Name: Homogene Zeitaufgelösten Förster Resonanz Energie Transfer-basierten Test zur Erkennung von Insulin-Sekretion (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 30 s
Description: Erfahren Sie die homogene zeitaufgelöste FRET-Methode zur schnellen Quantifizierung der Insulinsekretion aus pankreatischen Betazellen. Diese Technik ermöglicht präzise Messungen für Diabetesforschung und Wirkstoffentdeckung.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Die Autoren haben nichts preisgeben.

(1) INS-1E Zellen: Wartung und Beschichtung
<ol><li>Pflegen Sie, INS-1E Zellen in einem befeuchteten 37 ˚C/5% CO2 Inkubator und kultivierten mit RPMI 1640 Medium mit 5 % (V/V) Hitze-inaktivierten fötalen Rinderserum, 2 mM L-Glutamin, 10 mM HEPES, 1 mM Natrium Pyruvat, 100 U/mL Penicillin/Streptomycin ergänzt Lösung, 50 µM β-Mercaptoethanol. Kulturzellen Sie in 10 mL komplette RPMI 1640 Medium (pro Platte), bis zum Zusammenfluss von 80-90 % erreichen, wenn sie trypsiniert und passagiert oder verwendet werden können für die Insulin-Sekretion-Assay.</li>
	<li>
Tag 1: Aspirieren Sie Medien und waschen Sie Zellen einmal mit 5 mL vorgewärmten PBS. Fügen Sie 0,5 mL Trypsin (0,025 %) verdünnt 1:1 in 0,5 mL PBS trypsinize Zellen und 3-4 min bei 37 ° c inkubieren. Deaktivieren Sie Trypsin, indem eine 15 mL Zentrifugenröhrchen durch pipettieren 9 mL komplette Medien und Transfer Zellen hinzufügen.</li>
	<li>Pellet-Zellen durch Zentrifugation und erneut aussetzen der Zelle Pellet in etwa 5 mL frische Medien.</li>
	<li>Nehmen Sie 10 µL der neu suspendierten Zellen und mischen mit 10 µL Trypan blau vital Farbstoff für Zellviabilität zu überprüfen. Lebende und tote Zellen in 10 µL dieser Mischung mit einer Hemocytometer zu zählen. Lebensfähigkeit sollte über 90 % liegen. Verdünnen Sie die neu suspendierten Zellen in frische Medien auf 1 Million Zellen pro mL.</li>
	<li>0,5 mL INS-1E Samenzellen pro Bohrloch in einer Poly-L-Lysin vorbeschichtet 24-Well-Platte bei einer Dichte von 500.000 Zellen/gut.</li>
	<li>
Tag 2: Entfernen Sie die Medien 18-24 h nach der Beschichtung und 500 µL/Well frische RPMI 1640 Medien hinzufügen. Inkubieren Sie die Zellen für eine weitere 24 h damit Zellen vollständig von der vorherigen passaging Schritt zu erholen. Diese zusätzliche Zeit erlaubt die Zellen auf der Gewebekultur Platte verteilen.</li>
</ol>2. Insulin-Sekretion Assay (Tag 3)
<ol><li>KRB Puffer vorzubereiten: 132,2 mM NaCl, 3,6 mM KCl, 5 mM Nahco33, 0,5 mM NaH2PO4, 0,5 mM MgCl2, 1,5 mM CaCl2und 0,001 g/mL Rinderserumalbumin (BSA), pH 7.4.</li>
	<li>Aspirieren Sie Medien aus Zellen und zweimal mit vorgewärmten PBS waschen.</li>
	<li>Fügen Sie für den Glukose-Hunger-Schritt 450 µL/Well KRB (mit BSA) ohne Glukose für 1 h bei 37 ˚C/5% CO2.</li>
	<li>Während der Glukose-Hunger-Schritt vorzubereiten Verdünnungsreihen Gefäßsystem im KRB mit 200 mM Glukose (10 X-Konzentration).<ol>
<li>Bereiten Sie Medikament bei 10 x die Endkonzentration im KRB ergänzt mit 200 mM Glukose (auch 10 x die endgültige Assay-Glukosekonzentration vor). Wenn die Droge-Lager (plus die zusätzlichen 10 x Glukose) ist in DMSO, stellen Sie sicher, DMSO Prozentsatz Assay (idealerweise endgültige Prozentsatz von weniger als 0,1 % DMSO) konstant gehalten wird.</li>
		<li>Für Dopamin und Quinpirole Behandlungen, verwenden Sie einen abschließenden Test Medikament Konzentrationsbereich von 100 µM bis 100 pM (vom höchsten zum niedrigsten Konzentration), mit dem letzten Punkt der Dosis-Antwort enthält kein Medikament. Verwenden Sie für Bromocriptin einen abschließenden Test Konzentrationsbereich von 10 µM bis 22:00, mit dem letzten Punkt der Dosis-Antwort wird die wirkstofffreie Kontrolle.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Fügen Sie nach Glukose Hunger Medikament Verdünnungsreihen Assay, eine Dosis-Antwort zu produzieren hinzu.</li>
	<li>Fügen Sie 50 µL/Well jedes serielle Verdünnung in die entsprechenden Vertiefungen (total Assay Volume 500 µL).</li>
	<li>Zellen mit der jeweiligen Droge Verdünnungsreihen (in Anwesenheit von 20 mM Glukose) inkubieren Glukose Stimulation Schritt 90 min bei 37 ˚C/5% CO2. Eine Reihe von Kontroll-Vertiefungen enthalten: (1) Stimulation mit 20 mM Glukose allein in Ermangelung jeder zusätzliche medikamentöse und (2) Zellen, die weder mit Medikamenten noch Glukose (bietet eine basale Rate der Sekretion) stimuliert werden.</li>
	<li>Entfernen Sie nach der Stimulation Schritt vorsichtig die Überstände (Verwendung direkt oder bei 4 ° c). Hinweis: Eine zusätzliche 5 min. sanfte Zentrifugationsschritt (600 X g, 1 min) kann an dieser Stelle eingeführt werden, um alle verbleibenden Zellen in der Assay-Überstände entfernen.</li>
</ol>3. HTRF, Maßnahme Insulin-Sekretion
<ol><li>Verdünnen Sie Assay Überstände 01:10 in KRB (ohne BSA), vorzugsweise in klaren 96-Well Platten.</li>
	<li>Bereiten Sie der Insulin-Standardkurve für HTRF Insulin Assay (Tabelle 1).</li>
</ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Standard-Stammlösung 500 ng/ml</td>
			<td>Verdünnungsreihen</td>
			<td>Arbeiten [Insulin] ng/ml</td>
		</tr>
<tr>
<td>STD 7</td>
			<td>30 µl Lager + 140 µl KRB</td>
			<td>150</td>
		</tr>
<tr>
<td>STD 6</td>
			<td>30 µl STD 7 + 45 µl KRB</td>
			<td>60</td>
		</tr>
<tr>
<td>5 STD</td>
			<td>30 µl STD 6 + 45 µl KRB</td>
			<td>24</td>
		</tr>
<tr>
<td>4 STD</td>
			<td>30 µl STD 5 + 45 µl KRB</td>
			<td>9.6</td>
		</tr>
<tr>
<td>3 STD</td>
			<td>30 µl STD 4 + 45 µl KRB</td>
			<td>3.84</td>
		</tr>
<tr>
<td>2 STD</td>
			<td>30 µl STD 3 + 45 µl KRB</td>
			<td>1,54</td>
		</tr>
<tr>
<td>1 STD</td>
			<td>30 µl STD 2 + 45 µl KRB</td>
			<td>0,61</td>
		</tr>
<tr>
<td>STD 0</td>
			<td>45 µl KRB</td>
			<td>0</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="3">Hinweis: STD Lager ist 500 ng/ml</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabelle 1. Verdünnungsreihen die Standardkurve Insulin zu machen.
<ol start="3"><li>Die HTRF-Platte die Standardkurve Proben und der verdünnten Probe Überstände hinzufügen. Die Messung des ausgeschiedenen Insulin durch HTRF kann erfolgen, in eine 96-Well oder einem 384-Well-Plattenformat, unter Berücksichtigung, die das Assay-Volumen muss neu eingestellt werden. Einsatz 10 µL/Well Probe in 96-Well weiße Hälfte-Bereich Platten oder 5 µL/Well in einem weißen 384-Well geringem Volumen, Rundboden Teller (siehe Tabelle der Materialien).</li>
	<li>Antikörper-Mix in detektionspuffer vorzubereiten (siehe Tabelle der Materialien) in einem 1:2 Spender (Cryptate) / Akzeptor (XL-665) Verhältnis. Hinweis: Weitere spezifische Details über die HTRF Probe sind beim Hersteller erhältlich.</li>
	<li>Der Test auf 30 µL/Well (für eine 96-Well-Platte-Assay-Format) oder 15 µL/Well (für ein 384-Well-Platte-Assay-Format) Antikörper-Mischung hinzufügen.</li>
	<li>Die Dichtplatte und bei Raumtemperatur inkubieren.</li>
	<li>Platte nach 2 h, 4 h und/oder Übernachtung Inkubation mit Antikörpern, die mit der Platte-Leser und die entsprechenden HTRF optische Modul zu lesen (337 665 620 nm) (siehe Tabelle der Werkstoffe und Anweisungen des Herstellers). Die Integration Start-bei 60 µs und die Integrationszeit bei 400 µs. Einsatz 200 blinkt pro Bohrloch. Hinweis: Diese Parameter beruhten auf den Einsatz unserer speziellen Leser. Das Auslesen bei 620 nm und 665 nm variieren zwischen verschiedenen Instrumenten. Dies ist einer der Gründe, warum wir empfehlen die Verwendung der 665/620-Verhältnis. Bei der Berechnung dieses Verhältnis, Potentialdifferenzen von Leser zu Leser werden normalisiert und konsistente Werte unabhängig von dem Instrument zur Messung der HTRF bieten.</li>
</ol>(4) Datenanalyse und Normalisierung
<ol><li>Berechnen Sie die Insulin-Konzentrationen der Assay-Brunnen durch Extrapolation der ratiometrischen Fluoreszenz Lesungen (665 nm/620 nm), eine zweite Bestellung quadratische polynomische Kurve (Abbildung 2).</li>
</ol><img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57531/57531fig2.jpg"> Abbildung 2 : Insulin Standardkurve. Humaninsulin Lager der bekannten Konzentrationen wurde verwendet, um die Standardkurve Insulin zu generieren. Die daraus resultierende HTRF Verhältnisse (665 nm / 620 nm) wurden gegen die Insulin-Konzentrationen aufgetragen. Die Daten am besten passte, eine zweite Bestellung quadratische polynomische Kurve (R2 = 0.99996). Dies ist eine repräsentative Standardkurve. Fehlerbalken = SEM <a href="/files/ftp_upload/57531/57531fig2large.jpg" target="_blank">Klicken Sie bitte hier, um eine größere Version dieser Figur.</a>
<ol start="2"><li>Normalisieren Sie mit den hochgerechneten Daten wie ng/mL Insulin sezerniert (Insulin abgesondert in Reaktion auf die steigende Konzentrationen Liganden) auf den Mittelwert der % maximale Insulin-Sekretion Assay Brunnen (20 mM Glukose allein Zustand).</li>
	<li>Verwenden Sie die Kurve Passform (R2) aus einem einzigen Experiment um Intraplate Variation zu berechnen. Im Rahmen des Experiments R2 Einzelwerte von Intra experimentelle Duplikate, so dass die Berechnung der Standardfehler des Mittelwerts für die Kurvenanpassung abgeleitet.</li>
	<li>Verwenden Sie für die Bestimmung der interplate Variation die Daten aus mindestens drei einzelnen Experimente um den Standardfehler des Mittelwerts für die R-2 -Wert der kollektiven Kurve berechnen.</li>
</ol>

<ol><li>Taniguchi, C. M., Emanuelli, B., Kahn, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Critical+nodes+in+signalling+pathways%3A+Insights+into+insulin+action%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Critical nodes in signalling pathways: Insights into insulin action.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 7 (2), 85-96 (2006).</li>
<li>Vetere, A., Choudhary, A., Burns, S. M., Wagner, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeting+the+pancreatic+beta-cell+to+treat+diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Drug+Discov%22%5BJournal%5D)">Targeting the pancreatic beta-cell to treat diabetes.</a> Nat Rev Drug Discov. 13 (4), 278-289 (2014).</li>
<li>Despres, J. P., Lemieux, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Abdominal+obesity+and+metabolic+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Abdominal obesity and metabolic syndrome.</a> Nature. 444 (7121), 881-887 (2006).</li>
<li>Kahn, S. E., Hull, R. L., Utzschneider, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+linking+obesity+to+insulin+resistance+and+type+2+diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Mechanisms linking obesity to insulin resistance and type 2 diabetes.</a> Nature. 444 (7121), 840-846 (2006).</li>
<li>Barg, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+exocytosis+in+insulin-secreting+B-cells+and+glucagon-secreting+A-cells%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacol+Toxicol%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of exocytosis in insulin-secreting B-cells and glucagon-secreting A-cells.</a> Pharmacol Toxicol. 92 (1), 3-13 (2003).</li>
<li>Braun, M., Ramracheya, R., Rorsman, P. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22928575">Autocrine regulation of insulin secretion.</a> Diabetes Obes Metab. 14 Suppl 3, 143-151 (2012).</li>
<li>Farino, Z. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+rapid+insulin+assay+by+homogenous+time-resolved+fluorescence%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Development of a rapid insulin assay by homogenous time-resolved fluorescence.</a> PLoS One. 11 (2), e0148684(2016).</li>
<li>Simpson, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dopamine-mediated+autocrine+inhibitory+circuit+regulating+human+insulin+secretion+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">Dopamine-mediated autocrine inhibitory circuit regulating human insulin secretion in vitro.</a> Mol Endocrinol. 26 (10), 1757-1772 (2012).</li>
<li>Heyduk, E., Moxley, M. M., Salvatori, A., Corbett, J. A., Heyduk, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Homogeneous+insulin+and+C-Peptide+sensors+for+rapid+assessment+of+insulin+and+C-peptide+secretion+by+the+islets%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Homogeneous insulin and C-Peptide sensors for rapid assessment of insulin and C-peptide secretion by the islets.</a> Diabetes. 59 (10), 2360-2365 (2010).</li>
<li>Heyduk, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+protein+conformational+changes+by+FRET%2FLRET%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Measuring protein conformational changes by FRET/LRET.</a> Curr Opin Biotechnol. 13 (4), 292-296 (2002).</li>
<li>Degorce, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((HTRF%28%28R%29%29%3A+Pioneering+technology+for+high-throughput+screening%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Opin+Drug+Discov%22%5BJournal%5D)">HTRF((R)): Pioneering technology for high-throughput screening.</a> Expert Opin Drug Discov. 1 (7), 753-764 (2006).</li>
<li>Degorce, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((HTRF%3A+A+technology+tailored+for+drug+discovery+-+a+review+of+theoretical+aspects+and+recent+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Chem+Genomics%22%5BJournal%5D)">HTRF: A technology tailored for drug discovery - a review of theoretical aspects and recent applications.</a> Curr Chem Genomics. 3, 22-32 (2009).</li>
<li>Mathis, G. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10838427">HTRF(R) Technology.</a> J Biomol Screen. 4 (6), 309-314 (1999).</li>
<li>Daijo, J. E., Sportsman, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+time-resolved+fluorescence+immunoassay+for+insulin+in+rodent+plasma%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pharm+Biomed+Anal%22%5BJournal%5D)">A time-resolved fluorescence immunoassay for insulin in rodent plasma.</a> J Pharm Biomed Anal. 19 (3-4), 335-342 (1999).</li>
<li>Merglen, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glucose+sensitivity+and+metabolism-secretion+coupling+studied+during+two-year+continuous+culture+in+INS-1E+insulinoma+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Glucose sensitivity and metabolism-secretion coupling studied during two-year continuous culture in INS-1E insulinoma cells.</a> Endocrinology. 145 (2), 667-678 (2004).</li>
<li>Ustione, A., Piston, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dopamine+synthesis+and+D3+receptor+activation+in+pancreatic+beta-cells+regulates+insulin+secretion+and+intracellular+%5BCa%282%2B%29%5D+oscillations%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">Dopamine synthesis and D3 receptor activation in pancreatic beta-cells regulates insulin secretion and intracellular [Ca(2+)] oscillations.</a> Mol Endocrinol. 26 (11), 1928-1940 (2012).</li>
<li>Ustione, A., Piston, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+introduction+to+multiphoton+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Microsc%22%5BJournal%5D)">A simple introduction to multiphoton microscopy.</a> J Microsc. 243 (3), 221-226 (2011).</li>
<li>Ustione, A., Piston, D. W., Harris, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Minireview%3A+Dopaminergic+regulation+of+insulin+secretion+from+the+pancreatic+islet%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">Minireview: Dopaminergic regulation of insulin secretion from the pancreatic islet.</a> Mol Endocrinol. 27 (8), 1198-1207 (2013).</li>
<li>Rubi, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dopamine+D2-like+receptors+are+expressed+in+pancreatic+beta+cells+and+mediate+inhibition+of+insulin+secretion%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Dopamine D2-like receptors are expressed in pancreatic beta cells and mediate inhibition of insulin secretion.</a> J Biol Chem. 280 (44), 36824-36832 (2005).</li>
<li>Garcia-Tornadu, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disruption+of+the+dopamine+d2+receptor+impairs+insulin+secretion+and+causes+glucose+intolerance%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Disruption of the dopamine d2 receptor impairs insulin secretion and causes glucose intolerance.</a> Endocrinology. 151 (4), 1441-1450 (2010).</li>
<li>Garcia-Tornadu, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+insights+into+the+endocrine+and+metabolic+roles+of+dopamine+D2+receptors+gained+from+the+Drd2+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroendocrinology%22%5BJournal%5D)">New insights into the endocrine and metabolic roles of dopamine D2 receptors gained from the Drd2 mouse.</a> Neuroendocrinology. 92 (4), 207-214 (2010).</li>
<li>Lopez Vicchi, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dopaminergic+drugs+in+type+2+diabetes+and+glucose+homeostasis%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacol+Res%22%5BJournal%5D)">Dopaminergic drugs in type 2 diabetes and glucose homeostasis.</a> Pharmacol Res. 109, 74-80 (2016).</li>
<li>Kalra, S., Kalra, B., Agrawal, N., Kumar, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dopamine%3A+The+forgotten+felon+in+type+2+diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Recent+Pat+Endocr+Metab+Immune+Drug+Discov%22%5BJournal%5D)">Dopamine: The forgotten felon in type 2 diabetes.</a> Recent Pat Endocr Metab Immune Drug Discov. 5 (1), 61-65 (2011).</li>
<li>Mahajan, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bromocriptine+mesylate%3A+FDA-approved+novel+treatment+for+type-2+diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Indian+J+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Bromocriptine mesylate: FDA-approved novel treatment for type-2 diabetes.</a> Indian J Pharmacol. 41 (4), 197-198 (2009).</li>
<li>Caicedo, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Paracrine+and+autocrine+interactions+in+the+human+islet%3A+more+than+meets+the+eye%5BTitle%5D)+AND+%22Semin+Cell+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Paracrine and autocrine interactions in the human islet: more than meets the eye.</a> Semin Cell Dev Biol. 24 (1), 11-21 (2013).</li>
<li>Ballon, J. S., Pajvani, U., Freyberg, Z., Leibel, R. L., Lieberman, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+pathophysiology+of+metabolic+effects+of+antipsychotic+medications%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Endocrinol+Metab%22%5BJournal%5D)">Molecular pathophysiology of metabolic effects of antipsychotic medications.</a> Trends Endocrinol Metab. , (2014).</li>
<li>Freyberg, Z., Aslanoglou, D., Shah, R., Ballon, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intrinsic+and+antipsychotic+drug-induced+metabolic+dysfunction+in+schizophrenia%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Intrinsic and antipsychotic drug-induced metabolic dysfunction in schizophrenia.</a> Front Neurosci. 11, 432(2017).</li>
<li>de Leeuw van Weenen, E. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+dopamine+receptor+D2+agonist+bromocriptine+inhibits+glucose-stimulated+insulin+secretion+by+direct+activation+of+the+alpha2-adrenergic+receptors+in+beta+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">The dopamine receptor D2 agonist bromocriptine inhibits glucose-stimulated insulin secretion by direct activation of the alpha2-adrenergic receptors in beta cells.</a> Biochem Pharmacol. 79 (12), 1827-1836 (2010).</li>
</ol>

Wir danken Nicolas Pierre (Cisbio Bioassays) für hilfreiche Ratschläge und Dr. Pierre Maechler (Universität Genf) für die großzügige Bereitstellung von INS-1E Zellen. Diese Arbeit wurde unterstützt durch die Finanzierung aus dem Department of Defense (Grant PR141292, Z.F.), John F. und Nancy A. Emmerling Fund of The Pittsburgh Foundation (Z.F.).

Die hier beschriebenen HTRF Insulin Assay bietet eine schnelle, effiziente System zur Messung der Insulin-Sekretion aus einem kultivierten Zell-basierte System. Einer der wichtigsten Vorteile bietet dieser Test eine geringe Hintergrundsignal aufgrund der hohen Signal-Rausch-Verhältnis. Darüber hinaus haben wir bestätigt, dass das HTRF-Signal über einen längeren Zeitraum hinweg stabil ist (> 24 h)7. Dennoch, da die Insulin-Bindung monoklonaler Antikörper schnell bindende Sättigung nach Zugabe der P...

Die Verordnung des Energiestoffwechsels ist durch ein großen anabole Hormon Insulin verfeinert. Insulin ist synthetisiert und von pankreatischen Betazellen in Reaktion auf erhöhte extrazelluläre Blutzuckerwerte veröffentlicht. Das freigesetzte Insulin löst die Aufnahme von Glukose durch Insulin-empfindlichen Gewebe1,2. Physiologisch ist dies auf die Höhe der Glukosekonzentration nach einer Mahlzeit, gefolgt von Sekretion von Insulin, Glukoseaufnahme Regeln verbunden. Störungen in Glukose Homöostase zu metabolische Beeinträchtigungen bis hin zu Insulinresistenz führen und letztlich bei der Entstehung von Typ-2 Diabetes2,3,4.
Obwohl die Insulinsekretion ausgiebig untersucht wurde, bleiben seine Regulationsmechanismen schlecht verstanden. Ein kritischer Bereich Untersuchung wurde Identifikation von neuartigen Modulatoren der Insulin-Sekretion von Beta-Zellen5,6,7,8. Diese Studien erfordern ein besseres Verständnis der Kupplung Beziehung zwischen Stimulation von Glukose und Insulin-Sekretion. Daher ist die Fähigkeit, genau zu überwachen und zu quantifizieren, das Niveau der Glukose-stimulierten Insulinsekretion (GSIS) unerlässlich gewesen. Bisher wurden jedoch nur eine begrenzte Anzahl von Methoden zur Quantifizierung der GSIS mit Insulin-sezernierenden Zelllinien und/oder pankreatischen kleinen Inseln. Einer ist Radioimmunoassay (RIA), das Radioisotop-Tags Insulin und Antikörper verwendet. Die wichtigsten Einschränkungen dieses Ansatzes umfassen Fragen der Sicherheit durch die Handhabung und Entsorgung von radioaktiven Stoffen. Darüber hinaus ist diese Methode arbeitsintensiv, mit mehreren langen waschen und inkubationsschritte. Enzym-linked Immunosorbentprobe Assay (ELISA) ist ein weiterer Kosten- und arbeitsintensive Ansatz, der Antikörper gegen Insulin-Erkennung nutzt. Veränderung des Antikörpers Affinitäten und der Effizienz von Insulin zu erkennen sind limitierende Faktoren dieser Methode und die Reproduzierbarkeit der Ergebnisse beeinflussen können. ELISA weder RIA wurde für Hochdurchsatz-Experimente entwickelt. AlphaScreen ist ein homogenes Assay verwendet für die Erkennung und Messung der Insulin-Sekretion. AlphaScreen Technologie basiert auf der Umwandlung von ambient Sauerstoff in einem aufgeregt Sauerstoff Singulett-Zustand, die mit Chemilumineszenz Arten, was die Generation der Chemilumineszenz reagieren kann. Da die Probe homogen ist, entfallen viele der Waschschritte RIA und ELISA zugeordnet. Die Instabilität des Signals aufgrund der Art der Reaktion ist jedoch ein limitierender Faktor, der die Ablesung des Tests beeinflussen kann. () TR-Zange, entwickelt von Heyduk und Kollegen9, ist ein weiterer homogenen Ansatz zur Insulin-Messung basiert auf der Bindung von zwei separaten Antikörper gegen unterschiedliche Epitope auf die Insulin-Molekül. Die Antikörper sind jedes chemisch mit Doppel stranded DNA mit kurze ergänzende einzelne stranded DNA Überhänge. Bindung von Antikörpern an Insulin bringt sie zusammen und führt zu ein Doppel stranded DNA Duplex. Jeder Antikörper ist auch verbunden mit einer jeweiligen Spender oder Akzeptor Fluorophor, und der Verband der DNA Duplex vereint diese Fluorophore, Förster Resonanz Energietransfer (FRET) zu generieren. Eine mögliche Einschränkung der TR-Zange, liegt jedoch bei den Bund selbst. Die Unfähigkeit, schnell zerstreuen Hintergrundfluoreszenz während der Bund Reaktion führen zu relativ hohen Hintergrundfluoreszenz und ein low-Signal Rauschabstand innerhalb der Assay. Daher besteht ein Bedürfnis nach wie vor für eine zuverlässige, robuste und kostengünstige Assay zur Quantifizierung der GSIS in gewissem Sinne Hochdurchsatz.
Jüngste Fortschritte in der Biophysik gipfelten in der Entwicklung eines homogenen Zeitaufgelöste Fluoreszenz Energie Resonanz Transfer (HTRF) basierte Assays. Insbesondere während der Energietransfer innerhalb kann der Assay als FRET-basierte, genauer gesagt, bezeichnen HTRF Lumineszenz Energie Resonanz Transfer (LRET)10 abhängig von der nichtstrahlenden Übertragung von Energie zwischen Donor und Akzeptor Art11,12,13. Diese Unterscheidung ist wichtig, da der Zeitpunkt für eine Fluoreszenz oder Abschreckung basiert Bund Interaktion ist viel anders als bei LRET, obwohl die gleichen Arten von gating für Bund und LRET verwendet werden können. Darüber hinaus die Verwendung von seltenen Erden lanthanid Cryptate Verbindungen wie Europium oder Terbium Cryptate in HTRF produziert lange Fluoreszenz Halbwertszeiten12,14. Dies bietet den einzigartigen Vorteil der Einführung einer zeitlichen Verzögerung (µsec) zwischen Spender Erregung und die Messung der Emission von den Akzeptor (d. h. Zeitaufgelösten Assay). Diese zeitliche Verzögerung ermöglicht ausreichend Zeit für die Hintergrundfluoreszenz, vor der Messung der Akzeptor Emission Fluoreszenz zu zerstreuen. Infolgedessen das Auslesen ist frei von unspezifischen Fluoreszenz und damit ein hohes Signal-Rausch-Verhältnis erreicht ist (Abbildung 1). Darüber hinaus entfallen homogene Artder HTRF Waschschritten ungebundenen Arten, so dass des Tests viel schneller als ELISA oder RIA-basierten Methoden abwaschen.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57531/57531fig1.jpg"> Abbildung 1: Schematische des Mechanismus der Insulin-Erkennung HTRF. Zwei unabhängig generierten monoklonale Antikörper spezifisch erkennen und Binden an Insulin an verschiedenen Standorten. Diese Antikörper sind entweder dem Europium Cryptate Spender oder den XL665 Akzeptor konjugiert. Anregung des Spenders auf 337 nm Ergebnisse in Emission bei 620 nm. Die daraus resultierende Energieübertragung bewirkt XL665 emittieren bei einer längeren Wellenlänge, 665 nm. <a href="/files/ftp_upload/57531/57531fig1large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
Hier bieten wir ein detailliertes Protokoll für die Verwendung eines HTRF ausgerichteten Ansatzes an der GSIS aus INS-1E Zellen bestimmen, eine gut etablierte Insulin-sezernierenden Beta-Zellen abgeleitet Ratte Insulinom Zelle Zeile15. Darüber hinaus kann dieser Assay verwendet werden, für die Ermittlung der pharmakologischen Profils der molekularen Regulatoren der Insulin-Sekretion. Wir wenden dieses HTRF-basierte Insulin-Assay untersuchen Dopamin D2-Rezeptor Regulierung der GSIS mag. Immer mehr Studien haben gezeigt, dass der Neurotransmitter Dopamin ein wichtiger Regulator der GSIS8,16,17,18,19,20, ist 21 , 22. Dopamin wirkt GSIS in gewissem negativen Autokrine/Parakrine über Aktionen auf dem Dopamin D-2-Rezeptoren (D2, D3, D-4 -Rezeptoren) an der Oberfläche der Beta-Zellen der Bauchspeicheldrüse8 zum Ausdruck gebracht, wie , 16 , 19. mit dieser Assay, wir bestätigen Dopamin die Rolle als negativer Regulator der GSIS und nachweisen, dass die Dopamin D2-wie Rezeptor-Agonisten Bromocriptin und Quinpirole auch GSIS reduzieren.

<table><tbody><tr><td>96-Well-Weiß-Halbflächenplatte</td><td>Greiner Bio-One</td><td>82050-042</td><td></td></tr><tr><td>384-Well-Weißplatte mit niedrigem Volumen und rundem Boden</td><td>Corning</td><td>15100157</td><td></td></tr><tr><td>Insulin High Range Kit</td><td>Cisbio Bioassays</td><td>62IN1PEH&nbsp;</td><td>10.000 Tests HTRF-basiertes Insulin-Assay-Kit</td></tr><tr><td>PHERAstar FSX Platten-Reader</td><td>BMG Labtech</td><td>FSX</td><td>Platten-Reader angepasst für HTRF-basierte Assay-Messwerte</td></tr><tr><td>Plattenversiegeler</td><td>Fisher Scientific</td><td>DY992</td><td>Zum Verschließen der Platte, während Antikörper inkubieren</td></tr><tr><td>Hämozytometer</td><td>Hausser Scientific</td><td>3100</td><td></td></tr><tr><td>RPMI Medium 1640 (1x)</td><td>Gibco&nbsp;</td><td>11875-093</td><td>[+] L-Glutamin</td></tr><tr><td>Trypsin 0,05%&nbsp;</td><td>Corning</td><td>25-052-CI</td><td>0,53 mM EDTA, (-) Natriumbicarbonat</td></tr><tr><td>DPBS (Dulbecco-phosphatgepufferte Kochsalzlösung)</td><td>Corning</td><td>21-031-CV</td><td>Ohne Calcium und Magnesium</td></tr><tr><td>Fötales Rinderserum</td><td>Corning</td><td>35-010-CV</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Gibco&nbsp;</td><td>156-30-080</td><td></td></tr><tr><td>Natriumpyruvat</td><td>Gibco&nbsp;</td><td></td><td></td>11360070</tr><tr><td>Penicillin/Streptomycin-Lösung 100x</td><td>Corning</td><td>30-002 CT</td><td></td></tr><tr><td>2-Mercaptoethanol</td><td>Sigma</td><td>M1348</td><td></td></tr><tr><td>Trypanblauer Fleck (0,4%)</td><td>Gibco&nbsp;</td><td>15250-061</td><td></td></tr><tr><td>Dopaminhydrochlorid</td><td>Sigma</td><td>8502</td><td></td></tr><tr><td>Bromocriptinmesylat</td><td>Tocris</td><td>427</td><td></td></tr><tr><td>(-)-Chinpirolhydrochlorid</td><td>Tocris</td><td>1061</td><td></td></tr><tr><td>Rinderserumalbumin</td><td>Calbiochem</td><td>12659</td><td></td></tr><tr><td>Poly-L-Lysin</td><td>Sigma</td><td>P4832</td><td></td></tr><tr><td>Glukose</td><td>Sigma</td><td>G7021</td><td></td></tr><tr><td>DMSO (Dimethylsulfoxid)</td><td>Sigma</td><td>276855</td><td></td></tr></tbody></table>

homogene zeitaufgelösten förster resonanz energie transfer-basierten test zur erkennung von insulin-sekretion

Homogeneous Time-resolved F&#246;rster Resonance Energy Transfer-based Assay for Detection of Insulin Secretion

Die Erkennung der Insulin-Sekretion ist entscheidend für erhellendes Mechanismen der regulierten Sekretion sowie wie in Studien des Stoffwechsels. Obwohl zahlreiche Insulin-Assays für Dekaden bestanden haben, hat die jüngsten Aufkommen der homogenen Zeitaufgelösten Förster Resonance Energy Transfer (HTRF) Technologie diese Messungen deutlich vereinfacht. Dies ist eine schnelle, kostengünstige, reproduzierbare und robuste optische Assay abhängig, Antikörper konjugiert, helle Fluorophore mit lang anhaltende Emission, die Zeitaufgelöste Förster Resonance Energy Transfer erleichtert. Darüber hinaus ist HTRF Insulin Erkennung für die Entwicklung von Hochdurchsatz-Screening-Assays. Hier verwenden wir HTRF, um Insulin-Sekretion in INS-1E Zellen, eine Ratte Insulinom abgeleitet Zell-Linie zu erkennen. Dies ermöglicht es uns, basalen Ebenen von Insulin und deren Veränderungen in Reaktion auf die Stimulation der Glukose zu schätzen. Darüber hinaus verwenden wir diese Insulin-Detection-System, um die Rolle von Dopamin als negativer Regulator der Glukose-stimulierten Insulinsekretion (GSIS) zu bestätigen. In ähnlicher Weise, anderen Dopamin D2-wie-Rezeptor-Agonisten, Quinpirole und Bromocriptin, GSIS Konzentration abhängig zu senken. Unsere Ergebnisse zeigen das Dienstprogramm des Formates HTRF Insulin-Test bei der Bestimmung der Rolle von zahlreichen Medikamenten im GSIS und ihre pharmakologische Profile.

Wir validiert unsere Insulin HTRF Assay durch die Erzeugung eines Insulin-Standardkurve mit gereinigtem Humaninsulin Standards der vordefinierten Konzentrationen (Abbildung 2). Generation der Standardkurve erlaubt uns, die ratiometrischen Fluoreszenz Lesungen zu extrapolieren und somit bestimmen die sekretierten Insulinspiegel in Reaktion auf die medikamentöse Behandlungen (Abbildung 2). Intraplate Variante für Kurvenanpassung wa...

Hier präsentieren wir homogene Zeitaufgelöste FRET (HTRF) als effiziente Methode zum Schnellnachweis von Insulin aus den Zellen abgesondert.

Homogene Zeitaufgelösten Förster Resonanz Energie Transfer-basierten Test zur Erkennung von Insulin-Sekretion

The detection of insulin secretion is critical for elucidating mechanisms of regulated secretion as well as in studies of metabolism. Though numerous ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens ist es, die Spiegel des sezernierten Insulins aus insulinsekretierenden Zellen zu induzieren und genau zu quantifizieren. Diese Methode kann helfen, Schlüsselfragen im Bereich Diabetes zu beantworten, wie z. B. die Hauptmechanismen der glukosestimulierten Insulinsekretion in Betazellen der Bauchspeicheldrüse. Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass sie die Insulinsekretion als Reaktion auf die Glukosestimulation genau und schnell quantifizieren und potenzielle Auswirkungen von Arzneimitteln auf die Sekretion erkennen kann.Die Implikationen dieser Technik erstrecken sich auf die Therapie und Wirkstoffforschung zur Behandlung von Typ-2-Diabetes, da sie es uns ermöglichen wird, die Mechanismen der medikamenteninduzierten Stoffwechseldysfunktion besser zu verstehen. Obwohl diese Methode Einblicke in die Insulinsekretion von immortalisierten Betazelllinien geben kann, kann sie auch auf andere Systeme angewendet werden, z. B. auf intakte Pankreasinseln. Im Allgemeinen werden Personen, die neu in dieser Methode sind, aufgrund mehrerer Zellhandhabungsschritte und Arzneimittelvorbereitungen Schwierigkeiten haben.Die Idee zu dieser Methode hatten wir erst, als wir einen Schnelltest entwickeln wollten, um die Wirkung von dopaminergen Medikamenten auf die Insulinsekretion zu untersuchen. Die visuelle Demonstration dieser Methode ist von entscheidender Bedeutung, da die Schritte zur Handhabung der Zellen aufgrund der empfindlichen Natur der Zellen und der Bedeutung der Präzision, um die Konsistenz des Assays zwischen den Experimenten zu gewährleisten, schwer zu erlernen sind. Züchten Sie zunächst die INS-1E-Zellen, wie im Textprotokoll beschrieben.Sobald die Zellen die gewünschte Konfluenz erreicht haben, aspirieren Sie das Medium. Waschen Sie die Zellen mit fünf Millilitern phosphatgepufferter Kochsalzlösung. Geben Sie anschließend 0,5 Milliliter 025%iges Trypsin in die Zellen und lassen Sie die Zellen drei bis vier Minuten lang bei 37 Grad Celsius im Inkubator.Deaktivieren Sie das Trypsin, indem Sie neun Milliliter vollständiges Medium hinzufügen. Übertragen Sie anschließend die Zellen in ein 15-Milliliter-Zentrifugenröhrchen. Dann zentrifugieren Sie die Zellen zu einem Pellet.Nach dem Zentrifugieren das Pellet in fünf Millilitern frischem Medium auflösen. Pipettieren Sie 10 Mikroliter der resuspendierten Zellen aus dem Röhrchen und mischen Sie es mit 10 Mikrolitern Trypanblau, um die Lebensfähigkeit zu beurteilen. Verwenden Sie als Nächstes ein Hämozytometer, um die Anzahl der lebenden und toten Zellen zu zählen und sicherzustellen, dass 90 % der Zellen lebend sind.Nach der Zählung fügen Sie eine Million Zellen pro Milliliter in frisches RPMI 1640-Medium hinzu und säen Sie dann 0,5 Milliliter von 500.000 INS-1E-Zellen in jede Vertiefung einer mit Poly-L-Lysin beschichteten 24-Well-Platte. Lassen Sie die Platte einen ganzen Tag lang im Inkubator. Entfernen Sie am nächsten Tag das Medium und geben Sie 500 Mikroliter frisches RPMI 1640 Medium in jede der Vertiefungen.Inkubieren Sie die Platte weitere 24 Stunden lang, damit sich die Zellen auf den Well-Oberflächen ausbreiten können. Um den Assay durchzuführen, bereiten Sie zuerst den KRB-Puffer vor, aspirieren Sie dann das Medium aus jeder der Vertiefungen und waschen Sie es zweimal mit vorgewärmter phosphatgepufferter Kochsalzlösung. Geben Sie anschließend 450 Mikroliter KRB-Puffer, ergänzt mit Rinderserumalbumin, aber ohne Glukose, in jede Vertiefung.Lassen Sie die Kulturplatte eine Stunde lang bei 37 Grad Celsius und 5 % Kohlendioxid. Bereiten Sie serielle Verdünnungen der Arzneimittel in KRB-Puffer vor, ergänzt mit einer 10-fachen Endkonzentration von 200 Millimolar Glukose. Nach dem Schritt des Glukosemangels pipettieren Sie 50 Mikroliter seriell verdünnte Arzneimittel in jede der entsprechenden Vertiefungen.Zur Glukosestimulation fügen Sie die jeweiligen seriell verdünnten Arzneimittel in Gegenwart von 20 Millimolarglukose hinzu. Anschließend werden die Zellen 90 Minuten lang bei 37 Grad Celsius inkubiert. Sobald die Stimulation beendet ist, sammeln Sie die Überstände und geben Sie sie in beschriftete 1,5-Milliliter-Zentrifugenröhrchen.Übertragen Sie 10 Mikroliter jedes gesammelten Überstands in eine 96-Well-Platte. Geben Sie 90 Mikroliter KRB in jede Vertiefung, um ein Verdünnungsverhältnis von eins zu 10 zu erreichen. Mischen Sie die Verdünnungen, um die Homogenität zu gewährleisten.Holen Sie sich dann die Insulin-Standardkurve für den HTRF-Insulin-Assay. Geben Sie anschließend jeweils 10 Mikroliter der Standardinsulinproben und die verdünnten Assay-Überstände auf eine 96-Well-Platte. Bereiten Sie die Antikörpermischung in einem Ein- bis Zweispender vor, um ein Verhältnis im Nachweispuffer zu akzeptieren.Nachdem Sie die Antikörpermischung vorbereitet haben, geben Sie 30 Mikroliter davon in eine der Vertiefungen in einer 96-Well-Platte. Verschließen Sie die Platte und inkubieren Sie sie bei Raumtemperatur. Nach zweistündiger Inkubation lesen Sie die Platte mit dem Antikörpermix auf dem Plattenlesegerät ab.Verwenden Sie für die Messung das entsprechende HTRF-Optikmodul bei 665 und 620 Nanometern und verwenden Sie 200 Blitze für jede Vertiefung. Zunächst wird eine Insulin-Standardkurve gezeichnet, um die tatsächlichen Werte von Insulin aus den Assay-Proben zu extrapolieren. Die Standardkurve zeigt, dass der erhaltene ratiometrische Fluoreszenzwert in Abhängigkeit von den vordefinierten Standard-Humaninsulinkonzentrationen signifikant ansteigt.Als nächstes wird das basale Niveau der Insulinsekretion aus den INS-1E-Zellen in Gegenwart oder Abwesenheit von 20 Millimolarglukose untersucht. Aus dem Diagramm geht hervor, dass die Zellen in Gegenwart von Glukose etwa 100 Nanogramm pro Milliliter Insulin absondern. Interessanterweise ist der Insulinspiegel mit etwa 15 Nanogramm pro Milliliter in Abwesenheit von Glukose fast halb so hoch.Als nächstes werden die Zellen in Gegenwart von steigenden Dopaminkonzentrationen mit 20 Millimolar Glukose inkubiert. Das sezernierte Insulin wird auf den Durchschnittswert des prozentualen maximalen Insulins aus jeder Vertiefung normiert. Die Grafik zeigt, dass Dopamin GSIS hemmt, was auf die funktionelle Bedeutung von dopaminergen Rezeptoren in GSIS hinweist.Diese Grafik zeigt, dass Bromocriptin, ein Typ-2-Diabetes-Medikament, bei der Induktion von GSIS wirksamer ist als Dopamin. Dieses Diagramm zeigt, dass mit zunehmender Konzentration von Chinpirol ein D2-Agonist, obwohl weniger effizient als Bromocriptin, eine ähnliche Wirksamkeit wie Dopamin bei der Stimulierung der GSIS zeigt. Einmal gemeistert, kann diese Technik in vier bis fünf Stunden durchgeführt werden, wenn sie richtig ausgeführt wird.Wenn Sie dieses Verfahren versuchen, ist es wichtig, daran zu denken, sorgfältig und konsequent zu pipettieren. Im Anschluss an dieses Verfahren können andere funktionelle Assays wie der zyklische AMP HDRF-Assay durchgeführt werden, um zusätzliche Fragen zu beantworten, wie z.B. dopaminerge Wirkstoffeffekte auf die nachgeschaltete Signalübertragung. Nach ihrer Entwicklung ebnete diese Technik den Weg für Forscher auf dem Gebiet des Stoffwechsels, um andere endokrine sekretorische Signalwege sowohl in immortalisierten Zelllinien als auch in Pankreasinseln zu erforschen.Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie Sie die Insulinsekretion aus Zellen mit HDRF genau messen können.

homogeneous-time-resolved-frster-resonance-energy-transfer-based

Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Förster Resonanz Energie Transfer (FRET)-Mikroskopie ist eine leistungsstarke Technik für die Echtzeit-Überwachung der Signalwege in lebenden Zellen mit verschiedenen Biosensoren als Reporter. Hier beschreiben wir, wie eine benutzerdefinierte Epifluoreszenz bauen FRET Imaging-System aus handelsüblichen Komponenten und wie es zu benutzen für Experimente FRET.

FRET-Mikroskopie zur Echtzeit-Überwachung der Signalisierung Events in lebenden Zellen mit unimolekularen Biosensors

Dieses Video beschreibt den zeitaufgelösten Förster-Resonanzenergietransfer oder TR-FRET-Assay zur Bestimmung der endogenen Proteinphosphorylierung mit Hilfe von Donor- und Akzeptorfluorophoren, die auf Antikörpern markiert sind, die für ein Testprotein spezifisch sind. Diese Technik wurde entwickelt, um die Phosphorylierung von Testproteinen in Zelllysaten zu messen.

Zeitaufgelöster Forster-Resonanz-Energietransfer zur Überwachung der Proteinphosphorylierung in Zellen

Dieses Video zeigt den Elektrochemilumineszenz-Nachweis von Insel-Autoantikörpern in menschlichem Serum. Die Antikörper im Serum überbrücken das Ruthenium-konjugierte Antigen mit dem biotinylierten Capture-Antigen und bilden Komplexe, die durch Elektrochemilumineszenzmessungen nachgewiesen werden.

Nachweis von humanen Insel-Autoantikörpern mittels eines Elektrochemilumineszenz-Assays

Eine Beschreibung, wie Förster Resonance Energy Transfer integriert biologischen Sensoren (FIBS) zur in-situ-Kalibrierung Metabolic Profiling vorgestellt. Die FIBS kann verwendet werden, um die intrazellulären Spiegel von Metaboliten nicht-invasiv Unterstützung bei der Entwicklung von Stoffwechselmodelle und Hochdurchsatz-Screening von Bioprozess-Bedingungen zu messen.

FIBS-fähigen Nichtinvasive Metabolic Profiling

Dieses Protokoll beschreibt die schnelle und hochempfindliche Quantifizierung von Förster-Resonanzenergietransfer (FRET) Daten Sensor eine maßgeschneiderte portable FRET-Analyzer. Das Gerät wurde verwendet, Maltose innerhalb eines kritischen Temperaturbereich zu erkennen, die Detektionsempfindlichkeit maximiert, wodurch praktische und effiziente Beurteilung der Zuckergehalt.

Hochempfindliche und schnelle Fluoreszenzdetektion mit einem tragbaren FRET Analyzer

Das Ziel dieses Protokolls ist es, die Wirkung der Glukose-vermittelte Änderungen an mitochondrialen Atmung im Beisein von Naturstoffe auf intakt 832/13 Beta-Zellen mit Hilfe hochauflösender Respirometrie messen.

Hochauflösender Respirometrie, mitochondriale Funktion intakt Beta-Zellen in Anwesenheit von Naturstoffen zu messen

Dieses Protokoll beschreibt, wie man schnelle low-cost Luziferase-Assays bei mittlerem Durchsatz mit einer Insulin-verknüpften Gaußsia-Luziferase als Proxy für Insulinsekretion aus Beta-Zellen durchführt. Der Assay kann mit den meisten Lumineszenzplattenlesern und Mehrkanalpipetten durchgeführt werden.

Messung der relativen Insulinsekretion mit einem co-secreted Luciferase Surrogate

Zeitaufgelöste Förster-Resonanzenergietransfer-Zell-basierte Assay-Protokolle werden für die einfache, spezifische, sensitive und robuste Quantifizierung von endogenen phosphorylierten Signalwandlern und Aktivatoren der Transkription (STAT) 1/3/4/5/6-Proteinen in Zelllysaten im 384-Well-Format beschrieben.

Zeitaufgelöste Förster-Resonanz-Energietransfer-Assays zur Messung von endogenen phosphorylierten STAT-Proteinen in menschlichen Zellen

Dieses Protokoll beschreibt eine Methode zur synchronen Erfassung und Co-Registrierung von intrazellulären Signalereignissen und der Sekretion von Insulin und Glukagon durch primäre humane Pseudoinseln unter Verwendung der adenoviralen Verabreichung eines zyklischen Adenosinmonophosphat (cAMP)-Biosensors, eines cAMP-Differenzdetektors in situ (cADDis) und eines Mikroperifusionssystems.

Humanes Pseudoislet-System zur synchronen Bestimmung der Dynamik fluoreszierender Biosensoren und Hormonsekretionsprofile

Hier stellen wir ein Protokoll vor, um die räumlich-zeitliche Dynamik der Akt-Aktivierung und Phosphorylierung in lebenden HepG2-Zellen zu quantifizieren. Die Förster-Resonanzenergietransfer-Bildgebung (FRET) ist ein leistungsfähiges Werkzeug, das wertvolle Einblicke in die Insulinsignalwege und die Stoffwechselregulation in Krebszellen liefert.

Lebendzell-Förster-Resonanz-Energietransfer-Bildgebung der metabolisch regulierten Akt-Aktivierungsdynamik in HepG2-Zellen

Wir haben einen Duplex-in-situ-Hybridisierungsassay zur Kartierung der Insulinrezeptor-Isoformen IR-A und IR-B im murinen Plexus choroideus etabliert und damit die Einschränkungen traditioneller Methoden überwunden. Dieser hochauflösende Ansatz enthüllt die isoformspezifische Expression und bietet neue Einblicke in die Insulinsignalisierung im Gehirn und potenzielle isoform-gezielte Therapien für neurologische Erkrankungen.

Präzise Visualisierung der Insulinrezeptoren A und B im Gehirn von Mäusen mit einem RNA In Situ Hybridisierungsassay

Erfahren Sie die homogene zeitaufgelöste FRET-Methode zur schnellen Quantifizierung der Insulinsekretion aus pankreatischen Betazellen. Diese Technik ermöglicht präzise Messungen für Diabetesforschung und Wirkstoffentdeckung.

Homogene Zeitaufgelösten Förster Resonanz Energie Transfer-basierten Test zur Erkennung von Insulin-Sekretion

Weitere Videos entdecken