Name: Herstellung optischer Qualität Glasflächen, Makrophagen Fusion zu studieren (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-14T12:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 50 s
Description: Erfahren Sie die Herstellung optischer Qualitätsglasflächen für Makrophagen-Fusionsstudien mit Live-Bildgebung und Superauflösungsmikroskopie. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung molekularer Mechanismen in vivo.

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Wir möchte Mitglieder der Ugarova Labor und Ermittler in der Mitte für Stoffwechsel- und vaskuläre Biologie für hilfreiche Diskussion dieser Arbeit danken. James Faust möchte seine Dankbarkeit für die Ausbilder an der European Molecular Biology Laboratory Super Auflösung Mikroskopie-Kurs im Jahr 2015 zum Ausdruck zu bringen. Wir wünschen Satya Khuon am Janelia Danke für Hilfe bei der Probenvorbereitung für die LLSM. Während der Überprüfung und Dreharbeiten Teile dieses Werkes wurde James Faust durch ein T32 Fellowship (5T32DK007569-28) unterstützt. Die Gitter Licht Blatt Komponente dieses Werkes wurde von HHMI und Betty und Gordon Moore Foundation unterstützt. NIH finanziert T.U HL63199 zu gewähren.

Verfahren, die Tiere nutzen stimmten die Animal Care und Nutzung Gremien auf Mayo Clinic, Janelia Research Campus und Arizona State University.
1. Vorbereitung Deckglas Säure gereinigt
Hinweis: Deckglas gekauft von vielen Herstellern so sauber wie erwartet möglicherweise nicht. Betrachten Sie routinemäßig Reinigung Chargen von Deckglas vor jedem Eingriff wo Mikroskopie beteiligt ist.
<ol><li>Kaufen Sie hohe Stringenz Deckglas. Achten Sie besonders auf die richtige Dicke (0,15 oder 0,17 mm) wählen. Hinweis: Die Wahl der Abdeckung Glasstärke richtet sich nach dem Mikroskopobjektiv und direkt auf den objektiven Lauf aufgeführt ist.</li>
	<li>Das Deckglas in 12 M Salzsäure in einem gut belüfteten chemische Abzug für 1 h mit Beschallung (42 kHz, 70 W) inkubieren. Wiederholen Sie diesen Schritt für zwei weitere Male mit frisch 12 M HCl.</li>
	<li>Füllen Sie einen separaten Becher mit Reinstwasser und fügen Sie das Deckglas. Beschallen Sie das Deckglas für 5-10 min in einem gut belüfteten chemische Haube. Wiederholen Sie diesen Schritt zehnmal.</li>
	<li>Inkubieren Sie das Deckglas in Aceton in einer gut belüfteten chemische Haube für 30 min mit Beschallung. Wiederholen Sie diesen Schritt für zwei weitere Male.</li>
	<li>Füllen Sie einen separaten Becher mit sterilen Reinstwasser und fügen Sie das Deckglas. Beschallen Sie das Deckglas für 5-10 min in einem gut belüfteten chemische Haube. Wiederholen Sie diesen Schritt zehnmal.</li>
	<li>Inkubieren Sie das Deckglas in 100 % Ethylalkohol in eine chemische Haube für 30 min mit Beschallung. Wiederholen Sie diesen Schritt zwei weitere Male. Hinweis: Die Reinheit der Ethylalkohol ist wichtig. Verunreinigungen in Form von gelösten Stoffen werden auf dem Glas trocken und Makrophagen Fusion fördern können.</li>
	<li>Legen Sie für die langfristige Lagerung das Deckglas Säure gereinigt in einen Behälter gefüllt mit reinen Äthylalkohol. Alternativ, trocknen Sie das Deckglas mit Stickstoffgas und Shop in einem Vakuum Exsikkator.</li>
</ol>2. Vorbereitung des Fusogenic optisch hochwertige Oberflächen
<ol><li>Auflösen, DMSO-freie hochschmelzenden Punkt Paraffinwachs in hochreinen Toluol. Hinweis: Lager Konzentrationen bestehen bei 10 mg/mL, und verdünnt 1:9 in hochreinen Toluol zu 1 mg/mL Lösung sind. Achtung: Toluol sollte als Teratogen pfleglich behandelt werden. Toluol nach institutionellen chemische Hygieneplan entsorgen.</li>
	<li>Wenden Sie das Paraffin arbeiten Lösung für eine trockene Säure gereinigt Deckglas auf ein Volume, das die Glasoberfläche gleichmäßig deckt. Dekantieren Sie überschüssige Lösung und trocknen Sie das Deckglas mit Stickstoffgas oder Luft zu. Vorbereitung der Masse verwenden Sie Kanope Coplin entworfen, um das Deckglas unterzubringen.</li>
	<li>Das Deckglas mit 3 Schlägen in der x-Achse und anschließend mit 3 Schlägen in der y-Achse mit einem fusselfreien Tuch zu polieren (siehe Tabelle der Materialien).</li>
	<li>Unmittelbar vor das Experiment durchgeführt, das Deckglas mit sterilen Reinstwasser waschen und anschließend sterilisieren für 15-30 min mit UV-Licht in eine biologische Schutzhaube. Sterilisieren Sie alternativ Glasabdeckung durch Ethylen Oxid oder Gamma-Bestrahlung.</li>
</ol>3. Micropatterning Kohlenwasserstoff-Verbindungen beschränken, Fusion, vorgegebenen Regionen
<ol><li>Trocknen Sie das Deckglas Säure gereinigt und immobilisieren Sie das Glas auf eine Ebene Fläche zu.</li>
	<li>Tauchen Sie mit Pinzette, sorgfältig ein gold Elektronenmikroskopie Finder Übertragungsnetz in eine funktionierende Lösung von Kohlenwasserstoff-widerrufen. Wählen Sie einen Kohlenwasserstoff-Verbindung, die das eigentliche Ziel des Experiments entspricht (siehe Tabelle 1). Docht entfernt überschüssige Lösung durch leichtes Klopfen das Raster auf Filterpapier, und sofort das Gitter in der Mitte der Glasabdeckung. Können Sie Toluol zum Trocknen für 2 min bevor Sie mit dem nächsten Schritt fortfahren.</li>
	<li>Stellen Sie sicher, dass das Gitter auf dem Glas verklebt ist, durch das Glas vorsichtig umdrehen. Wenn das Raster wiederholen Sie Schritt 3.2 mit einem neuen Deckglas löst. Hinweis: Wenn ein Plasma Reiniger nicht verfügbar ist, überspringen Sie Schritt 3.4.</li>
	<li>Plasma reinigen das Deckglas durch Behandlung mit Vakuum Gasplasma. Hinweis: Der Finder-Raster dient als Maske, die zugrunde liegende Oberfläche adsorbiert mit langkettigen Kohlenwasserstoffen aus dem Plasma zu schützen. Die Regionen, die durch das Gitter geschützt sind werden nicht Fusogenic durch die Einwirkung von Plasma gerendert. Die Höhe der Zeit ist das Deckglas Expose Plasma sollte empirisch bestimmt werden.</li>
	<li>Entfernen Sie mit feinen Spitze Pinzette, vorsichtig das Gitter von der Glasoberfläche, die Micropattern verfügbar zu machen.</li>
</ol>4. Herstellung von unten Glasschalen
<ol><li>Bohren Sie ein 6-10 mm kreisrundes Loch in den Boden von einem 35-mm-Kunststoff Petrischale mit einem Schritt-Bohrer. Hinweis: Es ist wichtig, einen Schritt Bohrer mit glatte Kanten erstellt. Wenn Kanten zu rau sind, wird das Deckglas nicht flach auf den Boden der Schale kleben. Unvollkommen Planflächen erschweren die Mikroskopie.</li>
	<li>Vorsichtig mischen Sie und entgasen Sie Silikon-Elastomer gemäß den Anweisungen des Herstellers (z.B. Polydimethylsiloxan; PDMS).</li>
	<li>Wenden Sie eine dünne Schicht des Elastomer nur unmittelbar an den Rand des (d. h.Indefinitpronomen) das Loch. Hinweis: Das Elastomer sollte als eine ständige, wenn auch dünne Band rund um das Loch angezeigt werden.</li>
	<li>Sanft Auftragen der Fusogenic Deckglas (beschrieben in Abschnitt 2) oder die trockene Säure gereinigt Deckglas (beschrieben in Abschnitt 1) in die Schale um das Loch, umgeben von Elastomer zu decken. Stellen Sie sicher, dass das Deckglas bündig mit dem Boden der Schale wird und der Durchmesser des Lochs hinausgeht, so dass ein wesentlicher Teil des Glases in Kontakt mit dem Kunststoff. Das Elastomer durch Backen bei 50 ° C für ca. 2-3 Stunden zu heilen.</li>
	<li>Wenn Fusogenic Glas bevorzugt wird, UV sterilisieren die Schüssel und Kultur Zellen nach standard-Protokolle. Jedoch, wenn ein Micropattern bevorzugt wird, fahren Sie mit Schritt 3.2 Vorbereitung Micropattern (das Gasplasma verwendet, während Micropatterning das Gericht sterilisiert und stark Paare PDMS auf Glas).</li>
</ol>5. sammeln Thioglykollat entlockte Makrophagen
<ol><li>Injizieren Sie 8 Wochen alten C57BL/6 Mäusen mit 0,5 mL einer sterilen Lösung von 4 % Brewer Thioglykollat wie zuvor beschrieben3,4,6.</li>
	<li>Einschläfern Sie zweiundsiebzig Stunden später des Tieres entsprechend zugelassenen Tierpflege und Richtlinien Sie, und sammeln Sie Makrophagen durch peritoneal Lavage mit eiskalten Phosphat-gepufferte Kochsalzlösung mit 5 mM Ethylenediaminetetraacetate ergänzt.</li>
	<li>Die Makrophagen bei 300 X g für 3 min Zentrifugieren und in 1 mL DMEM:F12 mit 15 mM HEPES, ergänzt Aufschwemmen 10 % FBS und 1 % Antibiotika (Kulturmedium). Hinweis: Die Zellen werden anschließend mit einem Neubauer Hemocytometer gezählt. Makrophagen sind auf die entsprechende Konzentration verdünnt und auf die Oberflächen angewendet. Die Anzahl der Zellen auf einer vorgegebenen Fläche anwenden sollte durch den Prüfarzt für die Zwecke der experimentellen Frage sorgfältig abgewogen werden. Wenden Sie sich an bekannten Standards in der Primärliteratur.</li>
	<li>Waschen Sie nach 30 min die Oberflächen mit HBSS ergänzt mit 0,1 % BSA-anhaftende Zellen zu entfernen und ersetzen mit frischem Nährmedium. Die Kulturen in den Inkubator (5 % CO2 in der Luft bei 37 ° C) zurück.</li>
	<li>2 h später, aspirieren Sie das Medium und ersetzen mit Kulturmedium mit 10 ng/mL IL-4 ergänzt. Bild der Zellen wie4an anderer Stelle beschrieben.</li>
</ol>

<ol><li>McNally, A. K., Anderson, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interleukin-4+induces+foreign+body+giant+cells+from+human+monocytes%2Fmacrophages.+Differential+lymphokine+regulation+of+macrophage+fusion+leads+to+morphological+variants+of+multinucleated+giant+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Interleukin-4 induces foreign body giant cells from human monocytes/macrophages. Differential lymphokine regulation of macrophage fusion leads to morphological variants of multinucleated giant cells.</a> Am J Pathol. 147 (5), 1487(1995).</li>
<li>Helming, L., Gordon, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+mediators+of+macrophage+fusion%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Molecular mediators of macrophage fusion.</a> Trends Cell Biol. 19 (10), 514-522 (2009).</li>
<li>Podolnikova, N. P., Kushchayeva, Y. S., Wu, Y., Faust, J., Ugarova, T. P. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4973655/">The Role of Integrins α M β 2 (Mac-1, CD11b/CD18) and α D β 2 (CD11d/CD18) in Macrophage Fusion.</a> Am J Pathol. 186 (8), 2105-2116 (2016).</li>
<li>Faust, J. J., Christenson, W., Doudrick, K., Ros, R., Ugarova, T. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+fusogenic+glass+surfaces+that+impart+spatiotemporal+control+over+macrophage+fusion%3A+Direct+visualization+of+multinucleated+giant+cell+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Development of fusogenic glass surfaces that impart spatiotemporal control over macrophage fusion: Direct visualization of multinucleated giant cell formation.</a> Biomaterials. 128, 160-171 (2017).</li>
<li>Jenney, C. R., Anderson, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alkylsilane-modified+surfaces%3A+Inhibition+of+human+macrophage+adhesion+and+foreign+body+giant+cell+formation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Mater+Res%22%5BJournal%5D)">Alkylsilane-modified surfaces: Inhibition of human macrophage adhesion and foreign body giant cell formation.</a> J Biomed Mater Res. 46 (1), 11-21 (1999).</li>
<li>Vignery, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+to+fuse+macrophages+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Fusion%3A+Overviews+Methods%22%5BJournal%5D)">Methods to fuse macrophages in vitro.</a> Cell Fusion: Overviews Methods. , 383-395 (2008).</li>
<li>Zhao, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Foreign-body+giant+cells+and+polyurethane+biostability%3A+In+vivo+correlation+of+cell+adhesion+and+surface+cracking%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Mater+Res%22%5BJournal%5D)">Foreign-body giant cells and polyurethane biostability: In vivo correlation of cell adhesion and surface cracking.</a> J Biomed Mater Res. 25 (2), 177-183 (1991).</li>
<li>Anderson, J. M., Rodriguez, A., Chang, D. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Foreign+body+reaction+to+biomaterials%5BTitle%5D)+AND+%22Semin+Immunol%22%5BJournal%5D)">Foreign body reaction to biomaterials.</a> Semin Immunol. 20 (2), 86-100 (2008).</li>
<li>Jenney, C. R., Anderson, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+surface-coupled+polyethylene+oxide+on+human+macrophage+adhesion+and+foreign+body+giant+cell+formation+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Mater+Res%22%5BJournal%5D)">Effects of surface-coupled polyethylene oxide on human macrophage adhesion and foreign body giant cell formation in vitro.</a> J Biomed Mater Res. 44 (2), 206-216 (1999).</li>
<li>DeFife, K. M., Colton, E., Nakayama, Y., Matsuda, T., Anderson, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatial+regulation+and+surface+chemistry+control+of+monocyte%2Fmacrophage+adhesion+and+foreign+body+giant+cell+formation+by+photochemically+micropatterned+surfaces%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Mater+Res%22%5BJournal%5D)">Spatial regulation and surface chemistry control of monocyte/macrophage adhesion and foreign body giant cell formation by photochemically micropatterned surfaces.</a> J Biomed Mater Res. 45 (2), 148-154 (1999).</li>
<li>Jenney, C. R., DeFife, K. M., Colton, E., Anderson, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+monocyte%2Fmacrophage+adhesion%2C+macrophage+motility%2C+and+IL-4-induced+foreign+body+giant+cell+formation+on+silane-modified+surfaces+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Mater+Res%22%5BJournal%5D)">Human monocyte/macrophage adhesion, macrophage motility, and IL-4-induced foreign body giant cell formation on silane-modified surfaces in vitro.</a> J Biomed Mater Res. 41 (2), 171-184 (1998).</li>
<li>Hell, S. W., Wichmann, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Breaking+the+diffraction+resolution+limit+by+stimulated+emission%3A+stimulated-emission-depletion+fluorescence+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Opt+Lett%22%5BJournal%5D)">Breaking the diffraction resolution limit by stimulated emission: stimulated-emission-depletion fluorescence microscopy.</a> Opt Lett. 19 (11), 780-782 (1994).</li>
<li>van de Linde, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+stochastic+optical+reconstruction+microscopy+with+standard+fluorescent+probes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protocols%22%5BJournal%5D)">Direct stochastic optical reconstruction microscopy with standard fluorescent probes.</a> Nat Protocols. 6 (7), 991-1009 (2011).</li>
<li>Fölling, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescence+nanoscopy+by+ground-state+depletion+and+single-molecule+return%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Fluorescence nanoscopy by ground-state depletion and single-molecule return.</a> Nat Methods. 5 (11), 943-945 (2008).</li>
<li>Heilemann, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subdiffraction-resolution+fluorescence+imaging+with+conventional+fluorescent+probes%5BTitle%5D)+AND+%22Ange+Chem+Int+Edit%22%5BJournal%5D)">Subdiffraction-resolution fluorescence imaging with conventional fluorescent probes.</a> Ange Chem Int Edit. 47 (33), 6172-6176 (2008).</li>
<li>Betzig, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proposed+method+for+molecular+optical+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Optics+Letters%22%5BJournal%5D)">Proposed method for molecular optical imaging.</a> Optics Letters. 20 (3), 237-239 (1995).</li>
<li>Betzig, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+intracellular+fluorescent+proteins+at+nanometer+resolution%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Imaging intracellular fluorescent proteins at nanometer resolution.</a> Science. 313 (5793), 1642-1645 (2006).</li>
<li>Shtengel, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interferometric+fluorescent+super-resolution+microscopy+resolves+3D+cellular+ultrastructure%5BTitle%5D)+AND+%22P+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Interferometric fluorescent super-resolution microscopy resolves 3D cellular ultrastructure.</a> P Natl Acad Sci U S A. 106 (9), 3125-3130 (2009).</li>
<li>Shtengel, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+cellular+ultrastructure+by+PALM%2C+iPALM%2C+and+correlative+iPALM-EM%5BTitle%5D)+AND+%22Method+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Imaging cellular ultrastructure by PALM, iPALM, and correlative iPALM-EM.</a> Method Cell Biol. 123, 273-294 (2013).</li>
<li>Chen, B. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lattice+light-sheet+microscopy%3A+Imaging+molecules+to+embryos+at+high+spatiotemporal+resolution%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Lattice light-sheet microscopy: Imaging molecules to embryos at high spatiotemporal resolution.</a> Science. 346 (6208), 1257998(2014).</li>
<li>Planchon, T. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+three-dimensional+isotropic+imaging+of+living+cells+using+Bessel+beam+plane+illumination%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Rapid three-dimensional isotropic imaging of living cells using Bessel beam plane illumination.</a> Nat Methods. 8 (5), 417-423 (2011).</li>
</ol>

Die Autoren erklären, dass sie keine finanziellen Interessenkonflikte.

Die Notwendigkeit zu identifizieren und anschließend entwickeln optische Qualität Glasflächen, die Makrophagen Fusion fördern ergab sich aus der Tatsache, die bis vor kurzem nicht veröffentlichte Studie direkt Makrophagen Fusion im Rahmen des Wohnens visualisiert Proben3, 4. Dies ist dass Fusogenic Kunststoff-Oberflächen, die häufig verwendet werden, LWD Ziele erfordern und beschränken sich weitgehend auf Phase Kontrast-Optik. Diese Hindernisse wurden durch eine...

Die Bildung von MGCs begleitet eine Reihe von pathologischen Zuständen in den menschlichen Körper durch die chronische Entzündung1. Trotz Einigung, die Mononucleated Makrophagen zu bilden MGCs2vereinen, erstaunlich wenige Studien Fusion in Zusammenhang mit lebenden Exemplaren3,4. Und zwar deshalb, weil saubere Glasflächen, die für die meisten bildgebenden Verfahren nicht Makrophagen Fusion, wenn durch inflammatorische Zytokine5fördern. In der Tat, wenn sauberes Glas als Trägermaterial für Makrophagen Fusion, dann niedrige mittlere Vergrößerung Ziele (z.B. 10-20 X) und mehr als 15 h Dauerbetrieb verwendet wird Bildgebung müssen häufig eine einzelne Fusion Ereignis beobachten.
Auf der anderen Hand, Fusogenic Kunststoff-Oberflächen (z.B. Permanox) oder bakteriologische Qualität Kunststoff fördern Sie Fusion2. Bildgebung durch Kunststoff ist jedoch problematisch, da das Substrat dick ist und streut das Licht. Dies erschwert, imaging, da lange arbeiten Abstand (LWD) Ziele erforderlich sind. LWD-Ziele haben jedoch in der Regel geringe Lichtstärke Kapazität im Vergleich zu ihrem Pendant Deckglas korrigiert. Darüber hinaus sind Techniken, die ausgenutzt werden Änderungen in der Polarität von Licht durch die Probe z. B. differential Interferenz Kontrast unmöglich, da Kunststoff doppelbrechenden ist. Die Barrieren, die verbunden sind mit der Verwendung von Kunststoff sind weiter durch die Tatsache unterstrichen, die es ist unmöglich vorherzusagen, wo die Makrophagen Fusion/MGC Bildung auf der Oberfläche entstehen wird. Zusammen, diese Einschränkungen schränken die Visualisierung von Makrophagen Fusion zur Phase Kontrast Optik, total imaging Dauer verlängert (> 15 Stunden ununterbrochen), und niedriger Auflösung.
Wir identifizierten vor kurzem eine höchst Fusogenic Glasoberfläche während der Durchführung Einzelmolekül-Superresolution Mikroskopie mit Fixed Makrophagen/MGCs4. Diese Beobachtung war überraschend, weil sauberes Glas Oberflächen fördern Fusion mit einer sehr niedrigen Rate von ~ 5 % nach 24 h in Anwesenheit von Interleukin-4 (IL-4) durch die Fusion index4. Wir fanden, dass die Fähigkeit zur Verschmelzung zu fördern durch Oleamide Verschmutzung. Adsorption von Oleamide oder anderen Verbindungen, die ähnlich wie langkettige Kohlenwasserstoffe enthalten gemacht das Glas Fusogenic. Die meisten Fusogenic zusammengesetzten (Paraffinwachs) war Micropatterned, und es vermittelt ein hohes Maß an räumlich-zeitliche Kontrolle über Makrophagen Fusion und eine 2-fache Erhöhung der Zahl der Fusion-Ereignisse, die innerhalb der gleichen Zeitspanne im Vergleich zu Permanox beobachtet. Diese optische Qualität Flächen versehen den ersten Blick in die morphologischen Merkmale und Kinetik, die die Bildung von MGCs in lebende Exemplare zu Regeln.
Dieses Protokoll beschreibt die Herstellung einer Vielzahl von Glasflächen, die verwendet werden können, um die Bildung von MGCs von lebenden Exemplaren zu überwachen. Darüber hinaus zeigen wir, dass diese Flächen Fernfeld Höchstauflösung Techniken zugänglich sind. Oberfläche Fertigung ist das Ziel des Experiments abhängig, und jede Fläche wird mit entsprechenden Beispielen im Text Verfahren beschrieben.

<table><tbody><tr><td>Plasmareiniger</td><td>Harrick Plasma</td><td>PCD-32G</td><td></td></tr><tr><td>Suchergitter</td><td>Elektronenmikroskopie Wissenschaften</td><td>G400F1-Au</td><td>jedes goldene TEM-Gitter funktioniert</td></tr><tr><td>Deckglas (22x22 mm)</td><td>Thor Labs</td><td>CG15CH</td><td>verwenden Sie nur Deckglas mit hoher Stringenz</td></tr><tr><td>Paraffinwachs</td><td>Sigma Aldrich</td><td>17310</td><td></td></tr><tr><td>Petrolatum</td><td>Sigma Aldrich</td><td>16415</td><td>muss &alpha;-tocopherolfrei sein, wenn substituiert</td></tr><tr><td>Oleamid</td><td>Sigma Aldrich</td><td>O2136</td><td>frisches</td></tr><tr><td>Isopropanol</td><td>Sigma Aldrich</td><td>278475</td><td></td></tr><tr><td>Toluol</td><td>Sigma Aldrich</td><td>244511</td><td></td></tr><tr><td>Aceton</td><td>VWR International</td><td>BDH1101</td><td></td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>Elektronenmikroskopie Wissenschaften</td><td>15050</td><td>verwenden niedrig gelöste Feststoffe Ethanol</td></tr><tr><td>Salzsäure</td><td>Fischer Scientific</td><td>A144C-212</td><td>zur sauren Reinigung von Deckglas</td></tr><tr><td>verwenden Slyguard 184</td><td>VWR International</td><td>102092-312</td> mischen <td>in einem Verhältnis von 1:10 und aushärten bei 50 & Grad; C für 4 h</td></tr><tr><td>35 mm Petrischale</td><td>Santa Cruz Biotech</td><td>sc-351864</td><td></td></tr><tr><td>Dumont Nr. 5 Pinzette</td><td>Elektronenmikroskopie wissenschaften</td><td>72705</td><td>ideal zum Entfernen des TEM-Gitters in Abschnitt 3.5</td></tr><tr><td>FBS</td><td>Atlanta Biological</td><td>S11550</td><td></td></tr><tr><td>DMEM:F12</td><td>Corning</td><td>10-092</td><td>enthält 15 mM HEPES</td></tr><tr><td>Pen/Strept</td><td>Corning</td><td>30-002-Cl</td><td></td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Corning</td><td>21-023</td><td></td></tr><tr><td>BSA-Lösung</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A9576</td><td>bei 0,1 % in HBSS zum Waschen von nicht adhärenten Makrophagen</td></tr><tr><td>IL-4</td><td>Genscript</td><td>Z02996</td><td>aliquot bei 10 &mu; g/mL und bei -20 & deg lagern; C</td></tr><tr><td>C57BL/6J</td><td>Jackson Laboratory</td><td>000664</td><td>Verwendung für fixierte Proben oder Techniken, die keine Kontrastmittel benötigen</td></tr><tr><td>eGFP-LifeAct-Mäuse</td><td>n/a</td> n<td>/a</td><td>Verwendung für die Live-Fluoreszenzbildgebung</td></tr><tr><td>Kimwipe</td><td>Kimberly Clark&nbsp;</td><td>34155</td><td>Verwendung zum Polieren von Kohlenwasserstoff-adsorbierten Oberflächen</td></tr></tbody></table>

herstellung optischer qualität glasflächen, makrophagen fusion zu studieren

Fabricating Optical-quality Glass Surfaces to Study Macrophage Fusion

Die Bildung von mehrkernigen Riesenzellen (MGCs) von lebenden Exemplaren zu visualisieren ist eine Herausforderung gewesen, die meisten live bildgebende Verfahren Ausbreitung von Licht durch das Glas erfordern, aber auf Glas Makrophagen Fusion ein seltenes Ereignis ist. Dieses Protokoll stellt die Herstellung von mehreren optischen Qualität Glasflächen wo Adsorption von Verbindungen, die langkettigen Kohlenwasserstoffe Glas verwandelt sich in eine Fusogenic Oberfläche. Vorbereitung der saubere Glasflächen als Ausgangsmaterial für Oberflächenmodifizierung ist erstbeschrieben. Zweitens ist eine Methode für die Adsorption von Verbindungen, die langkettigen Kohlenwasserstoffe zur Umwandlung von nicht-Fusogenic Glas in ein Fusogenic Substrat zur Verfügung gestellt. Drittens beschreibt dieses Protokoll Herstellung der Oberfläche Micropatterns, die ein hohes Maß an räumlich-zeitliche Kontrolle über MGC Bildung zu fördern. Schließlich wird die Herstellung Glasschalen unten beschrieben. Beispiele für die Verwendung dieses Systems in-vitro- Zelle als ein Modell zur Fusion von Makrophagen und MGC Bildung werden angezeigt.

Physikalisch-chemischen Parameter der Materialien haben dramatische Auswirkungen auf das Ausmaß der Makrophagen Fusion7,8,9,10. Darüber hinaus sind Oberflächenverunreinigungen bekannt, Makrophagen Fusion11zu fördern. Daher ist es wichtig zu sauberen Deckglas als Negativkontrolle für Makrophagen Fusion. Beim Reinigen, wie im Protokoll Nr. ...

Dieses Protokoll beschreibt die Herstellung von hochwertigem optischen Glasoberflächen adsorbiert mit Verbindungen, die langkettigen Kohlenwasserstoffe, die können verwendet werden, um Makrophagen Verschmelzung von lebenden Exemplaren zu überwachen und ermöglicht Super-Resolution-Mikroskopie von festen Proben .

Herstellung optischer Qualität Glasflächen, Makrophagen Fusion zu studieren

Visualizing the formation of multinucleated giant cells (MGCs) from living specimens has been challenging due to the fact that most live imaging ...

Das übergeordnete Ziel dieses Protokolls ist es, nicht-fusogenes Deckglas in eine fusogene Oberfläche umzuwandeln, die zur Untersuchung der Makrophagenfusion mit jeder Form der optischen Mikroskopie verwendet werden kann. Diese Methode kann helfen, die grundlegenden Fragen im Zusammenhang mit dem molekularen Mechanismus der Makrophagenfusion zu beantworten. Der Hauptvorteil dieses Verfahrens besteht darin, dass jede Mikroskoptechnik, insbesondere die Live-Bildgebung, zur Untersuchung der Makrophagenfusion verwendet werden kann.Das Verfahren wird von James Faust, dritter Stipendiat, und Arnat Balabiyev, einem Doktoranden aus meinem Labor, demonstriert. Zu Beginn wird in einem gut belüfteten chemischen Abzug ein hochstringentes Deckglas in 12-molarer Salzsäure unter Beschallung eine Stunde lang inkubiert. Wiederholen Sie den Schritt zwei weitere Male mit frischem 12-molaren HCL.Füllen Sie ein separates Becherglas mit Reinstwasser und fügen Sie das Deckglas hinzu. Beschallen Sie dann das Deckglas fünf bis 10 Minuten lang. Als nächstes inkubieren Sie das Deckglas 30 Minuten lang in reinem Aceton mit Ultraschall.Wiederholen Sie den Schritt zwei weitere Male. Füllen Sie dann ein separates Becherglas mit sterilem Reinstwasser und fügen Sie das Deckglas hinzu. Beschallen Sie das Deckglas fünf bis 10 Minuten lang.Inkubieren Sie das Deckglas 30 Minuten lang in 100%igem Ethylalkohol unter Beschallung. Wiederholen Sie diesen Schritt zwei weitere Male. Für die Langzeitlagerung legen Sie das säuregereinigte Deckglas in ein Gefäß, das mit reinem Ethylalkohol beladen ist.Alternativ können Sie das Deckglas mit Stickstoffgas trocknen und in einem Vakuumexsikkator aufbewahren. DMSO-freies Paraffinwachs mit hohem Schmelzpunkt in ultrareinem Toluol auflösen. Tragen Sie mit einer Glaspipette genügend Paraffin-Arbeitslösung auf ein trockenes, mit Säure gereinigtes Deckglas auf, um die Glasoberfläche gleichmäßig zu beschichten.Dekantieren Sie die überschüssige Lösung und trocknen Sie das Deckglas mit Stickstoffgas oder Luft. Polieren Sie das Deckglas mit einem fusselfreien Tuch mit drei Strichen entlang der X-Achse und dann mit drei Strichen entlang der Y-Achse. Unmittelbar vor dem Versuch wird das Deckglas mit sterilem Reinstwasser gewaschen und anschließend in einer biologischen Sicherheitshaube 15 bis 30 Minuten lang mit ultraviolettem Licht sterilisiert.Trocknen Sie das säuregereinigte Deckglas und stellen Sie das Glas auf einer ebenen Fläche ruhig. Tauchen Sie mit einer Pinzette vorsichtig ein goldenes Transmissionselektronenmikroskopie-Suchgitter in eine Arbeitslösung einer Kohlenwasserstoffverbindung. Leiten Sie überschüssige Lösung ab, indem Sie vorsichtig mit dem Gitter auf das Filterpapier klopfen und das Gitter sofort in der Mitte des Deckglases platzieren.Lassen Sie das Toluol zwei Minuten trocknen. Stellen Sie sicher, dass das Gitter mit dem Glas verbunden ist, indem Sie das Glas vorsichtig umdrehen. Wenn sich das Gitter löst, wiederholen Sie die Verklebung mit einem neuen säuregewaschenen Deckglas.Überprüfen Sie nach dem Entfernen des TEM-Gitters die Kontinuität des Mikromusters mit geringer Vergrößerung. Das Mikromuster sollte durchgehend erscheinen, aber das Material sollte nicht über die Ränder des Musters hinausragen. Verwenden Sie anschließend einen Plasmareiniger mit Vakuum-Gas-Plasma, um das Deckglas gemäß dem Textprotokoll zu reinigen.Entfernen Sie dann mit einer Pinzette mit feiner Spitze vorsichtig das Gitter von der Glasoberfläche, um das Mikromuster freizulegen. Bohren Sie mit einem Stufenbohrer ein sechs bis 10 Millimeter großes kreisrundes Loch mit glatten Kanten in den Boden einer 35 Millimeter großen Petrischale aus Kunststoff. Silikonelastomer vorsichtig nach Herstellerangaben mischen und entgasen.Tragen Sie eine dünne Schicht Elastomer in unmittelbarer Nähe des Randes des Lochs in der Petrischale auf. Das Elastomer sollte als durchgehendes dünnes Band erscheinen, das das Loch umgibt. Setzen Sie vorsichtig entweder ein fusogenes oder das trockene, säuregereinigte Deckglas auf die Schale, um das von Elastomer umgebene Loch abzudecken.Stellen Sie sicher, dass das Deckglas bündig mit dem Boden der Schale abschließt und über den Durchmesser des Lochs hinausragt, sodass ein erheblicher Teil des Glases mit dem Kunststoff in Kontakt kommt. Härten Sie das Elastomer aus, indem Sie es zwei bis drei Stunden lang bei 50 Grad Celsius backen. Injizieren Sie acht Wochen alte C57-Black-6-Mäuse mit 0,5 Millilitern einer sterilen Lösung von 4%Brewer's Thioglycolate, wie im Textprotokoll beschrieben.72 Stunden später, nachdem das Tier gemäß den genehmigten Richtlinien für Tierpflege und -verwendung eingeschläfert wurde, sammeln Sie Makrophagen durch interperitoneale Spülung mit eiskaltem PBS, das mit fünf Millimolar EDTA ergänzt wurde. Zentrifugieren Sie die Makrophagen drei Minuten lang bei 300-fachem G und resuspendieren Sie das Zellpellet in einem Milliliter DMEM/F-12, ergänzt mit 15 Millimolaren Häufchen, 10 % FBS und 1 % Antibiotika. Nachdem Sie die Zellen gezählt und verdünnt und 30 Minuten lang auf die Oberflächen aufgetragen haben, verwenden Sie HBSS 0,1 %BSA, um die Oberflächen zu waschen, und ersetzen Sie das Kulturmedium.Bringen Sie die Kulturen dann wieder in den Inkubator zurück. Zwei Stunden später aspirieren Sie das Medium und ersetzen es durch Kulturmedium, das mit 10 Nanogramm pro Milliliter IL4 ergänzt ist, bevor Sie die Zellen abbilden. Bei der Reinigung, wie in diesem Video beschrieben, ist das Deckglas außergewöhnlich flach und weist keine offensichtlichen Oberflächenmerkmale auf. Während die Absorption langkettiger Kohlenwasserstoffe mit anschließendem Polieren der Oberfläche einen Grad an Nanotopographie erzeugt, der hier zu sehen ist.Auf sauberen Deckglasoberflächen verschmelzen Makrophagen mit einer sehr geringen Geschwindigkeit. Im Gegensatz dazu durchlaufen die Makrophagen, die auf Oberflächen aufgetragen werden, die mit Verbindungen adsorbiert sind, die langkettige Kohlenwasserstoffe enthalten, nach 24 Stunden in Gegenwart von IL4 eine robuste Fusion. Darüber hinaus macht die Absorption von Lösungsmittel allein Glas nicht zu einer fusogenen Oberfläche.Hier wird die volle Breite bei halbem Maximum (FWHM) von Strukturen, die kleiner als die Beugungsgrenze des Lichtmikroskops sind, verwendet, um die potentiellen Auflösungsunterschiede quantitativ zu bewerten. Wichtig ist, dass es keinen offensichtlichen Unterschied in der FWHM von 100-Nanometer-Fluoreszenzkügelchen zwischen den verschiedenen Oberflächen gibt, was darauf hindeutet, dass die für die Fluoreszenzbildgebung erforderlichen Eigenschaften von Glas ausreichend erhalten waren. In diesem Experiment wurden Makrophagen auf die Oberflächen aufgebracht, die langkettige Kohlenwasserstoffe enthalten.Dann wurde eine Form der hochauflösenden Mikroskopie durchgeführt, die als 3D-direkte stochastische optische Rekonstruktionsmikroskopie bezeichnet wird. Diese Videos zeigen, dass eine Vielzahl von Live-Imaging-Verfahren möglich sind, wenn Makrophagen auf die Oberflächen aufgebracht werden. Sobald Sie das Glas beherrschen, um die Oberfläche fusogen zu machen, kann es in einer halben Stunde durchgeführt werden, wenn es richtig gemacht wird.Wenn Sie dieses Verfahren versuchen, ist es wichtig, daran zu denken, es sorgfältig zu befolgen. Im Anschluss an dieses Verfahren können andere Methoden, wie z. B. die Fluoreszenzmikroskopie, durchgeführt werden, um Ansichten der Fusion mit molekülspezifischem Kontrast zu erhalten. Dies wird Experimente ermöglichen, mit denen Proteine identifiziert werden sollen, die direkt am Zeitpunkt der Fusion beteiligt sind.Nach ihrer Entwicklung ebnete diese Technik den Weg für Forscher, zeitaufgelöste Ansichten der Makrophagenfusion zu erhalten. Dies wird uns in Zukunft helfen, den Mechanismus der Makrophagenfusion besser zu verstehen. Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie in der Lage sein, Deckglas zu modifizieren, um die Makrophagenfusion zu untersuchen.Bitte vergessen Sie nicht, dass die Arbeit mit Säure und Toluol äußerst gefährlich sein kann und dass bei diesem Verfahren immer PSA und eine angemessene Belüftung verwendet werden sollten.

fabricating-optical-quality-glass-surfaces-to-study-macrophage-fusion

Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie und Infektion

Source: Lê-Bury, G., et al. Phagosome Migration and Velocity Measured in Live Primary Human Macrophages Infected with HIV-1. J. Vis. Exp. (2016)This video demonstrates live confocal imaging of HIV-1-infected human macrophages to visualize and quantify phagosome migration using GFP fluorescence and bright field tracking, providing insights into how HIV alters intracellular trafficking during Fc receptor–mediated phagocytosis.

Live Imaging of Phagosome Migration in HIV-1-Infected Human Macrophages

Dieses Video zeigt einen Assay zur Überwachung unabhängiger Makrophagen-vermittelter Phagozytose-Ereignisse der roten Blutkörperchen (RBC). Immunglobulin G (IgG)-opsonisierte humane Erythrozyten der Maus werden mit Mausmakrophagen inkubiert und unter einem konfokalen Mikroskop betrachtet. Die Erythrozyten werden von Makrophagen über eine phagozytäre Becherbildung verschlungen und gezielt für den lysosomalen Abbau eingesetzt.

Echtzeit-Bildgebung der Makrophagen-Phagozytose von IgG-opsonisierten roten Blutkörperchen

Dieses Video zeigt eine hochauflösende Totalreflexionsfluoreszenz-Mikroskopietechnik (TIRF) zur Echtzeit-Visualisierung der Phagosomenbildung und des Verschlusses während der Makrophagen-vermittelten Phagozytose von IgG-opsonisierten roten Blutkörperchen (RBCs), die an der Oberfläche einer Glasbodenschale befestigt sind. Die Makrophagen dehnen Pseudopodien um die Erythrozyten aus und umhüllen sie in den Phagosomen, wodurch sie sich von der Glasoberfläche lösen.

TIRF-Mikroskopie-basierte Visualisierung der Phagosomenbildung und des Phagosomenverschlusses

Phagocytic cells play a major role in the innate immune system by removing and eliminating invading microorganisms in their phagosomes. Phagosome ...

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Ein Verfahren zur gezielten Zellisolierung über Glas Oberflächenfunktionalisierung

Wir beschreiben einen Versuchsaufbau, um die Bildung und den Verschluss von Phagosomen in lebenden Makrophagen mit Hilfe der Totalreflexions-Fluoreszenzmikroskopie in drei Dimensionen zu visualisieren. Es ermöglicht die Überwachung der Basis des phagozytischen Bechers, der sich ausdehnenden Pseudopoden sowie der genauen Stelle der Phagosomenspaltung.

&quot;Phagosomen Closure Assay&quot; zu visualisieren Phagosomen Formation in drei Dimensionen Mit Total Internal Reflection Fluoreszenz-Mikroskopie (TIRFM)

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