Name: Chronische Transkraniellen Elektrostimulation und Intracortical Aufnahme bei Ratten (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-11T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 51 s
Description: Lernen Sie die Herstellung und Implantation chronischer transkranieller Stimulationselektroden bei frei beweglichen Ratten. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung von Kurz- und Langzeiteffekten auf die Gehirnfunktion und therapeutische Anwendungen bei Epilepsie und Depression.

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Diese Arbeit wurde unterstützt durch EU-RP7-ERC-2013-Starting Grant (No.337075), das "Momentum"-Programm von der ungarischen Akademie der Wissenschaften (LP2013-62) und der GINOP-2.3.2-15-2016-00018-Zuschuss. Wir danken Máté Kozák für die Stimulation zu dokumentieren und Aufnahme von Elektroden und Mihály Vöröslakos für die fruchtbaren Diskussionen während der Protokoll-Design.

Alle hier beschriebene Methoden sind nach den Richtlinien der Europäischen Gemeinschaften Rat (86/609 ECC) und für Animal Research bei Albert Szent-Györgyi medizinische und pharmazeutische Center der Universität von der Ethikkommission genehmigt worden Szeged (XIV/218/2016).
1. Herstellung der Elektroden Stimulation
<ol><li>Zu einer Stimulation Elektrode, schneiden sechs 10 cm lange Stücke von Miniatur-Anschluss Drähte entfernen 2 cm von der Verkleidung an einem Ende und 1 cm am anderen Ende.</li>
	<li>Zwei Kabel Verdrillen und kürzere geschälte seitlich festlöten.</li>
	<li>Erwerben Sie einen Streifen von drei Band-Verpackung einer integrierten Schaltung mit SOT-353-Fall.</li>
	<li>Nähen Sie die verdrillten Leitungen durch die drei Löcher des Pakets. Mehr geschälte Segment der Drähte sollte sich in den Hohlräumen des Pakets. Positionieren Sie die Kabel so, dass das Ende der Isolierung im Einklang mit den Rand der Löcher ist.</li>
	<li>Setzen Sie den dental Zement auf den Löchern, die Drähte zu beheben. Achtung: Der dental Zement muss dicht genug, um zu vermeiden, in den Hohlraum des Pakets undicht sein.</li>
	<li>Sobald der Zement verfestigt (mindestens 10 min) ist, drehen Sie das Paket und legte eine dünne Schicht von Sekundenkleber in das Loch eine Wasserdichte Abdichtung gegenüber den porösen Zement zu bilden. Zu vermeiden, kleben die geschälte Drähte.</li>
	<li>Verdrillen Sie die Kabel auf der kürzeren Seite geschälte und festlöten Sie (Abbildung 1A).</li>
	<li>Greifen Sie mehr geschälte Segment der Drähte mit der Spitze eines feinen Pinzette zu, Rollen sie herum zu und wickeln Sie sie in die Hohlräume (Abbildung 1 b). Schneiden Sie überschüssiges Kabel, wenn nötig.</li>
</ol>2. Herstellung der Aufnahme Elektroden
<ol><li>Um eine Aufnahme zu machen sah Triplett Elektrode (Abbildung 1-D), schneiden Sie ein 1 cm langes Stück Edelstahlrohr mit High-Speed-Rotary. Entfernen Sie die Flosse von den Enden des Rohres mit einer spitzen Nadel zu und dafür sorgen Sie, dass das Rohr frei von Schmutz und völlig durchlässig ist. Hinweis: Verwenden Sie Zange, nicht, wie sie das Rohr verzieht.</li>
	<li>Biegen Sie eine vergoldete Board Abstandhalter Pin mit einer Mindestlänge von 3 cm, Inhaber eines J-Form zu bilden. Schneiden Sie das längere Bein der 'J' Form und Löten sie zusammen, um wieder die ursprüngliche Form, eine abnehmbare Gelenk zwischen der langen linearen Teil, der von dem stereotaktischen Gerät stattfinden wird, und die "U"-Form, die die Elektrode zu halten, und dienen als ein Ankerpunkt zu machen . Das Rohr und das kürzere Bein des Inhabers "J" zusammenkleben. Kleben Sie einige zusätzliche 1 cm langen Stangen, falls erforderlich, für die Stabilität.</li>
	<li>Schneiden Sie 3 Stücke von 2,5 cm lange elektrodenleitungen mit Edelstahl, ultrafeine Schere. Stellen Sie sicher, dass es einen klaren und scharfen Schnitt, und die Isolierung an der runden Oberfläche der Elektrode Leitung intakt ist. Stellen Sie außerdem sicher, dass der Schnitte Tipp nicht aufgrund der Krafteinwirkung gebogen ist. Beugen Sie 1 oder 2 mm an einem Ende der einzelnen Drähte in verschiedenen Winkeln (z.B., eine linke gerade eine 45 ° und einen rechten Winkel), unterscheidbar zu machen.</li>
	<li>Das Rohr mit den Drähten zu füllen, wählen Sie einen entsprechenden Abstand der Elektroden für das Experiment (z. B.zur kortikalen lokales Feld möglicher (LFP) und aktuelle Quelle Dichte (CSD) Registrierung der empfohlenen Vorsprung von den Spitzen der Drähte aus der Öffnen der Tube: 4,5 mm, 4,1 mm und 3,7 mm, beziehungsweise). Hinweis, welcher Draht welche Tiefe für die Aufrechterhaltung einer richtigen Kanal Ordnung entspricht.</li>
	<li>Sobald die Drähte neben einander rechtsbündig und sind parallel mit dem Rohr, zur Behebung der elektrodenleitungen platzieren Sie einen einzigen Tropfen flüssigen Sekundenkleber an beiden Enden des Rohres mit einer spitzen Nadel. Stellen Sie sicher, dass der Kleber in das Rohr durch die Kapillarwirkung, aber nicht in der Aufnahme-Standorte an den überstehenden enden fließt.</li>
	<li>Bereiten Sie eine Elektrode-Interface-Platine mit einem richtigen Microconnector kompatibel mit dem Aufnahmesystem verwendet werden.</li>
	<li>Führen Sie die nicht-Aufnahme, gebogenen Enden der Drähte in die Löcher der Elektrode Interface-Platine entsprechend des gewünschten Aufnahme Kanals ein. Wenn alle Drähte in Position sind, drücken Sie die gold Pins in die Löcher mit einer Pinzette. Hinweis: Gold Pins können mit dental Zement fixiert werden, aber in den meisten Fällen ist es stabil genug, auch ohne diese Sicherheit Schritt.</li>
</ol>3. Anästhesie
<ol><li>Legen Sie das Tier in einer versiegelten Anästhesie Induktion Kammer und mit 4-5 % von Isofluran in 2 L/min medizinische Luft füllen.</li>
	<li>Wenn die Ratte Liegerad ist, entfernen Sie das Tier aus der Kammer zu und legen Sie sie in einem stereotaktischen Rahmen mit eine geeignete Belüftung Nasenstück.</li>
	<li>Stellen Sie Isofluran auf 2 % ein, obwohl die Rate der Luftstrom sollte gleich bleiben. Überprüfen Sie die Höhe der Anästhesie. Ist die Abwesenheit von der Pfote Rückzug Reflex in Reaktion auf kneifen, weiter, sonst erhöhen die Tiefe der Narkose.</li>
	<li>Überwachen Sie und warten Sie die Ratte Körpertemperatur auf 37 ± 0,5 ° C mit einem homöotherm Überwachungssystem. Wenden Sie ein Tröpfchen von Paraffin-Salbe auf die Augen, Austrocknung der Hornhaut zu verhindern. Wiederholen Sie diesen Vorgang während der Operation mehrmals, wenn nötig.</li>
	<li>Subkutan injizieren Sie 0,3 mg/kg Atropin um Schleim in den Atemwegen zu vermeiden. Wiederholen Sie diesen Vorgang alle vier Stunden bei längeren Operationen. Atmung zu überwachen und Verdampfer, bei Bedarf anpassen.</li>
</ol>4. die Implantation der Stimulation und Aufnahme Elektroden
Hinweis: Autoklav alle notwendigen chirurgischen Instrumente und befolgen Sie die allgemeinen Regeln der Asepsis und Antisepsis während des gesamten Verfahrens. Berühren Sie unsterilen Bereiche außerhalb der OP-Bereich. Tauchen Sie die Elektroden in Äthyl-Alkohol (70 %) für 30 min vor der Implantation.
<ol><li>Entfernen Sie die meisten die Haare aus der Kopfhaut mit einer Haarschneidemaschine. Enthaarungscreme auf die Kopfhaut auftragen, gleichmäßig auf der Oberfläche und ein paar Minuten warten. Einem Spatel um vorsichtig die Sahne und die restlichen Haare zu entfernen. Spülen Sie die Haut mit Wasser, dann mit Desinfektionsmittel.</li>
	<li>1-2 % Lidocain zu injizieren (nicht mehr als eine Gesamtdosis von 7 mg/kg) subkutan zur Betäubung der Haut. Einen einzigen Tropfen Vet Salbe für die Augen (z.B. Paraffin) gelten.</li>
	<li>Machen Sie eine gründliche und eine lange (~ 2 cm) sagittale Inzision in der Mittellinie mit einem Skalpell von der Stirn bis zum Nacken. Sezieren der Gewebe einschließlich der Knochenhaut vom Schädel, dann reinigen Sie den Bereich zwischen der Cristae der beiden Temporal Knochen mit einem Meißel oder Zahn einer Pinzette. Halten Sie den Schädel durch zurückziehen der sezierten Haut mit vier Bulldoggen ausgesetzt.</li>
	<li>Sanft legen Sie feine Pinzette zwischen den steilen Rand des Schläfenbeins und Muskeln und trennen Sie sie. Machen Sie jigging Bewegungen, so viel von der großen Oberfläche des Schläfenbeins wie möglich, vorzugsweise von der Kante des Occipital Knochens auf die Ebene der koronalen Nähte, verfügbar zu machen, ohne die Muskeln.</li>
	<li>Platzieren Sie Retraktoren Bitemporally um die Temporal Knochen ausgesetzt.</li>
	<li>Spülen Sie die Oberfläche des Schädels mit 1-2 mL 3 % H2O2, dann waschen Sie es mit 1-2 mL Wasser.</li>
	<li>Die Oberfläche der Temporal Knochen sehr sorgfältig an der Luft trocknen, die Feuchtigkeit mit ocular-Sticks aufwischen. Testen Sie, ob die Stimulation Elektroden auf die Oberfläche gereinigt vertikale Schädel passen (die Oberkante der Stimulationselektrode sollte im Einklang mit der Kante der Crista des Schläfenbeins). Nachjustieren Sie die Bulldogs und die Retraktoren oder prägen Sie die Stimulation Elektroden mit einer Schere, bei Bedarf.</li>
	<li>Füllen Sie die Hohlräume der Stimulation Elektroden mit elektrisch leitfähige gel und legte eine dünne Schicht des Klebers auf die Felge der Elektroden.</li>
	<li>Legen Sie die Stimulationselektrode auf die trockene Oberfläche des Schläfenbeins mit einer präzise Bewegung und halten Sie es fest im Ort für eine Minute mit einer feinen Pinzette. Stellen Sie sicher, dass keine Feuchtigkeit in Kontakt mit dem Kleber. MOP mit ocular-Sticks, falls erforderlich. Achtung: für den Fall, dass eine Instabilität der Elektrode erlebt wird, entfernen Sie es. Wiederholen Sie nach Reinigung der Knochen diesen Schritt mit einer neuen Stimulationselektrode.</li>
	<li>Setzen Sie dental Zement über die Ränder der Stimulationselektrode, während die undichte Feuchtigkeit des Gewebes kontinuierlich mit ocular-Sticks getrocknet wird. Decken Sie die gesamte Stimulationselektrode mit Zement.</li>
	<li>Nachdem der Kleber vollständig ausgehärtet ist, wiederholen Sie diese Schritte auf der kontralateralen Seite.</li>
	<li>Bohren Sie einige Löcher überall auf den Schädel zum Ankern Schrauben. Miniatur-Schrauben in die Löcher zu fahren und legte dental Zement übergießen. Verwenden Sie ein kleinerer Durchmesser von ca. 10 % im Vergleich zu den Schraubendurchmesser Bohrkopf.</li>
	<li>Je nach Zweck der Experimente einen Stecker an den Enden der Kabel Löten, legen Sie es auf die Oberfläche, und mit Zement, oder weiter Implantation Aufnahme Elektroden und Lichtleitfasern oder Vorbereiten einer kranialen Fenster über den Schädel. Löten Sie in diesem Fall die Stecker zu und Verankern sie das Konstrukt erst am Ende. Im Falle der Notwendigkeit der gleichzeitigen TES und LFP Langzeitaufzeichnungen Implantat die vorgenannten Elektrode Drillinge anstelle von einzelnen Drähten. Hinweis: Dieses Setup ermöglicht die Entfernung von gemeinsamen Modus Stimulation Artefakte8. Für die Details der Aufnahme Elektrode Implantation siehe vorherigen Protokolle14,15.</li>
	<li>Waschen Sie die exponierten Geweben reichlich mit Desinfektionsmittel. 1-2 % Lidocain zu injizieren (nicht mehr als eine Gesamtdosis von 7 mg/kg) subkutan.</li>
	<li>Debride Wundränder und schließen Sie sie mit einfachen unterbrochene Nähte um den Connector/Implantat. Desinfizieren Sie die Wunde mit Povidon-Jod.</li>
	<li>Carprofene 5 mg/kg subkutan zu injizieren. Wiederholen Sie diesen Vorgang, wenn nötig. Hinweis: Andere Analgetika können entsprechen die Anforderungen der lokalen ethischen Berechtigung Board verwendet werden.</li>
	<li>Auszusetzen, Anästhesie, release Earbars und Nasensteg und setzen Sie das Tier in einem Käfig postoperative Erholung, um wieder zu Bewusstsein kommen.</li>
	<li>Stellen Sie sicher, dass das Tier unter strenger Aufsicht in den ersten postoperativen Stunden. Weiterhin die Implantat-Bereich in regelmäßigen Abständen zu überwachen. Hinweis: Das Tier sollte nicht unbeaufsichtigt gelassen werden bis es ausreichend Bewusstsein zur Aufrechterhaltung der sternalen liegen wiedererlangt hat. Haus das Tier individuell bis zur endgültigen Genesung von der Prozedur.</li>
</ol>

<ol><li>Ozen, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcranial+electric+stimulation+entrains+cortical+neuronal+populations+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+neuroscience+%3A+the+official+journal+of+the+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Transcranial electric stimulation entrains cortical neuronal populations in rats.</a> The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 30 (34), 11476-11485 (2010).</li>
<li>Ali, M. M., Sellers, K. K., Frohlich, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcranial+alternating+current+stimulation+modulates+large-scale+cortical+network+activity+by+network+resonance%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+neuroscience+%3A+the+official+journal+of+the+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Transcranial alternating current stimulation modulates large-scale cortical network activity by network resonance.</a> The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 33 (27), 11262-11275 (2013).</li>
<li>Helfrich, R. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Entrainment+of+brain+oscillations+by+transcranial+alternating+current+stimulation%5BTitle%5D)+AND+%22Current+biology+%3A+CB%22%5BJournal%5D)">Entrainment of brain oscillations by transcranial alternating current stimulation.</a> Current biology : CB. 24 (3), 333-339 (2014).</li>
<li>Bikson, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcranial+direct+current+stimulation+for+major+depression%3A+a+general+system+for+quantifying+transcranial+electrotherapy+dosage%5BTitle%5D)+AND+%22Current+treatment+options+in+neurology%22%5BJournal%5D)">Transcranial direct current stimulation for major depression: a general system for quantifying transcranial electrotherapy dosage.</a> Current treatment options in neurology. 10 (5), 377-385 (2008).</li>
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<li>Kuo, M. F., Nitsche, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+transcranial+electrical+stimulation+on+cognition%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+EEG+and+neuroscience%22%5BJournal%5D)">Effects of transcranial electrical stimulation on cognition.</a> Clinical EEG and neuroscience. 43 (3), 192-199 (2012).</li>
<li>Sandrini, M., Fertonani, A., Cohen, L. G., Miniussi, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Double+dissociation+of+working+memory+load+effects+induced+by+bilateral+parietal+modulation%5BTitle%5D)+AND+%22Neuropsychologia%22%5BJournal%5D)">Double dissociation of working memory load effects induced by bilateral parietal modulation.</a> Neuropsychologia. 50 (3), 396-402 (2012).</li>
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<li>Kozak, G., Berenyi, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sustained+efficacy+of+closed+loop+electrical+stimulation+for+long-term+treatment+of+absence+epilepsy+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+reports%22%5BJournal%5D)">Sustained efficacy of closed loop electrical stimulation for long-term treatment of absence epilepsy in rats.</a> Scientific reports. 7 (1), 6300(2017).</li>
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<li>Marshall, L., Binder, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contribution+of+transcranial+oscillatory+stimulation+to+research+on+neural+networks%3A+an+emphasis+on+hippocampo-neocortical+rhythms%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+human+neuroscience%22%5BJournal%5D)">Contribution of transcranial oscillatory stimulation to research on neural networks: an emphasis on hippocampo-neocortical rhythms.</a> Frontiers in human neuroscience. 7, 614(2013).</li>
<li>Reato, D., Rahman, A., Bikson, M., Parra, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+weak+transcranial+alternating+current+stimulation+on+brain+activity-a+review+of+known+mechanisms+from+animal+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+human+neuroscience%22%5BJournal%5D)">Effects of weak transcranial alternating current stimulation on brain activity-a review of known mechanisms from animal studies.</a> Frontiers in human neuroscience. 7, 687(2013).</li>
<li>Thut, G., Miniussi, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+insights+into+rhythmic+brain+activity+from+TMS-EEG+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+cognitive+sciences%22%5BJournal%5D)">New insights into rhythmic brain activity from TMS-EEG studies.</a> Trends in cognitive sciences. 13 (4), 182-189 (2009).</li>
<li>Gage, G. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surgical+implantation+of+chronic+neural+electrodes+for+recording+single+unit+activity+and+electrocorticographic+signals%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+visualized+experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Surgical implantation of chronic neural electrodes for recording single unit activity and electrocorticographic signals.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. (60), (2012).</li>
<li>Vandecasteele, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large-scale+recording+of+neurons+by+movable+silicon+probes+in+behaving+rodents%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+visualized+experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Large-scale recording of neurons by movable silicon probes in behaving rodents.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. (61), e3568(2012).</li>
<li>Zayachkivsky, A., Lehmkuhle, M. J., Dudek, F. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+Continuous+EEG+Monitoring+in+Small+Rodent+Models+of+Human+Disease+Using+the+Epoch+Wireless+Transmitter+System%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+visualized+experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Long-term Continuous EEG Monitoring in Small Rodent Models of Human Disease Using the Epoch Wireless Transmitter System.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. (101), e52554(2015).</li>
<li>Ung, K., Arenkiel, B. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fiber-optic+implantation+for+chronic+optogenetic+stimulation+of+brain+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+visualized+experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Fiber-optic implantation for chronic optogenetic stimulation of brain tissue.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. (68), e50004(2012).</li>
<li>Mostany, R., Portera-Cailliau, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+craniotomy+surgery+procedure+for+chronic+brain+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+visualized+experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">A craniotomy surgery procedure for chronic brain imaging.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. (12), (2008).</li>
</ol>

Antal Gesellschafterversammlung ist der Inhaber und Gründer der Amplipex Ltd, ein Unternehmen für die Herstellung von großflächigen multiplexing Biosignal-Verstärker. Gábor Kozák und Tamás Földi haben nichts preisgeben.

Der wichtigste Schritt dieses Protokolls ist das Verkleben von der Elektrode-Paket auf der Knochenoberfläche. Bei unsachgemäßer Abdichtung, entsteht eine Lücke zwischen den Elektroden und den Knochen, und sekundäre Narbengewebe kann wachsen in diese Lücke, die die Qualität der Stimulation verringert. Die Knochenoberfläche muss komplett trocken sein, während der Schritte auf das Paket kleben und bei Instabilität der Elektroden zu erleben, muss es entfernt und ersetzt mit einem neuen Paket um die besten Ergebnisse zu erhal...

Transkraniellen Elektrostimulation (TES) ist eine wertvolle methodische Aktivität des Gehirns in eine zeitlich beschränkte Weise beeinflussen. Je nach Größe und Platzierung der Elektroden Stimulation, TES beeinträchtigen großes Gehirn Volumen und mitzureißen neuronale Populationen diffus1,2,3. Transkranielle Gleichstrom Stimulation ist für die Behandlung von schweren depressiven Störungen4,5, und viele Studien zu konzentrieren auf die kognitive Effekte der transkraniellen Stimulation in Menschen6 zeigen bereits medizinisch anerkannt. , 7. Darüber hinaus viel versprechende Ergebnisse wurden bei der Kontrolle der epileptische Anfälle8,9der Potenziale der TES gemeldet.
Trotz intensiver Forschung gibt es noch viele offene Fragen hinsichtlich der genaue Mechanismus der Action, mögliche Nebenwirkungen und das langfristige Resultat der Anwendung dieser Methode10,11,12. Daher ist es von entscheidender Bedeutung für eine stabile und reproduzierbare Protokoll, die Auswirkungen des TES in Tiermodellen zu untersuchen haben. Angesichts der Tatsache, dass viele Erkrankungen (z.B.Depressionen, Epilepsie und Schizophrenie) nur ausgiebig werden wach Tiere untersucht können und die Natur von diesen Erkrankungen erfordern in der Regel langfristige Behandlung, bieten wir ein Protokoll für chronische Implantation von Elektroden Transkranielle bei Ratten. Die hier vorgestellte Methode eignet sich für Verhaltensstudien oder kombinierbar mit Implantation von Elektroden Aufnahme (d.h., Kabel, Silikon-Sonden, Juxtacellular Elektroden) oder chronische kranialen Windows für elektrophysiologische Experimente und bildgebenden Verfahren, beziehungsweise. Abhängig von den experimentellen Design kann das Timing der Stimuli zufällige oder ereignisgesteuerte spezifischen Verhaltens Hinweise oder die elektrophysiologischen Markenzeichen von bestimmten Gehirn Staaten (Anfälle, Theta-Schwingungen)8, 11 , 13.
Es ist wichtig zu erwähnen, dass im Gegensatz zu den derzeit verwendeten menschlichen Ansatz, der Verkörperung der Elektroden auf der Haut verwendet werden, hier eine Methode zeigen wir, die subkutane Implantation rechts über die Oberfläche des Schläfenbeins, da Ratten kaum beschäftigt tolerieren Sie nichts auf ihrer Haut, die leicht zu erreichen mit ihren Pfoten gelegt.
Nach den Grundsätzen der Ersatz, Reduktion und Raffinesse, aufgrund der chronischen Natur der Implantation hilft diese Methode zur Reduzierung der Anzahl der Tiere, da jedes Tier in verschiedenen experimentellen Bedingungen monatelang, erlaubt die Verwendung eingestellt werden kann weniger Tiere zu verschiedenen Hypothesen zu testen.
In der vorliegenden Studie wir bieten eine ausführliche, schrittweise Protokoll Transkranielle Stimulation Elektrode Herstellung (Abbildung 1A-B) und zeigen die chronische Implantation diese Elektroden über die zeitliche Knochen ein sechs-Monat-alten männliche Long-Evans-Ratte.

<table><tbody><tr><td>Cyanacrylat-Flüssigkeit</td><td>Henkel</td><td>Loctite 401</td><td></td></tr><tr><td>Cyanacrylat-Gel</td><td>Henkel</td><td>Loctite 454</td><td></td></tr><tr><td>Draht für Stimulationselektroden</td><td>Phoenix Wire Inc.</td><td>36744MHW - PTFE Microminiature Hook-Up Wire Board</td><td></td></tr><tr><td>Spacer</td><td>E-tec Interconnect</td><td>SP1-020-S378/01-55</td><td></td></tr><tr><td>Steckverbinder</td><td>E-tec Interconnect</td><td>P2510I-02</td><td></td></tr><tr><td>Bandverpackung für Stimulationselektroden</td><td>Nexperia</td><td>74HC1G00GW</td><td>Bandverpackung für jeden integrierten Schaltkreis mit SOT-353-Gehäuse kann verwendet werden</td></tr><tr><td>Grip Cement</td><td>Industriequalität Dichtungsmasse Dentsply</td><td>675571 (Pulver) 675572 (Lösungsmittel)</td><td></td></tr><tr><td>Elektrisches Gel</td><td>Rextra</td><td>EKG-Gel</td><td></td></tr><tr><td>Aufzeichnungselektrodendraht</td><td>California Fine Wire Co.</td><td>.002 (50 Mikron) Wolfram 99,95% (CFW Material #: 100-211), HMl-Natural, geschnitten auf 3,0 Zoll Stücke, rund, geschnitten Länge Stück Draht</td><td></td></tr><tr><td>Ultrafeine Schere</td><td>Hammacher Instrumente</td><td>Edelstahl HSB 544-09</td><td></td></tr><tr><td>Edelstahlrohr</td><td>Vita Needle Company</td><td>29 RW, 304SS Schlauch, T.I.G. Geschweißt und Stecker</td><td></td></tr><tr><td>Hochgeschwindigkeits-Rotationssäge</td><td>Dremel</td><td>Modell # 395</td><td></td></tr><tr><td>Rotationssägehalter</td><td>Dremel</td><td>Modell # 220</td><td></td></tr><tr><td>Kreissäge Trennscheibe</td><td>Dremel</td><td>Modell # 409</td><td></td></tr><tr><td>Okularsticks</td><td>Lohmann-Rauscher</td><td>Pro-ophta Ocular Sticks Nassdesinfektionsmittel</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Egis</td><td>Betadine</td><td></td></tr><tr><td>Trockendesinfektionsmittel</td><td>Wagner Pharma</td><td>Reseptylharnstoff</td><td></td></tr><tr><td>Bohrmaschine</td><td>NSK-Nakanishi Großbritannien</td><td>Vmax35RV Pack</td><td></td></tr><tr><td>Verankerungsschrauben</td><td>Antrin Miniature Specialties, Inc.</td><td>000-120x1/16 SL BIND MS SS</td><td></td></tr></tbody></table>

chronische transkraniellen elektrostimulation und intracortical aufnahme bei ratten

Chronic Transcranial Electrical Stimulation and Intracortical Recording in Rats

Transkraniellen Elektrostimulation (VES) ist ein kraftvoll und relativ einfache Ansatz, diffus Aktivität des Gehirns nach dem Zufallsprinzip oder in einer geschlossenen ereignisgesteuerte Weise beeinflussen. Obwohl viele Studien über mögliche nutzen und Nebenwirkungen von TES in gesunden und pathologischen Gehirn konzentriert sind, gibt es noch viele grundlegende Fragen bezüglich der Wirkmechanismus der Stimulation. Deshalb gibt es ein klares muss für eine stabile und reproduzierbare Methode zu testen, die akute und chronische Effekte des TES bei Nagetieren. TES kombinierbar mit regelmäßigen Verhaltensstörungen, elektrophysiologische und bildgebende Techniken, neuronale Netze in Vivozu untersuchen. Die Implantation von Elektroden Transkranielle Stimulation erlegt nicht zusätzliche Beschränkungen für das experimentelle Design auf und eine vielseitige, flexible Tool bietet, um Aktivität des Gehirns zu manipulieren. Hier bieten wir Ihnen eine ausführliche, schrittweise Protokoll zu fabrizieren und Implantat Transkranielle Stimulation Elektroden Hirnaktivität monatelang in einer zeitlich beschränkten Weise zu beeinflussen.

Die Implantation von Elektroden chronische Stimulation (Abbildung 1 b) kombinierbar mit zusätzlicher Implantation von Elektroden (Abbildung 1-D) aufnehmen. Diese Einstellungen eignen sich zur Anforderungs-Aufnahme und Stimulation Systeme mit spezifischen Hirnaktivitäten stören bilden. Hier präsentieren wir repräsentative Ergebnisse einer geschlossenen Epilepsie-Erkennung und Interventionssystem, angewendet auf Lo...

Dieses ausführliche Protokoll beschreibt Transkranielle Stimulation Elektrode Platzierung auf dem Felsenbein um die kurz- und langfristigen Auswirkungen der transkraniellen Elektrostimulation im frei beweglichen Ratten zu untersuchen.

Chronische Transkraniellen Elektrostimulation und Intracortical Aufnahme bei Ratten

Transcranial electrical stimulation (TES) is a powerful and relatively simple approach to diffusely influence brain activity either randomly or in a ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens ist es, ein Schritt-für-Schritt-Protokoll zur Herstellung und Implantation chronischer transkranieller Stimulationselektroden zu zeigen. Diese Methode kann helfen, Schlüsselfragen im Bereich der Neurostimulation zu beantworten, wie z.B. die Langzeitwirkungen der zeitlich gezielten diffusen transkraniellen Elektrostimulation. Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass diese Methode aufgrund der geringen Größe des Implantats mit regulären elektrophysiologischen optogenetischen und bildgebenden Verfahren bei frei beweglichen Tieren kombiniert werden kann.Die Implikationen dieser Technik konzentrieren sich auf die Therapie von Epilepsie, Depressionen und anderen neuropsychologischen Störungen, da sie in der Lage ist, große Gehirnnetzwerke sofort zu beeinflussen. Um eine Stimulationselektrode herzustellen, schneiden Sie sechs 10 Zentimeter lange Stücke Miniatur-Anschlussdrähte ab. Entfernen Sie zwei Zentimeter der Verkleidung an einem Ende und einen Zentimeter am anderen Ende.Als nächstes verdrehst du zwei Kabel miteinander und lötest sie mit der kürzeren geschälten Seite an. Erwerben Sie anschließend einen Streifen mit drei Bandverpacku

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Wir geben Ihnen nützliche Informationen für Chirurgen, die das Erlernen der Prozess der Implantation von chronischen neuronalen Aufnahme Elektroden werden. Techniken für beide durchdringenden und der Oberflächenelektrode sind in einem Nagetier-Modell beschrieben.

Chirurgische Implantation von Elektroden für die Neural Chronische Aufnahme Single Unit Activity und Electrocorticographic Signale

Dieses Video zeigt die Methode zur Implantation eines On-Head-Elektrodensystems in eine anästhesierte Ratte zur Echtzeit-Anfallserkennung. Das Verfahren umfasst das Platzieren von Stimulations- und Aufzeichnungselektroden, das Befestigen mit Zahnzement und das Anschließen an einen am Kopf montierten Verstärker.

Implantation eines On-Head-Elektrodensystems in ein Rattenmodell zur Echtzeit-Erkennung von Anfällen

Quelle: Fritsch, B. et al. Transkranielle elektrische Hirnstimulation bei wachen Nagetieren. J. Vis. Exp. (2017)Dieses Video zeigt die Implantation von Elektroden und die Anwendung von transkranieller elektrischer Stimulation (tES) auf den motorischen Kortex von Warnratten. Es skizziert die Schritte bei der Elektrodenplatzierung, der Stimulationsabgabe und der daraus resultierenden neuronalen und mikroglialen Aktivierung und unterstreicht ihr neurotherapeutisches Potenzial.

Transkranielle elektrische Stimulation des motorischen Kortex bei einer wachen Ratte

Quelle: Beom, J., et al. Repetitive transkranielle Magnetstimulation der einseitigen Hemisphäre des Rattengehirns. J. Vis. Exp. (2016)Dieses Video zeigt die Anwendung der repetitiven transkraniellen Magnetstimulation (rTMS) bei anästhesierten Ratten zur Modulation der kortikalen Erregbarkeit. Das Verfahren beinhaltet die Bestimmung der motorischen Schwelle (MT), um eine Basisstimulation zu etablieren, gefolgt von der Anwendung von rTMS mit einer Intensität oberhalb der MT, um eine neuronale...

Modulation der kortikalen Erregbarkeit bei einer Ratte durch repetitive transkranielle Magnetstimulation

In dieser Studie wird die Methodik vorgestellt, wie man mehrfache in vivo elektrophysiologische Aufnahmen aus dem hyperdirekten Weg unter Urethananästhesie durchführt.

Akut<em&gt; In vivo</em&gt; Elektrophysiologische Aufzeichnungen von lokalen Feldpotentialen und Multi-Unit-Aktivitäten von der Hyperdirect-Pathway in anästhesierten Ratten

Dieses Protokoll beschreibt eine chirurgische Einrichtung für eine permanente Epicranial Elektrode Steckdose und einer implantierten Brust-Elektrode bei Nagetieren. Durch die Platzierung einer zweiten Elektrode in die Steckdose, können verschiedene Arten von transkranielle elektrische Hirnstimulation auf das motorische System alert Tiere durch den intakten Schädel geliefert werden.

Transkranielle elektrische Hirnstimulation in Alert Nagetiere

Ein kabelloses, bidirektionale System für neuronale Mehrkanal-Aufnahmen und Stimulation in Ratten frei Verhalten wird eingeführt. Das System ist leicht und kompakt, so dass nur minimale Auswirkungen auf die Futtersorten Verhaltensrepertoire. Darüber hinaus bietet dieses bidirektionale System ein ausgefeiltes Instrument um kausale Zusammenhänge zwischen Aktivierungsmuster Gehirn und Verhalten zu beurteilen.

Ein kabelloses, bidirektionale Schnittstelle für In Vivo Aufnahme und Stimulation der neuronalen Aktivität in Ratten frei Verhalten

Wir beschreiben ein Protokoll zur Beurteilung von Dosis-Wirkungs-Kurven für extrakranielle Stimulation in Bezug auf elektrische Feldmessungen des Gehirns und einen relevanten Biomarker-zerebralen Blutfluss. Da bei diesem Protokoll eine invasive Elektrode in das Gehirn eingeführt wird, ist eine Vollnarkose erforderlich, wobei die Spontanatmung der kontrollierten Atmung vorgezogen wird.

[Platzierung von extrakraniellen Stimulationselektroden und Messung des zerebralen Blutflusses und intrakranieller elektrischer Felder bei anästhesierten Mäusen

Diese Studie stellt eine skalierbare, zuverlässige und reproduzierbare Methode für wiederholte chronische kortikale Aufzeichnungen in einem Schweinemodell vor. Die Methode findet Anwendung in verschiedenen Bereichen der Neurowissenschaften, unter anderem in der Schmerzforschung und in der neurologischen Diagnostik.

Chronische Schädelfenstertechnik für wiederholte kortikale Aufzeichnungen während der Anästhesie bei Schweinen

Hier stellen wir zwei Protokolle für die Aufzeichnung von Mikro-Elektrokortikographie (μEcoG) mit hoher Dichte bei Ratten und Mäusen vor, einschließlich chirurgischer, Implantations- und Aufzeichnungsmethoden. μECoG-Aufzeichnungen werden entweder in Kombination mit laminarer Polytrodenaufzeichnung im auditorischen Kortex der Ratte oder mit optogenetischer Manipulation der neuronalen Aktivität im somatosensorischen Kortex der Maus durchgeführt.

Multiskalige Untersuchungen der kortikalen Prozessierung durch Integration laminarer Polytroden und Optogenetik mit Mikroelektrokortikographie bei Nagetieren

Lernen Sie die Herstellung und Implantation chronischer transkranieller Stimulationselektroden bei frei beweglichen Ratten. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung von Kurz- und Langzeiteffekten auf die Gehirnfunktion und therapeutische Anwendungen bei Epilepsie und Depression.

Chronische Transkraniellen Elektrostimulation und Intracortical Aufnahme bei Ratten

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