Name: Posterior Semicircular Canal Ansatz für Innenohr-gen Lieferung in Neugeborenen Maus (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-02T14:00:00.000+00:00
Duration: 3 min 52 s
Description: Erfahren Sie den posterioren Bogengangansatz zur Gentherapie im Innenohr von neugeborenen Mäusen. Diese zuverlässige Methode perfundiert das gesamte Innenohr und ermöglicht effiziente Genlieferung für Forschung.

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Diese Arbeit wurde mit Mitteln aus der NIDCD Abteilung der intramuralen Forschung /NIH (DC000082-02 bis W.W.C.) sowie DC000081, erweiterte Bildgebung Kern unterstützt. Wir sind dankbar für die NIDCD Tierhaus Mitarbeiter für die Pflege unserer Tiere.

Alle tierische Verfahren stimmten die Animal Care und Use Committee am nationalen Institut auf Taubheit und anderen Kommunikationsstörungen (NIDCD ASP1378-15).
1. Verfahren einrichten und Vorbereitung
<ol><li>Sterilisieren Sie alle Instrumente von Ethylenoxid in den Beginn des Experiments. Zwischen Tieren reinigen Sie mit Wulst Sterilisation Instrumente.</li>
	<li>Laden Sie die Projektmappe mit viralen Gentherapie in einer Mikropipette auf dem Mikro-Injektor. Die viralen Vektoren, die in dieser Studie verwendet wurde AAV2/8-whirlin (1 x 1013 Genom Kopien pro Milliliter, siehe die Tabelle der Materialien). Hinweis: In der Regel ist 1,1 µL Gesamtvolumen in die Mikropipette geladen.</li>
</ol>(2) Anästhesie
Hinweis: In dieser Studie verwendete Maus-Stamm ist der Wirbler Maus. Reinerbige Mutanten (WhrnWLAN/wi) und heterozygote Wurfgeschwistern (Whrn+ / wi) dienten.
<ol><li>Legen Sie die Mutter in einem separaten Käfig (getrennt aus dem Wurf).</li>
	<li>Legen Sie die Heimat Käfig mit dem Wurf (P0 - P5 Welpen) auf einem umlaufenden Wärmekissen (Set bei 37,5 ° C) um die Mäuse warm zu halten.</li>
	<li>Schneiden Sie den Daumen Teil eines Latex-Handschuh, und entgegenbringen Sie einen Welpen.</li>
	<li>Platzieren Sie den Welpen in Latex-Handschuh Daumen in einen Eimer mit Eis für ~ 2 min.</li>
	<li>Platzieren Sie den narkotisierten Hund auf einem großen quadratischen kommerziellen Kunststoff Einfrieren-Pack mit einem 4 "x 4" Gaze zwischen den Welpen und das Pack Oberfläche.</li>
	<li>Einen schweren Latex-Handschuh mit crushed Ice füllen und den Eis-Handschuh rund um die Welpen zu platzieren.</li>
	<li>Überprüfen Sie, ob der Welpe ausreichend durch das völlige Fehlen von jeder Reaktion auf verschiedene Reize (einschließlich einer festen Fuß Klemme) betäubt ist. Lassen Sie den Welpen auf das Packeis für die Dauer der Operation (ca. 5-10 min). Hinweis: Wir empfehlen die Welpen auf das Packeis für nicht mehr als 15 min während der Operation.</li>
</ol>3. chirurgische Vorgehen (Abbildung 1)
<ol><li>Reinigen Sie die Haut hinter dem Ohr mit einer Jod-wischen und ein Alkohol abwischen, sobald das Tier betäubt ist.</li>
	<li>Machen Sie einen postauricular Schnitt ~ 2 mm hinter dem Ohr mit Mikro-Schere, und teilen Sie den sternocleidomastoideus-Muskel mit Mikro-Schere.</li>
	<li>Nervus facialis und die Bulla zu identifizieren. Die Bulla ist knorpelig und semi-transparent in diesem Alter und es liegt medial Nervus facialis. Die stapedial Arterie durch die Bulla in diesem Alter sehen, die ein nützliches Wahrzeichen ist.</li>
	<li>Nervus facialis zu folgen, souverän und nach hinten, die hinteren Semicircular Kanal (PSCC) zu finden. Entfernen Sie die Muskelfasern und Weichgewebe über den hinteren Semicircular Kanal mit Mikro-Schere. Hinweis: In diesem Alter ist die PSCC knorpelig.</li>
	<li>Dringen Sie die PSCC mit einem Glas Mikropipette (~ 10 μm Durchmesser) auf der Mikro-Injektor.</li>
	<li>Injizieren Sie virale Gentherapie in das Innenohr. Hinweis: In der Regel insgesamt 20 Injektionen von 49 nL der Gentherapie werden geliefert in den hinteren Semicircular Kanal über ~ 40 s (Gesamtvolumen ~ 1 µL). Die virale Titer verwendet wurde 1 x 10-13 -Genom-Kopien pro mL.</li>
	<li>Schließen Sie der Hautschnitt mit einem 5: 0 Polyglactin Naht.</li>
</ol>4. postoperative Pflege
<ol><li>Ort der Welpe auf eine wärmende Unterlage, um eine normale Körpertemperatur während der Wiederherstellung aus der Narkose mit konstanter manuelle Stimulation/Rollen mit behandschuhten Fingern menschlichen wiederherzustellen.</li>
	<li>Sobald der Welpe wach ist, legen Sie sie zurück in seine Heimat Käfig.</li>
	<li>Streicheln Sie jeder Welpe mit einem Wattestäbchen, das die Heimat Käfig Einstreu ausgesetzt worden ist. Hinweis: Der Zweck davon ist, haben die Mäuse riechen wie sie es vor der Operation, das erhöht die Wahrscheinlichkeit, dass die Mutter ihr Wurf nach der Operation wieder zu akzeptieren. Wenn möglich, kann Urin von der Mutter gesammelt und rieb auf die Welpen mit einem Wattestäbchen, um die Wahrscheinlichkeit einer Ablehnung weiter zu verringern.</li>
	<li>Nase, die Mutter um ihre8desensibilisieren Mineralöl zuweisen und Wiedereinführung der Muttergottes in den Käfig zu Hause.</li>
</ol>

<ol><li>Chien, W. W., Monzack, E. L., McDougald, D. S., Cunningham, L. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+therapy+for+sensorineural+hearing+loss%5BTitle%5D)+AND+%22Ear+Hear%22%5BJournal%5D)">Gene therapy for sensorineural hearing loss.</a> Ear Hear. 36, 1-7 (2015).</li>
<li>Askew, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tmc+gene+therapy+restores+auditory+function+in+deaf+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Transl+Med%22%5BJournal%5D)">Tmc gene therapy restores auditory function in deaf mice.</a> Sci Transl Med. 7, 295(2015).</li>
<li>Akil, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Restoration+of+hearing+in+the+VGLUT3+knockout+mouse+using+virally+mediated+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Restoration of hearing in the VGLUT3 knockout mouse using virally mediated gene therapy.</a> Neuron. 75, 283-293 (2012).</li>
<li>Pan, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+therapy+restores+auditory+and+vestibular+function+in+a+mouse+model+of+Usher+syndrome+type+1c%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Gene therapy restores auditory and vestibular function in a mouse model of Usher syndrome type 1c.</a> Nat Biotechnol. 35, 264-272 (2017).</li>
<li>Isgrig, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+Therapy+Restores+Balance+and+Auditory+Functions+in+a+Mouse+Model+of+Usher+Syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Ther%22%5BJournal%5D)">Gene Therapy Restores Balance and Auditory Functions in a Mouse Model of Usher Syndrome.</a> Mol Ther. 25, 780-791 (2017).</li>
<li>Lentz, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rescue+of+hearing+and+vestibular+function+by+antisense+oligonucleotides+in+a+mouse+model+of+human+deafness%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Med%22%5BJournal%5D)">Rescue of hearing and vestibular function by antisense oligonucleotides in a mouse model of human deafness.</a> Nat Med. 19, 345-350 (2013).</li>
<li>Shibata, S. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+Interference+Prevents+Autosomal-Dominant+Hearing+Loss%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Hum+Genet%22%5BJournal%5D)">RNA Interference Prevents Autosomal-Dominant Hearing Loss.</a> Am J Hum Genet. 98, 1101-1113 (2016).</li>
<li>Van Sluyters, R. C., Obernier, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guidelines+for+the+care+and+use+of+mammals+in+neuroscience+and+behavioral+research%5BTitle%5D)+AND+%22Contemp+Top+Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">Guidelines for the care and use of mammals in neuroscience and behavioral research.</a> Contemp Top Lab Anim. 43, 48(2004).</li>
<li>Chien, W. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+Therapy+Restores+Hair+Cell+Stereocilia+Morphology+in+Inner+Ears+of+Deaf+Whirler+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Ther%22%5BJournal%5D)">Gene Therapy Restores Hair Cell Stereocilia Morphology in Inner Ears of Deaf Whirler Mice.</a> Mol Ther. 24, 17-25 (2016).</li>
<li>Hirose, K., Hartsock, J. J., Johnson, S., Santi, P., Salt, A. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systemic+lipopolysaccharide+compromises+the+blood-labyrinth+barrier+and+increases+entry+of+serum+fluorescein+into+the+perilymph%5BTitle%5D)+AND+%22J+Assoc+Res+Otolaryngol%22%5BJournal%5D)">Systemic lipopolysaccharide compromises the blood-labyrinth barrier and increases entry of serum fluorescein into the perilymph.</a> J Assoc Res Otolaryngol. 15, 707-719 (2014).</li>
<li>Okada, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+transfer+targeting+mouse+vestibule+using+adenovirus+and+adeno-associated+virus+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Otol+Neurotol%22%5BJournal%5D)">Gene transfer targeting mouse vestibule using adenovirus and adeno-associated virus vectors.</a> Otol Neurotol. 33, 655-659 (2012).</li>
<li>Suzuki, J., Hashimoto, K., Xiao, R., Vandenberghe, L. H., Liberman, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cochlear+gene+therapy+with+ancestral+AAV+in+adult+mice%3A+complete+transduction+of+inner+hair+cells+without+cochlear+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Cochlear gene therapy with ancestral AAV in adult mice: complete transduction of inner hair cells without cochlear dysfunction.</a> Sci Rep. 7, 45524(2017).</li>
</ol>

Die Autoren haben keine entsprechenden Angaben zu machen.

Mehrere chirurgische Ansätze sind beschrieben worden, um Nager inneren Ohren zu gelangen. Cochleostomie und Rundfenster Ansätze werden am häufigsten verwendet Zugriff die Cochlea, während die hinteren Semicircular Canal und endolymphatic Sac Ansätze in der Regel die vestibulären Organe1Zugriff auf verwendet werden. In einer aktuellen Studie haben wir gezeigt, dass posterior Semicircular Canal, die hohe Effizienz der Haarzelle Transduktion in der vestibulären Organe und die Schnecke<sup class="xref...

Innenohr Gentherapie ist ein sich rasant entwickelnden Gebiet der Untersuchung. Es wurde in verschiedenen Ausführungen der Tiere zu bekämpfen Ototoxizität, Lärm Trauma und erbliche Gehör Verlust1angewendet. Mehrere neuere Studien belegen funktionelle Erholung des Hörens und Gleichgewicht Funktionen mutierte Mäuse nach Innenohr Gen Therapie Lieferung2,3,4,5,6, 7. einer der wichtigsten Faktoren bei der Bestimmung der Erfolg des Innenohrs Gentherapie ist das chirurgische Vorgehen verwendet, um Zugriff auf das Innenohr. Im Idealfall das chirurgische Vorgehen wäre einfach durchzuführen, die anatomischen Landmarken wäre konsistent und leicht zu identifizieren, und die daraus resultierende Transduktion von gezielten Zelltypen wären hoch.
In einer aktuellen Studie haben wir gezeigt, dass bei viralen Gentherapie durch den hinteren Semicircular Kanal der Wirbler mutierte Maus (ein Modell der Hörverlust und vestibulären Dysfunktion) injiziert wurde, effizienten Transduktion von sensorischen Haarzellen in der vestibulären gesehen wurde auch Organe wie die Cochlea-5. Die hohe Effizienz der sensorischen Haarzellen Transduktion führte zu Verbesserung der auditorischen und vestibulären Funktionen in diesen mutierten Mäusen.
In diesem Artikel beschreiben wir ausführlich den hinteren Semicircular Canal Ansatz um die Neugeborenen Maus Innenohr gelangen.

<table><tbody><tr><td>Operationsmikroskop</td><td>Zeiss</td><td></td><td>OPMI Pico HNO-Mikroskop. Andere Präpariermikroskope würden auch funktionieren.</td></tr><tr><td>Mikrorezepte</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-10, 11295-51</td><td>#5 und #55 Dumont</td></tr><tr><td>Mikroschere</td><td>Fine Science Tools</td><td>15002-08</td><td></td></tr><tr><td>Nanoliter2000 Mikroinjektor</td><td>World Precision Instruments</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Heizkissen</td><td>Mastex</td><td>Modell 500/600</td><td></td></tr><tr><td>5-0 Vicryl-Nähte</td><td>Ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>AAV8-Whirlin</td><td>Vector Biolabs</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Glaspipette</td><td>Sutter Instruments</td><td>B100-75-10</td><td>Borosilikatglas</td></tr></tbody></table>

posterior semicircular canal ansatz für innenohr-gen lieferung in neugeborenen maus

Posterior Semicircular Canal Approach for Inner Ear Gene Delivery in Neonatal Mouse

Innenohr Gentherapie bietet große Versprechung als potenzielle Behandlung von Schwerhörigkeit und Schwindel. Der wichtige Determinanten für den Erfolg des Innenohrs Gentherapie ist eine Lieferung Methode zu finden, die konsequente Transduktion Effizienz der gezielten Zelltypen führt bei gleichzeitiger Minimierung der Hörverlust. In dieser Studie beschreiben wir den hinteren Semicircular Kanal-Ansatz als eine praktikable Methode für Innenohr-gen Lieferung bei neugeborenen Mäusen. Wir zeigen, dass gen-Lieferung durch den hinteren Semicircular Kanal in der Lage, das gesamte Innenohr durchspülen. Die leicht anatomische Identifikation des hinteren Semicircular Kanals sowie minimale Manipulation des Schläfenbeins erforderlich, machen diesem chirurgischen Ansatz eine attraktive Option für Innenohr-gen Lieferung.

Injektion von AAV8 whirlin Gentherapie in Neugeborenen Wirbler Mäuse durch den hinteren Semicircular Kanal führte zu whirlin Ausdruck (grün) in utricular Haarzellen (Abbildung 2), mit der Infektion Gesamtwirkungsgrad von 53,1 % (SD 38,1, n = 28)5 . Haarzellen ausgestrahlt hatte Stereocilia (rot) im Vergleich zu Haarzellen von kontralateralen nicht injiziert Ohren länglich (5,35 ± 2.11 µm vs. 3,20 ± 0,34 µm bzw.)5</sup...

In dieser Studie beschreiben wir den hinteren Semicircular Kanal-Ansatz als eine zuverlässige Methode für Innenohr-gen Lieferung bei neugeborenen Mäusen. Wir zeigen, dass gen-Lieferung durch den hinteren Semicircular Kanal in der Lage, das gesamte Innenohr durchspülen.

Posterior Semicircular Canal Ansatz für Innenohr-gen Lieferung in Neugeborenen Maus

Inner ear gene therapy offers great promise as a potential treatment for hearing loss and dizziness. One of the critical determinants of the success of ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens ist es, Zugang zum Innenohr der Maus für die Genübertragung zu erhalten. Diese Methode kann dazu beitragen, die Gentherapie auf effiziente Weise an das Innenohr der Maus zu verabreichen. Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass sie zuverlässig und leicht zu erlernen ist.Im Allgemeinen werden Personen, die mit dieser Methode noch nicht vertraut sind, aufgrund der geringen Größe des Innenohrs der Maus Schwierigkeiten haben. Mit etwas Übung können die meisten Menschen eine chirurgische Dissektion jedoch innerhalb von zehn Minuten durchführen. Beginnen Sie den Eingriff mit sterilen Instrumenten und schalten Sie den Bead-Sterilisator ein, um die Instrumente zwischen den Tieren zu reinigen.Laden Sie das therapeutische Virus in eine Mikropipette mit einem Durchmesser von zehn Mikrometern, die an einem Mikroinjektor befestigt ist. Der virale Vektor, der in unseren Experimenten verwendet wird, ist AAV28-Whirlin mit einem Titer von eins mal zehn bis 13 Genomkopien pro Milliliter. Für dieses Video wurde Methylenblau-Farbstoff verwendet, um die Visualisierung zu erleichtern.Reinigen Sie die Haut hinter dem Ohr mit drei Betadin-Peelings, gefolgt von einem Alkoholtuch. Machen Sie dann mit einer Mikroschere etwa zwei Millimeter hinter dem Ohr ein postaurikuläres Element und teilen Sie das darunter liegende Weichgewebe. Identifiziere den Gesichtsnerv und die Bulla.Der M. sternocleidomastoideus liegt senkrecht zum Nervus facialis. Die Steigbügelarterie ist durch die Bulla zu sehen, die ein nützlicher Orientierungspunkt ist. Folgen Sie dem Gesichtsnerv nach oben und nach hinten, um den hinteren Bogengang zu lokalisieren.Verwenden Sie die Mikroschere, um die Muskelfasern und das Weichgewebe zu entfernen, die über dem hinteren Bogengang liegen. Dringen Sie dann mit der geladenen Glasmikropipette auf dem Mikroinjektor in den hinteren Bogengang ein und injizieren Sie den Farbstoff in das Innenohr. In der Regel werden insgesamt 20 Injektionen à 49 Nanoliter über einen Zeitraum von 40 Sekunden in den hinteren halbkreisförmigen Kanal eingebracht, was einem Gesamtvolumen von etwa einem Mikroliter entspricht.Ziehen Sie die Pipette sofort nach der Verabreichung des letzten Volumens heraus. Schließen Sie dann den Hautschnitt mit einer 5-0-Polyglactin-Naht. Die Injektion von AAV8-Whirlin in neonatale Whirler-Mäuse, wie in diesem Video gezeigt, führte zu einer grünen Whirlin-Expression in utrikulären Haarzellen.Transduzierte Haarzellen wiesen längliche Stereozilien auf, die im Vergleich zu Haarzellen aus kontralateralen, nicht injizierten Ohren rot dargestellt waren. Die posteriore halbzirkuläre Kanalinjektion von AAV8-Whirlin führte auch bei den Whirler-Mäusen zur Transduktion von Cochlea-Haarzellen. Transduzierte Haarzellen exprimierten Whirlin an den Stereozilienspitzen und wiesen im Vergleich zu Haarzellen aus kontralateralen, nicht injizierten Ohren längliche Stereozilien auf.Im Anschluss an dieses Verfahren können andere Methoden wie ABI und der Stereotest durchgeführt werden, um zusätzliche Fragen zu beantworten, z. B. ob die Genübertragung im Innenohr einen Einfluss auf die auditiven und vestibulären Funktionen hat. Nach ihrer Entwicklung ebnete diese Technik den Weg für Forscher auf dem Gebiet der Genübertragung im Innenohr, um Defekte der Genübertragung im Innenohr der Maus zu erforschen.

posterior-semicircular-canal-approach-for-inner-ear-gene-delivery

Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Die Maus ist eine Innenohr-derived Plakode Sinnesorgan, dessen Entwicklungs-Programm wird während der Schwangerschaft erarbeitet. Wir definieren...

Gentransfer an sich entwickelnden Maus Innenohr<em&gt; In Vivo</em&gt; Die Elektroporation

Quelle: Kozin, E. D., et.al. Direkte Visualisierung des dorsalen Cochlea-Kerns der Maus zur optogenetischen Stimulation der Hörbahn. J. Vis. Exp. (2015)Dieses Video zeigt den virusvermittelten Gentransfer in den dorsalen Cochlea-Kern (DCN) der Maus, um eine lichtinduzierte auditive Stimulation zu ermöglichen. Ein viraler Vektor, der für Opsin, einen lichtempfindlichen Ionenkanal, kodiert, wird nach einer Kraniotomie und Kleinhirnaspiration in das DCN injiziert, um einen direkten Zugang zu...

Virusvermittelter Gentransfer in den dorsalen Cochlea-Kern der Maus zur lichtinduzierten auditiven Stimulation

Dieses Video zeigt die Kanalostomie, ein Verfahren, das die lokale Verabreichung von Medikamenten in das Innenohr einer Maus durch den Bogengang mit minimaler Schädigung des Gehörs und der vestibulären Funktion ermöglicht. Diese Methode ermöglicht die Inokulation von viralen Vektoren, Pharmazeutika und kleinen Molekülen in das Innenohr der Maus.

Kanalostomie zur lokalen Verabreichung von Medikamenten in das Innenohr einer erwachsenen Maus

Quelle: Akil, O., et al., Surgical Method for Virally Mediated Gene Delivery to the Mouse Inner Ear through the Round Window Membrane. J. Vis. Exp. (2015)Dieses Video zeigt das Verfahren zur Verabreichung eines therapeutischen Gens in das Innenohr eines Mauswelpen mit genetisch bedingtem Hörverlust. Unter Verwendung eines Adeno-assoziierten viralen (AAV) Vektors wird das Gen durch die runde Fenstermembran injiziert, wodurch Viruspartikel in Haarzellen eindringen, die Produktion von...

Virale vektorbasierte Gentherapie zur Wiederherstellung des Gehörs im Mausmodell

Der beschriebene postaurikuläre chirurgische Ansatz ermöglicht eine schnelle und direkte Verabreichung in die Cochlea-Scala tympani der Maus bei gleichzeitiger Minimierung des Blutverlusts und der Tiersterblichkeit. Diese Methode kann für die Cochlea-Therapie mit molekularer, pharmakologischer und viraler Verabreichung an postnatale Mäuse durch die runde Fenstermembran verwendet werden.

Chirurgische Verfahren zum viral vermittelte Gentransfer in die Maus-Innenohr über die runde Fenstermembran

Wir stellen eine Methode vor, die die Isolierung und Kultur von Cochlea-Explantaten aus embryonalen Maus-Innenohren beschreibt.  Wir demonstrieren auch eine Methode für den Gentransfer in Cochlea-Explantate mittels Rechteck-Elektroporation. Die In-vitro-Explantatkultur in Verbindung mit der Gentransfertechnik ermöglicht es den Forschern, die Auswirkungen einer Veränderung der Genexpression während der Entwicklung zu untersuchen.

Kultur von embryonalen Maus Cochlear Explantate und Gentransfer durch Elektroporation

Zwei mikrochirurgische Ansätze zur lokalen Wirkstoffabgabe an das Innenohr werden hier beschrieben und hinsichtlich ihres Einflusses auf Hörparameter, die Cochlea-Zytoarchitektur und die Expression von Entzündungsmarkern verglichen.

Eine vergleichende Studie von Drug-Delivery-Methoden Gezielte an die Maus Inner Ear: Bullostomy Versus Transtympanale Injection

Das Ziel dieses Protokolls ist es, die Vorbereitung, Kultur, Behandlung und Immunfärbung von neonatalen murinen Cochlea-Explantaten zu demonstrieren. Die Technik kann als In-vitro- Screening-Tool in der Hörforschung genutzt werden.

Neonatal Murine Cochlear Explant Technik als<em&gt; In vitro</em&gt; Screening-Tool in der Hörforschung

Wir berichten über eine chirurgische Methode, Drogen an das Innenohr von nichtmenschlichen Primaten, Weißbüschelaffe (Callithrix Jacchus), zu verwalten über die Membran des runden Fensters.

Ein chirurgischer Eingriff für die Verwaltung der Medikamente an das Innenohr in eine nicht-menschliche Primaten Weißbüschelaffe (Callithrix Jacchus)

Hier beschreiben wir Canalostomy Verfahren die lokale Medikamentenabgabe in das innere Ohr von Erwachsenen und Neugeborenen Mäusen durch den Semicircular Kanal mit minimalschaden Hör- und vestibulären Funktion ermöglicht. Diese Methode kann verwendet werden, virale Vektoren, Pharma und kleine Moleküle in das Innenohr Maus impfen.

Canalostomy als ein chirurgisches Vorgehen zu Local Drug Delivery in das innere Ohr von Erwachsenen und Neugeborenen Mäusen

Erfahren Sie den posterioren Bogengangansatz zur Gentherapie im Innenohr von neugeborenen Mäusen. Diese zuverlässige Methode perfundiert das gesamte Innenohr und ermöglicht effiziente Genlieferung für Forschung.

Posterior Semicircular Canal Ansatz für Innenohr-gen Lieferung in Neugeborenen Maus

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