Name: Automatische Erkennung von hochorganisierten Theta Oszillationen im Murine EEG (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-03-10T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 35 s
Description: Erfahren Sie die automatische Erkennung hochorganisierter Theta-Oszillationen im murinen EEG mittels implantierbarer Radiotelemetrie. Diese Methode ermöglicht die Analyse kognitiver Prozesse und neurologischer Erkrankungen.

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Die Autoren danken Dr. Christina Ginkel (Deutsches Zentrum für Neurodegenerative Erkrankungen, DZNE) und Dr. Robert Stark (DZNE) für ihre Unterstützung bei der Tierzucht und Tiergesundheit. Diese Arbeit wurde finanziell unterstützt vom Bundesinstitut für Arzneimittel und Medizinprodukte (BfArM), Bonn, Deutschland.

Alle Tierversuche wurden nach den Richtlinien des lokalen und institutionellen Rates über Animal Care (Universität Bonn, BfArM, LANUV, Deutschland) durchgeführt. Darüber hinaus wurde alle Tierversuche in Übereinstimmung mit überlegener Gesetzgebung durchgeführt, zum Beispiel der Europäischen Gemeinschaften Richtlinie des Rates vom 24. November 1986 (86/609 / EWG), oder einzelne regionale oder nationale Gesetzgebung. Spezifische Anstrengungen wurden gemacht, die Anzahl der verwendeten Tiere sowie deren Leiden zu minimieren. 1. Tierhaltung und EEG Aufnahmebedingungen <ol><li> Hausmäuse in Filter-Top-Käfigen oder benutzen individuell belüftete Käfige. </li><li> Übertragen Mäuse aus der Tierhaltung zu ventilierte Schränke in speziellen Laborräume, die für die implantierten Tiere und telemetrischer Aufnahmen geeignet sind. </li><li> Führen alle Tierversuche, einschließlich EEG Elektrodenimplantation und die nachfolgenden Aufnahmen unter standardisierten Bedingungen (22 ° C temtur, 12 h / 12 h Hell-Dunkel - Zyklus, 50-60% relative Luftfeuchtigkeit, Geräuschdämpfung, etc.) 18. </li><li> Vor dem Hochfrequenzsender Implantation Haustieren in Gruppen von 3 bis 4 in klar Typ - II - Polycarbonat Käfige mit Futter und Wasser ad libitum. Sie isolieren nicht einzelne Mäuse, da dies kann Stress verursachen und stören nachfolgende Experimente und Ergebnisse. </li><li> Verwenden Sie keine offenen Wohnbedingungen, aber ventilierte Schränke verwenden, anstatt während des Experimentierens und Aufnahme. </li></ol> 2. radiotelemetric EEG Elektrodenimplantation und EEG-Aufzeichnungen <ol><li> Anesthetize die Mäuse Injektion Betäubungsmitteln unter Verwendung zB ketaminehydrochloride / xylazinehydrochloride (100/10 mg / kg, intraperitoneal, ip) oder Inhalations Narkotika, zB Isofluran 17, 18. <ol><li> Für Isofluran-Narkose, positionieren Sie die Maus in eine Induktion chamber mit 4-5% Isofluran und 0,8-1% Sauerstoff oder Carbogen (5% CO 2 und 95% O 2). </li><li> Legen Sie eine Silizium facemask auf der Nase / Mund des Tieres die gewünschte Narkosetiefe zu kontrollieren und zu vermeiden Experimentator Exposition gegenüber Isofluran ein Spülsystem mit. </li><li> Verwenden Sie injizierbare Anästhetika, zB esketaminhydrochloride (100 mg / kg, ip) und xylazinehydrochloride (10 mg / kg, ip), wenn Inhalationsanästhesie nicht verfügbar ist. </li><li> Überwachen Sie die Tiefe der Anästhesie durch Prüfen der Schwanz Prise Reflex, Fuß Prise Reflex und Atemfrequenz. Beachten Sie, dass die künstliche Beatmung über Intubation bei Mäusen nicht notwendig ist. </li></ol></li><li> Implantieren den Hochfrequenzsender in eine subkutane Tasche auf dem Rücken des Tieres. <ol><li> Entfernen Sie die Körperhaare aus der Kopfhaut und vorzubehandeln die rasierte Kopfhaut mit zwei Desinfektionsmittel, dh 70% Ethanol und einer Jod-basierten Gestrüpp. </li><li> mit einem Skalpell, machenein Mittellinienschnitt auf der Kopfhaut von der Stirn bis zum nucheal Region. </li><li> Ausgehend von der Nacken- Einschnitt, bereiten eine subkutane Tasche auf der einen Seite von der Rückseite des Tieres durch eine stumpfe Dissektion mit chirurgische Scheren durchführen oder eine chirurgische Sonde. </li><li> Setzen Sie den Sender in die subkutane Tasche einschieben und die Überlänge des flexiblen Sender in den Beutel als auch führt. Besonderes Augenmerk Kontaminierung der Operationsstelle und Sender Implantat verhindert wird. Richtig isolieren steril von nicht sterilen Bereichen mit Vorhängen. </li></ol></li><li> Legen Sie das Versuchstier auf dem Stereotaxierahmen, zum Beispiel einer computerisierten 3D Stereotaxierahmen Gerät. Befestigen Sie den Schädel ein Nasenklemme und Ohrstangen mit. </li><li> Vorbehandeln den Schädel mit 0,3% H 2 O 2 weitere Gewebe aus dem Schädel zu entfernen und die Schädelnähte und craniometrics Sehenswürdigkeiten, Bregma und Lambda zu beleuchten. </li><li> Die Bohrungen an den Koordinaten der Wahl(Siehe Schritt 2.6) mit einem High-Speed-neuro Bohrer in einem drucklosen Modus mit maximaler Geschwindigkeit. HINWEIS: Druckfreies Bohren vermeidet den plötzlichen Durchbruch des Bohrkopfes und Schäden an der Rinde. Für eine Kraniotomie ist eine neuro High-Speed-Bohrer empfohlen. Wählen Sie Standard-Drillkopfdurchmesser von 0,3 - 0,5 mm einstellen, abhängig von der Elektrodendurchmesser. </li><li> Wählen Sie sorgfältig die Elektrodentyp, wenn man bedenkt die Impedanz, Durchmesser, Beschichtung etc. HINWEIS: Parylen beschichteten Wolfram oder Edelstahl-Elektroden sind die häufigsten. Die Elektrodentypen sollten nach experimentellen Anforderungen gewählt werden. Als Präventiv Manöver, Elektrodenspitzen vor der Implantation unter Verwendung von 70% igem Ethanol sterilisieren. Beachten Sie, dass die Elektrodenbeschichtung nicht für Hitzesterilisation nicht gestattet. </li><li> Für intrahippocampal CA1 EEG-Aufzeichnungen, ein Loch bohren stereotaxically bei folgenden Koordinaten: Bregma, -2 mm; mediolateral, 1,5 mm (rechte Hemisphäre); dorsoventrale, 1,3 mm (target Region: Ammonshorn (CA1) Pyramidenschicht). Bregma, -6,2 mm, mediolateral, 0 mm;: Für die Referenzelektrode, an den folgenden Koordinaten stereotaxische ein Loch oberhalb der Kleinhirnrinde bohren dorsoventrale, 0 mm. HINWEIS: Die zerebelläre Elektrode dient als Pseudo Elektrode, wie das Kleinhirn eine eher stille Hirnregion ist. Die Koordinaten stereotaxische wurden aus einer Standard-Maus-Gehirnatlas abgeleitet. </li><li> Vor dem Einführen der Elektroden, so dass sie auf die gewünschte Länge zu verkürzen. Mechanisch befestigen den extracranial Teil der Elektrode auf die Edelstahl-Helix des Senders. HINWEIS: Löten sollte vermieden werden, da dies erhebliche Rauschen in das System einbringen können. </li><li> Bringen Sie die Elektrode mit dem vertikalen Arm der stereotaktischen Gerät und legen Sie die Elektrode nach den oben genannten Koordinaten stereotaxische. </li><li> Befestigen Sie die Elektroden mit Glasionomerzement und warten, bis der Zement vollständig ausgehärtet ist. </li><li> Schließen Sie die Kopfhautmit Over-and-über Nähte mit nicht resorbierbaren 5-0 oder 6-0 Nahtmaterial. </li><li> Zur postoperativen Schmerzmanagement, verwalten Carprofen (5 mg / kg, subkutan, sc) einmal pro Tag für 4 aufeinanderfolgende Tage nach der Implantation. Beachten Sie, dass Carprofen sollte vor der ersten Einschnitt (Schritt 2.2.2) injiziert werden. </li><li> Lassen Sie die Tiere für 10 zu erholen - 14 Tage nach der Implantation, bevor die Aufnahmen und / oder Injektionsexperimente gestartet werden. </li></ol> 3. Spontane Aufnahmen von Theta Oszillationen und Pharmakologische Induction <ol><li> Aktivieren Sie den Hochfrequenzsender den magnetischen Schalter. Legen Sie das Tier mit seinem Heimkäfig auf der Aufnahmeplatte. Führen Sie langfristige Hippocampus-EEG-Aufzeichnungen für mindestens 24 bis 48 h. HINWEIS: Die Analyse der EEG-Amplitude und EEG-Frequenzeigenschaften von Langzeitaufzeichnungen bietet detaillierte Einblicke in die zirkadiane Abhängigkeit von Theta-Oszillationen und deren Assoziation mit spezifischen Verhaltens undkognitiven Bedingungen / Aufgaben. Immer verbinden EEG-Aufzeichnungen mit Videoüberwachung der Versuchstiere. </li><li> Für pharmakologische Induktion von Theta-Oszillationen, eine Einzeldosis von Urethan (800 mg / kg ip) oder einer Einzeldosis einer Muscarin-Rezeptoragonisten, beispielsweise Pilocarpin (10 mg / kg ip), Arecolin (0,3 mg / kg ip) oder Oxotremorin verwalten (0,03 mg / kg ip). Vorzubehandeln Mäuse mit N-Methylscopolamin (0,5 mg / kg ip) peripheren Muscarin Reaktionen zu vermeiden. auflösen Frisch alle Medikamente in 0,9% NaCl oder Ringer-Lösung. HINWEIS: Höhere Dosierungen von Muscarin-Rezeptor-Agonisten könnte der Anfalls Induktion bei Versuchstieren führen. Sehen Sie sich auch, dass die Dosierungen hier darstellen Sehenswürdigkeiten gegeben, die vor Dosis-Wirkungs-Studien in der Mauslinie zu untersuch erfordern. Beachten Sie, dass Urethan ist ein Mutagen und Karzinogen, das entsprechende Vorsichtsmaßnahmen bei der Lagerung und Handhabung erfordert. </li><li> Injizieren Atropin (50 mg / kg, ip) Atropin empfindlichen Typ II zu differenzierenvon Atropin unempfindliche Typ Theta I Schwingungen. HINWEIS: Die Atropin Dosierung ist wieder art- und spannungsabhängig und vorherige Bewertung Dosis-Wirkung erforderlich ist. Der optimale Zeitpunkt von Atropin Injektion hängt von den Pharmakodynamik von Muscarin-Rezeptor-Agonisten. Zur Identifizierung von Theta-II-Typ, Atropin Injektion wird 1 h nach Urethan Verabreichung empfohlen. </li><li> Versuchen Sie, die nachfolgende Anwendung verschiedener Medikamente zu vermeiden, da die systemische Verabreichung von Medikamenten globalen Transkriptions und Translationsmuster verändert, die nachfolgende EEG-Aufzeichnungen beeinflussen. Beachten Sie, dass kurzzeitige Theta-Schwingungen können auch durch sensorische Reize, wie Schwanz- oder Pfote-Kneifen induziert werden. </li><li> Extract / Export-Vertreter EEG Datensätze der Vorphase (Baseline) und die Nacheinspritzung Phase aus dem gesamten EEG-Aufzeichnung als ASCI oder TXT-Dateien, um die Pharmakokinetik der Medikamente unter Berücksichtigung angewendet werden und den Anforderungen der einzelnen Studienprotokoll. </li></ol> 4.Validierung der EEG-Elektrodenplatzierung <ol><li> Euthanize Tiere, indem sie in einer Inkubationskabine platzieren und einführen 100% Kohlendioxid. Verwenden Sie eine Füllrate von 10 bis 30% des Kammervolumens pro min mit Kohlendioxid an die vorhandene Luft in der Inkubationskammer hinzugefügt; Dies wird den Tieren in schnelle Bewusstlosigkeit mit minimaler Belastung führen. </li><li> Entfernen Sie die Maus aus der Kammer einmal Atemstillstand auftritt und eine verblasste Augenfarbe bleibt für 2-3 min. </li><li> Schneiden Sie die Elektroden aus rostfreiem Stahl und den Hochfrequenzsender Explantation. Enthaupten die Maus einer Schere oder einem Guillotine und entfernen das Gehirn aus dem neurocranium durch sanfte Manipulation mit chirurgischen Schere und Pinzette. </li><li> Befestigen Sie die Gehirne in 4% Paraformaldehyd in Phosphatpuffer-Salzlösung (PBS) (pH 7,4) über Nacht. Für Kryokonservierung, übertragen Sie die Gehirne von 30% Glukose und lagern Sie sie bei 4 ° C bis zur Weiterverarbeitung. HINWEIS: Paraformaldehyd ist als gefährlich einzustufen durch die 2012 OSHA Hazard Communication Standard (29 CFR 1910.1200). Nehmen Sie die notwendigen Vorsichtsmaßnahmen: Persönliche Schutzausrüstung verwenden, eine angemessene Belüftung und Staubbildung zu vermeiden. Darüber hinaus entfernen Zündquellen und Maßnahmen gegen elektrostatische Aufladungen treffen. Paraformaldehyd sollte nicht in die Umwelt freigesetzt werden. </li><li> Montieren Sie das extrahierte Gehirn auf dem Gewebehalter eines Kryostaten unter Verwendung eines Klebstoffs und schneiden Sie die Gehirne in 40 bis 75 &amp; mgr; m koronalen Scheiben schneiden. Montieren Sie die Scheiben auf Glasobjektträger und färben sie mit Nissl blau mit histologischen Standardverfahren; Dieses Verfahren wird den Zweigkanal zu visualisieren, die die vorherigen Elektrodenposition widerspiegelt. Beachten Sie, dass es auch möglich ist, koronalen Scheiben aus dem nativen Gehirn zu schneiden eine vibroslicer mit </li><li> Integrieren Sie nur diejenigen Tiere, die richtige EEG Elektrodenplatzierung Kriterien erfüllen; für den CA1-Region sollte die Spitze der Tiefenelektrode im Inneren der CA1 pyramidal Schicht lokalisiert werden. </li></ol><ol><li> Nehmen Sie CA1 intrahippocampal EEGs mit einer geeigneten Abtastrate ohne a priori-Filter-Cutoff. HINWEIS: Die Abtastrate, die Sender-spezifisch ist, bestimmt die obere Frequenzgrenze des EEG-Analyse. </li><li> Verarbeiten Sie die aufgezeichneten Daten mit einer Analyse-Software. Programm Zeit-Frequenz - Analysen und Berechnungen mit maßgeschneiderten Verfahren für die angemessene Kontrolle der Analysenmethoden (Abbildung 5) 20. </li><li> Schneiden Sie die aufgezeichneten EEG in Abschnitte mit einer Länge von jeweils 1 h. Verwenden Sie schnellen Computer-Prozessoren, da die Rechenzeit hoch ist. Darüber hinaus Verwendung von Software machen , die 20 - Computing auf mehrere Kernel parallelisieren können. </li></ol> 6. EEG Datenanalyse <ol><li> Analysieren Datensegmente eine komplexe Morlet Wavelet Verwendung sowohl die Frequenz und die Amplitude der Schwingungen zu berechnen. ANMERKUNG: Diese Wavelet (zB Ψ (x) = (π b)(- 1/2) exp (2 i π c x) exp (-x 2 / b), wobei b die Bandbreite Parameter ist, c die Mittenfrequenz und i die imaginäre Einheit) wurde in der Literatur häufig angewendet worden EEG zu studieren Daten, wie gewährleistet sie optimale Auflösung sowohl in der Frequenz und der Zeit 23, 24. </li><li> Verwenden Sie eine Bandbreite Parameter und Mittenfrequenz-Einstellung, die besonders gewichtet die Frequenzauflösung der Frequenzunterschiede auf dem 0,1-Hz-Ebene zu unterscheiden, während immer noch keine ausreichende Zeitauflösung zu vernachlässigen. HINWEIS: Neuronale Prozesse im Gamma - Band sind 25 von kurzer Dauer, und dies kann auch wahr halten für Theta - Rhythmen. Somit muss der analytische Ansatz ausreichende zeitliche Auflösung betrachten. </li><li> Analyse der EEG-Daten in dem Frequenzbereich von 0,2 bis 12 Hz, mit einer Schrittweite von 0,1 Hz, was die typische delta einschließlich derta und alpha Frequenzbereichen. </li><li> Stellen Sie eine automatisierte, komplexe analytische Werkzeug für die Erstellung der Theta-Frequenz-Architektur auf, die eine Standard-visuelle Inspektion von Theta-Oszillationen ersetzen kann; Dieses Verfahren ist das Theta-Detektionsverfahren (TDM) bezeichnet. </li><li> Berechnen des Quotienten aus der maximalen Amplitude in der Theta-Frequenzbereich (3,5 bis 8,5 Hz) und die maximale Amplitude in der oberen delta Frequenzbereich (2-3,4 Hz) für die Zeitfenster von 2,5 s jeweils. HINWEIS: Der Wert dieses Quotienten dient als Maß, um zu entscheiden, ob ein Theta-Schwingung aufgetreten ist. Die Definition des Theta Frequenzbereich variieren können auf den Funktionszustand und neuroanatomische Schaltung / System in Abhängigkeit analysiert werden. </li><li> Klassifizieren ein Segment als &quot;Theta Schwingungs Epoche&quot;, wenn das berechnete Verhältnis in diesem Segment mehr als 1,5 ist. ANMERKUNG: Dies gewährleistet, dass die maximale Amplitude theta mindestens 50% höher als die Amplitude in dem oberen delta Band während des verwandten 2,5-s EEGSegment. Beachten Sie, dass das Verhältnis Anpassung benötigen je nach Linie und / oder verwendeten Arten. Ein Intervall von 2,5 s eine minimale Dauer für eine Theta - Schwingung verhindert falsch-positiven Erkennungen bestimmter laut Epochen, und liegt im Bereich Definitionen anderer Publikationen 19, 26. Die obere Delta-Frequenzbereich dient als Bandsteuerfrequenz weil physiologisch relevanten Delta-Aktivität während der Nicht-Theta-Epochen erscheint, beispielsweise während des Slow-Wave-Schlaf, die sehr während Theta-Aktivität gedämpft. </li><li> Wiederholen Sie diesen Vorgang für alle 1 h Schnitt; jeder Abschnitt besteht aus 1.440 EEG-Segmente mit einer Länge von 2,5 s also jeder. </li><li> Statistisch ausgewertet Epochen die Daten der identifizierten Theta-Schwingung. </li><li> Berechnen Sie die Statistik der Gesamtlaufzeiten der festgestellten Theta Epochen; unterschiedliche oder vordefinierte Gruppen; Zyklen, wie hell / dunkel; und andere Parameter. HINWEIS: Statistics kann t-Test, ANOVA oder MANOVA, auf die Variable je nach der Anzahl der Gruppen, die Bedingungen, usw. </li><li> Berechne die Statistiken der Amplitude der detektierten theta Epochen, sondern nur in der Theta-Frequenzbereich (3,5 bis 8,5 Hz). </li><li> Bewertung der Statistiken der Frequenz der detektierten theta Epochen, sondern nur in der Theta-Frequenzbereich (3,5 bis 8,5 Hz). HINWEIS: Die theta Frequenz eines theta Epoche wird als die Frequenz zur theta Amplitude eines theta Epoche maximale Zugehörigkeit definiert. </li></ol>

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</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Theta-Aktivität ist von zentraler Bedeutung bei der systemischen Neurophysiologie. Es kann in verschiedenen Gehirnregionen, insbesondere im Hippocampus beobachtet werden, wo es an spezifische Verhaltens- und kognitive Zustände in Zusammenhang steht. Zusätzlich kann hippocampal theta pharmakologisch in Atropin empfindlichen Typ II und theta Atropin-insensitive Typ I differenziert werden. Typ I wird gedacht , um die Fortbewegung verbunden zu sein, wie Gehen oder Laufen 27, <sup class="xr...

Theta - Aktivität im Gehirn zu unterschiedlichen kognitiven und funktionalen Zustände im Zusammenhang, einschließlich Erregung, Aufmerksamkeit, willkürliche Bewegung, Erkundungsverhalten, Aufmerksamkeit Verhalten, Lernen und Gedächtnis, somatosensorischen Integration und schnelle Augenbewegungen (REM) Schlaf 1, 2. Grundsätzlich kann Theta-Aktivität als eine rhythmische Einheit in verschiedenen Hirnregionen erzeugt werden und ist sehr gut organisiert und synchronisiert als Theta-Oszillationen. Im Folgenden werden wir uns auf die Analyse und Quantifizierung von Theta - Aktivität / Schwingungen konzentrieren , die 3, innerhalb des septohippocampalen System erzeugt werden 4. Innerhalb des Septum, GABAergic, glutamatergen und cholinergen Neuronen Projekt zum Hippocampus und tragen zur Initiierung und Aufrechterhaltung von Theta Schwingungsverhalten. Es gibt eine anhaltende Diskussion darüber , ob Hippokampus - Theta - Oszillationen im Septum initiiert werden, das heißt, </em&gt; Der septalen Schrittmacher-Hippokampus - Folger - Modell, (extrahippocampal Theorie) oder intrinsisch innerhalb des Hippocampus (intrahippocampal Theorie) 5, 6, 7. Unabhängig von ihrer Herkunft, der Hippocampus-Theta-Oszillationen sind seit Jahren im Fokus des Interesses gewesen, vor allem in transgenen Mausmodellen. Diese Modelle erlauben für die Implantation von tiefen EEG - Elektroden und für die Aufzeichnung von Hippocampus - Theta - Oszillationen unter spezifischen kognitiven und Verhaltens Aufgaben 8. Hippokampus-Theta-Oszillationen sind heterogen in der Natur. Auf der Grundlage der so genannten dualistische Theorie der Theta - Oszillationen kann man zwischen Atropin empfindlichen Typ - II - Theta und Atropin unempfindliche Typ - I - Theta 9, 10, 11 unterscheiden. Letzteres kann typischerweise durch muskarinische M 1 / M induziert werden <sub&gt; 3 -Rezeptor - Agonisten, zB Arecolin Pilocarpin und Urethan. Jedoch Urethan ist ein Multi-Target-Medikament, das neben Muscarin-Aktivierung, auch komplexe Effekte auf andere Ionenkanal-Einheiten ausübt. Für Typ II theta enthält der Muscarin - Weg die Aktivierung von M 1 / M 3 und eine nachfolgende G q / 11 (G &amp; alpha;) -vermittelte Aktivierung von Phospholipase C β 1/4 (PLCß 1/4), Inositoltriphosphat (InsP 3) , diacylglycerole (DAG), Ca 2+ und Proteinkinase C (PKC). Die Rolle der PLCß 1 und PLCß 4 in thetagenesis hat in Knock-out - Studien validiert wurde mit PLCβ1 - / - und PLCβ4 - / - Mäuse einen vollständigen Verlust oder signifikante Abschwächung der Theta 12 Schwingung aufweisen, 13, 14. Zusätzliche M 1, M 3 und M 5 nachgeschalteten Targets (channels / Ströme) der muskarinischen Signalisierungskaskade gehören verschiedene Leitfähigkeiten, wie beispielsweise M-Typ - K + -Kanals (K M) über spannungsabhängigen K + -Kanals (K v 7); langsam nach Hyperpolarisation K + Kanal (Ks AHP); Leck K + Kanal (K Leck), wahrscheinlich über TWIK bezogene säureempfindliche K + Kanal (TASK1 / 3); Kationenstrom (I CAT), wahrscheinlich über Na + Leckkanal (NALCN); und I h über Hyperpolarisation und zyklische Nukleotid - gesteuerten Kanäle (HCN). Zusätzlich M 2 / M 4 Acetylcholin - Rezeptoren (AChRs) wurden berichtet mit Einwärtsgleichrichter K + -Kanal - 3,1 (K ir 3.1) und Einwärtsgleichrichter K + -Kanal 3.2 (K ir 3.2) 15 zu interferieren. Derzeit im Handel erhältliche Analysesoftware ermöglicht schnelle FFT-basierte Frequenzanalyse, beispielsweise Analyse der Leistung (P, mV 2)oder Leistungsspektrumsdichte (PSD, mV 2 / Hz). Leistung oder Leistungsspektrumsdichte (PSD) Analyse des Bereichs Theta-Frequenz gibt nur einen globalen Überblick über seine Tätigkeit. Um jedoch einen detaillierten Einblick in die kognitive und verhaltensbezogene Theta-Aktivität zu erhalten, die Analyse von hochorganisierten Theta-Oszillationen ist obligatorisch. Die Beurteilung der hochorganisierten Theta Schwingungen ist von zentraler Bedeutung im Bereich der neurodegenerativen und neuropsychiatrischen Erkrankungen. Die meisten experimentellen Krankheit Studien in transgenen Mausmodellen durchgeführt hochentwickelte neuro Ansätze zu epidurale Oberfläche und tiefe intrazerebrale EEGs aufzuzeichnen. Diese Techniken umfassen sowohl Haltegurt Systeme 16 und radiotelemetric Setups 17, 18. Theta Schwingungen können so spontan und verhaltensbezogenen Theta Schwingungen unter Langzeitaufnahmebedingungen aufgezeichnet werden. Theta-Oszillationen Zusätzlich werden Recorded folgende pharmakologische Induktion, sondern auch nach der Exposition von Tieren zu Verhaltens- oder kognitive Aufgaben oder auf sensorische Reize, wie Schwanz einklemmen. Frühe Ansätze Theta - Oszillationen wurden beschrieben von Csicsvari et al zu charakterisieren. 19. Die Autoren entwickelt, um eine halbautomatische Werkzeug für kurzfristige Theta-Analyse (15-50 min), die nicht geeignet für Langzeit-EEG-Aufzeichnungen ist. Unsere Methode, hier beschriebene, ermöglicht die Analyse der Langzeit EEG - Aufzeichnung&gt; 48 h 20. Csicsvari et al. 10 auch an der theta-delta - Verhältnis bezeichnet, aber keine Schwelle für die Bestimmung von hochorganisierten theta Schwingungen vorgesehen. Die Delta und Theta-Bereich Definitionen unserer Frequenzbereich Definitionen entsprechen. Da es nicht ausdrücklich erwähnt wird, gehen wir davon aus, dass eine FFT-basierte Methode von Csicsvari et al verwendet wird. die Kraft der Theta-Delta-Frequenzbänder zu berechnen. Dieswieder unterscheidet sich deutlich von unserem Verfahren kann, da wir Wavelet-basierte Amplituden auf einer großen Anzahl von Frequenzskalen (Δ Frequenzschritte (f) = 0,05 Hz), was zu einer viel höheren Genauigkeit zu berechnen. Die Dauer der individuell analysiert EEG Epoche unserer Definition ähnlich. Klausberger et al. 21 auch die Verwendung von theta-delta - Verhältnisse für die Analyse von Langzeit - EEG - Aufzeichnungen zu machen. Allerdings gibt es drei große Unterschiede im Vergleich zu unserem Ansatz: i) die EEG - Epoche Dauer ist viel länger, dh mindestens 6 s; ii) die theta-delta-Verhältnis auf 4 eingestellt ist, der viel höher als unsere Schwelle ist, und auf verschiedenen Frequenzbereichsdefinitionen bezieht; und iii) die Leistungsdefinition ist wahrscheinlich auf einer FFT Ansatz basieren, die hohe Präzision fehlt, insbesondere für sehr kurze Zeitfenster (2 s, dh 5 Zyklen für Schwingungen mit einer Frequenz von 2,5 Hz). In solchen Fällen wird eine Wavelet-basierte Verfahren ist empfehlenswert.Eine Studie von Caplan et al. 22 Theta - Leistung allein berechnet , während die Theta-Delta - Leistungsverhältnis zu ignorieren. So nähern sich die Caplan 22 nicht zwischen kognitiven Theta reichen Prozessen begleitet von einem hohen oder niedrigen Delta unterscheiden kann. Im folgenden Protokoll werden wir unsere analytischen Wavelet-basierten Ansatz präsentieren hochorganisierten Theta-Oszillationen im Hippocampus-EEG-Aufzeichnungen von Mäusen, um zuverlässig zu analysieren. Da dieses Verfahren automatisch arbeitet, kann es zu großen Datenmengen und Langzeit EEG-Messungen angewendet werden.

<table><tbody><tr><td>Carprofen (Rimadyl VET - Injektionslösung; </td><td>Pfizer</td><td>PZN 0110208208</td><td>20ml</td></tr><tr><td>binokulares chirurgisches Vergrößerungsmikroskop</td><td>Zeiss Stemi 2000</td><td>0000001003877, 435540000000, 0000001063306, 4170530000000, 4170959255000, 4551820000000, 4170959040000, 4170959050000</td><td></td></tr><tr><td>Dexpanthenole (Bepanthen Wund- und Heilsalbe)</td><td>Bayer</td><td>PZN: 1578818</td><td></td></tr><tr><td>Abdecktücher (steril)</td><td>Hartmann</td><td>PZN 0366787</td><td></td></tr><tr><td>70% Ethanol</td><td>Carl Roth</td><td>9065.5</td><td></td></tr><tr><td>0,3% / 3% Wasserstoffperoxid Lösung</td><td>Sigma</td><td>95321</td><td>30% Stammlösung</td></tr><tr><td>Handschuhe (steril)</td><td>Unigloves</td><td>1570</td><td></td></tr><tr><td>Dentalglas Ionomer Zement</td><td>KentDental /NORDENTA</td><td>957 321</td><td></td></tr><tr><td>Sterilisator für chirurgische Instrumente auf Wärmebasis</td><td>F.S.T.</td><td>18000-50</td><td></td></tr><tr><td>Hochgeschwindigkeits-Dentalbohrer</td><td>Adeor</td><td>SI-1708</td><td></td></tr><tr><td>Inhalations-Betäubungsmittelsystem (Isofluran)</td><td>Harvard Apparatus GmbH</td><td>34-1352, 10-1340, 34-0422, 34-1041, 34-0401, 34-1067, 72-3044, 34-0426, 34-0387, 34-0415, 69-0230</td><td></td></tr><tr><td>Isofluran</td><td>Baxter 250 ml</td><td>PZN 6497131</td><td></td></tr><tr><td>Ketamin</td><td>Pfizer</td><td>PZN 07506004</td><td></td></tr><tr><td>Laktat-Ringer-Lösung (steril)</td><td>Braun</td><td>L7502</td><td></td></tr><tr><td>Nissl-Färbelösung</td><td>Armin Baack</td><td>BAA31712159-Pads</td><td></td></tr><tr><td>(steril)</td><td>ReWa Krankenhausbedarf</td><td>2003/01</td><td></td></tr><tr><td>Stahl- und Wolframelektroden parylenbeschichtet</td><td>FHC Inc., USA</td><td>UEWLGESEANND</td><td></td></tr><tr><td>stereotaktischer Rahmen</td><td>Neurostar</td><td>51730M</td><td>bestellt bei Stoelting</td></tr><tr><td>(Stereo Drive-New Motorized Stereotaxic)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bänder (steril)</td><td>BSN medical GmbH & Co. KG</td><td>626225</td><td></td></tr><tr><td>TA10ETA-F20</td><td>DSI</td><td>270-0042-001X</td><td>Hochfrequenzsender 3,9 g, 1,9 cc, Eingangsspannungsbereich &plusmn; 2,5 mV, Kanalbandbreite (B) 1 - 200 Hz, Nennabtastrate (f) 1.000 Hz (f = 5B) Temperatur Betriebsbereich 34 - 41 &deg; C garantierte Batterielebensdauer 4 Monate</td></tr><tr><td>TL11M2-F20EET</td><td>DSI</td><td>270-0124-001X</td><td>Hochfrequenz-Sender 3,9 g, 1,9 cm³, Eingangsspannungsbereich &plusmn; 1,25 mV, Kanalbandbreite (B) 1 - 50 Hz, nominale Abtastrate (f) 250 Hz (f = 5B) Temperatur Betriebsbereich 34 - 41 &deg; C garantierte Batterielebensdauer 1,5 Monate</td></tr><tr><td>Vibroslicer 5000 MZ</td><td>Elektronenmikroskopie Sciences</td><td>5000-005</td><td></td></tr><tr><td>Xylazin (Rompun)</td><td>Bayer</td><td>PZN: 1320422</td><td></td></tr><tr><td>Matlab</td><td>Mathworks Inc.</td><td></td><td>Programmier-, Rechen- und Visualisierungssoftware</td></tr><tr><td>SPSS</td><td>IBM</td><td></td><td>Software für statistische Analysen</td></tr></tbody></table>

automatische erkennung von hochorganisierten theta oszillationen im murine eeg

Automatic Detection of Highly Organized Theta Oscillations in the Murine EEG

Theta-Aktivität wird im septohippocampalen System erzeugt und kann mit tiefen intrahippocampal Elektroden und implantierbare Elektroenzephalographie (EEG) oder Radiotelemetrie Haltegurtsystem Ansätze werden aufgezeichnet. Pharmakologisch, Hippokampus-Theta ist heterogen (siehe dualistische Theorie) und kann in Typ I und Typ II Theta unterschieden werden. Diese einzelnen EEG-Subtypen sind im Zusammenhang mit spezifischen kognitiven und Verhaltenszustände, wie Erregung, Exploration, Lernen und Gedächtnis, höhere integrative Funktionen usw. bei neurodegenerativen Erkrankungen wie Alzheimer, strukturelle und funktionelle Veränderungen des septohippocampalen System kann zu einer Beeinträchtigung der Theta-Aktivität führen / Schwingungen. Eine Standard quantitative Analyse des hippocampal EEG umfasst eine Fast-Fourier-Transformation (FFT) basierenden Frequenzanalyse. Allerdings ist dieses Verfahren keine Details liefern über Theta-Aktivität im Allgemeinen und hochorganisierten Theta-Oszillationen im Besonderen. Um Deta zu erhalteniled Informationen über hochorganisierten theta Schwingungen im Hippocampus, haben wir einen neuen analytischen Ansatzes entwickelt. Dieser Ansatz ermöglicht eine zeit- und kosteneffektive Quantifizierung der Dauer der hochorganisierten theta Schwingungen und deren Frequenzcharakteristik.

Theta-Aktivität kann in einem weiten Bereich des zentralen Nervensystems (ZNS) Regionen aufgezeichnet werden. Hier präsentieren wir eine Analyse der Theta-Oszillationen aus dem Maus-Hippocampus. Solche Schwingungen können in verschiedenen Verhaltens- und kognitive Zustände auftreten. Es ist sehr Theta-Schwingungen unter beiden spontan langfristige, aufgabenbezogene kurzfristige und pharmakologisch induzierten Bedingungen zu analysieren, zu empfehlen. Abbildung 1 z...

Theta-Aktivität im Hippocampus hängt mit spezifischen kognitiven und Verhaltensstadien zusammen. In dieser Arbeit beschreiben wir eine analytische Methode zur Detektion hochorganisierter Theta-Oszillationen innerhalb des Hippocampus unter Verwendung eines Zeit-Frequenz-basierten Ansatzes (d.h. Wavelet-Analyse).

Automatische Erkennung von hochorganisierten Theta Oszillationen im Murine EEG

Theta activity is generated in the septohippocampal system and can be recorded using deep intrahippocampal electrodes and implantable ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, pharmakologisch induzierte hochgradig organisierte Theta-Oszillationen bei Mäusen mittels implantierbarer EEG-Radiotelemetrie zu analysieren. Diese Methode kann helfen, zentrale Fragen im Bereich der systemischen Neurowissenschaften zu beantworten, beispielsweise wie hochgradig organisierte Theta-Oszillationen im EEG der Maus induziert, detektiert und quantifiziert werden können, und zwar basierend auf langzeitigen hippocampalen EEG-Radiotelemetrie-Aufzeichnungen. Der wesentliche Vorteil dieser Technik liegt darin, dass sie die Analyse hochgradig organisierter Theta-Oszillationen in großskaligen murinen hippocampalen EEG-Aufzeichnungen ermöglicht.Die Implikationen dieser Technik erstrecken sich auf unsere Therapie neuropsychiatrischer und neurodegenerativer Erkrankungen wie der Alzheimer-Krankheit, da Frequenzveränderungen wie eine Theta-Dysrhythmie häufig damit assoziiert sind. Obwohl diese Methode Einblicke in die murine hippokampale Theta-Dysrhythmie ermöglichen kann, ist sie nach entsprechender Anpassung auch auf EEG-Aufzeichnungen von anderen Arten, einschließlich des Menschen, anwendbar. Im Allgemeinen wird diese Methode Schwierigkeiten haben, wenn das Verfahren neu ist, da die Detektionsanalyse von Theta-Oszillationen eine korrekte Implantation der EEG-Elektroden und die Induktion von Theta erfordert.Vor dem Einsetzen der Elektroden muss die Parylenbeschichtung an der Spitze abgeschabt werden. Anschließend wird der extrakranielle Teil einer Elektrode mechanisch an der Edelstahlspirale des Senders befestigt. Danach verkürzen Sie die Elektroden auf die erforderliche Länge.Um den Hochfrequenzsender zu implantieren, legen Sie eine anästhesierte Maus auf den Operationstisch und führen Sie weiterhin Isofluran über eine Gesichtsmaske zu. Überprüfen Sie die Anästhesietiefe durch Kontrolle des Schwanzquetschreflexes, des Fußquetschreflexes und der Atemfrequenz. Entfernen Sie anschließend das Körperhaar von der Kopfhaut und desinfizieren Sie die rasierte Kopfhaut mit 70 % Ethanol und einer jodhaltigen Desinfektionslösung.Anschließend führen Sie mit einem Skalpell einen medianen Schnitt an der Kopfhaut vom Stirnbereich bis zum Nackenbereich durch. Danach bereiten Sie mittels einer Blutpräparation mit chirurgischen Scheren an einer Seite des Tierrückens eine subkutane Tasche vor. Im Anschluss wird der Sender in die subkutane Tasche eingebracht und die überschüssige Länge der flexiblen Sendeleitungen in der Tasche abgelegt.Danach fixieren Sie den Schädel mit einer Nasenklemme. Anschließend stellen Sie das Versuchstier auf den stereotaktischen Halter und setzen die Ohrstifte ein.Tragen Sie 0,3 Prozent Wasserstoffperoxid auf den Schädel auf, um eventuelles Gewebe zu entfernen und die Sichtbarmachung der Schädelnähte sowie der kraniometrischen Referenzpunkte wie Bregma und Lambda zu erleichtern. Danach bohren Sie die Löcher an den gewünschten Koordinaten mit einem Hochgeschwindigkeits-Neurochirurgiebohrer im druckfreien Modus mit maximaler Drehzahl. Wählen Sie die geeigneten Elektroden aus und sterilisieren Sie diese vor der Implantation mit 70 %igem Ethanol.Der Elektrodentyp sollte sorgfältig gemäß den experimentellen Anforderungen ausgewählt werden. Üblicherweise werden parylenbeschichtete Wolfram- oder Edelstahlelektroden am häufigsten verwendet. Danach befestigen Sie die Elektroden mit Glasionomerzement und warten, bis der Zement vollständig ausgehärtet ist.Als Nächstes schließen Sie die Kopfhaut mit wiederholten Nähten unter Verwendung eines nicht resorbierbaren Nahtmaterials. Zur postoperativen Schmerzbehandlung verabreichen Sie Carprofen vier Tage lang einmal täglich subkutan nach der Implantation. Lassen Sie das Tier vor den Ableitungen oder Injektionsversuchen 10 bis 14 Tage lang zur Erholung zu.Aktivieren Sie bei diesem Verfahren den Hochfrequenzsender mithilfe des Magnetschalters. Führen Sie langfristige hippocampale EEG-Aufzeichnungen über mindestens 24 bis 48 Stunden durch. Die Analyse der EEG-Amplitude und der EEG-Frequenzmerkmale langfristiger Aufzeichnungen ermöglicht einen detaillierten Einblick in die circadiane Abhängigkeit theta-osszillatorischer Aktivität und deren Zusammenhang mit bestimmten Verhaltensweisen sowie kognitiven Zuständen oder Aufgaben.Für die pharmakologische Induktion von Theta-Oszillationen behandeln Sie das Tier vorab mit Methscopolamin, um periphere muskarinerge Reaktionen zu vermeiden. Anschließend verabreichen Sie der Maus eine Einzeldosis Urethan oder einen muskarinergen Rezeptoragonisten zur Initiierung der Theta-Aktivität. Etwa 60 Minuten später injizieren Sie Atropin, um atropinsensitive Theta-Oszillationen vom Typ zwei von atropinresistenten Oszillationen vom Typ eins zu unterscheiden.Und fahren Sie mit der Aufzeichnung fort. Um die Platzierung der EEG-Elektroden zu überprüfen, schneiden Sie die Edelstahlelektroden durch und entfernen Sie den Hochfrequenzsender. Danach opfern Sie die Maus und entnehmen das Gehirn aus dem Neurokranium.Um die Elektrodenposition zu überprüfen, montieren Sie das entnommene Gehirn mit einem Klebstoff auf dem Gewebeträger eines Vibroschneiders. Schneiden Sie das Gehirn in 100 Mikrometer dicke koronale Schnitte. Bringen Sie die Schnitte auf Objektträgern an und färben Sie sie mit Nissl-Blau nach einer standardmäßigen histologischen Methode.Binden Sie das Tier für die Analyse nur ein, wenn es die korrekten Kriterien für die EEG-Elektrodenplatzierung erfüllt. Für die Region CA1 sollte die Spitze der Tiefenelektrode innerhalb der CA1-Pyramidenzellschicht lokalisiert sein. Laden Sie die EEG-Daten hoch.Hier ist ein beispielhafter 30-Minuten-EEG-Abschnitt. Verwenden Sie zur Zeit-Frequenz-Analyse die hier dargestellte komplexe Morlet-Wavelet-Funktion. Für die Zeit-Frequenz-Analyse wird der Frequenzbereich zwischen 0,2 und 12 Hz festgelegt und die Schrittweite auf 0,1 Hz eingestellt. Diese farbkodierte Zeit-Frequenz-Darstellung des EEG-Abschnitts veranschaulicht die Theta- und den oberen Delta-Frequenzbereich.Hier wird eine extrahierte 2,5-Sekunden-EEG-Epoche auf einen Theta-Segment analysiert. Da das Verhältnis der maximalen Amplitude im Theta-Bereich zur maximalen Amplitude im oberen Delta-Bereich größer als 1,5 ist, wird dieser Segment als oszillatorische Theta-Epoche klassifiziert. Dies gewährleistet, dass die maximale Theta-Amplitude in der berechneten EEG-Epoche mindestens 50 % höher ist als die Amplitude im oberen Delta-Band.Diese Abbildung zeigt die Korrelation zwischen den stark organisierten Theta-Oszillationen und dem Theta-Erkennungsmaß in der EEG-Aufzeichnung, bei der die theta-oszillatorischen Abschnitte quantifiziert und statistisch analysiert werden können. Hier sind zwei jeweils 2,5 Sekunden lange EEG-Epochen, die visuell als Nicht-Theta- und Theta-Abschnitte klassifiziert wurden. Und hier sind die Zeit-Frequenz-Analysen der CA1-EEG-Abschnitte, dargestellt in den entsprechenden Diagrammen oben im Frequenzbereich von 0,2 bis 12 Hz. Bei farbkodierter Amplitude zeigt die Zeit-Frequenz-Analyse des Nicht-Theta-EEG-Abschnitts eine regelmäßige, fluktuierende Theta-Architektur bezüglich der Frequenzen über die Zeit.Während das Segment mit stark synchronisierten Theta-Oszillationen durch eine regelmäßige, nicht schwankende Theta-Amplitude mit einer nahezu konstanten Frequenz von sechs Hz gekennzeichnet ist, beträgt das Verhältnis der maximalen Theta- zur maximalen Delta-Amplitude in dieser Karte 1,25 und in dieser Karte 4,67. Dies klassifiziert die EEG-Epoche eindeutig als ein Theta-Oszillations-EEG-Segment. Sobald die Technik beherrscht ist, kann sie innerhalb einer Stunde durchgeführt werden, sofern sie ordnungsgemäß angewendet wird.Nach Durchführung dieses Verfahrens können weitere Methoden wie die Zeit-Frequenz-Analyse weiterer Frequenzbänder oder die automatisierte Anfallsdetektion angewendet werden, um Fragen zu beantworten, beispielsweise ob andere EEG-Bänder betroffen sind, wie sie gekoppelt sind und in welcher Beziehung sie zur neuronalen Hypererregbarkeit stehen. Nach ihrer Entwicklung ebnete diese Technik Forschern auf dem Gebiet der systemischen Neurowissenschaften den Weg, um Veränderungen in der hippokampalen Theta-Architektur in transgenen Mausmodellen, wie beispielsweise Mausmodellen der Alzheimer-Krankheit, zu untersuchen. Nach dem Ansehen dieses Videos sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man hochgradig organisierte Theta-Oszillationen induziert, detektiert und analysiert.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Behavior

Verhalten

Dieses Video demonstriert ein Protokoll zur Modulation von Theta-Oszillationen in einem gentechnisch veränderten Mausmodell mit lichtempfindlichen Ionenkanälen in seinen GABAergen medialen Septumneuronen. Durch die Abgabe von Lichtimpulsen an den Hippocampus zielt das Protokoll darauf ab, die neuronale Aktivität zu synchronisieren und Theta-Oszillationen zu erzeugen, die als lokale Feldpotentiale aufgezeichnet werden.

Selektive Manipulation von Theta-Oszillationen in einem Mausmodell

Dieses Video zeigt die Aufzeichnung von rhythmischen neuronalen Netzwerkaktivitäten, auch bekannt als Theta-Oszillationen, in einem isolierten Hippocampus. Elektroden werden in verschiedene Schichten und räumliche Positionen eingeführt, um Theta-Oszillationen zu erkennen und zu analysieren. Dies zeigt die einzigartige neuronale Zusammensetzung und die Konnektivität des neuronalen Netzwerks über verschiedene Schichten des Hippocampus hinweg.

In vitro Aufzeichnung von Theta-Oszillationen im Hippocampus der Maus

Die Aufzeichnung von Elektroenzephalogramm (EEG) und Elektromyogramm (EMG) bei frei verhaltenden Mäusen ist ein kritischer Schritt, um Verhalten und Physiologie mit Schlaf und Wachheit zu korrelieren. Das hierin beschriebene experimentelle Protokoll stellt ein kabelbasiertes System zur Erfassung von EEG- und EMG-Aufzeichnungen bei Mäusen bereit.

Polygraphic Recording Verfahren zur Messung von Schlaf bei Mäusen

Hochfrequenzoszillationen (HFO) wurden als präoperative Biomarker für die Identifizierung der epileptogenen Zone bei pädiatrischen Patienten mit medizinisch refraktärer Epilepsie entwickelt. Eine Methode für die nicht-invasive Erfassung, Erkennung und Lokalisierung von HFO bei gleichzeitiger Kopfhaut Elektroenzephalographie (EEG) und Magnetoenzephalographie (MEG) wird vorgestellt.

Interiktalen Hochfrequenzoszillationen Erkannte mit Simultaneous Magnetoencephalographie und Elektroenzephalographie als Biomarker für Pädiatrische Epilepsie

Diese Arbeit demonstriert die Leistung von Akupunktur, Epilepsiemodellen und der Analyse des Schlafes bei Nagetieren. Das Verfahren der Akupunktur und die Identifizierung von Akupunkturpunkten werden beschrieben. Pilocarpin oder Pentylentetrazol (PTZ) wird verwendet, um Epilepsie zu induzieren. Für die Schlafanalyse werden Elektrokortikogramm (ECoG), Elektromyogramm (EMG), Gehirntemperatur und Bewegungsaktivitätsaufzeichnungen verwendet.

Manipulation von Epileptiforme Electrocorticograms (ECoGs) und Schlaf bei Ratten und Mäusen durch Akupunktur

Hier stellen wir experimentelle und analytische Verfahren vor, um die zeitliche Dynamik der neuronalen und kardialen Variablen des Nicht-REM-Schlafes bei Mäusen zu beschreiben, die die Schlafreaktion auf akustische Reize modulieren.

Quantifizierung der infra-langsamen Dynamik der spektralen Kraft und der Herzfrequenz bei schlafenden Mäusen

Wir beschreiben die Verwendung der optogenetik und elektrophysiologische Aufnahmen für gezielte Manipulationen der hippocampal Theta Schwingungen (5 bis 10 Hz) im Verhalten Mäuse. Die Wirksamkeit von Rhythmus mitreißen wird mit lokalen Feldes Potenzial überwacht. Eine Kombination von Opto und pharmakogenetischen Hemmung befasst sich mit das ableitenden Auslesen der hippocampalen Synchronisation.

Optogenetische Mitnahme von Hippocampal Theta Schwingungen im Verhalten der Mäuse

Dieses Protokoll stellt ein Open-Source-, kompiliertes MATLAB-Programm bereit, das Multitaper-Spektrogramme für elektroenzephalografische Daten generiert.

Computerbasiertes Multitaper-Spektrogrammprogramm für elektroenzephalographische Daten

Mit simultaner Video-EEG-Oximetrie-Kapnographie entwickelten wir eine Methodik zur Bewertung der Anfälligkeit von Kaninchenmodellen für die Entwicklung provozierter Arrhythmien und Krampfanfälle. Dieses neuartige Aufzeichnungssystem schafft eine Plattform, um die Wirksamkeit und Sicherheit von Therapeutika zu testen und kann die komplexe Kaskade von Multisystemereignissen erfassen, die in einem plötzlichen Tod gipfeln.

Multisystem-Monitoring zur Identifizierung von Anfällen, Arrhythmien und Apnoe bei bewusst zurückhaltenden Kaninchen

Dieses Protokoll wurde entwickelt, um ein zuverlässiges und leicht zugängliches System zur Aufzeichnung von frei beweglichen Nagetier-EEGs zu schaffen.

Ein kostengünstiges und minimal-invasives Protokoll für die chronische Multi-Site-Elektroenzephalographie-Aufzeichnung bei frei beweglichen Mäusen

Erfahren Sie die automatische Erkennung hochorganisierter Theta-Oszillationen im murinen EEG mittels implantierbarer Radiotelemetrie. Diese Methode ermöglicht die Analyse kognitiver Prozesse und neurologischer Erkrankungen.

Automatische Erkennung von hochorganisierten Theta Oszillationen im Murine EEG

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