Name: Eine präklinische Mausmodell der Osteosarkom, die extrazelluläre Vesikel-vermittelter Kommunikation zwischen Tumor und mesenchymalen Stammzellen zu definieren (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-06T12:30:00.000+00:00
Duration: 11 min 15 s
Description: Erfahren Sie, wie ein präklinisches Mausmodell die Kommunikation zwischen Tumor und mesenchymalen Stammzellen über extrazelluläre Vesikel untersucht. Diese Methode ermöglicht die Analyse von Tumorprogression und Metastasenbildung in vivo.

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S.R. Baglio wurde durch ein Stipendium von Associazione Italiana per la Ricerca Sul Ariete (AIRC) kofinanziert von der Europäischen Union unterstützt. Darüber hinaus hat dieses Projekt erhielt Fördermittel aus der Europäischen Union Horizont 2020 Forschung und Innovation Programm unter der Marie Sklodowska-Curie Finanzhilfevereinbarung keine 660200 (, S.R. Baglio).

Menschlichen Fettgewebe für mesenchymale Stammzellen isoliert wurden erhalten aus der Abteilung für plastische Chirurgie des Tergooi Krankenhauses (Hilversum, Niederlande) nach Genehmigung durch institutionelle Ethikkommission und schriftliche Einwilligung. GFP-positiven adipösen MSCs wurden von der Abteilung für medizinische und chirurgische Wissenschaften für Kinder und Erwachsene (Universität von Modena und Reggio Emilia) erhalten.
Tierversuche wurden gemäß dem niederländischen Gesetz über Tierversuche durchgeführt, und das Protokoll stimmte der Ausschuss für Tierversuche am VU University medical Center, Amsterdam, Niederlande.
1. Isolierung von Tumor sezerniert extrazelluläre Vesikel.
<ol><li>EV-abgereicherte fetalen Bovine Serum (FBS) durch Zentrifugieren FBS bei 70.000 x g über Nacht (16 Stunden), keine Bremse, bei 4 ° C mit einer Ultra-schwingende Eimer Rotor vorbereiten (1 h für Entschleunigung erwarten). Sorgfältig sammeln des Überstands (EV-abgereicherte FBS) ohne zu stören das Pellet. Filtern Sie die EV-abgereicherte FBS mit 0,22 µm Filter.</li>
	<li>Kulturmedium EV erschöpft durch die Ergänzung Iscoves geändert Dulbecco Medium (IMDM) mit 100 U/mL Penicillin, 100 µg/mL Streptomycin, 2 mM Glutamin vorbereiten (1 x P/S/G) und 5 % EV-abgereicherte FBS.</li>
	<li>3 x 106 143B Zellen in 175 cm2 Fläschchen Saatgut und Kultur sie in EV-abgereicherte Nährmedium in einem Inkubator bei 37 ° C und 5 % CO2. Wenn die Zellen sind 80-90 % Zusammenfluss (in der Regel nach 36 h bis 48 h), sammeln des Überstands für EV-Isolierung aus 8 X 175 cm2 Kolben (28 mL/Flasche).</li>
	<li>Pre-Löschen des Zelle Überstands um Zellen und zellenrückstand durch Differentielle Zentrifugation (Zentrifugieren des Überstands der vorigen Runde jedes Mal) nach das folgende Protokoll zu entfernen:<ol>
<li>Zentrifugieren Sie den überstand zweimal bei 500 X g für 10 min.</li>
		<li>Zentrifugieren Sie den überstand zweimal bei 2000 X g für 15 min.</li>
		<li>Zentrifugieren Sie den überstand zweimal bei 10.000 x g für 30 min.</li>
		<li>Führen Sie alle Centrifugations bei 4 ° C mit maximaler Beschleunigung und Abbremsung Geschwindigkeitseinstellungen. Nach jedem Schritt sorgfältig sammeln des EV-haltigen Überstands, etwa 1 mL hinterlässt. Fahren Sie sofort um 1,5 oder Store Schritt bereits geräumten Medium bei-80 ° C bis EV Isolation bedingt.</li>
	</ol>
</li>
	<li>EVs durch Zentrifugieren der bereits geräumten konditionierten Mediums einmal 70.000 x g für 1 h zu isolieren, Bremse, bei 4 ° C in Ultra-Zentrifuge Röhrchen (Endvolumen 38,5 mL/Tube) mit einer Ultra-schwingende Eimer Rotor langsam.</li>
	<li>Sorgfältig entfernen den überstand, verlassen ca. 1 mL hinter Aufschwemmen der EV-haltigen Pellets in das restliche Volumen bündeln sie alle in einer Ultrazentrifuge Röhre und Phosphat-gepufferte Kochsalzlösung (PBS) bis zum kompletten tubenabfüllung hinzufügen (Endvolumen 38,5 mL).</li>
	<li>Zentrifuge wieder bei 70.000 x g für 1 h bei 4 ° C, ohne Bremse (1 h für Entschleunigung erwarten). Sorgfältig entfernen des Überstands ohne zu stören das Pellet und 100-200 µL hinterlassen.</li>
	<li>Aufschwemmen Sie EV-Pellet und passen Sie das Endvolumen zu 200 µL mit PBS (standardisiert für alle EV-Isolationen). Die EV-Vorbereitung sofort verwenden und lagern bei-80 ° C bis Einsatz22. Hinweis: EVs können bis zu 6 Monaten bei-80 ° c gelagert werden</li>
</ol>(2) EV Charakterisierung.
Gereinigte EVs können durch Übertragung Elektronenmikroskopie (TEM)23visualisiert werden.
<ol><li>Mix-EV Preps mit ein gleiches Volumen von 4 % Paraformaldehyd in Phosphatpuffer.</li>
	<li>Mantel 200 mesh Formvar-Kohlenstoff-beschichtete Nickel TEM Raster mit 5 µL der EV-Aussetzung für 20 min bei Raumtemperatur.</li>
	<li>Die EV-Proben auf TEM Gittern mit 1 % Glutaraldehyd in 0,1 M Phosphatpuffer (pH 7,0), Kontrast mit Uranyl Oxalat (pH 7,0) zu fixieren, und Einbetten in eine Mischung aus 4 % Uranyl Acetat und 2 % Methylcellulose im Verhältnis 1:9 auf dem Eis.</li>
	<li>Entfernen Sie Gitter mit Edelstahl Schleifen zu und tupfen Sie die überschüssige Flüssigkeit mit Filterpapier auf eine entsprechende Dicke der Folie Methyl Zellulose zu gewährleisten.</li>
	<li>Nach dem Trocknen untersuchen Sie Gitter mit einem Transmissions-Elektronenmikroskop und erfassen Sie Bilder mit einer digitalen Kamera gekoppelt, um die entsprechende Software.</li>
</ol>3. Bildung von MSCs durch Tumor-abgeleitete EVs.
<ol><li>Bereiten Sie MSC Kulturmedium ergänzt Alpha-minimale wesentliche Medium (Alpha-MEM) mit 4 % EV-abgereicherte menschlichen Thrombozyten Lysate (hPL)24, Heparin (10 U/mL) und 1 x P/S/G. Hinweis: EV-abgereicherte hPL erhält man nach dem Verfahren in Abschnitt 1.1 beschrieben.</li>
	<li>Samen 1,4 x 106 Fettgewebe abgeleitete MSCs pro 75 cm2 Kolben und Kultur sie in EV-abgereicherte MSC-Nährmedium in einem Inkubator bei 37 ° C und 5 % CO2.</li>
	<li>Wenn Zellen Zusammenfluss von 70 % zu erreichen, fügen 143B Osteosarkom - oder Kontrolle menschliche Fibroblasten (Hf)-EVs, 10 µL EV Vorbereitung/cm2 von Kultur-Kolben. 24 Stunden inkubieren Sie und fügen Sie die gleiche Menge an EVs für weitere 6 Stunden. Hinweis: Menschliche Fibroblasten kultiviert in Dulbeccos geändert Eagle Medium (DMEM) 10 % FBS und EVs sind isoliert, wie in Abschnitt 1 beschrieben.</li>
	<li>Sammeln des MSC Überstands, Zentrifugieren 1 X 500 X g für 5 min bei 4 ° C (mit maximaler Beschleunigung und Abbremsung Geschwindigkeitseinstellungen), an einen neuen Schlauch übertragen und Speichern des geräumten Überstands bei-80 ° C um zukünftige Zytokin Analyse (Abschnitt 5) zu ermöglichen.</li>
	<li>Für in Vivo Experimenten (siehe Abschnitt 6), GFP-positiven MSCs25 zu erziehen, wie in den Abschnitten 3.1 bis 3.3 beschrieben, sammeln die Zellen und Aufschwemmen sie mit PBS-Puffer auf eine Endkonzentration von 106 Zellen pro 100 µL. halten Sie Zellen auf Eis bis Injektion.</li>
</ol>(4) EV Internalisierung Assay.
EV-Aufnahme durch MSCs visualisieren, beschriften EVs mit einem grün-fluoreszierende Linker Farbstoff (GFLD) (im Handel erhältlich) nach der Hersteller-Protokolls:
<ol><li>Kurz, 180 µL des Verdünnungsmittels hinzu kommt der 200 µL EV Prep. 1 µL GFLD Farbstoff in 50 µL Verdünnungsmittel verdünnen und der verwässerte EV Prep 20 µL verdünnter Farbe hinzufügen.</li>
	<li>Vorsichtig mischen Sie, indem Sie pipettieren und 3 min bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubieren.</li>
	<li>Fügen Sie 5 mL 0,1 % BSA in PBS, transfer zum Ultra-Zentrifuge Röhren und füllen Sie das Rohr mit PBS (Endvolumen 38,5 mL/Tube).</li>
	<li>1 X bei 70.000 x g für 1 h bei 4 ° C, ohne Bremse Zentrifugieren (1 h für Entschleunigung erwarten). Nehmen Sie den überstand vorsichtig und Aufschwemmen der beschrifteten EV-Pellets in einem Endvolumen von 200 µL (Lautstärke mit PBS).</li>
	<li>Der MSC-Kultur der beschrifteten EVs hinzufügen oder bei-80 ° c Lagern Nach der Inkubation über Nacht bewerten Vesikel Internalisierung von Fluoreszenz-Mikroskopie und flow Cytometry7.</li>
</ol>5. Bewertung der MSC Zytokin Expressionsprofil.
<ol><li>Für die Multiplex-Quantifizierung von Interleukin-8 (IL-8), Interleukin-1β (IL-1β), Interleukin-6 (IL-6), Interleukin-10 (IL-10), Tumor-Nekrose-Faktor (TNF) und Interleukin - 12p 70 (IL - 12p 70) Protein-Ebene in der MSC konditioniert Medium (siehe Punkt 3.4), verwenden Sie eine handelsübliche durchflusszytometrischen Wulst Array (CBA) für menschliche inflammatorischen Zytokinen, die Anweisungen des Herstellers.</li>
	<li>Kurz, mischen Sie die Antikörper konjugiert Capture-Perlen und fügen sie Sie alle Assay Röhren. Die Rohre der Zytokin-standard-Verdünnungen oder konditionierten mittlere Proben hinzufügen.</li>
	<li>Fügen Sie die Erkennung Reagenz und inkubieren 3 Stunden bei RT</li>
	<li>Waschen Sie die Perlen mit dem mitgelieferten Waschlösung. Messen Sie die Proben mit einem Durchflusszytometer und analysieren Sie die Daten entsprechend den Anweisungen des Herstellers.</li>
</ol>6. Generation ein Orthotopic Xenograft-Maus-Modell der Osteosarkom.
<ol><li>Lassen Sie sechs Wochen altes Baby, weiblich, Athymic nackt-Foxn1nu Mäuse für mindestens eine Woche vor Beginn der experimentellen Verfahren zu akklimatisieren.</li>
	<li>Einen Tag vor dem chirurgischen Eingriff sowie perioperative Analgesie Paracetamol hinzufügen das Trinkwasser. Verdünnen Sie "Paracetamol Lösung für Kinder" (siehe Tabelle der Materialien) mit Wasser, um eine Endkonzentration von 2 mg/mL zu erhalten. Basierend auf einer durchschnittlichen Wasseraufnahme von 150 mL/kg/Tag, und einem durchschnittlichen Körpergewicht von 20 g, diese Dosis ist ausreichend, um eine Dosis von 6 mg zu erreichen/Maus/Tag (300 mg/kg/Tag).</li>
	<li>Analgetische Behandlung bis zu 24 Stunden nach der Operation, oder länger, wenn die Tiere von Schmerzen Anzeichen weiter.</li>
	<li>Am Tag des chirurgischen Eingriffs kultivierte Luciferase-positiv (Fluc) 143B Zellen (zuvor erzeugte Lentivirale Transduktion) sammeln, indem Sie bei 300 X g für 10 min zentrifugieren und Aufschwemmen der Zellen in einer Konzentration von 2 x 105 Zellen/µL mit PBS-Puffer. Die Zellsuspension auf Eis bis zu 6 Stunden mithalten.</li>
	<li>Autoklaven chirurgische Geräte. Bereiten Sie vor und reinigen Sie den Arbeitsbereich und die sterilisierten Schere und Pinzette auf sterile Blätter. 20 min vor dem chirurgischen Eingriff (Schritt 6,8), Spritzen die Tiere subkutan mit Buprenorphin (0,05 mg/kg, in 0,9 % Kochsalzlösung verdünnt) als Analgetikum mit 0,5 mL Insulinspritzen (29-Gauge-Nadel).</li>
	<li>Kurz vor jedem Tier zu betäuben, füllen Sie eine 10 µL Spritze mit mindestens 1 µL Zellsuspension konzentriert (Fluc) 143B (siehe Punkt 6.4).</li>
	<li>Betäuben Sie das Tier mit Isofluran Inhalation Anästhesie (ca. 2-3 % Sauerstoff). Überprüfen der Narkose durch Zehe-Kneifen das Tier. Wenn das Tier nicht reagiert, das kneifen, d. h. , die es zutiefst betäubt ist, gelten Sie die Salbe auf die Augen, Trockenheit während der Narkose zu verhindern.</li>
	<li>Positionieren Sie das Tier auf den Rücken mit dem Kopf in einem Anästhesie-Maske und mit den Beinen in Richtung des Bedieners. Biegen Sie das linke Knie. Wischen Sie die Haut mit 70 % Ethanol und gelten Sie Lidocain (2 %) mit einem Wattestäbchen 3 mal als lokale Schmerzmittel.</li>
	<li>Verwenden Sie eine sterile chirurgische Messer, um einen kleinen Einschnitt (ca. 5 mm) auf die Haut unterhalb des Knies aussetzen die Tibia zu machen. Bohren Sie ein Loch in der Tibia, ca. 2 mm unterhalb des Knies mit Mikro Spiralbohrer 0,8 mm. Seien Sie vorsichtig, nicht, durch beide Tibia Cortex zu bohren.</li>
	<li>Injizieren Sie 1 µL Zellsuspension (ca. 2 x 105 Zellen) in das Loch mit einem 26-Gauge-Nadel langsam (in ca. 5 Sekunden). Schließen Sie das Loch mit ein Tröpfchen von Gewebekleber Rückfluss der Suspension zu verhindern.</li>
	<li>Schließen Sie die Haut mit Monofilen Nahtmaterial und einen Tropfen Gewebekleber. Lassen Sie die Tiere erholen in einer gut geheizten Umgebung (Verwendung einer Wärmelampe). Nicht unbeaufsichtigt lassen Tiere bis sie ausreichend Bewusstsein zur Aufrechterhaltung der sternalen liegen wiedererlangt haben. Erst nachdem die Tiere aus der Narkose vollständig wiederhergestellt sind, kehren sie an ihren eigenen Käfigen.</li>
	<li>Zwei Tage nach der Inokulation Tumor, zu injizieren, EV erzogen oder naiv GFP-positiven MSCs (106 Zellen in 100 µL PBS, siehe Punkt 3.5) intravenös mit einer 0,5 mL Insulin Spritze in die Vene der Schweif der Mäuse.</li>
	<li>Folgen Sie Tumorwachstum durch Biolumineszenz imaging26 zweimal in der Woche. Zu diesem Zweck die Mäuse i.p mit 150 µL injizieren D-Luciferin (30 mg/mL) mit einer Insulin-Spritze. Zehn Minuten nach der Injektion, positionieren Sie die Tiere in die Biolumineszenz imaging-System und Messen der Photon-Flux von Tumorzellen erzeugt.</li>
	<li>Darüber hinaus Messen Sie den Durchmesser des primären Knochentumor mit einer Zange. Breite x Länge2 x 0,5 wird das Tumorvolumen (in mm3) geschätzt.</li>
	<li>Hinweis: Humane Endpoints werden definiert als Tumor Durchmesser > 15 mm oder Gewichtsverlust > 15 %.</li>
</ol>7. Bewertung der Lunge Knötchen Anzahl
<ol><li>Wenn eines der Tiere die humaneren Endpunkt definiert im Schritt 6.14 (in ca. 3-4 Wochen) erreicht, beenden Sie das Experiment zu und sammeln Sie und analysieren Sie alle relevanten Gewebe.</li>
	<li>Zehn Minuten vor Euthanization, 150 µL injizieren D-Luciferin (30 mg/mL) mit einer 0,5 mL Insulin Spritze.</li>
	<li>Die Tiere mit Isofluran Inhalation Anästhesie zu betäuben (siehe Punkt 6.7). Bestätigen Sie die Tiefe der Narkose durch das Fehlen von Reaktionen der Maus auf die Zehe kneifen. Die Mäuse durch zervikale Dislokation27einschläfern.</li>
	<li>Lunge, Leber, Milz und Nieren mit sterilisierten Schere und Pinzette zu sammeln. Waschen Sie die Organe in PBS, Blut-Spuren zu entfernen und sie auf eine Petrischale.</li>
	<li>Legen Sie die Petrischale mit den Organen in die Biolumineszenz imaging-System. Messen Sie die Biolumineszenz-Signal auf beiden Seiten der Organe. Sofort nach der Messung, stürzen Sie die Organe in 4 % Formalin fixieren sie (24-72 Stunden, bei RT) für künftige histologische Analysen.</li>
	<li>Die erhaltenen Bilder mit entsprechenden Bildbearbeitungssoftware durch manuelle Schwellwerte zu verarbeiten. Die Anzahl der Lunge Knötchen auf das jeweilige Bild. Zählen Sie die Gesamtzahl der Lunge Knötchen auf beiden Seiten der Lunge.</li>
</ol>8. die histologische Analyse
<ol><li>Zur histologischen Untersuchung der Lungengewebe:<ol>
<li>Betten Sie Formalin fixiert Organe in Paraffin ein und bereiten Sie 6 µm Gewebe Folien.</li>
		<li>Deparaffinate des Lungengewebes gleitet und Antigen-Retrieval durch Kochen sie für 15 min in 0,01 M Citrat-Puffer (pH 6) führen.</li>
		<li>Inkubieren Sie die Folien horizontal bei Raumtemperatur mit Anti-Human Vimentin Antikörper (200 µg/mL) verdünnt 1: 150 in Antikörper-Verdünnungsmittel (im Handel erhältlich) und anschließend mit dem sekundären, HRP-markierten Antikörper (0,5 mg/mL, Verdünnung 1: 500). Färben der Gewebe mit 3'-Diaminobenzidine (DAB) und Hämatoxylin Zähler Färbung.</li>
		<li>Beobachten Sie die gefärbten Gewebe Folien mit einem optischen Mikroskop gekoppelt an die entsprechende Kamera und Image-Software.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Das Vorhandensein von GFP-positiven MSCs in Maus Tibien bewerten:<ol>
<li>Entkalken Sie die Schienbeine in Ethylenediaminetetraacetic Säure (EDTA) 0,24 M, pH 7,2-7,4. Aktualisieren Sie EDTA Puffer täglich bis Knochen flexibler (ca. 1 Woche).</li>
		<li>Schienbeine zu entwässern und mit Paraffin zu infiltrieren. Betten Sie die Schienbeine (einschließlich Osteosarkom Gewebe) in Paraffin-Blöcke.</li>
		<li>Verwenden Sie ein Mikrotom 6 µm Paraffin Abschnitte vorzubereiten. Legen Sie die Paraffin-Abschnitte auf Objektträger. Nach dem Trocknen Lagern Sie Folien über Nacht bei Raumtemperatur</li>
		<li>Führen Sie Wärme vermittelt Antigen-Retrieval mit Citrat-Puffer (vgl. 8.1.2) und das Gewebe mit Anti-GFP Antikörper (ganze Antiserum) in einer 1:900 Verdünnung in Antikörper-Verdünnungsmittel färben. Counterstain Gewebe mit 4', 6-Diamidino-2-Phenylindole (DAPI).</li>
		<li>Beobachten Sie die Gewebe-Folien mit einem Fluoreszenzmikroskop gekoppelt, um die entsprechende Software zur Abbilderstellung.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Hanahan, D., Weinberg, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hallmarks+of+cancer%3A+The+next+generation%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Hallmarks of cancer: The next generation.</a> Cell. 144 (5), 646-674 (2011).</li>
<li>Karnoub, A. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenchymal+stem+cells+within+tumour+stroma+promote+breast+cancer+metastasis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Mesenchymal stem cells within tumour stroma promote breast cancer metastasis.</a> Nature. 449 (7162), 557-563 (2007).</li>
<li>Jung, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recruitment+of+mesenchymal+stem+cells+into+prostate+tumours+promotes+metastasis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Recruitment of mesenchymal stem cells into prostate tumours promotes metastasis.</a> Nat Commun. 4, 1795(2013).</li>
<li>Shahar, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Percentage+of+mesenchymal+stem+cells+in+high-grade+glioma+tumor+samples+correlates+with+patient+survival%5BTitle%5D)+AND+%22Neuro+Oncol%22%5BJournal%5D)">Percentage of mesenchymal stem cells in high-grade glioma tumor samples correlates with patient survival.</a> Neuro Oncol. 19 (5), (2016).</li>
<li>Behnan, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recruited+brain+tumor-derived+mesenchymal+stem+cells+contribute+to+brain+tumor+progression%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Recruited brain tumor-derived mesenchymal stem cells contribute to brain tumor progression.</a> Stem Cells. 32 (5), 1110-1123 (2014).</li>
<li>Giallongo, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Granulocyte-like+myeloid+derived+suppressor+cells+%28G-MDSC%29+are+increased+in+multiple+myeloma+and+are+driven+by+dysfunctional+mesenchymal+stem+cells+%28MSC%29%5BTitle%5D)+AND+%22Oncotarget%22%5BJournal%5D)">Granulocyte-like myeloid derived suppressor cells (G-MDSC) are increased in multiple myeloma and are driven by dysfunctional mesenchymal stem cells (MSC).</a> Oncotarget. 7 (52), 85764-85775 (2016).</li>
<li>Baglio, S. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blocking+tumor-educated+MSC+paracrine+activity+halts+osteosarcoma+progression%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Blocking tumor-educated MSC paracrine activity halts osteosarcoma progression.</a> Clin Cancer Res. 23 (14), 3721-3733 (2017).</li>
<li>Pittenger, M. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multilineage+potential+of+adult+human+mesenchymal+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells.</a> Science. 284 (5411), 143-147 (1999).</li>
<li>Shi, Y., Du, L., Lin, L., Wang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumour-associated+mesenchymal+stem%2Fstromal+cells%3A+emerging+therapeutic+targets%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Drug+Discov%22%5BJournal%5D)">Tumour-associated mesenchymal stem/stromal cells: emerging therapeutic targets.</a> Nat Rev Drug Discov. 16 (1), 35-52 (2017).</li>
<li>Ridge, S. M., Sullivan, F. J., Glynn, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenchymal+stem+cells%3A+key+players+in+cancer+progression%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cancer%22%5BJournal%5D)">Mesenchymal stem cells: key players in cancer progression.</a> Mol Cancer. 16 (1), 31(2017).</li>
<li>Luo, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Infiltrating+bone+marrow+mesenchymal+stem+cells+increase+prostate+cancer+stem+cell+population+and+metastatic+ability+via+secreting+cytokines+to+suppress+androgen+receptor+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">Infiltrating bone marrow mesenchymal stem cells increase prostate cancer stem cell population and metastatic ability via secreting cytokines to suppress androgen receptor signaling.</a> Oncogene. 33 (21), 2768-2778 (2013).</li>
<li>Huang, W. -H., Chang, M. -C., Tsai, K. -S., Hung, M. -C., Chen, H. -L., Hung, S. -C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenchymal+stem+cells+promote+growth+and+angiogenesis+of+tumors+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">Mesenchymal stem cells promote growth and angiogenesis of tumors in mice.</a> Oncogene. 32 (37), 4343-4354 (2013).</li>
<li>Patel, S. A., Meyer, J. R., Greco, S. J., Corcoran, K. E., Bryan, M., Rameshwar, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenchymal+stem+cells+protect+breast+cancer+cells+through+regulatory+T+cells%3A+role+of+mesenchymal+stem+cell-derived+TGF-beta%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Mesenchymal stem cells protect breast cancer cells through regulatory T cells: role of mesenchymal stem cell-derived TGF-beta.</a> J Immunol. 184 (10), 5885-5894 (2010).</li>
<li>Becker, A., Thakur, B. K., Weiss, J. M., Kim, H. S., Peinado, H., Lyden, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracellular+vesicles+in+cancer%3A+Cell-to-cell+mediators+of+metastasis%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Cell%22%5BJournal%5D)">Extracellular vesicles in cancer: Cell-to-cell mediators of metastasis.</a> Cancer Cell. 30 (6), 836-848 (2016).</li>
<li>Skog, J., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3423894/">Glioblastoma microvesicles transport RNA and protein that promote tumor growth and provide diagnostic biomarkers.</a> Nat Cell Biol. 10 (12), 1470-1476 (2008).</li>
<li>Peinado, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Melanoma+exosomes+educate+bone+marrow+progenitor+cells+toward+a+pro-metastatic+phenotype+through+MET%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Med%22%5BJournal%5D)">Melanoma exosomes educate bone marrow progenitor cells toward a pro-metastatic phenotype through MET.</a> Nat Med. 18 (6), 883-891 (2012).</li>
<li>Zomer, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+imaging+reveals+extracellular+vesicle-mediated+phenocopying+of+metastatic+behavior%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">In vivo imaging reveals extracellular vesicle-mediated phenocopying of metastatic behavior.</a> Cell. 161 (5), 1046-1057 (2015).</li>
<li>Webber, J., Steadman, R., Mason, M. D., Tabi, Z., Clayton, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cancer+exosomes+trigger+fibroblast+to+myofibroblast+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Cancer exosomes trigger fibroblast to myofibroblast differentiation.</a> Cancer Res. 70 (23), 9621-9630 (2010).</li>
<li>Webber, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differentiation+of+tumour-promoting+stromal+myofibroblasts+by+cancer+exosomes%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">Differentiation of tumour-promoting stromal myofibroblasts by cancer exosomes.</a> Oncogene. 34 (3), 290-302 (2015).</li>
<li>Zhou, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cancer-secreted+miR-105+destroys+vascular+endothelial+barriers+to+promote+metastasis%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Cell%22%5BJournal%5D)">Cancer-secreted miR-105 destroys vascular endothelial barriers to promote metastasis.</a> Cancer Cell. 25 (4), 501-515 (2014).</li>
<li>Whiteside, T., Anastasopoulou, E., Voutsas, I., Papamichail, M., Perez, S., Nunes, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exosomes+and+tumor-mediated+immune+suppression%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Rev+Mol+Diagn%22%5BJournal%5D)">Exosomes and tumor-mediated immune suppression.</a> Expert Rev Mol Diagn. 15 (10), 1293-1310 (2016).</li>
<li>Verweij, F. J., Van Eijndhoven, M. A. J., Middeldorp, J., Pegtel, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+viral+microRNA+exchange+via+exosomes+in+vitro+and+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Analysis of viral microRNA exchange via exosomes in vitro and in vivo.</a> Methods Mol Biol. 1024, 53-68 (2013).</li>
<li>Baglio, S. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+bone+marrow-+and+adipose-mesenchymal+stem+cells+secrete+exosomes+enriched+in+distinctive+miRNA+and+tRNA+species%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Res+Ther%22%5BJournal%5D)">Human bone marrow- and adipose-mesenchymal stem cells secrete exosomes enriched in distinctive miRNA and tRNA species.</a> Stem Cell Res Ther. 6 (1), 127(2015).</li>
<li>Naaijkens, B. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+platelet+lysate+as+a+fetal+bovine+serum+substitute+improves+human+adipose-derived+stromal+cell+culture+for+future+cardiac+repair+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Tissue+Res%22%5BJournal%5D)">Human platelet lysate as a fetal bovine serum substitute improves human adipose-derived stromal cell culture for future cardiac repair applications.</a> Cell Tissue Res. 348 (1), 119-130 (2012).</li>
<li>Grisendi, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adipose-derived+mesenchymal+stem+cells+as+stable+source+of+tumor+necrosis+factor-related+apoptosis-inducing+ligand+delivery+for+cancer+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Adipose-derived mesenchymal stem cells as stable source of tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand delivery for cancer therapy.</a> Cancer Res. 70 (9), 3718-3729 (2010).</li>
<li>Cosette, J., Abdelwahed, R. B., Donnou-Triffault, S., Sautès-Fridman, C., Flaud, P., Fisson, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioluminescence-based+tumor+quantification+method+for+monitoring+tumor+progression+and+treatment+effects+in+mouse+lymphoma+models%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Bioluminescence-based tumor quantification method for monitoring tumor progression and treatment effects in mouse lymphoma models.</a> J Vis Exp. (113), (2016).</li>
<li>Carbone, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessing+cervical+dislocation+as+a+humane+euthanasia+method+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Assoc+Lab+Anim+Sci%22%5BJournal%5D)">Assessing cervical dislocation as a humane euthanasia method in mice.</a> J Am Assoc Lab Anim Sci. 51 (3), 352-356 (2012).</li>
<li>Costa-Silva, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pancreatic+cancer+exosomes+initiate+pre-metastatic+niche+formation+in+the+liver%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Pancreatic cancer exosomes initiate pre-metastatic niche formation in the liver.</a> Nat Cell Biol. 17 (6), 816-826 (2015).</li>
<li>Hoshino, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumour+exosome+integrins+determine+organotropic+metastasis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Tumour exosome integrins determine organotropic metastasis.</a> Nature. 527 (7578), 329-335 (2015).</li>
<li>Clayton, A., Mitchell, J. P., Court, J., Mason, M. D., Tabi, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+tumor-derived+exosomes+selectively+impair+lymphocyte+responses+to+interleukin-2%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Human tumor-derived exosomes selectively impair lymphocyte responses to interleukin-2.</a> Cancer Res. 67 (15), 7458-7466 (2007).</li>
<li>Wieckowski, E. U., Visus, C., Szajnik, M., Szczepanski, M. J., Storkus, W. J., Whiteside, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor-derived+microvesicles+promote+regulatory+t+cell+expansion+and+induce+apoptosis+in+tumor-reactive+activated+cd8%2B+T+lymphocytes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Tumor-derived microvesicles promote regulatory t cell expansion and induce apoptosis in tumor-reactive activated cd8+ T lymphocytes.</a> J Immunol. 183 (6), 3720-3730 (2009).</li>
<li>Valenti, R., Huber, V., Iero, M., Filipazzi, P., Parmiani, G., Rivoltini, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor-released+microvesicles+as+vehicles+of+immunosuppression%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Tumor-released microvesicles as vehicles of immunosuppression.</a> Cancer Res. 67 (7), 2912-2915 (2007).</li>
<li>Costa-Silva, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pancreatic+cancer+exosomes+initiate+pre-metastatic+niche+formation+in+the+liver%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Pancreatic cancer exosomes initiate pre-metastatic niche formation in the liver.</a> Nat Cell Biol. 17 (6), 816-826 (2015).</li>
<li>Lin, L. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumour+cell-derived+exosomes+endow+mesenchymal+stromal+cells+with+tumour-promotion+capabilities%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">Tumour cell-derived exosomes endow mesenchymal stromal cells with tumour-promotion capabilities.</a> Oncogene. 35 (46), 6038-6042 (2016).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts preisgeben.

Tumor sezerniert extrazelluläre Vesikel (EVs) verändern die Physiologie von lokalen und entfernten Mesenchymale Zellen ein Tumor-unterstützendes Umfeld zu generieren. Hier beschreiben wir die Generation von einem präklinischen Mausmodell der Osteosarkom, die Dissektion der EV-vermittelten Wechselwirkungen zwischen Tumorzellen erlaubt und mesenchymalen Stammzellen (MSCs) in Vivo. Wir zeigen, dass systemische Injektion von menschlichen Tumor EV-gebildete MSCs bei Mäusen mit Osteosarkom Xenotransplantate stark Wach...

Der Tumor Mikroumgebung beteiligt sich aktiv an den meisten, wenn nicht alle Aspekte der Tumorgenese und Krebs Fortschreiten, einschließlich Metastasenbildung und die Entwicklung von Resistenzen gegen Therapeutika1. Dies unterstreicht die Notwendigkeit der präklinischen orthotopen Krebs-Maus-Modellen, die Dissektion der Auftritt in der Tumor-Nische komplexen Tumor-Stroma-Interaktionen zu ermöglichen.
Unter den vielen zellulären Komponenten des Tumors Mikroumgebung tragen mesenchymaler Stammzellen (MSCs) stark zur Krebsentwicklung bei mehreren Krebsarten wie Brustkrebs, Prostatakrebs, Hirntumoren, Multiple Myelom/Plasmozytom und Osteosarkom2 ,3,4,5,6,7. MSCs sind multipotente Stammzellen, die in verschiedenen Erwachsenen und fetalen Geweben, einschließlich Knochenmark, Fettgewebe, Plazenta, Nabelschnurblut und andere8,9befinden. In Reaktion auf inflammatorische Signale Krebs erzeugt MSCs migrieren in Tumor Standorte, in der Tumor-Mikroumgebung integrieren und letztlich in Unterstützung von Krebs Zellen10unterscheiden. Diese Krebs-assoziierten MSCs vorsehen Tumorprogression auf Tumorzellen und auf dem umgebenden Stroma2, handeln wesentliche Faktoren (z.B. Wachstumsfaktoren, Chemokine, Zytokine und immunsuppressive Mediatoren). 3 , 11 , 12 , 13. während die Tumor-fördernde Wirkung von Krebs-assoziierten MSCs in zahlreichen Krebs-Modelle untersucht wurden, sind die Mechanismen, durch die Tumorzellen MSCs Programmieren um eine Krebs-fördernde Nische Form, schlecht verstanden. Hier beschreiben wir die Generation eines orthotopen Xenograft-Modells, die die Studie der Pro-tumorigenic Interaktion zwischen Knochen Krebszellen und MSCs über extrazelluläre Vesikel (EVs) ausdrücklich erlaubt.
EVs sind wichtige Mediatoren der interzellulären Kommunikation zwischen Tumor und Stromazellen Zellen14. EVs tragen funktionelle Biomoleküle der Zelle Herkunft, einschließlich Proteine, Lipide und regulatorischen RNAs. Einmal in den Extrazellulärraum freigesetzt, diese Bläschen von umgebenden Zellen aufgenommen werden können oder an entfernten Standorten über das Blut oder die Lymphzirkulation durchgeführt und zutiefst Ziel Zelle Verhalten beeinflussen können. 15 , 16 , 17 zum Beispiel Aufnahme von Krebs EVs von Stromazellen Fibroblasten Myofibroblast Unterscheidung Angiogenese Unterstützung und Beschleunigung Tumor Wachstum in Vivo18,19, Internalisierung von Endothelzellen führen Zellen können Tumor-Angiogenese stimulieren und erhöhen die vaskuläre Permeabilität16,20, und Interaktion mit Immunzellen könnte zur Unterdrückung der Immunantwort Antitumor-21.
Wir vor kurzem gezeigt, mit einer Biolumineszenz orthotopen Xenograft-Maus-Modell der Osteosarkom, dass Tumorzellen hohe Mengen des EFD freigeben, die MSCs Pro tumorigenic und Pro-metastasiertem Phänotyp zu veranlassen. Dieser Effekt wird durch eine dramatische Veränderung in der MSC Zytokin Expressionsprofil (bezeichnet als "MSC Education") und kann durch die Gabe von einer therapeutischen Interleukin-6-Rezeptor (IL-6R) Antikörper7verhindert werden. Unsere Arbeit gezeigt, dass Krebs EVs sind entscheidende Modulatoren des MSC-Verhalten, wodurch eine Begründung für Mikroumgebung ausgerichtete Ansätze, Osteosarkom Fortschreiten zu stoppen. Hier beschreiben wir Schritt für Schritt-Protokoll um die EV-vermittelten Tumor-MSC Interaktion in Vivozu untersuchen. Dieses Modell soll: (1) speziell definieren Krebs EV-induzierte Veränderungen des MSC Verhalten in den Tumor Mikroumgebung, 2) auszuwerten, wie diese Interaktion zu Knochen Tumorwachstum und Metastasenbildung und (3) Studie beiträgt, ob stören EV-vermittelten Übersprechen in Vivo verhindert Krebs Fortschreiten.

<table><tbody><tr><td>Equipment</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ultra Zentrifuge</td><td>Beckman</td><td>Optima L-90K</td><td></td></tr><tr><td>Rotor SW32Ti</td><td>Beckman</td><td>369650</td><td>Im Manuskript als ultraschwingender Schaufelrotor bezeichnet</td></tr><tr><td>Transmissionselektronenmikroskop</td><td>Zeiss</td><td>EM109</td><td>Oder ähnlich TEM</td></tr><tr><td>Digitalkamera</td><td>Nikon</td><td>DMX 1200F</td><td>Oder ähnliche Kamera</td></tr><tr><td>Imaging-Software TEM&nbsp;</td><td>Nikon</td><td>ACT-1</td><td></td></tr><tr><td>Fluoreszenzmikroskop</td><td>Zeiss</td><td>Imager.D2</td><td>Oder ähnlich Fluoreszenzmikroskop</td></tr><tr><td>Bildgebungssoftware FM</td><td>Zeiss</td><td>ZEN Blue</td><td></td></tr><tr><td>Incubator</td><td>Nuaire</td><td>4750E</td><td></td></tr><tr><td>Zentrifuge</td><td>Hettick</td><td>ROTANTA 460R-80</td><td></td></tr> <tr><td>Freezer</td><td>Thermo electro corporation</td><td>n.a.</td><td></td></tr><tr><td>FACS</td><td>BD</td><td>BD FACScalibur</td><td>oder ähnliches Durchflusszytometer</td></tr><tr><td>Bohrer</td><td>Ferm</td><td>FCT-300</td><td>Mit 0,8 mm Bohrer</td></tr><tr><td>HSS Mikrospiralbohrer, 0,8 mm</td><td>Proxxon</td><td>28 852</td><td>0,8 mm Bohrer</td></tr><tr><td>IVIS Kamera</td><td>Xenogen</td><td>Ivis Lumina</td><td>Im Manuskript als Biolumineszenzkamera bezeichnet. Xenogen ist jetzt Teil der Perkin Elmer</td></tr><tr><td>Living Image Software2.60</td><td>Xenogen / Igor Por</td><td>n.a</td><td>Xenogen ist jetzt Teil von Perkin Elmer</td></tr><tr><td>10 &micro; L Spritze</td><td>Hamilton</td><td>Neuros Modell 1701 RN</td><td></td></tr><tr><td>Nadel: Hamilton RN Nadel für Spritze, 26 Gauge, Pointstyle AS, benutzerdefinierte Länge 2 cm</td><td>Hamilton</td><td>n.a.Caliper</td><td></td></tr> <tr><td></td><td>Mitutoyo</td><td>G08004463</td><td></td></tr><tr><td>Autoklav</td><td>Astell</td><td>n.a.Wärmelampe</td><td></td></tr> <tr><td></td><td>Philips</td><td>n.a.</td><td></td></tr><tr><td>Culture media</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fötales Rinderserum</td><td>Hyclone</td><td>RYG35912</td><td></td></tr><tr><td>Thrombozytenlysat</td><td>n.a.n.a.IMDM</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>medium</td><td>Lonza</td><td>BE12-722F</td><td></td></tr><tr><td>alpha-MEM medium</td><td>Lonza</td><td>BE02-002F</td><td></td></tr><tr><td>DMEM medium</td><td>Lonza</td><td>BE12-614F</td><td></td></tr><tr><td>Pen/Streptokokken/Glutamin</td><td>GIBCO</td><td>10378-016</td><td></td></tr><tr><td>Heparin</td><td>LEO</td><td>012866-08</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin/EDTA (10x)</td><td>GIBCO</td><td>15400-054</td><td></td></tr><tr><td>Cells</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>adipose deriverd MSCs</td> n.a.n.a.GFP-positive <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>MSCs</td><td>n.a.n.a.humane</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Fibroblasten</td><td>n.a.n.a</td><td>.</td><td></td></tr><tr><td>143B Zellen</td><td>ATCC</td><td>CRL-8303</td><td></td></tr><tr><td>FLUC-143B Zellen</td><td>ATCC</td><td>CRL-8303</td><td>Transduced</td></tr><tr><td>Disposables</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kulturflaschen 175 cm2</td><td>CELLSTAR</td><td>660175</td><td></td></tr><tr><td>50 mL Röhrchen</td><td>Greiner bio-one</td><td>210261</td><td></td></tr><tr><td>Gefrierröhrchen</td><td>Thermowissenschaftliche</td><td>377224</td><td></td></tr><tr><td>Ultra-Clear-Röhrchen</td><td>Beckman</td><td>344058</td><td>Im Manuskript als Ultra-Zentrifugenröhrchen</td></tr><tr><td>0,22 & Mikro bezeichnet; m Filter</td><td>Millex</td><td>SLGV033RS</td><td></td></tr><tr><td>200 Mesh Formvar-kohlenstoffbeschichtete Nickelgitter</td><td>EMS (Elektronenmikroskopie)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>0,5 mL Insulinspritzen mit 29G Nadel</td><td>Terumo</td><td>U-100&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Petrischale</td><td>Sigma - Aldrich</td><td>P7612</td><td></td></tr><tr><td>Filterpapier&nbsp;</td><td>Thermo fisher Scientific</td><td>50363215</td><td></td></tr><tr><td>Reagenzien / Kits</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehyd</td><td>Alfa Aeser</td><td>43368.9M</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Braun</td><td>220/12257974/110</td><td></td></tr><tr><td>Glutaraldehyd</td><td>EMS (Elektronenmikroskopie)</td><td>16300</td><td></td></tr><tr><td>Uranyloxalat</td><td>EMS (Elektronenmikroskopie) Wissenschaften)</td><td>22510</td><td></td></tr><tr><td>Uranyacetat</td><td>EMS (Elektronenmikroskopie)</td><td>22400</td><td></td></tr><tr><td>Methylcellulose</td><td>EMS (Elektronenmikroskopie)</td><td>1560</td><td></td></tr><tr><td>PKH67</td><td>Sigma</td><td>mini67-1kt</td><td>Im Manuskript bezeichnet als GFLD</td></tr><tr><td>BSA</td><td>Sigma</td><td>A8412</td><td></td></tr><tr><td>CBA - humanes entzündliches Zytokin-Kit</td><td>BD</td><td>551811</td><td></td></tr><tr><td>Formaldehyd 37%</td><td>VWR</td><td>104003100</td><td></td></tr><tr><td>Kohlenstoffstahl chirurgische Klingen</td><td>Swann-Morton</td><td>206</td><td>Im Manuskript als chirurgisches Messer bezeichnet</td></tr>, <tr><td>Anti-Human-Vimentin-Antikörper</td>, <td>Santa Cruz</td><td>sc-6260</td>, <td>Klon V9</td></tr>, <tr><td>Antikörperverdünnungsmittel</td>, <td>DAKO</td><td>S0809</td><td></td></tr>, <tr><td>HRP-markierter Anti-Maus-IgG-Antikörper</td>, <td>Life Technologies</td><td>32230</td><td></td></tr><tr><td>DAB-kit</td><td>DAKO</td><td>K500711</td><td></td></tr><tr><td>Hämatoxyllin</td><td>Sigma</td><td>GHS232</td><td></td></tr><tr><td>EDTA-Puffer</td><td>n.a.n.a.Citratpuffer</td><td></td><td></td></tr> <tr><td></td><td>n.a.n.a.Kaninchen</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>polyklonaler Anti-GFP-Antikörper</td><td>Abcam</td><td>n.a.Ab290</td><td></td></tr> <tr><td>DAPI&nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>D1306</td><td></td></tr><tr><td>Paracetamol, 120 mg / 5 ml Sirup</td><td>Bayer</td><td>n.a.Sinaspril</td><td>, Paracetamol-Lösung für Kinder</td></tr><tr><td>Isofluran 1000 mg/g</td><td>Vumc Apotheke</td><td>n.a.Buprenofinhydrochlorid</td><td></td></tr><tr><td>, 0,3 mg/ml</td><td>Indivior UK Limited</td> n.a.Lidocain-HCL <td></td><td></td></tr><tr><td>2%</td><td>Vumc Apotheke</td><td>n.a.70</td><td></td></tr><tr><td>% Ethanol</td><td>VWR</td><td>93003.1006</td><td></td></tr><tr><td>Gewebekleber</td><td>Derma+Flex, formuliertes medizinisches Cyanacrylat</td><td>Vygon</td><td>LB604060</td></tr><tr><td>Augentropfen: Vidisec Carbogel, 2 mg/ml</td><td>Bausch+Lomb</td><td>n.a.D-Luciferin</td><td></td></tr><tr><td>, Kaliumsalz</td><td>Gold Biotechnologie</td><td>LUCK-1</td><td></td></tr><tr><td>Objektträger</td><td>Thermo scientific</td><td>630-0954</td><td></td></tr><tr><td>Edelstahlschlaufen&nbsp;</td><td>n.a.n.a</td><td>.</td><td></td></tr><tr><td>Mäuseexperimente</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mäuse, Hsd:Athymic Nude-Foxn1nu,&nbsp; weiblich, 6 Wochen bei Ankunft, bakterieller Status konform FELASA</td><td>ENVIGO</td><td>n.a.Papier-Zellstoff</td><td></td></tr> <tr><td>Smart Home (Käfiganreicherung)</td><td>Bio Services</td><td>n.a.Alpha-dri</td><td></td></tr> <tr><td>Einstreumaterial</td><td>Shepperd Speciality Papers</td><td>n.a. </td><td></td></tr><tr><td>Mäusefutter: Teklad global 18% Protein Nagetiernahrung</td><td>ENVIGO</td><td>2918-11416M</td><td></td></tr><tr><td>Nähte</td><td>Ethicon</td><td>V926H</td><td></td></tr><tr><td>Schere</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S3146-1EA</td> <td>(oder ähnlich)</td></tr> <tr><td>Pinzette</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F4142-1EA (</td><td>oder ähnlich)</td></tr></tbody></table>

eine präklinische mausmodell der osteosarkom, die extrazelluläre vesikel-vermittelter kommunikation zwischen tumor und mesenchymalen stammzellen zu definieren

A Preclinical Mouse Model of Osteosarcoma to Define the Extracellular Vesicle-mediated Communication Between Tumor and Mesenchymal Stem Cells

Innerhalb der Tumor Mikroumgebung beitragen ansässig oder rekrutierten mesenchymaler Stammzellen (MSCs) zur malignen Progression bei mehreren Krebsarten. Unter dem Einfluss von bestimmten Umweltsignale können diese adulten Stammzellen Parakrine Mediatoren führt zu beschleunigten Tumorwachstum und Metastasierung freigeben. Definieren das Übersprechen zwischen Tumor und MSCs ist von primärer Bedeutung zu verstehen, die Mechanismen der Tumorprogression und neue Ziele für eine therapeutische Intervention zu identifizieren.
Krebszellen produzieren große Mengen von extrazellulären Vesikeln (EVs), die das Verhalten der Zielzellen in der Mikroumgebung Tumor oder an entfernten Standorten tiefgreifend beeinflussen können. Tumor-EVs beilegen funktionellen Biomoleküle, einschließlich der entzündlichen RNAs und (Onko) Proteine, die Stromale Zellen um die metastatische Verhalten der Krebszellen zu verbessern oder zur Teilnahme an der Pre-metastatischen Nische Bildung erziehen können. In diesem Artikel beschreiben wir die Entwicklung von einem präklinischen Krebs-Maus-Modell, die spezifische Auswertung an die EV-vermittelten Übersprechen zwischen Tumor und mesenchymalen Stammzellen ermöglicht. Zunächst beschreiben wir die Reinigung und Charakterisierung von Tumor sezerniert EVs und die Bewertung der EV-Internalisierung von MSCs. Wir machen dann Verwendung von eine Multiplex-Perle-basierte Immunoassay auszuwertende Änderung des MSC-Zytokin-Expressionsprofil induziert durch Krebs EVs. Schließlich veranschaulichen die Generation eine biolumineszente orthotopen Xenograft-Maus-Modell der Osteosarkom, die die Tumor-MSC-Interaktion rekapituliert, und zeigen den Beitrag der EV-gebildete MSCs zu Wachstum und Metastasierung Tumorbildung.
Unser Modell bietet die Möglichkeit, wie Krebs EVs ein Tumor tragenden Umfeld gestalten zu definieren und zu bewerten, ob die Blockade der EV-vermittelten Kommunikation zwischen Tumor und MSCs Krebs Fortschreiten verhindert.

In dieser Studie erkundeten wir die Fähigkeit des Osteosarkom abgesondert EVs, MSCs in Richtung Pro tumorigenic und Pro-metastasiertem Phänotyp zu erziehen. Wir zeigen, dass Osteosarkom Zellen exosom-wie EVs freigeben, die von MSCs internalisiert werden. Wir die Änderung des MSC Zytokin Expressionsprofil induziert durch Krebs EVs gemessen und bewertet die Wirkung der EV-gebildete MSCs auf Tumorwachstum und Metastasenbildung. Die allgemeine Darstellung des Studiendesigns ist in <strong cla...

Direkter Einspritzung von Krebs-abgeleiteten extrazellulären Vesikeln (EVs) führt zur Neuprogrammierung des Knochenmarks Tumorprogression zu unterstützen; die Zellen dieser Effekt vermitteln, ist jedoch unklar. Hierin beschreiben wir eine Schritt für Schritt Protokoll zur EV-vermittelten Tumor-mesenchymale Stammzellen (MSC) Interaktionen in VivoUntersuchung offenbart eine entscheidende Rolle für EV-gebildete MSCs in Metastasen.

Eine präklinische Mausmodell der Osteosarkom, die extrazelluläre Vesikel-vermittelter Kommunikation zwischen Tumor und mesenchymalen Stammzellen zu definieren

Within the tumor microenvironment, resident or recruited mesenchymal stem cells (MSCs) contribute to malignant progression in multiple cancer types. Under ...

Das übergeordnete Ziel dieses experimentellen Verfahrens ist es, ein präklinisches Mausmodell zu entwickeln, um die Rolle der extrazellulären vesikelvermittelten Kommunikation zwischen Tumor- und mesenchymalen Stammzellen zu untersuchen. Diese Methode kann helfen, mehrere Schlüsselfragen im Bereich der Krebsbiologie zu beantworten, nämlich wie Tumor- und mesenchymale Stammzellen mittels extrazellulärer Vesikel kommunizieren und ob dies das Fortschreiten der Krebserkrankung unterstützt. Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass sie es ermöglicht, die Rolle der mesenchymalen Stammzellanpassung durch Krebs-EVs auf das Fortschreiten und die Metastasenbildung in vivo zu untersuchen.Die Implikation dieses Verfahrens erstreckt sich auch auf unsere Krebstherapie, da wir GSA verwenden können, um die EV-Kommunikation und die Androgensignalisierung zu stören und das Fortschreiten der Krebserkrankung zu hemmen. Neben Einblicken in die EV-vermittelte Kommunikation beim Osteosarkom kann diese Methode auch auf viele andere Krebsarten angewendet werden. Tatsächlich wird Knochenmark, das aus den mesenchymalen Stammzellen gewonnen wird, leicht an mehr Stellen rekrutiert, wo es sich zu krebsunterstützenden Zellen differenzieren kann.Beginnen Sie mit der Aussaat von acht 175-Quadratzentimeter-Kolben mit jeweils 3 Millionen 143B-Zellen. Kultivieren Sie die Zellen 36 bis 48 Stunden lang mit EV-abgereichertem Medium. Wenn die Zellen zu 80 bis 90 % konfluent sind, sammeln Sie die Überstände aus den acht Kolben für die EV-Isolierung.Verwenden Sie anschließend eine Differenzzentrifugation, um alle Zellen und Zelltrümmer aus dem Überstand zu entfernen. Diese besteht aus wiederholten Zentrifugationen bei vier Grad Celsius mit maximaler Beschleunigung und Verzögerung. Nach jedem Zentrifugationsschritt wird der Überstand aufgefangen und ein Milliliter des Überstands im Zentrifugationsröhrchen zurückgelassen.Laden Sie nun einen vorgeklärten Überstand mit 38,5 Millilitern pro Röhrchen in Ultrazentrifugenröhrchen. Isolieren Sie dann die Elektrofahrzeuge mit einer Ultrazentrifuge bei 70.000 g für eine Stunde, mit einer langsamen Pause und bei vier Grad Celsius. Entfernen Sie nach der Ultrazentrifugation vorsichtig den Überstand, so dass etwa ein Milliliter zurückbleibt.Suspendieren Sie dann die EV-haltigen Pellets im verbleibenden Volumen. Bündeln Sie alle Suspensionen. Und waschen Sie die gepoolten Suspensionen mit PBS.Füllen Sie die Tube auf 38,5 Milliliter. Wiederholen Sie dann den Ultrazentrifugationszyklus, aber verwenden Sie keine Pause. Der Rotor sollte nach etwa einer Stunde aufhören zu drehen.Entfernen Sie anschließend vorsichtig den Überstand, ohne das Pellet zu stören, und lassen Sie 100 bis 200 Mikroliter Lösung übrig. Zum Schluss resuspendieren Sie das EV-Pellet und stellen Sie das endgültige Volumen mit PBS auf 200 Mikroliter ein. Die EVs können dann durch TEM charakterisiert, mit Farbstoffen für Aufnahmeexperimente markiert oder zur Ausbildung mesenchymaler Stammzellen für In-vivo-Experimente verwendet werden.Es ist entscheidend, dass die primären MSCs die richtige Zelldichte haben, bevor sie Krebs-EVs ausgesetzt werden. Die Zelle sollte zu etwa 70 % konfluent sein, um ein optimales EV-Verhältnis der Zellen zu erreichen und auch ein Überwachsen während der Bildungszeiten zu verhindern. Dieses Experiment verwendet akklimatisierte adulte Athymic Nude-Foxn1nu Mäuse.Einen Tag vor dem chirurgischen Eingriff Paracetamol über das Trinkwasser verabreichen. Bereiten Sie am Tag der Operation 143B-Zellen mit 200.000 pro Mikroliter PBS vor. 20 Minuten vor der Operation das Tier mit Buprenorfin versorgen.Befüllen Sie kurz vor der Anästhesie eine 10-Mikroliter-Spritze mit den konzentrierten 143B-Zellen. Nachdem Sie die richtige Anästhesie bestätigt und Augensalbe aufgetragen haben, positionieren Sie das Tier auf dem Rücken mit den Hinterbeinen in Richtung des Bedieners. Befestigen Sie als Nächstes eine Anästhesiemaske am Tier.Beugen Sie dann das linke Knie und wischen Sie die Haut mit drei abwechselnden Peelings aus 70 % Ethanol und Povidon-Jod ab und tragen Sie dann 2 % Lidocain als lokales Analgetikum auf. Machen Sie nun einen kleinen Schnitt in die Haut direkt unterhalb des Knies, um das Schienbein freizulegen. Machen Sie dann mit einem 0,8-Millimeter-Mikrotwist-Bohrer ein Nadelloch in das Schienbein, etwa 2 Millimeter unterhalb des Knies.Vermeiden Sie es, durch beide Tibiarinde zu bohren. Fahren Sie fort, indem Sie langsam einen Mikroliter Zellen über einen Zeitraum von etwa fünf Sekunden in das Loch injizieren. Verschließen Sie dann das Loch mit einem Tropfen Gewebekleber, um einen Rückfluss der Suspension zu verhindern.Schließen Sie die Operation ab, indem Sie die Haut mit Nähten und einem Tropfen Gewebekleber verschließen. Lassen Sie das Tier sich durch Erhitzen erholen und behandeln Sie es 24 Stunden lang mit Paracetamol. Verwenden Sie zwei Tage später eine 0,5-Millimeter-Insulinspritze, um die MSCs in die Schwanzvene zu injizieren.Die korrekte Verabreichung während einer Schwanzveneninjektion kann visuell bestätigt werden. Wenn ein weißer Bereich auftritt oder Sie auf einen Widerstand stoßen, injizieren Sie bitte erneut an einem Bereich oberhalb der vorherigen Injektionsstelle. Verfolgen Sie dann zweimal pro Woche das Tumorwachstum mittels Biolumineszenz.Injizieren Sie den Mäusen D-Luciferin über eine Insulinspritze und messen Sie 10 Minuten später den von den Tumorzellen erzeugten Photonenfluss mit einem bildgebenden System. Wenn der Tumordurchmesser eines Tieres größer als 15 Millimeter wird oder sein Gewichtsverlust 15 % übersteigt, schläfern Sie das Tier ein und sammeln Sie alle relevanten Gewebe. 10 Minuten vor der Einschläferung D-Luciferin injizieren, wie es vor der Bildgebung geschehen ist.Nach der Euthanasie entnehmen Sie Lunge, Leber, Milz und Nieren mit einer sterilisierten Schere und Pinzette. Waschen Sie das Blut aus den Organen mit PBS und ordnen Sie sie für die Bildgebung auf einer Petrischale an. Dokumentieren Sie mit einem Biolumineszenz-Bildgebungssystem beide Seiten der Organe.Sobald die Bilder aufgenommen wurden, fixieren Sie die Organe sofort für die zukünftige histologische Analyse. Um die Fotodokumente zu verarbeiten, wenden Sie einfach einen manuellen Schwellenwert an und zählen Sie die Anzahl der Knötchen in jedem Foto. Achten Sie darauf, für jedes Foto den gleichen Schwellenwert zu verwenden und das Gewebe aus allen Richtungen zu dokumentieren, insbesondere die Lunge.Nach der Entkalkung des Schienbeins der Maus fahren Sie mit der Dehydrierung und der Paraffineinbettung fort. Verwenden Sie dann ein Mikrotom, um Sechs-Mikron-Paraffinschnitte vorzubereiten, und sammeln Sie die Schnitte auf Objektträgern. Sobald die Objektträger getrocknet sind, lagern Sie sie über Nacht bei Raumtemperatur.Führen Sie am nächsten Tag eine wärmevermittelte Antigen-Entnahme mit Citratpuffer durch. Färben Sie dann das Gewebe mit Anti-GFP-Antikörpern bei eins bis 900 und anschließend mit einer DAPI-Gegenfärbung. Dokumentieren Sie abschließend die gefärbten Gewebeschnitte mittels Fluoreszenzmikroskopie.Die Reinheit der isolierten EVs wurde durch Elektronenmikroskopie bestätigt. Die Präparate enthielten Vesikel mit einem Durchmesser zwischen 40 und 100 Nanometern. Um zu beurteilen, ob Krebs-EVs mit MSCs interagieren, wurden die EVs mit einem grün fluoreszierenden lipophilen Linkerfarbstoff markiert und über Nacht mit MSCs inkubiert.Die effiziente Einführung von Elektrofahrzeugen durch MSCs wurde damit bestätigt. Eine immunmodulatorische Eigenschaft von EVs auf MSCs wurde mit Hilfe eines Multiplex-B-basierten Zytokin-Immunoassays bestätigt. Tumor-EVs verursachten eine erhöhte IL-8- und IL-6-Produktion in MSCs im Vergleich zu humanen Fibroblasten-Kontroll-EVs.Als nächstes wurde in einem orthotopen Xenotransplantat-Mausmodell des Osteosarkoms gezeigt, dass Mäuse, die mit EV-gebildeten MSCs behandelt wurden, das Tumorwachstum beschleunigten. Vier Tage nach der systemischen Injektion von GFP-exprimierenden MSCs wurden GFP-exprimierende Zellen im Knochenmark und im Tumorgewebe nachgewiesen, was ein MSC-Homing zur Tumorstelle zeigt. Ex-vivo-Bildgebungen verschiedener Organe zeigten die Bildung von Lungenknoten.Letztendlich wiesen Mäuse, die EV-gebildete MSCs erhielten, mehr Lungenmetastasen auf. Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man Stromazellen ex vivo mit Krebs-EVs aufklärt und die Auswirkungen von gebildeten Stromazellen in vivo anhand präklinischer Mausmodelle untersucht. Sobald dieses Verfahren gemeistert ist, kann es innerhalb von vier Wochen durchgeführt werden, vorausgesetzt, es stehen genügend Krebs-EVs zur Verfügung.Bei diesem Verfahren ist es wichtig, vorausschauend zu planen und eine reproduzierbare Reinigung der extrazellulären Vesikel des Krebses zu erreichen, sowie proliferierende mesenchymale Stammzellen mit geringer Passage zu verwenden.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Cancer Research

Krebsforschung

Das erfindungsgemäße Protokoll in der vorliegenden Studie berichtet ermöglicht selektiven Nachweis von Lungenmetastasen in einzelne Zelle Auflösung in Mäusen durch...

Verbesserte Visualisierung von Lungenmetastasen bei Single Cell Auflösung in Mäusen durch kombinierte<em&gt; In-situ</em&gt; Perfusion des Lungengewebes und X-Gal Färbung von<em&gt; LacZ</em&gt;-Tagged Tumor Cells

Dieses Video zeigt das chirurgische Verfahren zur bildgesteuerten Tumorresektion und Implantation eines Biogerüsts, das mit gentechnisch veränderten mesenchymalen Stammzellen oder MSCs besiedelt ist, die Tumornekrosefaktor-verwandte Apoptose-induzierende Liganden oder TRAIL exprimieren. Diese therapeutischen MSCs haben das Potenzial bei der Behandlung von Hirntumoren.

Fluoreszenzgesteuerte Tumorresektion und MSC-gesäte Gerüstimplantation im Mausmodell: Ein chirurgisches Verfahren zur Verabreichung therapeutischer mesenchymaler Stammzellen in die Resektionshöhle von Hirntumoren im Mausmodell

Dieses Manuskript beschreibt die Entwicklung eines Tiermodells, das es ermöglicht, die Auswirkungen von Tumorhypoxie auf die Metastasierung direkt zu testen und die Mechanismen ihrer Wirkung zu entschlüsseln. Obwohl sich die hier beschriebenen Experimente auf das Ewing-Sarkom konzentrieren, kann ein ähnlicher Ansatz auf andere Tumorarten angewendet werden.

In - vivo - Modell für die Prüfung von Wirkung von Hypoxie auf die Tumormetastasierung

Hier präsentieren wir Ihnen ein Protokoll für die Erzeugung von induzierten pluripotenten Stammzellen (iPSCs) von Li-Fraumeni Syndrom (LFS) Patienten abgeleiteten Fibroblasten, Differenzierung der iPSCs über mesenchymalen Stammzellen (MSCs), Osteoblasten und Modellierung in vivo Tumorgenese mit LFS Patienten abgeleitet Osteoblasten.

Modellierung von Osteosarkom mit Li-Fraumeni-Syndrom, die Patienten abgeleitet induzierten pluripotenten Stammzellen

Die extrazelluläre Matrix (BEM) Knochenmodell für Osteosarkom (OS) ist hier gut etabliert und gezeigt. Es kann als geeignete Gerüst für Primärtumor Wachstum in Vitro imitiert und bietet ein ideales Modell für das Studium der histologischen und cytogenic Heterogenität des Betriebssystems verwendet werden.

Dreidimensionale extrazelluläre Matrix Knochenmodell für Osteosarkom

Beschrieben wird hier die Verwendung einer methylierungsspezifischen Sondenverstärkungsmethode zur Analyse der Methylierungvon LINE-1-Elementen in mesenchymalen Stammzellen, die mit osteosarkomabgeleiteten extrazellulären Vesikeln behandelt werden. Ultrazentrifugation, ein beliebtes Verfahren zur Trennung extrazellulärer Vesikel vom fetalen Rinderserum, wird ebenfalls demonstriert.

LINE-1 Methylierungsanalyse in mesenchymalen Stammzellen, die mit Osteosarkom-abgeleiteten extrazellulären Vesikeln behandelt werden

Hier wird eine syngene orthotope Implantation gefolgt von einem Amputationsverfahren des Osteosarkoms mit spontaner Lungenmetastasierung beschrieben, das zur präklinischen Untersuchung der Metastasenbiologie und entwicklung neuartiger Therapeutika eingesetzt werden kann.

Ein syngenes orthotopes Osteosarkom Sprague Dawley Rattenmodell mit Amputation zur Kontrolle der Metastasenrate

Das vorliegende Protokoll beschreibt die Intratibia-Osteosarkom-Zellinjektion zur Generierung von Mausmodellen mit orthotopen Osteosarkom- und Lungenmetastasenläsionen.

Intratibiale Osteosarkom-Zellinjektion zur Erzeugung orthotoper Osteosarkom- und Lungenmetastasen-Mausmodelle

Das Protokoll bietet einen detaillierten Standardisierungsprozess der Abkochformel und der Sondentechnik am Beispiel der Yiqi Jiedu-Abkochung im Osteosarkom-Mausmodell. Es beschreibt den Tierschutz und verbessert die Zuverlässigkeit von Forschungsdaten, indem es effektive Strategien zur Untersuchung der therapeutischen Wirksamkeit und der molekularen Mechanismen von Abkochrezepturen in vivo bietet.

Sondenstrategie für die Sudformel der Traditionellen Chinesischen Medizin bei Osteosarkom-Modellmäusen

Das vorliegende Protokoll beschreibt das Verfahren zur Etablierung eines patientenabgeleiteten Xenotransplantat-Mausmodells (PDX) unter Verwendung von humanem Osteosarkomgewebe.

Etablierung eines patienteneigenen Xenotransplantat-Mausmodells mit humanem Osteosarkomgewebe

Erfahren Sie, wie ein präklinisches Mausmodell die Kommunikation zwischen Tumor und mesenchymalen Stammzellen über extrazelluläre Vesikel untersucht. Diese Methode ermöglicht die Analyse von Tumorprogression und Metastasenbildung in vivo.

Eine präklinische Mausmodell der Osteosarkom, die extrazelluläre Vesikel-vermittelter Kommunikation zwischen Tumor und mesenchymalen Stammzellen zu definieren (Video) | JoVE Journal

Eine präklinische Mausmodell der Osteosarkom, die extrazelluläre Vesikel-vermittelter Kommunikation zwischen Tumor und mesenchymalen Stammzellen zu definieren

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