Name: Die Bestimmung Glucose Metabolism Kinetics Verwendung 18 F-FDG Micro-PET / CT (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-05-02T14:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 7 s
Description: Lernen Sie die kinetische Modellierung des Glukosestoffwechsels mit 18F-FDG und Micro-PET/CT bei Mäusen. Diese Methode ermöglicht quantitative Analysen für Diabetes- und Stoffwechselforschung.

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Diese Arbeit wurde unterstützt durch einen National Imaging Facility Subsidised Access Grant für BJC, einen Programmzuschuss des National Health and Medical Research Council of Australia (482800) für KAR und PJB. Die Autoren danken Andrew Arthur, Hasar Hazme und Marie-Claude Gregoire für die Unterstützung bei der Entwicklung dieser Methode.

Alle in dieser Studie beschriebenen Verfahren wurden von dem Sydney Local Health District und University of Sydney Tierethikkomitees und folgten den NIH Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren, Achte Auflage (2011) genehmigt. 1. Vorbereitung der Tiere HINWEIS: In diesem Protokoll männlichen db / db - Mäuse (BKS.Cg- Dock7 m + / + Lepr db / J) wurden in Gruppenhaltung mit ad libitum Zugang zu Futter und Wasser bis zum Alter von 6 Wochen gehalten. Zum Zeitpunkt der Bildgebung, Mäuse gewogen ~ 30 g. Alle Mäuse in diesem Protokoll verwendet hatten Nüchternblutzuckerspiegel zwischen 10 und 14 mmol / L. <ol><li> Bei Bedarf schnell die Mäuse. In dem vorliegenden Beispiel schnell die Mäuse für 5 Stunden vor dem experimentellen Verfahren. </li><li> Behandlung von Mäusen mit dem gewünschten Wirkstoffe (zB Medikament, Protein, Peptid) vor dem Beginn der Bilderzeugung. In diesem Beispiel verabreicht eine subkutane Injektion von Insulin (3U / kg Humaninsulin) oder äquivalente Volumen PBS 30 min vor dem Beginn der Bildgebung. </li></ol> 2. Richten Sie Workflows Hinweis: Dieses Protokoll auf einem PET / CT-Scanner durchgeführt wurde. Erwerben PET-Daten zunächst durch Akquisition von CT-Daten gefolgt. <ol><li> PET - Einstellungen: <ol><li> Select - Isotop wie 18 F, eingestellte Scandauer bis 3.600 s, und die obere und untere Ebene Energiediskriminierung bis 350 keV - 650 keV (default) mit einem Koinzidenzzeitfenster von 3,432 ns (Standard). Histogram list-Modus-Daten in 16 Rahmen (6 x 10 s, 4 x 60 s, 1 x 300 s, 5 x 600 s) für den Zeitraum 0-60 min nach Tracerinjektion. Rekonstruieren Emission Sinogramme mit Hilfe von 2D-FBP mit einem Zoom-1.5. HINWEIS: Die rekonstruierten Bilder bestanden aus 16 dynamischen Rahmen, die jeweils mit 128 × 128 × 159 Voxel und eine Voxel - Größe von 0,52 × 0,52 × 0,796 mm 3. </li></ol></li><li> CT - Einstellungen: <ol><li> Zumeine Ganzkörper-CT-Scan, stellte den Strom bei 500 A, Spannung bei 50 kV, Belichtungszeit von 500 ms und 200 Projektionen über eine Umdrehung 360. Stellen Sie das Detektorsichtfeld (FOV) zu 30.722.048, Anzahl der Bettpositionen bis 3 (zur Deckung volle PET FoV Bereichs), Überlappung zwischen Bettpositionen = 30,234713% und Detektor Binning bis 4. HINWEIS: CT-Rekonstruktion wurde mit Kegelstrahl-Tomographie-Bildrekonstruktionssoftware mit HU-Kalibrierung, bilinearer Interpolation und Shepp-Logan-Filter durchgeführt. </li></ol></li><li> 18 F-FDG: <ol><li> Um ein ausreichenden 18 F-FDG (zum Beispiel 450 MBq in 0,5 ml) von einem lokalen Provider ankommen ~ 30 min vor der ersten Injektion. Aliquot und verdünnt den 18 F-FDG so dass Tiere erhalten ~ 10 MBq von 18 F-FDG in einem Endvolumen von 0,1 ml. </li></ol></li></ol> 3. Imaging Protocol <ol><li> Abwischen Induktionskammer und Aufnahmebett mit 80% (v / v) Ethanol aseptische Bedingungen aufrechtzuerhalten. PlaCE, um die Maus in einer Ansaugkammer und anästhesieren mit 5% Isofluran in Sauerstoff. </li><li> Platzieren Sie die Maus auf ein Aufnahmebett mit einem elektrischen Heizkissen angebracht auf Körpertemperatur und einen Präzisions Verdampfer Bugkonus zu halten liefern Isofluran (Wartung, 1,5 bis 2%) bei einer Strömungsgeschwindigkeit von 1 l / min. Bewerben Augensalbe auf die Augen Trockenheit während der Narkose zu verhindern. </li><li> Bewegen Sie die Maus in Bauchlage auf einem Sensorfeld, um die Atmung zu überwachen und sicherzustellen, dass eine angemessene Ebene der Narkose gehalten wird. </li><li> Erwärmen Sie den Schwanz unter Verwendung einer Wärmepackung für 1 bis 2 min, um die laterale Schwanzvene aufzuweiten. Katheterisieren die laterale Schwanzvene eine 30-Gauge-Nadel in die laterale Schwanzvene durch Einfügen. Sichern die Nadel an Ort und Stelle mit chirurgischem Klebstoff und den Katheter sichern. </li><li> Last Bildgebung in die Scanner-Bett und das Bett durch die Maschine bewegen, so dass der Katheter von der Rückseite der Maschine zugegriffen werden kann. </li><li> Befestigen des Katheters an der 18 F-FDG Spritze in einer SYRinge Fahrer. Berechnen die genaue 18 F-FDG - Dosis (10 MBq) , basierend auf der Aktivität in der Spritze vor der Injektion und das Volumen verabreicht werden (&lt;100 ul, injizierte über 10 s). </li><li> Um die Auswirkungen der Narkose auf der Variabilität der Glukoseaufnahme zu minimieren, um eine konstante Zeit zwischen der Einleitung der Narkose und der Injektion von 18 F-FDG (zB 30 min) sicherzustellen. </li><li> Commence die PET - Scan unmittelbar vor der Injektion von 18 F-FDG. Nach Abschluss des PET-Scan (3,600 s), einen CT-Scan (~ 10 min) durchführen für die Co-Registrierung von Radiotracer-Aufnahme mit Geweben zu ermöglichen. </li><li> Bewegen des Aufnahmebetts in die Ausgangsposition, entfernen Sie das Tier aus dem Bett. </li><li> An diesem Punkt das Tier einschläfern oder lassen Sie es sich erholen: <ol><li> Für Euthanasie, Genickbruch, während noch unter Narkose durchführt und Organe von Interesse für eine spätere Analyse sammeln. </li><li> Wenn so dass die Maus zu erholen, legen Sie die Maus in einzelnen Gehäusen auf einem Heizkissen odervor einer Heizlampe. Überwachen Sie die Maus, bis es genügend Bewusstsein wiedererlangt Brustlage zu halten. Lassen Sie die Maus für 1 h erholen, bevor auf Gruppenhaltung zurück. </li></ol></li></ol> 4. PET Bildverarbeitung HINWEIS: Die Bildrekonstruktion wurde mit Erwerb Arbeitsplatzsoftware v1.5.0.28 und Analyse in der Forschung am Arbeitsplatz Software v4.2 durchgeführt. <ol><li> Co-Register Bilder CT und PET und stellen Sie sicher, dass die Ausrichtung in allen drei Dimensionen korrekt ist. <ol><li> Im Menü ‚Datei‘, wählen Sie ‚Ordnersuche / Import‘ und wählen Sie den Ordner mit den Daten enthalten. Wählen Sie die gewünschten PET und CT-Daten ein und klicken Sie auf den ‚General Analysis‘ Tab. </li><li> Sortieren Sie die Daten, so dass die CR bezeichnet ist ‚Quelle‘ und PET bezeichnet ‚Ziel‘. Im Menü ‚Arbeitsablauf‘, wählen Sie ‚Registrierung‘. Wenn die Bilder angepasst werden müssen richtig zusammen registriert, verwenden Sie die Werkzeuge in th seine &#39;Registration&#39; Menü. </li></ol></li><li> Im Menü ‚Arbeitsablauf‘, wählen Sie ‚ROI Quantifizierung‘. <ol><li> Verwenden Sie die ‚Pan‘ und ‚Zoom‘ Funktionen in der Registerkarte ‚Bild‘ die gewünschte Region zu suchen. Im Menü ‚Extras‘, wählen Sie die ‚Erstellen‘ Registerkarte und klicken Sie auf das Pinsel-Symbol. Zeichnen Sie den ROI auf das Bild </li></ol></li><li> Extrahieren Zeitaktivitätskurven von ‚Save ROI Quantifizierung‘ von den ‚Speichern‘ Menü auswählen. Speichern Sie die Daten als CSV-Datei. </li><li> Quantifizieren Radioaktivität Aufnahme als Bq pro cm 3 des Gewebes. Konvertieren Werte in Prozent der injizierten Dosis pro cm 3 (% ID / cm 3) durch die CSV in eine Tabellenkalkulationsdatei lädt. </li></ol> 5. Eingangsfunktion <ol><li> Um für das System Punktverwaschungsfunktion zu korrigieren, entfalten die geschätzte PSF System für 5 Iterationen die reblurred Van Cittert Entfaltungsverfahren unter Verwendung von wie zuvor 9 beschrieben. HINWEIS: Dies aufgrund der geringen Größe der Hohlvene in einer Maus erforderlich ist. </li><li> Verwenden Post Dekonvolution Bilder eine Bluteingangsfunktion zeitAktivitätsKurve zu erzeugen, wie oben beschrieben. </li></ol> 6. Kinetic Modeling HINWEIS: Das FDG Zwei Gewebekompartiment Modell (1) erfordert die Plasmaeingangsfunktion. <ol><li> Konvertieren der Bluteingangsfunktion in der CSV - Datei an die Plasmaeingangsfunktion unter Verwendung der folgenden Gleichung 10: Input_plasma = Input_blood × (0,386 e - 0.191t + 1,165). </li><li> Bei dem kinetischen Modellierungstool klicken Sie auf die ‚Kinetic‘ klicken. Importieren Sie das Gewebe und Plasma-Gesamtaktivität zählen CSV-Dateien in das kinetische Modellierungswerkzeug von ‚Load Time Activity Curve‘ aus dem ‚Menü‘ auswählen. </li><li> Im ‚Model‘ Menü 2 Gewebekompartimenten wählen. Stellen Sie sicher, dass das Kästchen neben k4 nicht ausgewählt istund gibt einen Wert von 0. Für Erstmontage, deaktivieren die Box für vB (Blutvolumenanteil), und einen Wert von 2% ein. </li><li> Klicken Sie auf die &quot;Fit aktuelle Region. Korrigieren der extrahierten interessierenden Bereich für die Dispersion 11, 12. Sie erreichen dies durch den Chi-Quadrat-Wert für das FDG-Modell für verschiedene Dispersionszeiten zu minimieren. </li><li> Durchführen einer zweiten schwimmenden Sitz vB Wert mit (Kontrollkästchen neben dem Feld für vb) und den optimierten Dispersionswert der regionalen Geschwindigkeitskonstanten (k 1 -k 3) zu berechnen. Berechne den regionalen Zufluß konstant wie K i = (k 1 x k 3) / (k 2 + k 3). </li></ol>

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</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Das hier beschriebene Protokoll stellt eine robuste, nicht-invasive Methode, die Kinetik der Glukoseaufnahme aus dem Blut in dem Gewebe und anschließenden Metabolismus bei Mäusen zu bestimmen. Die db / db - Maus ist ein ist ein etabliertes Tiermodell von Diabetes Typ 2 , die 14 extensiv Insulinresistenz und entsprechende Eingriffe verwendet worden ist , zu untersuchen. Allerdings haben frühere Studien nur Endpunkt Aufnahme im Herzen quantifizierten 1...

Der Zweck dieser Studie war es, eine Positronen - Emissions - Tomographie / Computertomographie (PET / CT) basierend Methodik zu entwickeln , die in - vivo - Echtzeit - Aufnahme von Glucose aus dem Blutstrom in spezifische Gewebe in Mäusen zu quantifizieren. Dies wurde unter Verwendung erreicht 18 F-markierten fluorodeoxyglucose (FDG) Glukoseaufnahme und kinetische Modellierung zur Messung der Raten von 18 F-FDG - Aufnahme aus dem Plasma zu dem intrazellulären Raum zu schätzen, die Geschwindigkeit des Transports von intrazellulären Raum zu Plasma und die Rate der 18 F-FDG - Phosphorylierung. Bei Nagetieren 18F-FDG ist in der präklinischen Bewertung zahlreicher Krebstherapien 1, Studien der Tumorprogression 2 und Tumor - Stoffwechsel 3 sowie Abbildung von braunen Fettdepots 4, neuroinflamation 5 und dem Stoffwechsel im Gehirn 6 verwendet </sup&gt;. Traditionelle Methoden verwendet , um die Gewebe - spezifische Aufnahme von Glucose in Mäusen zu untersuchen (und Ratten) In der Regel beinhaltet die Behandlung mit 2-Desoxyglucose radiomarkiert mit entweder 3 H oder 14 C , gefolgt von Euthanasie, Gewebeentnahme und Messung der Radioaktivität in jedem Gewebe 7. Die Verwendung von PET / CT ermöglicht eine nicht-invasive Bestimmung der Glukoseaufnahme und Stoffwechsel in mehreren Organen und Regionen gleichzeitig in lebenden Tieren. Zusätzlich ist, wie Euthanasie nicht erforderlich ist, ist diese Technik für den Einsatz in Langzeitstudien geeignet. Typ 2 Diabetes mellitus (T2DM) durch gestörte Glukosestoffwechsel und Hyperglykämie sekundär zu reduzierte Gewebe Ansprechbarkeit auf Insulin (Insulinresistenz) und die Unfähigkeit von pankreatischen -Cells gekennzeichnet ausreichenden Mengen von 8 Insulin zu produzieren. Die kinetische Analyse der Glukoseaufnahme und Stoffwechsel kann wichtige Einblicke inder Mechanismus der Wirkung und Wirksamkeit von therapeutischen Interventionen sowie für erweiterte Überwachung des Krankheitsverlaufs ermöglichen.

<table><tbody><tr><td>PET/CT-Scanner</td><td>Siemens</td><td>Inveon&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>18F-FDG</td><td>PETNET Solutions</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Pharmachem</td><td></td><td></td></tr><tr><td>30 Gauge Needle</td><td>BD</td><td>305106</td><td></td></tr><tr><td>PMOD Modellierungssoftware</td><td>PMOD Technologies</td><td></td><td></td></tr><tr><td>BKS. Cg-Dock7m&nbsp;+/+&nbsp; Leprdb/J Mäuse</td><td>Jackson Laboratory</td><td>000642</td><td></td></tr><tr><td>Humaninsulin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

die bestimmung glucose metabolism kinetics verwendung<sup&gt; 18</sup&gt; f-fdg micro-pet / ct

Determining Glucose Metabolism Kinetics Using 18F-FDG Micro-PET/CT

Diese Arbeit beschreibt die Verwendung von 18F-FDG und micro-PET/CT-Bildgebung zur Bestimmung der in vivo Glukosestoffwechsel-Kinetik bei Mäusen (und ist auf Ratten übertragbar). Eine gestörte Aufnahme und ein gestörter Stoffwechsel von Glukose in mehreren Organsystemen aufgrund einer Insulinresistenz ist ein Kennzeichen von Typ-2-Diabetes. Die Fähigkeit dieser Technik, eine bildabgeleitete Eingabefunktion aus der Hohlvene unter Verwendung eines iterativen Dekonvolutionsverfahrens zu extrahieren, macht die Entnahme von arteriellen Blutproben überflüssig. Die Anpassung von Zeitaktivitätskurven des Gewebes und der Vena cava an ein Zweigewebemodell mit drei Kompartimenten ermöglicht die Abschätzung kinetischer Mikroparameter in Bezug auf die 18F-FDG-Aufnahme aus dem Plasma in den intrazellulären Raum, die Transportrate vom intrazellulären Raum zum Plasma und die Rate der 18F-FDG-Phosphorylierung. Diese Methodik ermöglicht es, die Glukoseaufnahme und die Stoffwechselkinetik im Rahmen von Längsschnittstudien mehrfach zu messen und gibt auch Einblicke in die Wirksamkeit therapeutischer Interventionen.

Wir haben zuvor mithilfe der db / db - Maus - Modell die Auswirkungen der Erhöhung der Plasma - Apo-A-I - Spiegel auf die Kinetik der Glukoseaufnahme und Stoffwechsel 13 zu untersuchen. In dieser Studie verwenden wir db / db - Mäuse , die mit Insulin behandelt , um die Nützlichkeit von PET / CT - Bildgebung zu zeigen , die Aufnahme von 18 F-FDG aus dem Plasma in den Gastrocnemius - Muskel in Echtzeit zu überwachen. <p class="jove_content" fo:keep-to...

Diese Studie beschreibt ein Protokoll, das 18F-FDG und Positronenemissionstomographie/Computertomographie (PET/CT) Bildgebung zusammen mit kinetischer Modellierung verwendet, um die in vivo Echtzeitaufnahme von 18F-FDG in Gewebe zu quantifizieren.

Die Bestimmung Glucose Metabolism Kinetics Verwendung<sup&gt; 18</sup&gt; F-FDG Micro-PET / CT

This paper describes the use of 18F-FDG and micro-PET/CT imaging to determine in vivo glucose metabolism kinetics in mice (and is transferable to rats). ...

Das übergeordnete Ziel dieses Bildgebungsprotokolls besteht darin, die in vivo Echtzeitaufnahme von Glukose aus dem Blutstrom in spezifische Gewebe von Mäusen zu quantifizieren. Diese Methode kann helfen, zentrale Fragen im Bereich Diabetes und Stoffwechsel zu beantworten, beispielsweise welche Auswirkungen diabetische Therapien auf die Glukoseaufnahme und den Stoffwechsel haben. Der Hauptvorteil dieser Technik liegt darin, dass Experimente longitudinal durchgeführt werden können, um beispielsweise den Einfluss von Alter oder Ernährung auf den Glukosestoffwechsel zu untersuchen.Das Erlernen dieser Methode liefert Informationen über den Glukosestoffwechsel in Skelettmuskel. Sie ist außerdem in anderen Geweben wie Leber und Gehirn nützlich und auf Ratten übertragbar. Eine visuelle Demonstration dieser Methode ist entscheidend, da die Bildaufnahme und unsere Analyse-Schritte korrekt durchgeführt werden müssen, um genaue Ergebnisse sicherzustellen.Wischen Sie zuerst die Induktionskammer, die Bildgebungsliege und die Heizplatte mit 80 % Ethanol ab. Stellen Sie das Versuchstier in die Induktionskammer und betäuben Sie es mit 5 % Isofluran und Sauerstoff. Befestigen Sie eine elektrische Heizplatte und eine Sensorplatte auf der Bildgebungsliege.Legen Sie die Maus in Bauchlage und führen Sie weiterhin ein Liter pro Minute 1,5 bis 2 % Isofluran über eine Nasenmaske zu. Tragen Sie einen tierärztlichen Augensalbe auf die Augen der Maus auf, um Austrocknung zu verhindern. Anschließend erwärmen Sie den Schwanz der Maus ein bis zwei Minuten lang.Wenn die seitliche Schwanzvene erweitert ist, eine 30-Gauge-Nadel in die Vene einführen. Die Nadel mit chirurgischem Kleber fixieren und einen Katheter an die Nadel anschließen. Die Bildgebungsliege in den PET/CT-Scanner einfahren und die Liege so positionieren, dass der Katheter von der Rückseite des Geräts aus zugänglich ist.Befestigen Sie eine Spritze, die die zehn Mega Back-Roll-F18-FDG-Dosis enthält, am Katheter. Nach einer festgelegten Zeit nach der Einleitung der Anästhesie beginnen Sie eine einstündige PET-Aufnahme und injizieren die F18-FDG-Dosis. Unmittelbar nach Abschluss der PET-Aufnahme führen Sie eine 10-minütige CT-Aufnahme durch.Nach dem CT-Scan bewegen Sie den Bildgebungs-Tisch in seine Ausgangsposition und nehmen die Maus vom Tisch. Töten Sie die Maus entweder durch Halsbrechung unter Anästhesie oder lassen Sie die Maus in Einzelhaltung unter Beobachtung wieder aufwachen. Um mit der Bildverarbeitung zu beginnen, laden Sie die rekonstruierten PET- und CT-Bilder.Weisen Sie die CT-Daten als Quelle und die PET-Daten als Ziel zu. Registrieren Sie die Daten gemeinsam und richten Sie die Bilder nach Bedarf aus. Wählen Sie anschließend die ROI-Quantifizierung aus.Verwenden Sie die Schwenk- und Zoomwerkzeuge, um den gewünschten interessierenden Bereich im Bild zu finden. Wechseln Sie zum Register „Erstellen“ und wählen Sie den Pinselwerkzeug. Zeichnen Sie eine ROI, die dem Musculus gastrocnemius entspricht.Verwenden Sie anschließend die Funktion „ROI-Quantifizierung speichern“, um die Gewebe-Zeit-Aktivitätsdaten als CSV-Datei zu extrahieren. Entfalten Sie die geschätzte punktförmige Systemantwort mittels der Van-Cittert-Entfaltungsmethode über fünf Iterationen. Zeichnen Sie danach eine ROI, die der Vena cava entspricht.Exportieren Sie die Zeitaktivitätsdaten der Bluteingabefunktion aus den Bildern nach der Dekonvolution als CSV-Datei. Importieren Sie die CSV-Dateien in eine Tabellenkalkulationssoftware. Speichern Sie die Daten als neue CSV-Dateien und konvertieren Sie die Aufnahmewerte in Prozent injizierte Dosis pro Kubikzentimeter.Stellen Sie die Zeit-Aktivitäts-Kurven mit einer Tabellenkalkulationssoftware dar. Speichern Sie anschließend die verarbeiteten Vena-cava-Daten in einer neuen CSV-Datei. Wandeln Sie die Vena-cava-Daten in eine Plasmablockade-Eingabefunktion um.Wählen Sie im kinetischen Modellierungstool „kinetisch“ aus. Importieren Sie die Dateien mit den Gesamtaktivitätszähldaten für Gewebe und Plasma. Wählen Sie ein Zwei-Gewebe-Drei-Kompartiment-Modell.Stellen Sie sicher, dass die Dephosphorylierungsrate von F18-FDG, K4, nicht ausgewählt ist und einen Wert von null aufweist. Setzen Sie den Blutvolumenanteil, VB, auf 2 %. Um der aus der Vena cava abgeleiteten Eingangsfunktion eine Dispersion hinzuzufügen, verwenden Sie ein Programm wie disp4dft, um mehrere Eingangsfunktionen mit unterschiedlichen Dispersionszeiten zu erstellen. Laden Sie dann nacheinander die Eingangsfunktionen mit Dispersion und wählen Sie „aktuelle Region anpassen“.Wiederholen Sie den Vorgang, um die Eingangsfunktion mit der Streuung zu finden, die den niedrigsten Chi-Quadrat-Wert aufweist. Verwenden Sie die optimierte Eingangsfunktion und setzen Sie den Blutvolumenanteil auf einen variablen Wert. Passen Sie den Bereich erneut an, um die regionalen Geschwindigkeitskonstanten zu bestimmen.Berechnen Sie anschließend die regionale Influsskonstante. Sechs Wochen alte DBDB-Mäuse, die entweder mit Insulin oder mit phosphatgepufferter Kochsalzlösung behandelt wurden, wurden mit dieser Methode abgebildet. Die mit Insulin behandelten Mäuse zeigten im Vergleich zu den Kontrollmäusen eine erhöhte F18-FDG-Aktivität im Musculus gastrocnemius.Keine erhöhte Aktivität wurde in der Vena cava beobachtet. Für die kinetische Modellierung wurde ein Zwei-Gewebe-Drei-Kompartiment-Modell verwendet. Es wurde kein signifikanter Unterschied zur Kontrolle in der Transportgeschwindigkeit von F18-FDG vom kapillaren Plasma in den intrazellulären Raum oder umgekehrt beobachtet.Jedoch war die F18-FDG-Phosphorylierungsrate bei den mit Insulin behandelten Mäusen signifikant höher. Die Influx-Konstante war entsprechend bei den mit Insulin behandelten Mäusen höher. Nach dem Anschauen des Videos sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man die Mäuse korrekt abbildet, Regionen von Interesse abgrenzt und kinetische Parameter berechnet.Es darf nicht vergessen werden, dass die Arbeit mit Strahlung gefährlich sein kann, und bei der Durchführung dieses Verfahrens sollten stets Vorsichtsmaßnahmen wie eine angemessene Schulung, die Verwendung von Abschirmungen und die Überwachung der Strahlenexposition getroffen werden.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

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