Name: In Vivo Tracking der menschlichen Fettgewebe mesenchymalen Stammzellen in einem Rattenmodell Knie Arthrose mit fluoreszierenden lipophile Membran Farbstoff (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-10-08T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 31 s
Description: Erfahren Sie die In-vivo-Verfolgung von humanen adipösen mesenchymalen Stammzellen in einem Ratten-Knie-Arthrose-Modell mittels fluoreszenzmarkierter DiD-Farbstoffinjektion. Diese Methode ermöglicht die Beobachtung von Zellpersistenz und Biodistribution.

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Die aktuelle Studie wurde unterstützt durch Shanghai Innovationsförderung (1402 H 294300) gesponsert von der Wissenschaft und Technologie Kommission von Shanghai Gemeinde (CN), Dr. Wen Wang. Wir möchten danken Dr. Guangdong Zhou (National Tissue Engineering Center of China) für seine technische Unterstützung und wissenschaftliche Beratung für diese Handschrift. Wir auch möchte Herr Huitang Xia (Shanghai neunten Volks Krankenhaus) danken für seine Hilfe im Bereich des Tierschutzes.

Verfahren im Zusammenhang mit tierischen Probanden wurden genehmigt durch die lokalen institutionellen Animal Care und Ethik-Kommission, mit dem Bemühen, das Leiden der Tiere zu minimieren. Das folgende Protokoll wurde von der institutionellen Animal Care und Nutzung Committee (IACUC) in Shanghai neunte People genehmigt &#8217; s Krankenhaus, Shanghai JiaoTong University School of Medicine mit dem Protokoll angegliedert Nummer [2017] 063.
 1. Aufbau eines Surgically-Induced Ratte Knie Osteoarthritis Modells <ol><li>für dieses chirurgische Verfahren, Verwendung 8-12 Wochen alten männlichen Sprague-Dawley (SD) Ratten mit einem Körpergewicht zwischen 250 und 300 g.</li>
	<li>Die Tiere mit 40 mg/kg Tiletamin und 40 mg/kg Zolazepam durch intramuskuläre Injektion zu betäuben.</li>
	<li>Legen Sie das Tier in einer linken seitlichen Position auf einer beheizten Bühne. Rasieren Sie das rechte Knie gründlich mit einem Rasiermesser. Desinfizieren Sie den OP-Bereich mit 10 % Providone-Jod-Lösung gefolgt von 70 % Ethanol, zwei weitere Male zu wiederholen und malen Sie dann mit 10 % Providone-Jod-Lösung und die nicht-chirurgische Fläche mit einem OP Pad.</li>
	<li>Mit einem chirurgischen Skalpell machen einen 2 cm Schnitt seitlich entlang der Patellasehne, setzen Sie die Jointcapsules.</li>
	<li>Verwenden ein chirurgisches Skalpell, um den medialen Seitenbandes Transekt. Reflektieren den Meniskus in Richtung Femur.</li>
	<li>Tropfen sterilen 0,9 % Natriumchlorid-Lösung auf der Oberfläche des Gelenkknorpels während des Betriebs zu verhindern, dass den Knorpel austrocknen.</li>
	<li>Der medialen Meniskus mit Zange greifen und Durchtrennung der Meniskus an der schmalsten Stelle aus der Tibia Beschäftigung mit einem Skalpell ( Abbildung 1A). Nicht zu verletzen, des Knorpels.</li>
	<li>Schließen die Gelenkkapsel mit einer resorbierbaren Naht 4: 0.</li>
	<li>Überwachen die chirurgische Ratten, bis sie wieder zu Bewusstsein kommen.</li>
	<li>Spritzen 20 mg/kg Gentamicin zur Vermeidung von Infektionen und 0,05 mg/kg Buprenorphin durch eine intramuskuläre Route zur Linderung von Schmerzen nach der Operation.</li>
	<li>Pflegen die Ratten in einer temperaturgesteuerten Tierhaus unter einem 12 h hell/dunkel-Zyklus für 3-8 Wochen zu Beginn KOA. Tiere weiterhin erhalten Schmerzmittel, einschließlich aber nicht beschränkt auf Buprenorphin (0,05 mg/kg, i.m.) und Gentamicin (20 mg/kg i.m.), wenn Symptome fortbestehen.</li>
</ol> 2. Histologie der Ratte KOA Bewertungsmodell <ol><li>Opfern, die Ratten mit übermäßigen CO 2 Inhalation (hinzufügen eine Füllrate von etwa 30 % des Kammervolumens pro Minute mit Kohlendioxid an die vorhandene Luft in der Kammer, um die tierischen Bewusstlosigkeit innerhalb von ca. 2-3 min. halten CO2-Fluss für ein Minimum von 1 min nach Atmung aufhört.) Zeitpunkten (Vertreter Ergebnisse werden angezeigt, nach 8 Wochen der KOA Induktion von 3 bis 8 Wochen) nach der Operation angegeben</li> <li>sezieren die Haut und Muskeln rund um die Kniegelenke und die Kniegelenke mit einem Skalpell abgeschnitten.</li>
	<li>Fix die Kniegelenke in 4 % Paraformaldehyd (PFA) für 3 Tage bei Raumtemperatur. Danach die Proben in 20 % Ethylenediaminetetraacetic Säure (EDTA) für ca. 4 Wochen bei 4 ° C zu entkalken, und ändern Sie die EDTA alle 3 Tage. 
	Achtung: Paraformaldehyd ist giftig, tragen geeigneten persönlichen Schutzausrüstung (PSA), wie Handschuhe und Brille.</li>
	<li>Entwässern die Proben unter Verwendung eines automatischen Gewebe-Prozessors. Menü zu einen bündigen Zyklus wie folgt starten: 70 % Ethanol für 1 h; dann 80 % Ethanol und 95 % igem Ethanol für 1 h; gefolgt von 2 Zyklen von 100 % Ethanol 1 h; Anschließend Xylol zweimal für 1 h jedes Mal und jedes Mal 3 Mal bei 58 ° C für 1 h paraffin. 
	Achtung: Xylol ist giftig, so tragen Sie geeignete PSA, wie Handschuhe und Brille. 
	Hinweis: Optional zur manuellen Entwässerung mit den gleichen Aufbau wie die automatische Gewebe-Prozessor verwenden Gläser Coplin.</li>
	<li>Den medialen Aspekt der intakten gemeinsame Fläche ablegen und Binde sie in der Paraffinblock mit Gewebe eingebettet in das Zentrum. 
	Hinweis: Optional Zange verwenden, um die Proben in den Paraffinblock manuell einbinden.</li>
	<li>5 µm sagittale Abschnitte vom medialen Rand des Gelenks für 30 µm Intervalle mit 2 Schnittserien durch rotary Mikrotom schneiden beginnen.</li>
	<li>Abschnitte auf Glasobjektträger montieren und deparaffinize Folien in Xylol. Zwischen den 2 Schnittserien Fleck eine Folie mit Hämatoxylin &#38; Eosin (H &#38; E) Färbung: 0,1 % Hämatoxylin für 15 min, 1 % Essigsäure-Lösung für 10 s und 0,5 % Eosin für 10 Minuten. Und Flecken auf die anderen Folie mit Safranin O/schnell grün Färbung: 0,1 % Hämatoxylin für 15 min, 0,02 % schnell grün für 3 min, 1 % Essigsäure-Lösung für 10 s und 0,1 % Safranin O für 3 min. 
	Achtung: Xylol ist giftig, geeignete PSA, wie Handschuhe, Brillen zu tragen.</li>
	<li>Ergebnis der gefärbten Folien mit Osteoarthritis Research Society International (OARSI) Histopathologie Bewertungssystem in Ratten 6.</li>
</ol> 3. Kennzeichnung des menschlichen mesenchymalen Stammzellen mit fluoreszierenden Farbstoff hat <ol><li>Tat bereiten Zelle Kennzeichnung Lösung in 100 % igem Ethanol bei einer Konzentration von 1 mM. Die Zelle-Kennzeichnung Lösung vor Licht schützen und bei Raumtemperatur für 6 Monate lagern.</li>
	<li>Wachsen HaMSCs mit Standardzellen Kultur Verfahren in Dulbecco &#39; s geändert Eagle &#39; s Medium (DMEM) ergänzt mit 1 % Penicillin und Streptomycin und 10 % fetalen Kälberserum (FCS) in einer Petrischale 10 cm.</li>
	<li>HaMSCs mit 2 mL 0,25 % Trypsin mit 1 mM EDTA vor rund 80 % Zusammenfluss lösen.</li>
	<li>Trypsin mit 4 mL Kulturmedium zu neutralisieren und die Zellen bei 800 X g für 3 min bei Raumtemperatur spin.</li>
	<li>Unterbrechen die Zellen bei einer Dichte von 1 x 10 6 Zellen/mL in 5 mL Serum-freien Kulturmedium.</li>
	<li>Kennzeichnen die Zellen durch Zugabe von 50 µL hat Zelle Kennzeichnung Lösung in 5 mL serumfreien Nährmedium bei 37 ° C 50 min.</li>
	<li>Drehen Sie die markierten Zellen 800 X g für 3 min.</li>
	<li>Waschen die Zellen zwei weitere Male mit 5 mL Phosphat Puffer Kochsalzlösung (PBS) bei 800 X g für 3 min.</li>
	<li>Überprüfen Sie die gekennzeichneten HaMSCs mit einem fluoreszierenden Mikroskop mit einem Filtersatz Cy5.</li>
	<li>Zählen die Zellen mit Trypan blau Färbung und 2,5 x 10 6 entwicklungsfähigen Zellen in 100 µL PBS zur Injektion erhalten.</li>
</ol> 4. In Vivo Fluoreszierende Imaging Track HaMSCs <ol><li>acht Wochen nach der Operation (Schritt 1), betäuben die KOA Ratten durch intramuskuläre Injektion von 25 mg/kg Tiletamin und 25 mg/kg Zolazepam.</li>
	<li>Das rechte Knie rasieren gründlich mit einem Rasiermesser, die Lötstelle verfügbar zu machen. Die Lötstelle mit 70 % Ethanol zu desinfizieren.</li>
	<li>Mit einer 26 G Spritzennadel Spritzen 2,5 x 10 6 Zellen ausgesetzt in 100 µL PBS in der Mitte des Bereichs Dreieck gekennzeichnet von der medialen Seite der Patella Ligament, die medialen femoralen Kondylus und medialen Tibia Kondylus (gebildet Abbildung 1 b).</li>
	<li>Öffnen Sie die Software zur Abbilderstellung und initialisieren die Biolumineszenz in Vivo imaging-System.</li>
	<li>Position Ratten in der Rückenlage in die zentrale Bühne das Abbildungssystem positionieren und schließen Sie die Tür der Kammer.</li>
	<li>Überprüfen die &#34; fluoreszierenden &#34; Kontrollkästchen und wählen Sie fluoreszierende Filter Sätze von 640 nm für Anregung und 680 nm für Emission ( Abbildung 2A).</li>
	<li>Select Sichtfeld, D. einstellen Pixel binning auf Medium (8), F/Stop 2 und Belichtung Zeit automatisch. Aufrechterhaltung der optimalen Belichtungszeit konsequent, um vergleichbare Ergebnisse zu erhalten über die gesamte Studie ( Abbildung 2A).</li>
	<li>Entfernen Sie das Tier von der Bühne und Monitor für die Wiederherstellung aus der Narkose. 
	Hinweis: Statt Tier auf ein Heizkissen mit 2-3 Schichten aus Frottee bedeckt.</li>
	<li>Wählen Sie die Einheiten der strahlende Effizienz für die Messung der Fluoreszenz ( Abb. 2 b). Wählen Sie Bereiche von Interesse (ROI) für die Analyse und Quantifizierung fluoreszierende Signale aus jedem Bild ( Abbildung 2).</li>
	<li>Wiederholen Sie den Vorgang der in-Vivo Bildgebung für jede Ratte sequenziell, HaMSCs längs Aufbewahrung im Gelenk zu studieren. 
	Hinweis: Wir empfehlen die Tiere imaging &#39; fluoreszierenden Signale durch in-vivo imaging-System einmal alle zwei Tage für die erste Woche nach der Injektion und einmal pro Woche, bis das Signal nicht erkannt werden kann.</li>
</ol>

<ol><li>Loeser, R. F., Goldring, S. R., Scanzello, C. R., Goldring, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Osteoarthritis%3A+a+disease+of+the+joint+as+an+organ%5BTitle%5D)+AND+%22Arthritis+Rheum%22%5BJournal%5D)">Osteoarthritis: a disease of the joint as an organ.</a> Arthritis Rheum. 64 (6), 1697-1707 (2012).</li>
<li>Lane, N. E., Shidara, K., Wise, B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Osteoarthritis+year+in+review+2016%3A+clinical%5BTitle%5D)+AND+%22Osteoarthritis+Cartilage%22%5BJournal%5D)">Osteoarthritis year in review 2016: clinical.</a> Osteoarthritis Cartilage. 25 (2), 209-215 (2017).</li>
<li>Wang, W., Cao, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Treatment+of+osteoarthritis+with+mesenchymal+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+China+Life+Sci%22%5BJournal%5D)">Treatment of osteoarthritis with mesenchymal stem cells.</a> Sci China Life Sci. 57 (6), 586-595 (2014).</li>
<li>Burke, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Therapeutic+potential+of+mesenchymal+stem+cell+based+therapy+for+osteoarthritis%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Transl+Med%22%5BJournal%5D)">Therapeutic potential of mesenchymal stem cell based therapy for osteoarthritis.</a> Clin Transl Med. 5 (1), 27(2016).</li>
<li>Bendele, A. M. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15758487">Animal models of osteoarthritis.</a> J Musculoskelet Neuronal Interact. 1 (4), 363-376 (2001).</li>
<li>Gerwin, N., Bendele, A. M., Glasson, S., Carlson, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+OARSI+histopathology+initiative+-+recommendations+for+histological+assessments+of+osteoarthritis+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Osteoarthritis+Cartilage%22%5BJournal%5D)">The OARSI histopathology initiative - recommendations for histological assessments of osteoarthritis in the rat.</a> Osteoarthritis Cartilage. 18, Suppl 3. S24-S34 (2010).</li>
<li>Janusz, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+osteoarthritis+in+the+rat+by+surgical+tear+of+the+meniscus%3A+Inhibition+of+joint+damage+by+a+matrix+metalloproteinase+inhibitor%5BTitle%5D)+AND+%22Osteoarthritis+Cartilage%22%5BJournal%5D)">Induction of osteoarthritis in the rat by surgical tear of the meniscus: Inhibition of joint damage by a matrix metalloproteinase inhibitor.</a> Osteoarthritis Cartilage. 10 (10), 785-791 (2002).</li>
<li>Li, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+human+adipose-derived+mesenchymal+stem+cell+tracking+after+intra-articular+delivery+in+a+rat+osteoarthritis+model%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Res+Ther%22%5BJournal%5D)">In vivo human adipose-derived mesenchymal stem cell tracking after intra-articular delivery in a rat osteoarthritis model.</a> Stem Cell Res Ther. 7 (1), 160(2016).</li>
<li>Zhou, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Administering+human+adipose-derived+mesenchymal+stem+cells+to+prevent+and+treat+experimental+arthritis%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Immunol%22%5BJournal%5D)">Administering human adipose-derived mesenchymal stem cells to prevent and treat experimental arthritis.</a> Clin Immunol. 141 (3), 328-337 (2011).</li>
<li>Desando, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intra-articular+delivery+of+adipose+derived+stromal+cells+attenuates+osteoarthritis+progression+in+an+experimental+rabbit+model%5BTitle%5D)+AND+%22Arthritis+Res+Ther%22%5BJournal%5D)">Intra-articular delivery of adipose derived stromal cells attenuates osteoarthritis progression in an experimental rabbit model.</a> Arthritis Res Ther. 15 (1), 22(2013).</li>
<li>Riester, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Safety+Studies+for+Use+of+Adipose+Tissue-Derived+Mesenchymal+Stromal%2FStem+Cells+in+a+Rabbit+Model+for+Osteoarthritis+to+Support+a+Phase+I+Clinical+Trial%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Transl+Med%22%5BJournal%5D)">Safety Studies for Use of Adipose Tissue-Derived Mesenchymal Stromal/Stem Cells in a Rabbit Model for Osteoarthritis to Support a Phase I Clinical Trial.</a> Stem Cells Transl Med. 6 (3), 910-922 (2017).</li>
<li>Bai, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tracking+long-term+survival+of+intramyocardially+delivered+human+adipose+tissue-derived+stem+cells+using+bioluminescence+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Imaging+Biol%22%5BJournal%5D)">Tracking long-term survival of intramyocardially delivered human adipose tissue-derived stem cells using bioluminescence imaging.</a> Mol Imaging Biol. 13 (4), 633-645 (2011).</li>
<li>Wolbank, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Labelling+of+human+adipose-derived+stem+cells+for+non-invasive+in+vivo+cell+tracking%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Tissue+Bank%22%5BJournal%5D)">Labelling of human adipose-derived stem cells for non-invasive in vivo cell tracking.</a> Cell Tissue Bank. 8 (3), 163-177 (2007).</li>
<li>Heymer, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Iron+oxide+labelling+of+human+mesenchymal+stem+cells+in+collagen+hydrogels+for+articular+cartilage+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Iron oxide labelling of human mesenchymal stem cells in collagen hydrogels for articular cartilage repair.</a> Biomaterials. 29 (10), 1473-1483 (2008).</li>
<li>Hemmrich, K., Meersch, M., von Heimburg, D., Pallua, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Applicability+of+the+dyes+CFSE%2C+CM-DiI+and+PKH26+for+tracking+of+human+preadipocytes+to+evaluate+adipose+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Cells+Tissues+Organs%22%5BJournal%5D)">Applicability of the dyes CFSE, CM-DiI and PKH26 for tracking of human preadipocytes to evaluate adipose tissue engineering.</a> Cells Tissues Organs. 184 (3-4), 117-127 (2006).</li>
<li>Shim, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pharmacokinetics+and+in+vivo+fate+of+intra-articularly+transplanted+human+bone+marrow-derived+clonal+mesenchymal+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Dev%22%5BJournal%5D)">Pharmacokinetics and in vivo fate of intra-articularly transplanted human bone marrow-derived clonal mesenchymal stem cells.</a> Stem Cells Dev. 24 (9), 1124-1132 (2015).</li>
<li>Chen, B. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+safety+study+on+intrathecal+delivery+of+autologous+mesenchymal+stromal+cells+in+rabbits+directly+supporting+Phase+I+human+trials%5BTitle%5D)+AND+%22Transfusion%22%5BJournal%5D)">A safety study on intrathecal delivery of autologous mesenchymal stromal cells in rabbits directly supporting Phase I human trials.</a> Transfusion. 55 (5), 1013-1020 (2015).</li>
<li>Chan, M. M., Gray, B. D., Pak, K. Y., Fong, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-invasive+in+vivo+imaging+of+arthritis+in+a+collagen-induced+murine+model+with+phosphatidylserine-binding+near-infrared+%28NIR%29+dye%5BTitle%5D)+AND+%22Arthritis+Res+Ther%22%5BJournal%5D)">Non-invasive in vivo imaging of arthritis in a collagen-induced murine model with phosphatidylserine-binding near-infrared (NIR) dye.</a> Arthritis Res Ther. 17, 50(2015).</li>
<li>Texier, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cyanine-loaded+lipid+nanoparticles+for+improved+in+vivo+fluorescence+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Opt%22%5BJournal%5D)">Cyanine-loaded lipid nanoparticles for improved in vivo fluorescence imaging.</a> J Biomed Opt. 14 (5), 054005(2009).</li>
<li>Honig, M. G., Hume, R. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescent+carbocyanine+dyes+allow+living+neurons+of+identified+origin+to+be+studied+in+long-term+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Fluorescent carbocyanine dyes allow living neurons of identified origin to be studied in long-term cultures.</a> J Cell Biol. 103 (1), 171-187 (1986).</li>
<li>Rahmati, M., Mobasheri, A., Mozafari, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inflammatory+mediators+in+osteoarthritis%3A+A+critical+review+of+the+state-of-the-art%2C+current+prospects%2C+and+future+challenges%5BTitle%5D)+AND+%22Bone%22%5BJournal%5D)">Inflammatory mediators in osteoarthritis: A critical review of the state-of-the-art, current prospects, and future challenges.</a> Bone. 85, 81-90 (2016).</li>
<li>Detante, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravenous+administration+of+99mTc-HMPAO-labeled+human+mesenchymal+stem+cells+after+stroke%3A+in+vivo+imaging+and+biodistribution%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Transplant%22%5BJournal%5D)">Intravenous administration of 99mTc-HMPAO-labeled human mesenchymal stem cells after stroke: in vivo imaging and biodistribution.</a> Cell Transplant. 18 (12), 1369-1379 (2009).</li>
<li>Hu, S. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+magnetic+resonance+imaging+tracking+of+SPIO-labeled+human+umbilical+cord+mesenchymal+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biochem%22%5BJournal%5D)">In vivo magnetic resonance imaging tracking of SPIO-labeled human umbilical cord mesenchymal stem cells.</a> J Cell Biochem. 113 (3), 1005-1012 (2012).</li>
<li>Xia, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intra-articular+transplantation+of+atsttrin-transduced+mesenchymal+stem+cells+ameliorate+osteoarthritis+development%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Transl+Med%22%5BJournal%5D)">Intra-articular transplantation of atsttrin-transduced mesenchymal stem cells ameliorate osteoarthritis development.</a> Stem Cells Transl Med. 4 (5), 523-531 (2015).</li>
<li>Jasmin,, et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimized+labeling+of+bone+marrow+mesenchymal+cells+with+superparamagnetic+iron+oxide+nanoparticles+and+in+vivo+visualization+by+magnetic+resonance+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22J+Nanobiotechnology%22%5BJournal%5D)">Optimized labeling of bone marrow mesenchymal cells with superparamagnetic iron oxide nanoparticles and in vivo visualization by magnetic resonance imaging.</a> J Nanobiotechnology. 9, 4(2011).</li>
<li>Lehmann, T. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coculture+of+human+nucleus+pulposus+cells+with+multipotent+mesenchymal+stromal+cells+from+human+bone+marrow+reveals+formation+of+tunnelling+nanotubes%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Med+Rep%22%5BJournal%5D)">Coculture of human nucleus pulposus cells with multipotent mesenchymal stromal cells from human bone marrow reveals formation of tunnelling nanotubes.</a> Mol Med Rep. 9 (2), 574-582 (2014).</li>
<li>Wang, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+adipose-derived+mesenchymal+progenitor+cells+engraft+into+rabbit+articular+cartilage%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Mol+Sci%22%5BJournal%5D)">Human adipose-derived mesenchymal progenitor cells engraft into rabbit articular cartilage.</a> Int J Mol Sci. 16 (6), 12076-12091 (2015).</li>
</ol>

Meng Li, Ming-Hao und Wang Wen sind aktuelle Mitarbeiter und Stock-Option-Inhaber von zellulären Biomedizin-Gruppe (Nasdaq: CBMG). Die anderen Autoren erklären keinen Interessenskonflikt.

Sicherheitsstandards und Bioverteilung Studien der Stammzell-Therapie sind dringend notwendig, bevor wir regenerative Stammzell-Therapie für KOA von der Bank ans Bett zu bringen. Die pathologische Umfeld der Krankheit spielt jedoch eine wichtige Rolle in der Ausdauer und der Bioverteilung des transplantierten HaMSCs10. Unsere Fraktion nachweislich vor kurzem intraartikulären Injektion von HaMSCs mehr in einer pathologischen KOA Umgebung beibehalten, als Injektionen unter normalen Bedingungen<sup c...

Knie-Arthrose (KOA) ist eine degenerative Erkrankung, die durch Verlust von Gelenkknorpel und fortschreitende Entzündung, die eine große chronische Erkrankung bei älteren Menschen rund um die Welt1geworden ist. Aktuelle Therapien mit Anti-inflammatory Drogen, körperliche Ergänzungen und chirurgische Eingriffe können jedoch nur vorübergehende Linderung für symptomatische Schmerzen2vorsehen.
Menschlichen Fettgewebe mesenchymaler Stammzellen (HaMSCs) sind eine vielversprechende regenerative Heilmittel für Knie-Arthrose, aufgrund ihrer multipotenten Differenzierungspotenzial für Knorpelregeneration und immunmodulatorische Eigenschaften3geworden, 4. Im Vergleich mit pharmakologischen Routen, Mechanismen der Aktion in Vivozu untersuchen, ist das tracking live HaMSCs in kleiner KOA Tiermodelle derzeit lehrreich, die Begründung und die Machbarkeit der HaMSC Therapie vor der klinischen Anwendung zu etablieren. Für präklinische Tests, destabilisiert mediale Meniscectomy (MM) die mechanische Belastung des Gelenks zu induzieren KOA in Ratten, bietet ein relativ machbar Modell mit konsistenten Reproduzierbarkeit5. Das Auftreten von KOA induziert durch MM ist älter als Durchtrennung des vorderen Kreuzbandes allein oder in Kombination mit partiellen medialen Meniscectomy6. Daher sind die langfristigen Wechselwirkungen zwischen eingespritzte HaMSCs mit der pathologischen Mikroumgebung von KOA oft bei Ratten induziert durch MM7,8bewertet.
Obwohl die therapeutische Wirksamkeit des HaMSCs wurde ausführlich berichtet, relevante Kenntnisse auf ist die in-Vivo -Persistenz von implantierten HaMSCs durch intraartikuläre Injektion (IA) knapp9,10. Daher sind verschiedene zelluläre Kennzeichnung Methoden entwickelt worden, einschließlich der Immunhistologie11, Luciferase12, grün fluoreszierendes Protein13 Transfektion Eisenoxid labeling für Magnetresonanz-Bildgebung (MRI)14, , und zahlreiche fluoreszierende Zelle Farbstoffe8,15,16. Verglichen mit arbeitsintensiven Histologie Analysen, beschäftigt in Vivo nicht-invasive Bildgebung optische Geräte, die Echtzeit-Verteilung und Dynamik der Zellen beschriftet mit fluoreszierenden Signale10,17zu erkennen. Für funktionelle live Cell Imaging ist Cytocompatible fluoreszierenden Kennzeichnung eine anspruchsvolle radioaktiven kostenlose Tracking-Technik, um zelluläre Aktivitäten nach Stammzell-Transplantation18zu offenbaren. Darüber hinaus besitzen multicolor lipophile Fluoreszenzfarbstoffen Vorteile gegenüber amino-Reaktivfarbstoffe hydrophil oder fluoreszierende Proteine, einschließlich ihrer Zelle verbesserte Durchlässigkeit und verstärkten Fluoreszenz Quantum Erträge19.
So nutzen die Protokolle enthalten hier eine rote Laser beschriftet mit lipophilen Carbocyanines Zellen erregen haben (DilC18(5)), ist eine dunkelrote fluoreszierende Dil (Dialkylcarbocyanines) analog20. Die rot-verschoben Anregung und Emission Spektren von vermeidet Autofluorescent Störungen und tiefen Gewebe über einen langen Zeitraum hinweg in lebenden Tieren8Bildgebung ermöglicht. Diese Methode des Trackings Zellen in Vivo mit beschriftet habe ist gültig für die Überwachung der transplantierten Stammzellen, wie HaMSCs, in Tiermodellen, das zum Verständnis und zur Verbesserung der aktuellen regenerative Stammzelltherapie wesentlich ist.

<table><tbody><tr><td>Matrx VMR Tieranästhesiesystem</td><td>Midmark</td><td>VIP3000</td><td></td></tr><tr><td>4-0 Naht</td><td>Shanghai Jinhuan</td><td>KC439</td><td></td></tr><tr><td>Rasierer</td><td>Pritech</td><td>LD-9987</td><td></td></tr><tr><td>Gentamicin</td><td>Zhejiang Jindakang Tiergesundheitsprodukt Co., Ltd.</td><td>Keine</td><td></td></tr><tr><td>0,9% Natriumchloridlösung</td><td>Hunan Kelun Pharmaceutical Co., Ltd.</td><td></td><td></td>H43020455</tr><tr><td>Penicillin</td><td>Shanghai Kangfu chemisch-pharmazeutische Co., Ltd.</td><td>Verifizierter</td><td></td></tr><tr>Lieferant -<td>Buprenorphin</td><td>Tianjin Pharmaceutical Research Institute Pharmaceutical Co., Ltd.</td><td>Keine</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehyd</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>16005</td><td>Verdünnung auf eine Endkonzentration von 10 % in PBS</td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E9884</td><td>Verdünnung auf eine Endkonzentration von 20 % in PBS</td></tr><tr><td>0,1 % Hämatoxylin-Lösung, Mayer' s</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>MHS16</td><td></td></tr><tr><td>0,5% Eosin Y-Lösung, alkoholisch</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>HT110116</td><td></td></tr><tr><td>Safranin O</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S8884</td><td></td></tr><tr><td>Fast Green</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F7258</td><td></td></tr><tr><td>Shandon Excelsior ESTM Tissue Processor</td><td>Thermo Fisher</td><td>A78400006</td><td></td></tr><tr><td>Shandon Histocentre&trade; 3 Tissue Embedding Center</td><td>Thermo Fisher</td><td>B64100010</td><td></td></tr><tr><td>Vollautomatisches Rotationsmikrotom</td><td>Leica</td><td>RM2255</td><td></td></tr><tr><td>DiD</td><td>Molekulare Sonden, Life Technologies</td><td>V-22887</td><td></td></tr><tr><td>D-MEM High Glucose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D5648</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>GIBCO, Life Technologies</td><td>14190-144</td><td></td></tr><tr><td>0,25 % Trypsin-EDTA</td><td>Invitrogen</td><td>25200-114</td><td></td></tr><tr><td>10 cm Petrischale</td><td>Corning</td><td>V118877</td><td></td></tr><tr><td>Zentrifuge</td><td>Beckman</td><td>Optima MAX-TL</td><td></td></tr><tr><td>Fluoreszenzmikroskop</td><td>Olympus</td><td>BX53</td><td></td></tr><tr><td>0,4% Trypanblau Lösung</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>93595</td><td></td></tr><tr><td>Titetamme</td><td>Virbac (Zoletil 50)</td><td>1000000188</td><td></td></tr><tr><td>Zolazepam</td><td>Virbac (Zoletil 50)</td><td>1000000188</td><td></td></tr><tr><td>Sterile hyposermische Spritze zum Einmalgebrauch 26G</td><td>Shanghai Misawa Medical Industry Keine</td><td></td><td></td></tr><tr><td>IVIS-Spektrum In-vivo-Bildgebungssystem</td><td>PerkinElmer</td><td>124262</td><td></td></tr><tr><td>Living Imaging 4.0 Software</td><td>PerkinElmer</td><td>Keine</td><td></td></tr></tbody></table>

in vivo tracking der menschlichen fettgewebe mesenchymalen stammzellen in einem rattenmodell knie arthrose mit fluoreszierenden lipophile membran farbstoff

In Vivo Tracking of Human Adipose-derived Mesenchymal Stem Cells in a Rat Knee Osteoarthritis Model with Fluorescent Lipophilic Membrane Dye

Um die klinische Anwendung der menschlichen Fettgewebe gewonnenen mesenchymalen Stammzellen (HaMSC) Therapie für Knie-Arthrose (KOA) zu unterstützen, haben wir die Wirksamkeit der Zelle Persistenz und Bioverteilung des HaMSCs in Tiermodellen untersucht. Wir zeigten eine Methode um die Zellmembran der HaMSCs mit lipophilen Fluoreszenzfarbstoff zu beschriften. Anschließend wurde intraartikuläre Injektion der markierten Zellen bei Ratten mit chirurgisch induzierten KOA dynamisch durch ein in-Vivo imaging-System überwacht. Wir beschäftigten die lipophilen Carbocyanines haben (DilC18 (5)), eine dunkelrote fluoreszierende Dil (Dialkylcarbocyanines) Analog, die einen roten Laser zur Anregung der natürlichen grünen Autofluoreszenz vom umgebenden Gewebe zu vermeiden verwendet. Darüber hinaus rot-verschoben Emissionsspektren der zulässige tiefen Gewebe Bildgebung mit lebenden Tieren und die Kennzeichnung Verfahren keine zytotoxischen Effekte oder funktionellen Schaden HaMSCs verursacht. Dieser Ansatz hat sich gezeigt, um eine effiziente Überwachungsmethode für HaMSCs in einem Rattenmodell KOA werden. Die Anwendung dieser Methode könnte auch verwendet werden, um die optimale Verwaltung Weg und Dosierung von MSCs aus anderen Quellen in präklinischen Studien bestimmen.

Um KOA Modell zu induzieren, erfolgte MM im rechten Kniegelenk von SD-Ratten (Abbildung 3). Acht Wochen nach der Operation Ratten wurden geopfert und Schnittserien der Kniegelenke wurden ausgewertet, mit beiden H &#38; E und Safranin O/schnell grün Färbung (Abbildung 4). H &#38; E Färbung, die Oberfläche des Gelenkknorpels ausgestellt rauere Grenzen in der Chirurgie Knie als das normale Gelenk ohne Operation. Für Safranin-O/schne...

Dieses Protokoll beschreibt eine effiziente Möglichkeit zur Überwachung der Zelle Persistenz und Bioverteilung des menschlichen Fettgewebe mesenchymalen Stammzellen (HaMSCs) durch dunkelrote Fluoreszenz Kennzeichnung in einem Rattenmodell Knie Arthrose (KOA) durch intraartikuläre Injektion (IA).

In Vivo Tracking der menschlichen Fettgewebe mesenchymalen Stammzellen in einem Rattenmodell Knie Arthrose mit fluoreszierenden lipophile Membran Farbstoff

In order to support the clinical application of human adipose-derived mesenchymal stem cell (haMSC) therapy for knee osteoarthritis (KOA), we examined the ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, die Wirksamkeit der Zellpersistenz und Biodistribution humaner, aus Fettgewebe stammender mesenchymaler Stammzellen in einem Ratten-Kniegelenk-Osteoarthritis-Modell, kurz KOA-Modell, mittels in-vivo-Fluoreszenzbildgebung zu bewerten. Die in-vivo-Verfolgung von Stammzellen kann helfen, zentrale Fragen im Bereich der regenerativen Medizin bezüglich der Verteilung und Lokalisation humaner, aus Fettgewebe gewonnener mesenchymaler Stammzellen in tierischen KOA-Modellen zu beantworten. Der Hauptvorteil der Verwendung von DiD liegt darin, dass sein rotverschobenes Emissionsspektrum die Bildgebung in tiefen Gewebeschichten bei lebenden Tieren ermöglicht, ohne zytotoxische Effekte oder funktionelle Schädigungen der mit Farbstoff markierten Zellen hervorzurufen.Beginnen Sie damit, eine anästhesierte männliche Sprague-Dawley-Ratte mit einem Gewicht von 250 bis 300 g und einem Alter von acht bis zwö2 Wochen in linke Seitenlage auf eine beheizte Unterlage zu legen. Benutzen Sie ein Rasiermesser, um das rechte Knie gründlich zu rasieren, und desinfizieren Sie den Operationsbereich mit einer 10%igen Povidon-Jod-Lösung und 70%igem Ethanol. Bedecken Sie den nicht-operierten Bereich mit einem chirurgischen Tuch.Und verwenden Sie ein Skalpell, um einen zwei Zentimeter langen lateralen Schnitt entlang der Patellasehne vorzunehmen, um die Gelenkkapseln freizulegen. Danach durchtrennen Sie mit einem chirurgischen Skalpell das mediale Kollateralband, klappen den Meniskus in Richtung Femur zurück und fassen den medialen Meniskus mit einer Pinzette. Schneiden Sie mit dem Skalpell am engsten Punkt des Meniskus ausgehend von der tibialen Ansatzstelle durch.Um einen zuverlässigen und realisierbaren KOA-Beginn zu erzielen, sollte die Meniskusseite des Femurs bei jedem Versuchstier vollständig durchtrennt werden. Anschließend wird die Gelenkkapsel mit einer vierfachen, resorbierbaren Naht verschlossen und die Ratte überwacht, bis sie sich vollständig erholt hat. Acht Wochen nach der Operation werden humane, aus Fettgewebe stammende mesenchymale Zellen aus einer 80 % konfluenten Kultur mit zwei Millilitern Trypsin plus EDTA für drei Minuten bei 37 °C abgelöst.Nach einigen Minuten das Trypsin mit vier Millilitern komplettem Kulturmedium neutralisieren und die Zellen durch Zentrifugation gewinnen. Den Zellpellet in fünf Millilitern serumfreiem Kulturmedium auf eine Konzentration von einer mal 10 hoch 6 Zellen pro Milliliter resuspendieren. Die Zellen anschließend 50 Minuten lang bei 37 Grad Celsius mit 50 Mikroliter DiD-Zellmarkierungslösung markieren.Am Ende der Inkubation die Zellen durch Zentrifugation sammeln und sie zweimal mit jeweils fünf Milliliter PBS waschen. Nach der letzten Zentrifugation die Zellen auf eine Konzentration von 2,5 × 10⁶ vitalen Zellen pro 100 Mikroliter PBS einstellen und in eine Ein-Milliliter-Spritze mit einer 26-Gauge-Nadel füllen. Danach die arthritische Kniegegend des ersten Versuchstieres erneut rasieren, um den Gelenkbereich freizulegen, und die exponierte Haut mit 70 %igem Ethanol desinfizieren.Injizieren Sie die markierten Zellen in die Mitte des Dreiecks, das durch die mediale Seite des Ligamentum patellae, den mediale Femurkondylus und den mediale Tibiakondylus gebildet wird, und öffnen Sie die Bildgebungssoftware. Initialisieren Sie das In-vivo-Biolumineszenz-Bildgebungssystem und positionieren Sie die Tiere in Rückenlage auf der zentralen Plattform des Bildgebungssystems. Mit geschlossener Kammertür überprüfen Sie das Fluoreszenzfeld und wählen die geeigneten Anregungs- und Emissions-Filterkombinationen für die Fluoreszenz aus.Stellen Sie das Sichtfeld auf D, die Pixelverzerrung auf acht, die Blende auf zwei und die Belichtungszeit auf automatisch. Nach der Bildaufnahme lassen Sie die Tiere unter Überwachung auf einer Heizplatte ausklingen, bis sie sich vollständig erholt haben. Wählen Sie dann in der geeigneten Bildanalyse-Software die Einheiten für die Strahlungseffizienz zur Messung der Fluoreszenz sowie die interessierenden Bereiche für die Analyse aus und quantifizieren Sie die fluoreszenten Signale aus jedem Bild.In diesem repräsentativen Experiment wurden serielle Schnitte des Kniegelenks einer Ratte mit induzierter Kniegelenksarthrose acht Wochen nach der Operation mittels H&E- und Safranin-O/Fast-Green-Färbung untersucht. Die Dicke des Gelenkknorpels ist in den arthritischen Knien geringer als in den kontralateralen Gelenken ohne Operation, wie in den H&E-gefärbten Schnitten zu beobachten ist. Außerdem ist das Proteoglykan verringert und das fibrillierte Kollagen im arthritischen Gelenk erhöht, sichtbar gemacht durch die Safranin-O/Fast-Green-Färbung, was auf das Fortschreiten des degenerativen Phänotyps der Kniegelenksarthrose hinweist, der durch die Operation induziert wurde.Eine Stunde nach der Färbung weisen DiD-markierte humane mesenchymale Zellen aus Fettgewebe in vitro eine runde Form auf. Nach 24 Stunden zeigen kultivierte, mit DiD markierte mesenchymale Zellen eine lange spindelförmige Gestalt, was bestätigt, dass DiD die Adhärenzfähigkeit der Zellen nicht verändert. Die Bildgebung der Knie von osteoarthritischen Tieren acht Wochen nach der Operation zeigt das Vorhandensein der DiD-markierten Zellen vom Tag null bis zum Tag 70 nach der Injektion.Nach ihrer Entwicklung ebnete diese Technik den Forschern auf dem Gebiet der Stammzelltherapie den Weg, um die optimale Routine und Dosierung für die sichere und machbare Injektion mesenchymaler Stammzellen zur Behandlung der Kniegelenksarthrose bei Tieren zu bestimmen. Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie humane mesenchymale Stammzellen mit DiD markiert werden, um sie in das chirurgisch induzierte Ratten-KOA-Modell zu injizieren und in vivo zu verfolgen.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Developmental Biology

Entwicklungsbiologie

Dieses Video zeigt Techniken für die Kennzeichnung von menschlichen embryonalen Stammzellen und mesenchymalen Stammzellen mit fluoreszierenden Farbstoffen. Diese Technik kann für eine in vivo Verfolgung der transplantierten Stammzellen mit optischen Bildgebung und zur histopathologischen Korrelation mit Fluoreszenzmikroskopie eingesetzt werden.

Labeling Stammzellen mit fluoreszierenden Farbstoffen zur nicht-invasiven Detektion mit Optical Imaging

Tracking-Dynamics of Muscle Engraftment bei Kleintieren durch In Vivo Fluorescent Imaging

Wir beschreiben eine Mehrfachwinkel-Dreh optischen Abbildungs ​​(Maroi)-System für die in vivo Quantifizierung einer Fluoreszenzmarkierung von Saposin C (SapC), Dioleoylphosphatidylserin (DOPS) nanovesicles geliefert. Der Einsatz Mausmodellen von Krebs und Arthritis, zeigen wir, wie die Signalkurve Maroi Analyse kann für die genaue Zuordnung und biologische Charakterisierung von Krankheitsprozessen eingesetzt werden.

In Vivo Optical Imaging von Hirntumoren und Arthritis mit fluoreszierenden SapC-DOPS Nanovesicles

Monozyten sind Schlüsselregulatoren der angeborenen Immunität und spielen eine entscheidende Rolle bei der Erneuerung des peripheren mononukleären phagozytischen Systems und im Falle von Entzündungen. Dieses Manuskript beschreibt das Verfahren der Echtzeit-Bildgebung des Schädeldachknochenmarks der Maus, um den Mobilisierungsmechanismus der Monozyten zu untersuchen.

Tracking-Maus-Knochenmark-Monozyten<em&gt; In-vivo-</em

Dieses Protokoll beschreibt die Radiomarkierung von mesenchymalen Stammzellen von Pferden und deren Implantation in Sehnenverletzungen beim Pferd, um das Zellüberleben und die Gewebeverteilung mittels Gammaszintigraphie zu bestimmen.

In-vivo-Imaging und Verfolgung von Technetium-99m markierten Knochenmark mesenchymale Stammzellen in Equine Tendinopathie

Das Protokoll beschreibt ein neuartiges Maus-Femur-Fensterkammermodell, das verwendet werden kann, um die Bewegung von Zellen im femoralen Knochenmark in vivo zu verfolgen. Die Intravital-Multiphotonen-Fluoreszenzmikroskopie wird verwendet, um drei Komponenten des femoralen Knochenmarks (Gefäße, Kollagenmatrix und Neutrophile) im Zeitverlauf abzubilden.

Femur Fensterkammer Modell für<em&gt; In Vivo</em&gt; Zelltracking im Knochenmark der Maus

Modelle von Kolon Entzündung murine Studien haben gezeigt, dass ein kleiner Prozentsatz (1-5 %) von mesenchymalen Stammzellen (MSC) intravenös injiziert oder intraperitoneal beherbergt die entzündeten Darm1,2. Diese Studie zeigt, dass Ultraschall-geführte intrakardiale Injektionen von MSCs erhöhte Lokalisierung in den Darm führen.

Ultraschall-geführte intrakardiale Injektion humaner mesenchymaler Stammzellen Homing in den Darm zur Verwendung in murinen Modellen von experimentellen entzündlichen Darmerkrankungen erhöhen

Traditionelle Methoden zur Beurteilung der adipogenen Differenzierung sind billig und einfach zu bedienen, aber sind nicht spezifisch für Änderungen in der Genexpression. Wir haben einen Test zur Quantifizierung von mesenchymalen Zelldifferenzierung in Reifen Adipozyten mit einer Linie spezifische Marker entwickelt. Dieser Test hat vielfältige Anwendungen in Grundlagenforschung und klinischer Medizin.

Visualisierung und Quantifizierung von mesenchymalen Zellen adipogenen Differenzierung Potenzial mit einer Linie spezifische Marker

Hier beschreiben wir ein Protokoll zur Isolierung, Kultivierung und Phänotypisierung von mikrovaskulären Endothelzellen aus humanem subkutanem Fettgewebe (hSATMVECs). Zusätzlich beschreiben wir ein experimentelles Modell des hSATMVEC-Adipozyten-Cross-Talks.

Untersuchung der Wechselwirkung zwischen Fettendothelzellen und Adipozyten im menschlichen subkutanen Fettgewebe

Mit einem ex-vivo-Explant-Modell werden kleine Stücke des rostralen Anteils des viszeralen weißen Fettgewebes von mageren Mäusen 7–10 Tage lang kultiviert, was die Induktion und Untersuchung der Entzündung von Fettgewebe während der fettreichen Ernährung ermöglicht.

Ein ex vivo Mausmodell für fettreiche, diätähnliche Fettgewebeentzündung

Erfahren Sie die In-vivo-Verfolgung von humanen adipösen mesenchymalen Stammzellen in einem Ratten-Knie-Arthrose-Modell mittels fluoreszenzmarkierter DiD-Farbstoffinjektion. Diese Methode ermöglicht die Beobachtung von Zellpersistenz und Biodistribution.

In Vivo Tracking der menschlichen Fettgewebe mesenchymalen Stammzellen in einem Rattenmodell Knie Arthrose mit fluoreszierenden lipophile Membran Farbstoff (Video) | JoVE Journal

In Vivo Tracking der menschlichen Fettgewebe mesenchymalen Stammzellen in einem Rattenmodell Knie Arthrose mit fluoreszierenden lipophile Membran Farbstoff

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