren Sie Medienkomponenten und Filter.</td></tr><tr><td>Nunc Zellkultur-behandelte Kolben mit Filterkappen, T175 cm2&nbsp;</td><td>Thermo Scientific</td><td>178883</td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>Katalognummer</td><td>Kommentare</strong</td></tr><tr><td>>Growth Media</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hyclone DMEM Fisher</td><td>Scientific</td><td>SH30081.02</td><td></td></tr><tr><td>Hyclone FBS</td><td>Fisher Scientific</td><td>SH30910.03</td><td></td></tr><tr><td>MEM Lösung für nicht-essentielle Aminosäuren (100x)</td><td>Thermo Fisher</td><td>11140-050</td><td></td></tr><tr><td>GlutaMAX Supplement (100x)</td><td>Thermo Fisher</td><td>35050-061</td><td></td></tr><tr><td>Natriumpyruvat (100 mM)</td><td>Thermo Fisher</td><td>11360-070</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin-Streptomycin (10.000 U/ml)</td><td>Thermo Fisher</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>Amphotericin B (gelbe Lösung/250 &micro; g/mL)</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP264520</td><td></td></tr><tr><td>Bambanker Freeze 120 mL</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC9582225</td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>Katalognummer<</td><td>strong>Kommentare</td></tr><tr><td>Fibronektin-Färbung</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>8-Well-Kammer-Schieber&nbsp;</td><td>Fisher</td><td>Scientific 1256518</td><td></td></tr><tr><td>20% Paraformaldehyd&nbsp;</td><td>Elektronenmikroskopie</td><td>15713</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>T8787</td><td></td></tr><tr><td>100% Glycerin</td><td>BioRad</td><td>9455</td><td></td></tr><tr><td>100% normales Ziegenserum</td><td>Fisher Scientific</td><td>101098-382</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Fibronektin-Antikörper [F1]</td><td>Abcam</td><td>ab32419</td><td>1:300 Verdünnung in Blockierungslösung</td></tr><tr><td>Anti-SERPINH1</td><td>Sigma</td><td>S5950-200ul</td><td>1:250 Verdünnung in Blockierungslösung</td></tr><tr><td>Anti-SOX2</td><td>Millipore</td><td>MAB4343</td><td>1:100 Verdünnung in Blockierungslösung</td></tr><tr><td>Anti-Nestin</td><td>Millipore</td><td>MAB5326</td><td>1:200 Verdünnung in Blockierungslösung</td></tr>, <tr><td>Anti-TUJ1</td>, <td>Covance</td><td>MMS-435P</td>, <td>Verdünnung 1:1.000, Verdünnung in Blockierungslösung</td></tr>, <tr><td>Alexa Fluor 488, Anti-Kaninchen</td>, <td>Thermo Fisher</td><td>A11029</td><td>1:400, Verdünnung in Blockierungslösung; (grüner Kanal; Ex/Em2 495/519 nm)&nbsp;</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 555 Anti-Maus</td><td>Thermo Fisher</td><td>A21424</td><td>1:400 Verdünnung in Blockierungslösung; (roter Kanal; Ex/Em2 590/617 nm)&nbsp;</td></tr><tr><td>Hoechst 33342 Beizmittel</td><td>Thermo Fisher</td><td>H3570</td><td>auf eine Endkonzentration von 1,0 & mu verdünnen; g/ml; (blauer Kanal; Ex/Em2 358/461 nm)</td></tr><tr><td colspan="4">Lieferanten sind Vorschläge, ähnliche Produkte von alternativen Anbietern können ebenfalls verwendet werden.</td></tr></tbody></table>

ableitung von leptomeningen explantation kulturen von postmortem human brain donors

Derivation of Leptomeninges Explant Cultures from Postmortem Human Brain Donors

Obwohl große Fortschritte in der klinischen Charakterisierung der Parkinson-Krankheit, einige Studien durchgeführt worden, berichten, dass die Diagnose der Parkinson-Krankheit ist nicht pathologisch bis zu 25% der klinisch diagnostizierten Parkinson-Krankheit bestätigt. Daher ist aus klinisch diagnostizierten Patienten gesammelt Gewebe mit idiopathischen Parkinson-Krankheit eine hohe Rate von Fehldiagnose haben kann; daher in vitro Studien aus solchen Geweben Parkinson-Krankheit zu studieren , wie einem präklinischen Modell zwecklos werden kann. Durch das Sammeln von postmortalen humanen Leptomeningen mit einer bestätigten neuropathologischen Diagnose der Parkinson-Krankheit und gekennzeichnet durch nigrostriatalen Zellverlust und die intrazelluläre Proteineinschlüsse genannt Lewy - Körperchen, kann man sicher sein , dass klinisch beobachtet Parkinsonismus nicht von einem anderen zugrundeliegenden Krankheitsprozess verursacht wird (zB Tumor, Arteriosklerose). Dieses Protokoll presents die Präparation und Herstellung von postmortalen menschlichen Leptomeningen zur Ableitung eines meningeal Fibroblasten-Kultur. Dieses Verfahren ist robust und besitzt eine hohe Erfolgsquote. Die Herausforderung der Kultur liegt Sterilität als das Gehirn Beschaffungs allgemeinen nicht unter sterilen Bedingungen durchgeführt wird. Daher ist es wichtig, die Kulturmedien mit einem Cocktail aus Penicillin, Streptomycin und Amphotericin B. zu ergänzen Die Ableitung der meningealen Fibroblasten von Autopsie bestätigten Fälle mit Parkinson-Krankheit ist die Grundlage für in vitro - Modellierung von Parkinson-Krankheit. Meningeale Fibroblasten erscheinen 3-9 Tage nach der Probenvorbereitung und etwa 20-30 Millionen Zellen können in 6-8 Wochen kryokonserviert werden. Die meningeal Fibroblasten-Kultur ist homogen und die Zellen exprimieren Fibronektin, eine häufig verwendete Marker Hirnhaut zu identifizieren.

Wenn das Leptomeningen Verarbeitungsprotokoll erfolgreich war, Auswuchs meningealer Fibroblasten beobachtet ersten drei bis neun Tage nach der Sektion, obwohl dies von der Länge der Post-mortem-Intervall für das Gehirn verlassen können. Abbildung 1 zeigt meningeal Fibroblasten - Kulturen von vier verschiedenen Spendern. 1A zeigt eine Leptomeningen Stück von einem Deckglas (dunkel diagonale Linie) und Fibroblasten - Auswuchs um das Gewebe vier Tage nach d...

Die Leptomeningen Explantatkultur Protokoll aus menschlichem post mortem Gehirn ist eine technisch robuste und einfache Art und Weise Fibronektin-positive meningeal Fibroblasten innerhalb von 6-8 Wochen und kryokonserviert werden etwa 20-30 Millionen Zellen abzuleiten.

Ableitung von Leptomeningen Explantation Kulturen von Postmortem Human Brain Donors

Even though great progress has been made in the clinical characterization of Parkinson&#39;s disease, several studies report that the diagnosis of ...

Ich bin Birgitt Schule, die Direktorin des Hirnspendeprogramms am Parkinson's Institute and Clinical Center. In diesem Video beschreiben wir eine Technik für eine Explantat-Zellkultur und die Dauer von primären Fibroblasten aus Leptomeningen des postmortalen menschlichen Gehirns von Patienten mit Parkinson-Krankheit. Diese Fibroblasten können für eine Vielzahl von Anwendungen verwendet werden, einschließlich zellbasierter Assays.Dies ist wichtig, da wir Zelllinien aus autopsiegesicherten Fällen von sporadischer Parkinson-Krankheit mit Lewy-Körperchen-Pathologie untersuchen können. Beginnen Sie damit, alle erforderlichen Materialien in die Gewebekulturhaube zu geben. Alle Gegenstände, die in die Dunstabzugshaube gelangen, müssen mit 70 % Ethanol besprüht und abgewischt werden.Der erste Schritt besteht darin, die Hirnhäute von der Röhre in die Schneideschale zu übertragen. Beginnen Sie damit, etwa 10 Milliliter phosphatgepufferte Kochsalzlösung in eine sterile 10 Zentimeter große Schneidschale zu gießen. Hier sieht man die Hirnhäute.Übertragen Sie die Hirnhäute vorsichtig mit einer sterilen Pinzette in die Schneidschale. Führen Sie diesen Schritt langsam aus, um ein Reißen zu verhind

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Dieser Artikel beschreibt Methoden zur Ableitung von angereicherten Populationen von murinen Oligodendrozyten-Vorläuferzellen (OPC) in primären Kultur, die, um zu reifen Oligodendrozyten (OLS) produzieren differenzieren. Darüber hinaus beschreibt dieser Bericht Techniken zur Herstellung murine myelinisierenden Co-Kulturen durch Impfen Maus OPCs auf einen Neuriten Bett Maus Spinalganglien Neuronen (DRGNs).

Ableitung von Enriched Oligodendrozyten Kulturen und Oligodendrozyten / Neuron myelinisierenden Co-Kulturen von Post-Natal Mausgeweben

Dieses Protokoll beschreibt die Ableitung von Gliazellen Eingeschränkte Vorstufen aus fötalem Rückenmark und gehalten in vitro entweder für die Transplantation oder für die Untersuchung von oligodendrocytic Linie.

Ableitung von Gliazellen Eingeschränkte Vorstufen aus E13-Mäusen

Dieses Video demonstriert eine Technik zur Herstellung von frei schwebenden Schnittkulturen aus dem erwachsenen menschlichen Gehirn. Dünne Scheiben werden mit Hilfe eines Vibratoms aus einem Gehirnschnitt erzeugt. Diese Scheiben werden dann in einem Kulturmedium suspendiert, das mit Wachstumsfaktoren ergänzt ist, um die Lebensfähigkeit des Gewebes zu erhalten.

Präparation frei schwebender Schnittkulturen aus einem erwachsenen menschlichen Gehirn

Dieses Video demonstriert eine Technik zur Etablierung einer dreidimensionalen Kultur von Gliazellen. Gliazellen aus dem Rattengehirn sind in einer photovernetzbaren Polymermatrix eingekapselt, die extrazelluläre Matrixkomponenten enthält. Nach der Inkubation in einem Wachstumsmedium vermehren sich die Gliazellen innerhalb der Stützmatrix, um eine dreidimensionale Kultur zu bilden.

Etablierung einer dreidimensionalen Kultur von Gliazellen aus dem Rattengehirn

Kammerunterstützungsgerät Cerebrospinalflüssigkeit (CSF) taucht die neuroepithelialen und zerebralen Kortex Vorläuferzellen während der frühen Entwicklung des Gehirns im Embryo. Hier beschreiben wir die Methode entwickelt, um ventrikuläre CSF aus Nagetier Embryonen unterschiedlichen Alters zu isolieren, um seine biologische Funktion untersucht. Darüber hinaus zeigen wir unsere zerebralen Kortex Explantat Dissektion und Kultur Technik, die für Explantat Wachstum ermöglicht mit minimalem Volumen...

Isolierung von Liquor aus Rodent Embryonen für die Verwendung mit Dissected Cerebral Kortikale Explantate

Dieses Protokoll beschreibt eine Methode, um einzelne Gehirn-Aging-Trajektorien durch ein Gehirn-Spenden-Programm und die richtige Charakterisierung des Gehirns zu verfolgen. Hirnspender sind an einer langfristigen Längs-Langzeitstudie beteiligt, einschließlich serieller multidimensionaler Bewertungen. Das Protokoll enthält eine detaillierte Beschreibung der Gehirnverarbeitung und eine genaue Diagnosemethodik.

Abbiategrasso Brain Bank Protocol zum Sammeln, Verarbeiten und Charakterisieren alternder Gehirne

Wir beschreiben eine intrazisternale Injektion, die eine an der Spitze gebogene Nadel verwendet, die zum Schädel stabilisiert werden kann, wodurch das Risiko einer Schädigung des darunter liegenden Parenchyms beseitigt wird. Der Ansatz kann für die genetische Schicksalskartierung und Manipulation von Leptomeningealzellen und für die Verfolgung der Bewegung von Zerebrospinalflüssigkeit verwendet werden.

Induktion von Leptomeningealzellen Modifikation über intrazisternale Injektion

In dieser Arbeit werden zwei optimierte Protokolle für die Untersuchung von residenten und peripher abgeleiteten Immunzellen innerhalb des zentralen Nervensystems, einschließlich des Gehirns, des Rückenmarks und der Hirnhäute, vorgestellt. Jedes dieser Protokolle trägt dazu bei, die Funktion und Zusammensetzung der Zellen zu bestimmen, die diese Kompartimente unter stationären und entzündlichen Bedingungen besetzen.

Isolierung von Geweben des Zentralnervensystems und zugehörigen Hirnhäuten für die nachgeschaltete Analyse von Immunzellen

Dieses Protokoll stellt eine einzigartige Möglichkeit dar, Zellkulturen des Zentralnervensystems aus embryonalen Tag-17-Mäusegehirnen für die neuro(immun)ologische Forschung zu generieren. Dieses Modell kann mit verschiedenen experimentellen Techniken analysiert werden, darunter RT-qPCR, Mikroskopie, ELISA und Durchflusszytometrie.

Etablierung gemischter neuronaler und glialer Zellkulturen aus embryonalen Mäusegehirnen zur Untersuchung von Infektionen und angeborener Immunität

Leptomeningeale lymphatische Endothelzellen (LLECs), ein kürzlich identifizierter intrakranieller Zelltyp, haben nur unzureichend verstandene Funktionen. In dieser Studie wird ein reproduzierbares Protokoll für die Entnahme von LLECs aus  Mäusen und die Etablierung von In-vitro-Primärkulturen vorgestellt. Dieses Protokoll soll es Forschern ermöglichen, sich mit den zellulären Funktionen und möglichen klinischen Auswirkungen von LLECs zu befassen.

Gewinnung und Primärkultur von leptomeningealen lymphatischen Endothelzellen

In diesem Artikel wird ein Protokoll für die Vermehrung von zerebralen Tumorzellen (CSF-CTCs) beschrieben, die von Patienten mit Melanom-assoziierter leptomeningealer Erkrankung (M-LMD) gesammelt wurden, um präklinische Modelle zur Untersuchung von M-LMD zu entwickeln.

Ex vivo Kultur von zirkulierenden Tumorzellen in der Hirnmarksflüssigkeit von Melanompatienten zur Untersuchung der Melanom-assoziierten Leptomeningealerkrankung

Erfahren Sie die Explantatkultur von Leptomeningen aus postmortem menschlichem Hirngewebe zur Gewinnung fibronektin-positiver Fibroblasten. Diese Methode ermöglicht die Erforschung von Parkinson-Zelllinien.

Ableitung von Leptomeningen Explantation Kulturen von Postmortem Human Brain Donors

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