Name: Flow Cytometry-based Drug Screening-System für die Identifizierung von kleinen Molekülen, die zelluläre Differenzierung von Stammzellen Glioblastom zu fördern (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-01-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 28 s
Description: Erfahren Sie ein Hochdurchsatz-Screening-Verfahren zur Identifizierung kleiner Moleküle, die astrogliale Differenzierung von Glioblastom-Stammzellen fördern. Diese Methode nutzt einen GFAP-GFP-Reporter.

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Hinweis: Astroglial und neuronale Lentivirus Reporter Systeme wurden als abgepackte, konzentrierte Lentivirale Vorbereitungen gekauft. Grundlegende Kenntnisse der Flow Cytometry Technik ist erforderlich. Auch für eine vollständige Nutzung dieses Protokolls benötigt der Benutzer Zugang zu einem Durchflusszytometer mit hohen Durchsatzleistung (96-Well Platten als Aufnahmequelle akzeptiert).
1. Lentivirale transkriptionelle Reporter System
Hinweis: Alle Fluss durchflusszytometrischen Analyse verwenden Sie elterlichen, nicht ausgestrahlt, Zellen oder Vektor ausgestrahlt (nicht fluoreszierend) für die Festlegung der Baseline Fluoreszenz. Darüber hinaus beachten Sie, dass bei allen Schritten, wo mechanische Zerreibung gefordert ist, sanft. Rauen Verreibung kann töten eine bedeutende Anzahl von den fragilen vorliegenden Allgemeinen Geschäftsbedingungen und Flow Cytometry Ergebnisse beeinflussen.
<ol><li>Platte 1 x 106 Zellen in 2 mL vollständig neuronale Stammzellen Wachstumsmedium in einer 6-Multiwell-Platte.</li>
	<li>Transduzieren Sie Zellen durch Zugabe von Lentivirus Reporter bei einer Vielzahl von Infektionen (Moi) gleich 5.</li>
	<li>Fügen Sie 2 µL des Polybrene für eine Endkonzentration von 8 µg/mL.</li>
	<li>Inkubieren Sie die Zellen bei 37 ° C und 5 % CO2 über Nacht.</li>
	<li>Ersetzen Sie am nächsten Tag Wachstumsmedium um ungebundene Virus zu entfernen. Die Platte wieder in den Inkubator bei 37 ° C und 5 % CO2 und 24 h inkubieren.</li>
	<li>0,5 mL des Gesamtvolumens zu ernten; Spin-down Zellen bei 360 X g für 5 min bei Raumtemperatur in einem 15 mL konische Röhrchen und überstand durch Aspiration entfernen. Die verbleibenden Zellen 0,5 mL frische neurale Stammzellen Wachstumsmedium hinzu und die Platte in den Inkubator für eine weitere Expansion zurück.</li>
	<li>Fügen Sie 200 µL des Reagenz Dissoziation und 5 min bei 37 ° c inkubieren</li>
	<li>Sanft auf und ab pipettieren, um Zellen zu distanzieren. Hinweis: Harte Verreibung kann erhebliche Tötung der vorliegenden Allgemeinen Geschäftsbedingungen, vollständige Dissoziation erfolgt in der Regel nach 20 - 30 Mal.</li>
	<li>Zur Minimierung von Zellhaftung oder Aggregation fügen Sie 800 µL von Hank es ausgewogen Salz Lösung (HBSS) für ein Endvolumen von 1 mL hinzu.</li>
	<li>Übertragen Sie 200 µL jeder Zellsuspension auf einen Brunnen einer 96-Multiwell-Platte.</li>
	<li>Verwenden Sie bei diesem Vorgang ein Benchtop-Durchflusszytometer mit 96-Well-Platte-Funktion ausgestattet, mit einem blauen Laser Erregung und mit der Fähigkeit zur Erkennung von grün fluoreszierendes Protein. Führen Sie durchflusszytometrischen Analyse mit mindestens 10.000 lebensfähige Zellen für jede Akquisition.</li>
	<li>Bestimmen Sie den Anteil der GFP-positiven Zellen durch Durchflusszytometrie.</li>
</ol>(2) subclone Auswahl, Expansion und Validierung
<ol><li>Platte Zellen in 100 µL neurale Stammzellen Medium bei einer Dichte von 0,7 Zellen pro Bohrloch einer 96-Multiwell-Platte.</li>
	<li>Kultur-Klone für 11 Tage bei 37 ° C und 5 % CO2. Dieser Schritt ist sehr Zelltyp abhängig und benötigen wahrscheinlich eine Anpassung auf die Zell-Linie verwendet. Eine Kugel Durchmesser ≥ 100 µm ist in der Regel ein guter Indikator für das Vorhandensein der klonogenen vorliegenden Allgemeinen Geschäftsbedingungen in den Neurosphären.</li>
	<li>Markieren Sie mit einem fluoreszierenden Mikroskop mit einem FITC-Filter ausgestattet, die Brunnen, die eine einzelne Neurosphäre enthalten wo ~ 1-5 % der Zellen GFP-positiv sind. Hinweis: Bestimmung den genauen Prozentsatz der GFP-positiven Zellen ist nicht zu kritisch zu diesem Zeitpunkt. Jeder der Subclones wird später durch Durchflusszytometrie ausgewertet werden. Dieser Schritt wird durchgeführt, um die Summe zu reduzieren Anzahl der Klone mit Schwerpunkt auf Neurosphären analysiert werden, die durch ihren Ursprung undifferenziert, GFAP-negativ, GSC.</li>
	<li>Erweitern Sie ausgewählte Reporter Klone bis gibt es eine ausreichende Anzahl von Zellen für die Analyse von Durchflusszytometrie. Eine Sub-konfluierende gut einer 6-Multiwell-Platte mit ≤ 1.5x105 Zellen/mL sollte eine ausreichende Anzahl von Zellen. Hinweis: Ein detailliertes Verfahren zur Isolierung und Ausbau der vorliegenden Allgemeinen Geschäftsbedingungen ist verfügbar 17.</li>
</ol>3. Ermittlung der GFAP:GFP Ausdruck von Durchflusszytometrie
<ol><li>Ernten Sie ein Aliquot der Zellen (0,5 mL) von jedem Reporter Klon und nicht ausgestrahlt Kontrollen der genaue Prozentsatz der GFP-positiven Zellen bestimmt. Wenn man bedenkt Reporter Klone, die ~ 1-5 % GFP-positiven Zellen enthalten.</li>
	<li>Spin-Zellen bei 360 X g für 5 min bei Raumtemperatur und überstand durch Aspiration entfernen.</li>
	<li>Jedes Pellet 200 µL der Zelle Dissoziation Reagenz hinzugeben und die Rohre in einem Wasserbad, eingestellt auf 37 ° c inkubieren</li>
	<li>Genannte Zellen vorsichtig, um eine einzelne Zelle Suspension (in der Regel zwischen 20 bis 30 Mal) zu erreichen.</li>
	<li>Zur Minimierung von Zellhaftung oder Aggregation fügen Sie 800 µL HBSS zu einem Endvolumen von 1 mL hinzu.</li>
	<li>Übertragen Sie 200 µL pro Bohrloch einer 96-Multiwell-Platte von jedem Zellsuspension.</li>
	<li>Verwenden Sie bei diesem Vorgang ein Benchtop-Durchflusszytometer mit 96-Well-Platte-Funktion. Führen Sie durchflusszytometrischen Analyse mit mindestens 10.000 lebensfähige Zellen für jede Akquisition.</li>
</ol>4. ELDA Selbsterneuerung Assay klonogenen Kapazität bewerten
Hinweis: Für Steuerelemente, sowohl elterlichen, nicht ausgestrahlt, sowie mit dem Ausdruck der GFP Lentivirus ausgestrahlt Zellen, sollte verwendet werden, um festzustellen, das relative klonogenen Potenzial der GSC Differenzierung Reporter Linien auf die ursprünglichen GSC-Kulturen, aus denen sie waren abgeleitet.
<ol><li>Differenzierung-Reporter Subclones in einzellige Suspensionen zu distanzieren, wie oben beschrieben.</li>
	<li>Platte Zellen in 96-Multiwell-Platten in 100 µL kompletten neurale Stammzellen Wachstumsmedien bei Zelldichten zwischen 5 und 500 Zellen pro Bohrloch.</li>
	<li>9 bis 11 Tage bei 37 ° C und 5 % CO2inkubieren Sie Zellen.</li>
	<li>Ergebnis positive Vertiefungen durch direkte Visualisierung der Neurosphären unter einem Lichtmikroskop. Ein Brunnen sollte betrachtet werden, "positiv", wenn es mindestens einen einzigen großen Neurosphäre enthält.</li>
	<li>Stecken Sie die Daten: total Brunnen analysiert und die Anzahl der positiven Vertiefungen mit http://bioinf.wehi.edu.au/software/elda/index.html die ELDA Online-Schnittstelle zur Verfügung.</li>
</ol>(5) Medikament Bibliothek Verdünnung Vorbereitung
<ol><li>Bibliothek-Platten aus dem Speicher bei-80 ° C entfernen, mit Alufolie bedecken (Schutz der lichtempfindlichen Substanzen). Für etwa 30 min bis zu einer Stunde bei Raumtemperatur auftauen.</li>
	<li>Verwenden Sie ein 12-Kanal Mehrkanal-Pipette, um die Bibliothek-Verbindungen bis zu 0,2 mM komplette neurale Stammzellen Medium zu verdünnen. Verdünnte DMSO auf 10 % im Wachstumsmedium Hinweis: Die Endkonzentration von DMSO sollte 0,1 % bei Zellen hinzugefügt werden. Eine höhere Konzentration von DMSO in der Kultur kann Toxizität führen. Aus diesem Grund empfiehlt es sich, Sensibilität für DMSO in der Zell-Linie verwendet, vor der Behandlung zu testen.</li>
	<li>Verwenden Sie DMSO als Fahrzeugkontrolle zur Behandlung von Zellen in der linken und rechten Spalte jeder Platte (Spalten 1 und 12; Brunnen A bis H).</li>
	<li>Decken Sie die verdünnte Bibliothek-Platten mit Alu-Folie ab und wieder die ursprüngliche Bibliothek Platten-80 ° C Gefrierschrank für die Langzeitspeicherung.</li>
</ol>(6) Drogentest
Hinweis: DMSO-behandelten Zellen sollte auf die Grundlinie Fluoreszenz einstellen und anpassen, gating verwendet werden.
<ol><li>Platte 5 x 103 Zellen in einer 96-Multiwell-Platte in 99 µL kompletten neurale Stammzellen Wachstumsmedium.</li>
	<li>Mit einem 12-Kanal Mehrkanal-Pipette, behandeln Sie Zellen mit verdünnter Bibliothek Verbindungen auf eine Endkonzentration von 2 µM (1 µL 0,2 mM Droge in 99 µL Zellsuspension) oder mit DMSO (Kontrolle). Inkubieren Sie die Platten für 72 h bei 37 ° C und 5 % CO2.</li>
	<li>Ein 12-Kanal Mehrkanal-Pipette mit 150 µL Reagenz Zelle Dissoziation in jede Vertiefung hinzufügen und 20 min bei 37 ° c inkubieren</li>
	<li>Sanft mit einem 12-Kanal Mehrkanal-Pipette verreiben, bis einzelne Zellsuspension (in der Regel zwischen 20 bis 30 Mal) erreicht ist, um Zellen zu distanzieren. Die Zeitspanne, die Neurosphären vollständig distanzieren muss variiert zwischen GSC Linien. Während das empfohlene Zelle Dissoziation Reagenz (siehe Material) sicher ist und Inkubation für bis zu 45 Minuten keinen Einfluss auf die Lebensfähigkeit in GSC mehrzeilig getestet hatte, überprüfen Sie für jede Zeile der GSC in Screening verwendet werden. Hinweis: Das Endvolumen in jedem sollte nun etwa 250 µL (100 µL Zellsuspension + 150 µL Reagenz Zelle Dissoziation).</li>
	<li>Den Anteil der Zellen mit dem Ausdruck der GFAP:GFP Reporters von Durchflusszytometrie zu bestimmen. Verwenden Sie standard-gating-Strategie. Erstens, streut Handlung nach vorne und seitlich um ein allgemeines Gefühl der Zellengröße und Lebensfähigkeit zu erhalten. Dann legen Sie ein Tor auf die lebensfähige Population der einzelligen. Dies ist die Bevölkerung für die grünen Fluoreszenz (eGFP) bestimmt wird. Jede Verbindung, die Ergebnisse in eine Erhöhung des Anteils der GFP-positiven Zellen um mehr als drei Standardabweichungen Kontrolle (DMSO-behandelt) eine Positive "Hit." gilt als Diese Schwelle sollte je nach Anwendungsfall und die gewünschte Härte eingestellt werden. Hinweis: Für den hohen Durchsatz ist Bildschirm mit einem einzigen GSC Reporter Subclone empfohlen. Nach erfolgreichen Identifizierung sollte jeder Treffer gegen zusätzliche Reporter Subclones aus der gleichen Linie GSC überprüft werden. Um das Vertrauen für wahre Hits zu erhöhen ist auch empfehlen Tests Verbindungen gegen Reporter Subclones isoliert aus verschiedenen GSC Neurosphären Linien.</li>
</ol>

<ol><li>Maher, E. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Malignant+glioma%3A+genetics+and+biology+of+a+grave+matter%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Dev%22%5BJournal%5D)">Malignant glioma: genetics and biology of a grave matter.</a> Genes Dev. 15 (11), 1311-1333 (2001).</li>
<li>Bonavia, R., Inda, M. M., Cavenee, W. K., Furnari, F. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heterogeneity+maintenance+in+glioblastoma%3A+a+social+network%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Heterogeneity maintenance in glioblastoma: a social network.</a> Cancer Res. 71 (12), 4055-4060 (2011).</li>
<li>Bao, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glioma+stem+cells+promote+radioresistance+by+preferential+activation+of+the+DNA+damage+response%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Glioma stem cells promote radioresistance by preferential activation of the DNA damage response.</a> Nature. 444 (7120), 756-760 (2006).</li>
<li>Sul, J., Fine, H. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Malignant+gliomas%3A+new+translational+therapies%5BTitle%5D)+AND+%22Mt+Sinai+J+Med%22%5BJournal%5D)">Malignant gliomas: new translational therapies.</a> Mt Sinai J Med. 77 (6), 655-666 (2010).</li>
<li>Bar, E. E., Chaudhry, A., Farah, M. H., Eberhart, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hedgehog+signaling+promotes+medulloblastoma+survival+via+Bc%2FII%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Hedgehog signaling promotes medulloblastoma survival via Bc/II.</a> Am J Pathol. 170 (1), 347-355 (2007).</li>
<li>Chu, Q., Orr, B. A., Semenkow, S., Bar, E. E., Eberhart, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prolonged+inhibition+of+glioblastoma+xenograft+initiation+and+clonogenic+growth+following+in+vivo+Notch+blockade%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Prolonged inhibition of glioblastoma xenograft initiation and clonogenic growth following in vivo Notch blockade.</a> Clin Cancer Res. 19 (12), 3224-3233 (2013).</li>
<li>Schreck, K. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Notch+target+Hes1+directly+modulates+Gli1+expression+and+Hedgehog+signaling%3A+a+potential+mechanism+of+therapeutic+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">The Notch target Hes1 directly modulates Gli1 expression and Hedgehog signaling: a potential mechanism of therapeutic resistance.</a> Clin Cancer Res. 16 (24), 6060-6070 (2010).</li>
<li>Warrell, R. P. Jr, et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differentiation+therapy+of+acute+promyelocytic+leukemia+with+tretinoin+%28all-trans-retinoic+acid%29%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Differentiation therapy of acute promyelocytic leukemia with tretinoin (all-trans-retinoic acid).</a> N Engl J Med. 324 (20), 1385-1393 (1991).</li>
<li>Piccirillo, S. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bone+morphogenetic+proteins+inhibit+the+tumorigenic+potential+of+human+brain+tumour-initiating+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Bone morphogenetic proteins inhibit the tumorigenic potential of human brain tumour-initiating cells.</a> Nature. 444 (7120), 761-765 (2006).</li>
<li>Bar, E. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cyclopamine-mediated+hedgehog+pathway+inhibition+depletes+stem-like+cancer+cells+in+glioblastoma%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Cyclopamine-mediated hedgehog pathway inhibition depletes stem-like cancer cells in glioblastoma.</a> Stem Cells. 25 (10), 2524-2533 (2007).</li>
<li>Bar, E. E., Lin, A., Mahairaki, V., Matsui, W., Eberhart, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hypoxia+increases+the+expression+of+stem-cell+markers+and+promotes+clonogenicity+in+glioblastoma+neurospheres%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Hypoxia increases the expression of stem-cell markers and promotes clonogenicity in glioblastoma neurospheres.</a> Am J Pathol. 177 (3), 1491-1502 (2010).</li>
<li>Kahlert, U. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CD133%2FCD15+defines+distinct+cell+subpopulations+with+differential+in+vitro+clonogenic+activity+and+stem+cell-related+gene+expression+profile+in+in+vitro+propagated+glioblastoma+multiforme-derived+cell+line+with+a+PNET-like+component%5BTitle%5D)+AND+%22Folia+Neuropathol%22%5BJournal%5D)">CD133/CD15 defines distinct cell subpopulations with differential in vitro clonogenic activity and stem cell-related gene expression profile in in vitro propagated glioblastoma multiforme-derived cell line with a PNET-like component.</a> Folia Neuropathol. 50 (4), 357-368 (2012).</li>
<li>Lim, K. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibition+of+monocarboxylate+transporter-4+depletes+stem-like+glioblastoma+cells+and+inhibits+HIF+transcriptional+response+in+a+lactate-independent+manner%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">Inhibition of monocarboxylate transporter-4 depletes stem-like glioblastoma cells and inhibits HIF transcriptional response in a lactate-independent manner.</a> Oncogene. 33 (35), 4433-4441 (2014).</li>
<li>Kahlert, U. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ZEB1+Promotes+Invasion+in+Human+Fetal+Neural+Stem+Cells+and+Hypoxic+Glioma+Neurospheres%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Pathol%22%5BJournal%5D)">ZEB1 Promotes Invasion in Human Fetal Neural Stem Cells and Hypoxic Glioma Neurospheres.</a> Brain Pathol. 25 (6), 724-732 (2014).</li>
<li>Hu, Y., Smyth, G. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ELDA%3A+extreme+limiting+dilution+analysis+for+comparing+depleted+and+enriched+populations+in+stem+cell+and+other+assays%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol+Methods%22%5BJournal%5D)">ELDA: extreme limiting dilution analysis for comparing depleted and enriched populations in stem cell and other assays.</a> J Immunol Methods. 347 (1-2), 70-78 (2009).</li>
<li>Meyer, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single+cell-derived+clonal+analysis+of+human+glioblastoma+links+functional+and+genomic+heterogeneity%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Single cell-derived clonal analysis of human glioblastoma links functional and genomic heterogeneity.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 112 (3), 851-856 (2015).</li>
<li>Galli, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+characterization+of+tumorigenic%2C+stem-like+neural+precursors+from+human+glioblastoma%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Isolation and characterization of tumorigenic, stem-like neural precursors from human glioblastoma.</a> Cancer Res. 64 (19), 7011-7021 (2004).</li>
<li>Spina, R., Voss, D. M., Asnaghi, L., Sloan, A., Bar, E. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atracurium+Besylate+and+other+neuromuscular+blocking+agents+promote+astroglial+differentiation+and+deplete+glioblastoma+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Oncotarget%22%5BJournal%5D)">Atracurium Besylate and other neuromuscular blocking agents promote astroglial differentiation and deplete glioblastoma stem cells.</a> Oncotarget. 7 (1), 459-472 (2016).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts preisgeben.

Während die meisten der bisherigen Studien der vorliegenden Allgemeinen Geschäftsbedingungen konzentriert sich hauptsächlich auf die Markierungen, die sie definieren, in dieser Studie haben wir beschlossen das umgekehrte Vorgehen. Wir konzentrieren uns in erster Linie auf die differenzierten Stammarten erzeugt durch die vorliegenden Allgemeinen Geschäftsbedingungen (z. B. Zellen, die mit dem Ausdruck Astroglial und neuronale Marker). Hier zeigen wir Ihnen die Nutzung von zellbasierten Hochdurchsatz-Drogen-screening-Syste...

Jüngste Studien haben gezeigt, dass Tumoren eine kleine Population enthalten von Zellen, die Krebs-Stammzellen (CSCs) oder Tumor-initiierenden Zellen bezeichnet sind verantwortlich für die Tumorprogression, Metastasierung und Resistenz gegen Chemo - und Radio-Therapien 1, 2. das Vorhandensein von Krebs-Stammzellen und ihre differenzierten Stammarten in Tumoren gilt als einen wichtigen Faktor zur Förderung intratumorale Heterogenität und stellt somit eine große Hürde bei der Behandlung von Krebserkrankungen3. Tumor Zelle Hierarchie, bereitgestellt durch die Krebs-Stammzellen-Theorie hat die Entwicklung neuer Strategien zur Behandlung von Krebserkrankungen 4inspiriert. Ein Ansatz für die Zielgruppenadressierung Krebsstammzellen ist zu identifizieren und hemmen Signalwege, die bekanntermaßen während der embryonalen Entwicklung des betroffenen Organs erforderlich sind. In der Tat haben wir und andere zuvor mehrere Papiere, beschreibt die laufende Anforderung für die neuronale Stammzellen-relevanten Signalwege Sonic Hedgehog und Kerbe in Glioblastom5,6,7veröffentlicht. Diese Arbeit hat dazu beigetragen, die Verfestigung der Grund für mehrere GBM klinische Studien. Ein zweiter Ansatz für Krebs-Stammzellen-targeting ist ihre Differenzierung zu fördern. Dieser Ansatz hat eine Menge Unterstützung aufgrund der günstigen Ergebnisse von präklinischen und klinischen Studien bei der Behandlung von akuten Promyelocytic Leukämie mit Retinsäuren (ATRA, ein Vitamin-A-Analog) erhalten. Hier fand ATRA, entfernen die Reifung Block zu Krebs Zelle Differenzierung8. Piccirillo und Kollegen haben in jüngerer Zeit, elegant gezeigt, dass BMP-4 GSC Differenzierung in Astrozyten mit bedeutenden Anti-GBM-Effekte in Vitro und in Vivo9fördert.
Die Gründe für die vorliegende Studie basiert auf einer "Reverse Engineering" Ansatz für die Ausrichtung der vorliegenden Allgemeinen Geschäftsbedingungen. Angesichts die große Heterogenität in GBM und schlechte Differenzierung als eines der Markenzeichen von Krebs, fragten wir, ob wir einen günstigeren Phänotyp - Differenzierung in eine Astrozyten-artigen Zustand fördern könnten. Hier haben wir keine Vorkenntnisse in der Signalwege, die vorliegenden Allgemeinen Geschäftsbedingungen in einem bestimmten Tumor-Exemplar zu erhalten, sondern eher einen gewünschten Phänotyp (z.B. GFAP Positivität) erreichen wollen.
Dieser Bericht beschreibt die Verfahren zum Herstellen von GSC Differenzierung Reporter-Linien von der Transduktion von GSC-angereicherten Kulturen zum GSC klonale Selektion verwendet. Die Glioblastom Neurosphäre Linien verwendet wurden im Labor von Professor Angelo Vescovi von Patienten mit der Diagnose einer primären Glioblastom am Krankenhaus San Raffaele - Mailand, Italien gegründet. Diese Zeilen wurden in mehreren Publikationen: 6,10,11,12,13,14ausgiebig untersucht. Es wird dringend empfohlen, dass Personen, die bei der Umsetzung dieser Techniken in ihrem Labor interessieren die Relevanz des Reporters zu Krebs Stammzell-Selbsterneuerung Kapazität in den Zellen bestimmen sie studieren möchten (Dies gilt für alle Reporter). Ein detailliertes Protokoll für eines der in-vitro- klonogenen-Assays im Bereich akzeptiert steht zur Verfügung, um diese15,16zu erreichen. Zu guter Letzt steht ein detailliertes Protokoll beschreibt die Nutzung der Differenzierung Reporter-Linien in einen Drogentest Durchflusszytometrie basiert am Ende zur Verfügung. Der Hinweis haben ähnlich zum Astroglial Differenzierung System hier beschrieben wird, wir erfolgreich etabliert und validiert GSC Reporter Linien einen MAP2:GFP (neuronale Differenzierung) Reporter zu integrieren. Daher beschreiben die Methoden in diesem Papier kann angewendet werden, um zellulare Unterscheidung in verschiedene Linien der Zelle zu studieren.
Einige der Zahlen in diesem Bericht finden Sie in einer kürzlich erschienenen Publikation: "Atracurium Besylate und anderen neuromuskulären Blockern Astroglial Differenzierung fördern und zum Abbau Glioblastom Stammzellen18."_FITTED

<table><tbody><tr><td>ESGRO Complete Accutase</td><td>EMD Millipore</td><td>SF006</td><td></td></tr><tr><td>Dimethylsulfoxid (DMSO)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D2650</td><td></td></tr><tr><td>HBSS (Hank's Balanced Salt Solution)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>H6648</td><td></td></tr><tr><td>Human GFAP Differentiation Reporter (pGreenZeo, Virus)</td><td>SBI (System Biosciences)</td><td>SR10015VA-1</td><td></td></tr><tr><td>50 ml steriles Einwegreagenz Reservoirs</td><td>Corning</td><td>4870</td><td></td></tr><tr><td>6-Well-Platte</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>130184</td><td></td></tr><tr><td>96-Well-Platte</td><td>Falcon</td><td>353072</td><td></td></tr><tr><td>Biolite T25 cm&sup2; Thermo Fisher</td><td>Scientific</td><td>130189</td><td></td></tr><tr><td>Biolite T75 cm&sup2; </td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>130190</td><td></td></tr><tr><td>15 ml Zentrifugenröhrchen</td><td>Celltreat</td><td>229411</td><td></td></tr><tr><td>1,5 ml Mikrozentrifugenröhrchen</td><td>Fisher Scientific</td><td>05-408-129</td><td></td></tr><tr><td>Ovation Mehrkanalpipette, 12 Kanäle, 0,5 - 20 μl</td><td>VistaLab Technologies</td><td>1060-0020</td><td></td></tr><tr><td>Ovation Mehrkanalpipette, 12 Kanäle, 5-250 μl</td><td>VistaLab Technologies</td><td>1060-0250</td><td></td></tr><tr><td>Multi-12-Kanal-Pipettenspitzen 25 &mu; l</td><td>VistaLab Technologies</td><td>4060-1002</td><td></td></tr><tr><td>Multi-12-Kanal-Pipettenspitzen 250 μm l</td><td>VistaLab Technologies</td><td>4060-9025</td><td></td></tr><tr><td>Guava easyCyte 5HT Tisch-Durchflusszytometer</td><td>EMD Millipore</td><td>0500-4005</td><td></td></tr><tr><td>NIH Clinical Collections 1 und 2 Small Molecule Libraries</td><td>Evotec</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Name</strong</td><td>>Company</td><td>Katalognummer</td><td>Comments</td></tr><tr><td>Zur Herstellung von neuralen Stammzellmedien (500 mL)</td><td></td><td></td><td>Endkonzentration</td></tr><tr><td>BSA</td><td>GoldBio.com</td><td>A-421-250</td><td>0,20%</td></tr><tr><td>DMEM/F12 10X</td><td>Corning</td><td>90-091-PB</td><td>1X</td></tr><tr><td>Heparin-Natriumsalz</td><td>Sigma Aldrich</td><td>H3149</td><td>0,0002</td></tr>%<tr><td>HEPES 1M</td><td>Sigma Aldrich</td><td>H4036</td><td>5,4 mM</td></tr><tr><td>Insulin-Transferrin-Selen (ITS-G) (100X)</td><td>Life Technologies</td><td>41400-045</td><td>1X</td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S-5761</td><td>14,5 mM</td></tr><tr><td>Penicillin-Streptomycin (10.000 U/ml) 100X</td><td>Gibco</td><td>15140-122</td><td>1X</td></tr><tr><td>Progesteron</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P8783</td><td>16 nM</td></tr><tr><td>Putrescin</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P5780</td><td>4.8 & Mikro; M</td></tr><tr><td>Basic FGF (FGF2), Human</td><td>GoldBio</td><td>1140-02-50</td><td>10 ng/ml</td></tr><tr><td>EGF, Human</td><td>GoldBio</td><td>1150-04-100</td><td>20 ng/ml</td></tr><tr><td>Bottle-Top Filter, 150ml, 33mm, 0.22um, Pes, S, Ind</td><td>Corning</td><td>431160</td><td>Zur Filterung von sterilisierten Medien</td></tr></tbody></table>

flow cytometry-based drug screening-system für die identifizierung von kleinen molekülen, die zelluläre differenzierung von stammzellen glioblastom zu fördern

Flow Cytometry-based Drug Screening System for the Identification of Small Molecules That Promote Cellular Differentiation of Glioblastoma Stem Cells

Glioblastom (GBM) ist die häufigste und tödlichste primäre Gehirntumor bei Erwachsenen verursacht rund 14.000 Todesfälle pro Jahr allein in den USA. Mediane Überlebenszeit nach Diagnosestellung beträgt weniger als 15 Monate mit maximalen chirurgische Resektion, Strahlung und Temozolomid Chemotherapie. Die Herausforderungen bei der Entwicklung effektiver GBM Behandlungen immer deutlicher geworden, und gehören seine unnachgiebige Invasivität, seiner Beständigkeit gegenüber standard-Behandlungen, seine genetische Komplexität und molekulare Anpassungsfähigkeit und Subpopulationen von GBM Zellen mit phänotypischen Ähnlichkeit zu normalen Stammzellen, hierin als Glioblastom Stammzellen (vorliegenden Allgemeinen Geschäftsbedingungen) bezeichnet. Da die vorliegenden Allgemeinen Geschäftsbedingungen für Tumorwachstum und Progression erforderlich sind, stellt Therapie auf der Basis der Differenzierung eine praktikable Behandlungsmethode für diese unheilbaren Tumoren dar.
Das folgende Protokoll beschreibt eine Auflistung von Verfahren, die einen hohen Durchsatz screening-Plattform zur Benennung von kleinen Molekülen, die Förderung der GSC Astroglial Differenzierung zu schaffen. Das Herzstück des Systems ist ein glial fibrillary sauren Protein (GFAP) Differenzierung Reporter-Konstrukt. Das Protokoll enthält die folgenden allgemeinen Verfahren: (1) Festlegung GSC Differenzierung Reporter; (2) Prüfung/Validierung der Relevanz des Reporters GSC selbst-Erneuerung/klonogenen Kapazität; und (3) Hochleistungs-Durchflusszytometrie Drogen-Screening.
Die Screening-Plattform bietet einen einfache und kostengünstigen Ansatz um kleine Moleküle zu identifizieren, die vorliegenden Allgemeinen Geschäftsbedingungen Differenzierung fördern. Darüber hinaus hält Nutzung der Bibliotheken der FDA-zugelassene Medikamente das Potenzial für die Identifizierung der Agents, die schneller verwendet werden können. Außerdem sollen Therapien, die Krebs-Stammzell-Differenzierung fördern synergistisch mit aktuellen "Pflege" Standardtherapien zu arbeiten, die gezeigt worden, um gezielt zu beseitigen in erster Linie mehr differenzierte Krebszellen.

Drei unabhängige Patienten abgeleitet Neurosphären Linien wurden mit dem Lentivirus Astroglial Reporter Codierung für eine grün-fluoreszierende Protein (GFP) verschmolzen in-Frame mit einer Zeocin Widerstand Kassette ausgestrahlt und angetrieben durch das menschliche GFAP-Promotor-Element ( Abbildung 1). Nächsten einzelnen Klone wurden durch Ausplattieren 0,7 Zellen pro Bohrloch in einer 96-well-Platte (Abbildung 2) isoliert, es ...

Eine effizientes Screening-Protokoll wird für die Identifikation von kleinen Molekülen präsentiert, die Astroglial Differenzierung in Glioblastom Stammzellen (vorliegenden Allgemeinen Geschäftsbedingungen) zu fördern. Der Test basiert auf Stammzell-Differenzierung Reporter, wobei der Ausdruck der verbesserte GFP (eGFP) durch den menschlichen GFAP Projektträger angetrieben wird.

Flow Cytometry-based Drug Screening-System für die Identifizierung von kleinen Molekülen, die zelluläre Differenzierung von Stammzellen Glioblastom zu fördern

Glioblastoma (GBM) is the most common and most lethal primary brain tumor in adults, causing roughly 14,000 deaths each year in the U.S. alone. Median ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, Bibliotheken kleiner Moleküle nach Wirkstoffen zu screenen, die die astrogliale Differenzierung in Glioblastom-Stammzellen fördern. Diese Methode kann helfen, zentrale Fragen im Bereich der Krebsstammzellen zu beantworten, beispielsweise, welche Signalwege erforderlich sind, um Glioblastom-Stammzellen im undifferenzierten Zustand zu erhalten. Eine korrekte Durchführung dieser Technik ermöglicht die direkte Identifizierung kleiner Moleküle, die die Differenzierung von Glioblastom-Stammzellen fördern.Die Bedeutung dieser Technik erstreckt sich auf die Therapie von Ehlers-Danlos-Glioblastom, da die Verringerung des Anteils an Glioblastom-Stammzellen die Wahrscheinlichkeit eines Rezidivs verringern könnte. Diese Methode kann auch zur Einleitung der Differenzierung in andere Zelllinien unter Verwendung anderer Reporterkonstrukte angewendet werden. Unser Bericht ist der erste, der einen Hochdurchsatzansatz zur Identifizierung von Substanzen etabliert, die Gliom-Stammzellen zur Differenzierung zwingen.Das Arbeiten mit Lentivirus-Partikeln in aus Patienten stammenden Krebszellen kann äußerst gefährlich sein. Daher sollten stets die Standardverfahren für den Umgang mit blutübertragbaren Krankheitserregern befolgt werden. Beginnen Sie damit, eine Million Glioblastom-Stammzellen oder GSCs in zwei Milliliter vollständigem Wachstumsmedium für neuronale Stammzellen in einer 6-Loch-Platte zu säen.Als Nächstes transduzieren Sie die Zellen mit dem Lentivirus-Reporter bei einer Multiplizität der Infektion gleich fünf. Geben Sie zwei Mikroliter Polybrene zur Zell- und Virusmischung hinzu, sodass die Endkonzentration acht Mikrogramm pro Milliliter beträgt, und inkubieren Sie die Zellen über Nacht bei 37 Grad Celsius und 5 % CO2. Ersetzen Sie nach der Inkubation das Wachstumsmedium, um nicht gebundenes Virus zu entfernen.Und zentrifugieren Sie die Zellen bei 360 × g für fünf Minuten. Entfernen Sie dann vorsichtig das Medium und impfen Sie die Zellen in eine 6-Loch-Platte aus. Inkubieren Sie die Zellen anschließend weitere 24 Stunden.Entnehmen Sie 0,5 Milliliter des gesamten Kulturvolumens. Pelletieren Sie die Zellen durch Zentrifugation bei 360 ×g für fünf Minuten bei Raumtemperatur. Resuspendieren Sie die Zellen in 0,5 Milliliter frischem Wachstumsmedium für neurale Stammzellen.Stellen Sie die Platte zurück in den Inkubator, um eine Ausbreitung über mindestens 72 Stunden zu ermöglichen. Geben Sie 200 Mikroliter Dissoziationsreagenz hinzu und inkubieren Sie fünf Minuten in einem Wasserbad, das auf 37 Grad Celsius eingestellt ist. Dissoziieren Sie die Zellen, indem Sie sie vorsichtig mehrmals auf- und abpipettieren.Zugeben Sie zu den dissoziierten Zellen 800 Mikroliter HBSS, um eine minimale Zelladhäsion oder -aggregation sicherzustellen. Überführen Sie anschließend 200 Mikroliter jeder Zellsuspension in die Vertiefungen einer 96-Multiwell-Platte. Bestimmen Sie den Prozentsatz der Zellen, die das grün fluoreszierende Protein exprimieren, mittels Durchflusszytometrie.Registrieren Sie mindestens 10.000 lebensfähige Zellen pro Messung. Verwenden Sie bei jeder Durchflusszytometrie-Untersuchung parentale, nicht transduzierte Zellen oder Vektor-transduzierte, nicht fluoreszierende Zellen, um die Baseline-Fluoreszenz zu bestimmen. Um einzelne Subklone auszuwählen und zu expandieren, säen Sie Zellen mit einer Dichte von 0,7 Zellen pro Vertiefung in 100 Mikroliter Neuralstammzell-Medium in einer 96-Loch-Platte aus.Kultivieren Sie diese Klone 11 Tage lang. Achten Sie auf Neurosphären mit einem Durchmesser von mehr als 100 Mikron. Wir haben diese Größenschwelle zuvor festgelegt, um rückwirkend zu bestimmen, ob die Neurosphäre von einer sich selbst erneuernden Glioblastom-Stammzelle stammte.Diese Grenzgröße muss möglicherweise bei der Arbeit mit verschiedenen Glioblastom-Zellmodellen optimiert werden. Beobachten Sie die Zellen unter einem Fluoreszenzmikroskop mit FITC-Filter und markieren Sie die Wells, die einen einzelnen Neurosphäroid enthalten, bei dem etwa 1 % bis 5 % der Zellen GFP-positiv sind. Erweitern Sie nach der Markierung einzelne Klone, bis eine ausreichende Anzahl an Zellen für die Durchflusszytometrie-Analyse verfügbar ist.Unter der Annahme, dass die Reporter-Klone 1 % bis 5 % GFP-positiver Zellen enthalten, gewinnen Sie 0,5 Milliliter von jeder Klon sowie eine gleiche Menge nicht-transduzierter Kontrollzellen, um den genauen Prozentsatz an GFP-positiven Zellen zu bestimmen. Nach dem Zentrifugieren der Zellen bei 360 × g für fünf Minuten bei Raumtemperatur wird der Überstand abgesaugt. Geben Sie 200 Mikroliter Dissoziationsreagenz zu jedem Pellet hinzu und inkubieren Sie die Röhrchen in einem Wasserbad, das auf 37 Grad Celsius eingestellt ist.Nach der Inkubation die Zellen etwa 20 bis 30 Mal pipettieren, um eine Einzelzell-Suspension zu erhalten. Anschließend 800 Mikroliter HBSS hinzufügen, um eine minimale Zelladhäsion oder -aggregation sicherzustellen. Danach jeweils 200 Mikroliter jeder Zellsuspension in die Vertiefungen einer 96-Multiwell-Platte überführen.Abschließend wird die Durchflusszytometrie durchgeführt, wobei mindestens 10.000 lebensfähige Zellen pro Messung erfasst werden. Zur Beurteilung der klonogenen Kapazität werden Einzelzell-Suspensionen von Differenzierungs-Reporter-Subklonen hergestellt, indem die Zellen etwa 20 bis 30 Mal auf- und abpipettiert werden. Anschließend werden diese Zellen in 100 Mikroliter vollständigem Wachstumsmedium für neuronale Stammzellen mit einer Dichte von etwa fünf bis 500 Zellen pro Vertiefung in 96-Multiwell-Platten ausplattiert.Kultivieren Sie diese Zellen neun bis elf Tage lang. Suchen Sie unter dem Lichtmikroskop nach Neurosphären. Eine Vertiefung, die mindestens eine einzelne große Neurosphäre enthält, gilt als positiv.Als Kontrollen werden die elterlichen, nicht transduzierten Zellen sowie die GFP-positiven, mit Lentivirus transduzierten Zellen herangezogen; geben Sie die Gesamtanzahl der analysierten Wells sowie die Anzahl der positiven Zellen in die ELDA-Online-Schnittstelle ein. Zum Beginn des Screenings werden 5000 Zellen in 99 Mikroliter vollständigem Wachstumsmedium für neuronale Stammzellen in einer 96-Well-Platte ausgesät. Anschließend werden die Zellen mit einem 12-Kanal-Pipettierer mit einer endgültigen Konzentration von zwei Mikromolar verdünnter Bibliotheksverbindungen oder mit der DMSO-Kontrolle behandelt.Inkubieren Sie die Zellen 72 Stunden lang. Geben Sie nun 150 Mikroliter Zell-Dissociationsreagenz mithilfe eines 12-Kanal-Pipettors in jede Vertiefung und inkubieren Sie 20 Minuten bei 37 Grad Celsius. Danach pipettieren Sie die Zellen vorsichtig etwa 20 bis 30 Mal mit einem 12-Kanal-Pipettor in jeder Vertiefung, bis eine Einzelzell-Suspension erreicht ist.Führen Sie nun die Durchflusszytometrie durch und bestimmen Sie den Prozentsatz der Zellen, die den GFAP:GFP-Reporter exprimieren. Bestimmen Sie zunächst die Zellgröße und Vitalität anhand des Vorwärts- und Seitenstreulichts und grenzen Sie die vitalen Zellen ab. Anschließend ermitteln Sie die GFP-positiven Zellen innerhalb der vitalen Zellpopulation.Ein Anstieg des Prozentsatzes GFP-positiver Zellen um drei Standardabweichungen gegenüber den Kontrollen gilt als positiver Befund, der je nach gewünschter Stringenz anpassbar ist. Repräsentative Bilder von HSR-GBM1 GSC-Subklonen mit niedriger und hoher Expression von GFAP:GFP werden gezeigt. Die Subklone mit positiver GFAP:GFP-Expression wurden mittels Durchflusszytometrie aus der patientenabgeleiteten Neurosphärenlinie ausgewählt.Hier zeigt ein niedriges GFAP:GFP, dass weniger als 5 % der Zellen im Klon GFP-positiv sind, während ein hohes GFAP:GFP angibt, dass mehr als 75 % der Zellen im Klon GFP-positiv sind. Diese Ergebnisse zeigen, dass die in-vitro-Selbsterneuerungskapazität von GFAP-niedrigen Teilklonen höher ist als die ihrer GFAP-hohen Gegenstücke, wie durch ELDA bestimmt. Daher sind GH-Teilklone stärker differenziert als GL-Teilklone.Schließlich wurden Arzneimittelsammlungen untersucht, um Wirkstoffe zu identifizieren, die in der Lage sind, die astrogliale Differenzierung in GSCs zu induzieren. 12 Arzneimittel führten signifikant zu einer Erhöhung des Anteils an Zellen, die den GFAP:GFP-Reporter exprimierten. Wenn man die Technik einmal beherrscht, kann sie bei korrekter Durchführung innerhalb weniger Wochen durchgeführt werden.Nach Durchführung dieses Verfahrens können weitere Methoden wie der alamarBlue-Assay, der klonogene Assay in halbfesten Medien oder die subkutane beziehungsweise intrakranielle Xenotransplantation durchgeführt werden, um zusätzliche Fragestellungen zu beantworten, beispielsweise die Wirkung selektiver Wirkstoffe auf die zelluläre Proliferation und Klonogenität in vitro sowie die Tumorigenität in vivo. Nach Anschauen dieses Videos sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man Verbindungen identifizieren kann, die in der Lage sind, die astrogliale Differenzierung von Glioblastom-Stammzellen zu induzieren.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Cancer Research

Krebsforschung

Diese Video-Protokoll zeigt die Anwendung des Fluoreszenzfarbstoffs Carboxyfluorescein-succinimidylester (CFSE) zur Identifikation und Trennung von verschiedenen Subpopulationen von Zellen in humanen Glioblastomzellen nach der Häufigkeit des Zellteilung basiert.

Identifizierung und Isolierung von Slow-teilenden Zellen im menschlichen Glioblastoma Mit Carboxyfluorescein Succinimidyl Ester (CFSE)

Dieses Video demonstriert eine Technik zur Generierung einer Reporterlinie aus Glioblastom-Stammzellen, um die Differenzierung von Glioblastom-Stammzellen (GSCs) in Astroglia zu identifizieren. Es werden die Schritte beschrieben, die bei der Aussaat von GSCs, der Transduktion mit einem Lentivirus, das für GFP kodiert, und der Bestimmung der GFP-Reporterexpression durch Durchflusszytometrie erforderlich sind.

Ein lentivirales transkriptionelles Reportersystem zur Generierung einer Reporterlinie zur Differenzierung von Glioblastom-Stammzellen

Protokoll zur Verbreitung von dissoziierten hochgradigen chirurgischen Gliomproben im serumfreien Neurosphärenmedium zur Auswahl für Zellen mit Krebsstammzellphänotyp. Für Proben, die nicht als Neurosphären wachsen, wird ein alternatives Protokoll vorgeschlagen. Eine Paraffin-Einbettungstechnik zur Aufrechterhaltung der 3D-Neurosphärenarchitektur für die Immunzytochemie wird beschrieben.

Optimierung der hochwertigen Gliom-Zellkultur von chirurgischen Proben für den Einsatz in klinisch relevanten Tiermodellen und 3D-Immunchemie

Die Identifizierung neuartiger Wirkstoffziele, die von präklinischen Tests zu Versuchen am Menschen übergehen, ist eine wissenschaftliche Priorität. Zu diesem Zweck beschreiben wir hier einen funktionellen genomischen Ansatz, um die Auswirkungen der Genverarmung auf Sphäroide von Krebszelllinien zu untersuchen, die menschliche Krebserkrankungen in vivo besser modellieren.

Functional Genomics Screening Verwendung zur Identifizierung möglicher neuer Wirkstoff-Targets in Cancer Cell Sphäroid-Kulturen

Wir präsentieren in der aktuellen Studie eine neuartige fluoreszenzbasierten Assays von einer transgenen Maus abgeleiteten Lymphozyten. Dieser Assay ist für Hochdurchsatz-Screening (HTS) von kleinen Molekülen dotiert mit einer Kapazität von entweder Hemmung oder Förderung der Lymphozytenaktivierung geeignet.

Ein Fluoreszenz-basierte Lymphocyte Assay geeignet für Hochdurchsatz-Screening von kleinen Molekülen

Hier beschreiben wir Leben-Zelle bildgebende Verfahren um die Migration und Invasion von Glioblastom Gehirn Tumor-Stammzellen im Laufe der Zeit und unter mehreren Behandlungsbedingungen quantitativ zu messen.

Live Cell Imaging-Assays Studie Glioblastom Gehirn Tumor Stammzellen Migration und Invasion

Dieses Protokoll beschreibt die Erzeugung von vom Patienten abgeleiteten Sphäroiden und nachgelagerte Analysen, einschließlich Quantifizierung der Proliferation, Zytotoxizitätstests, Durchflusszytometrie, Immunfluoreszenzfärbung und konfokale Bildgebung, um Potenzial der Kandidaten als antineoplastische Therapeutika. Dieses Protokoll unterstützt Präzisionsmedizin mit der Identifizierung spezifischer Medikamente für jeden Patienten und das Krankheitsstadium.

Physiologische Rand-3D-Sphäroide für antineoplastisches Arzneimittel-Screening, um Krebs-Stammzellen gezielt anzusprechen

Die Gliomstammzellen (GSCs) sind ein kleiner Teil der Krebszellen, die eine wesentliche Rolle bei der Tumorinitiierung, Angiogenese und Arzneimittelresistenz beim Glioblastom (GBM), dem häufigsten und verheerendsten primären Hirntumor, spielen. Das Vorhandensein von GSCs macht das GBM sehr refraktär gegenüber den meisten einzelnen Zielerregern, so dass Hochdurchsatz-Screening-Methoden erforderlich sind, um potenziell wirksame Kombinationstherapeutika zu identifizieren. Das Protokoll beschreibt...

Ein schneller Screening-Workflow zur Identifizierung einer potenziellen Kombinationstherapie für GBM unter Verwendung von vom Patienten abgeleiteten Gliomstammzellen

Hier etablieren wir eine metabolische Profiling-Plattform, die dreidimensionale (3D) Gliom-Sphäroide und bildgebende Normalisierung mittels extrazellulärer Flussanalyse integriert. Dieser Ansatz ermöglicht eine genauere Bewertung der metabolischen Reaktionen von Tumoren auf medikamentöse Behandlungen und gibt Einblicke in mögliche Resistenzmechanismen.

Fortschritte bei der metabolischen Profilerstellung von dreidimensionalen Hirntumor-Sphäroiden für das Wirkstoffscreening

Wir präsentieren ein 3D-Glioblastom-Migrationsmodell unter Verwendung von von Patienten abgeleiteten magnetischen Gliomsphären, die aus neu diagnostizierten und wiederkehrenden Tumoren erzeugt wurden. Diese Plattform ermöglicht die Visualisierung patientenspezifischer Migrationsdynamiken und die Bewertung der therapeutischen Wirksamkeit. Der Test kann nach der Migration multiplexiert werden, um die Proteinlokalisierung und Expressionsmuster zu bewerten.

Reproduzierbarer 3D-Glioblastom-Migrationstest mit magnetischer Nanopartikel-vermittelter sphäroider Lokalisierung unter hypoxischen Bedingungen

Erfahren Sie ein Hochdurchsatz-Screening-Verfahren zur Identifizierung kleiner Moleküle, die astrogliale Differenzierung von Glioblastom-Stammzellen fördern. Diese Methode nutzt einen GFAP-GFP-Reporter.

Flow Cytometry-based Drug Screening-System für die Identifizierung von kleinen Molekülen, die zelluläre Differenzierung von Stammzellen Glioblastom zu fördern (Video) | JoVE Journal

Flow Cytometry-based Drug Screening-System für die Identifizierung von kleinen Molekülen, die zelluläre Differenzierung von Stammzellen Glioblastom zu fördern

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